Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

אנו מתארים את ההליכים לבידוד של גידול oocytes מזקיקי השחלות בשלבים מוקדמים של פיתוח, כמו גם את ההתקנה של מערכת תרבות מבחנה אשר יכול לתמוך בצמיחה ובידול עד לשלב הבוגר במלואו.

Abstract

העתודה המוגבלת של אוציטים בוגרים ותו לא מהווים מחסום מרכזי להצלחת הרבייה בסיוע ליונקים. בהתחשב בכך שבמהלך תוחלת החיים של הרבייה רק כ 1% של oocytes בשחלה בוגרת ומבייצת, מספר טכניקות פותחו כדי להגדיל את הניצול של שמורת השחלות לאוכלוסייה הגדלה של זקיקים שאינם מבייצים. טכנולוגיות כאלה אפשרו התערבויות של שימור פוריות, תוכניות בחירה במשק החי ושימור מינים בסכנת הכחדה. עם זאת, הפוטנציאל העצום של שמורת השחלות עדיין לא נופק ברובו. בפרות, למשל, נעשו כמה ניסיונות לתמוך בתרבות המבחנה של אוציטים בשלבים התפתחותיים ספציפיים, אך פרוטוקולים יעילים ואמינים עדיין לא פותחו. כאן אנו מתארים מערכת תרבות השוחזרת את התנאים הפיזיולוגיים של שלב הזקיקים המתאים, המוגדרת להתפתח במבחנה הגדלה oocytes שנאספו מזקיקי אנטרל מוקדם של צב ים לשלב הבוגר במלואו, המקביל זקיק אנתלי בינוני ב vivo. שילוב של הורמונים ופוספודיסטרז 3 מעכב שימש כדי למנוע חידוש מיוטי בטרם עת כדי להנחות את ההבידול של oocyte.

Introduction

במהלך תוחלת החיים של הרבייה, רק חלק קטן של oocytes הנוכחיים בשחלה בוגרת, משתחררים בחצוצרות בעת הביוץ, והם זמינים להיות מופרית ולפתחלעובר קיימא 1. מצד שני, רוב האוציטים בתוך השחלה עוברים אטרזיה ולעולם לא מביצים. במבחנה עובר ייצור (IVP) טכנולוגיות ניסו להגדיל את הניצול של שמורת השחלות2,,3. עד כה, טכנולוגיות כאלה אפשרו התערבויות של שימור פוריות, תוכניות בחירה במשק החי ושימור מינים בסכנת הכחדה. אף על פי כן, רוב הפרוטוקולים להשתמש oocytes כי בעצם השלימו את שלב הצמיחה בתוך זקיק השחלות antral, ולכן מכונים oocytes גדל במלואו. בבקר, שבו טכנולוגיות IVP נמצאות בשימוש נרחב, oocytes גדל באופן מלא להגיע קוטר סופי של כ 120 μm נאספים זקיקים המשתרעים מ 2 עד 8 מ"מ קוטר (זקיקי אנטרל בינוני)1. עם הבידוד מהזקיקים, אוציטים כאלה הם במבחנה התבגרו ומופריים. הזיגוטים מתהתרבות לאחר מכן עד לשלב blastocyst או מועברים לנמען או cryopreserved. בבקר, כמו גם מינים רבים אחרים, למרות הפוטנציאל המוצע על ידי IVP, מספר העובר המיוצר במבחנה לכל פרה לא השתפר במידה רבה ב-40 השנים האחרונות. זאת בין היתר בשל המספר המוגבל של oocytes גדל באופן מלא המאכלסים שחלה בזמן נתון אשר ניתן לאחזר ולהיות נתון טכניקות IVPסטנדרטיות 4,5,6.

oocytes המוקפים בתוך זקיקי antral מוקדם, כלומר, זקיקים אלה כי הם פחות מ 2 מ"מ קוטר, מייצגים מקור פוטנציאלי לשמש בתוכניות שימור פוריות7 , כמו שחלה בערך מכיל 10 פעמים זקיקים אנטראליים מוקדמים יותר מאשר נמלהבינונית 8. עם זאת, oocytes אלה עדיין בשלב הצמיחה ועדיין לא הגיעו לשלב 9 גדלבמלואו. בתור שכזה, הם עדיין פעילים תעתיק, הפקת mRNAs כי יאוחסן עבור צעדים התפתחותיים מאוחרים יותר, ועדיין לא עברו את כל תהליך הבידול הנדרש כדי לתן את oocytes עם היכולת של באופן ספונטני התחדשות והשלמת meiosis אני פעם בודדתי מת תאזקיקים 10,,11. לכן, הם לא יכולים להיות מוגשים ישירות לפרוטוקולי התבגרות חוץ-חוץ (IVM) סטנדרטיים, אבל הם דורשים תקופה נוספת של תרבות שתאפשר להם להשלים את שלב הצמיחה ולהבדיל כראוי.

המעבר מההגדלה לשלב הבוגר במלואו, אשר בבקר מתרחש כאשר הזקיק מתפתח מהעקבר המוקדם לשלב הנמלי הבינוני, הוא אחד הצעדים הקריטיים במהלך פיתוח oocyte. בבקר ניסו מספר מחקרים לסיכום אירועים אלהבמבחנה 2,,12,13,,14,,15,,16,,17,,18,,19., עם זאת, עד כה לא פותחו פרוטוקולים אמינים ורק דווח על הצלחה מוגבלת. על פי מחקריםקודמים 20, oocytes גדל אלה מהווים אוכלוסייה הומוגנית. מלבד היותם פעילים בתמלול, הכרומטין שלהם מפוזר בפסית הנבט (GV), בתצורה הנקראת GV02,21. לעומת זאת, האוכלוסייה של oocytes גדל באופן מלא המתקבל זקיקי אנטרל בינוני הוא הטרוגני יותר, מצב כי הוא שיקוף על ידי דרגות שונות של דחיסת כרומטין (GV1, GV2 ו GV3) שניתןלצפות 20. בין אלה, נתונים קודמים הראו כי oocytes GV2 ו GV3 מאופיינים באופן כללי באיכות טובה יותר ויכולת התפתחותית עוברית גבוההיותר 20,21,22,23,24.

החל מהתצפיות לעיל, כאן אנו מתארים מערכת תרבות ארוכה של 5 ימים של oocytes (L-IVCO) המאפשרת בידול של oocytes מבודד כמו קומפלקסים cumulus-oocyte (COCs) מזקיקי אנטרל מוקדם. אסטרטגיית תרבות זו התפתחה מ 10 שנים מחקרים ארוכים שנערכו במעבדה שלנו שורשים הקרקע שלה על שפותחו בעבר 24-48 שעות בתרבות oocyte מבחנה (IVCO)2,מערכות טרום בגרות 23,,25 ותוספי אבץ במהלך תרבות oocyte. שילוב של הורמון מגרה זקיק (FSH) ו פוספודאסטראז-3 (PDE3) מעכב, מסוגל לשפר את התקשורת cumulus-oocyte2,למנוע חידוש מיוטיבטרם עת 2, ותמיכהצמיחה oocyte2 שימש.

Protocol

השחלות נאספו בין 4 ל 8 שנים חולב הולשטיין פרות התאושש בבית המטבחיים המקומי (INALCA S.p.A., Ospedaletto Lodigiano, LO, IT 2270M לסה"נ, איטליה).

1. הכנה לתקשורת

הערה: יש להכין את כל אמצעי המדיה לפחות ארבע שעות לפני השימוש. מדיה המאגרת נתרן ביקרבונט מדגירה ב 38.5 ° C ו 5% CO2 באוויר, לחות מקסימלית. אמצעי המדיה המאגרים ב-HEPES מתוחזקים ב-38.5°C בתנור תרמוסטי.

  1. ארוך בתרבות המבחנה של oocytes (L-IVCO) בינוני
    1. להכין 15 מ"ל של מדיום התרבות הבסיסית (M199-B): תוספת M199 עם 2 mM גלוטמין, 0.4% חומצת שומן חינם סרום חזיר אלבומין (BSA), 0.2 mM נתרן pyruvate, 25 m נתרן ביקרבונט, 0.1 mM ציסטאמין, 21.3 μg / מ"ל של פנול אדום, 75 μg / מ"ל של kanamycin ו 4% Polyvinylpyrrolidone (PVP; 360 k משקל מולקולרי).
    2. הכינו 3 מ"ל של מדיום ההחזקה (M199-H): ל-M199-B מוסיפים 5 μM cilostamide ושופכים אותו לצלחת פטרי 35 מ"מ.
    3. להכין את המדיום L-IVCO (M199-L): תוספת M199-B עם 0.15 μg /mL Zn סולפט, 10-4 IU/mL FSH, 10 ng/mL אסטרדיול, 50 ng/mL טסטוסטרון, 50 ng/mL פרוגסטרון ו 5 μM Cilostamide.
    4. מניחים 200 μL של M199-L בינוני בכל באר של צלחת 96 מצופה היטב. מלאו את הבארים בארבעת הקצוות של הצלחת במים תרבותיים סטריליים כדי לפצות על אידוי ולשמור על לחות מתאימה במהלך התרבות.
    5. דגירה 96 צלחת גם ואת M199-H בינוני ב אינקובטור ב 38.5 ° C ו 5% CO2 באוויר, לחות מקסימלית.
  2. מדיום פירוק
    1. להכין את מדיום הניתור (M199-D): תוספת M199 עם 0.4% BSA שבר V, 0.164 mM פניצילין, 0.048 mM סטרפטומיצין, 1790 יחידות / L heparin. M199-D ניתן להכין בכמויות גדולות, מחולק 20 mL aliquots ומאוחסן ב 4 מעלות צלזיוס במשך 6 חודשים. בעת הצורך, חם ותוספת 1 aliquot.
    2. להכין 20 מ"ל של M199-D בתוספת עם 5 μM cilostamide (M199-D cilostamide).

2. איסוף ועיבוד השחלות

הערה: כל ההליכים מתבצעים בטמפרטורת החדר (26°C) אלא אם צוין אחרת.

  1. לשחזר את השחלות בבית המטבחיים מפרות.
  2. מניחים את השחלות בתמיסת מלח סטרילית (NaCl, 9 גרם/ל' ב-26 – 28°C שנוספו עם פניצילין 100 U/mL וסטרפטומיצין 0.1 מ"ג/מ"ל.
  3. להעביר את האיברים למעבדה בתמיסת מלח סטרילית חמה בתוך 4 שעות.
  4. לשטוף את השחלות 4x בתמיסת מלח סטרילית מתוחזק ב 26 מעלות צלזיוס.
  5. הסר את כל זקיקי הנמל מאמצע עד גדול על ידי שאיפה כל הזקיקים יותר מ 2 מ"מ קוטר באמצעות מחט 18 G מחובר משאבת שאיפה עם לחץ ואקום להגדיר -28 mmHg ולמקם את השחלות שאף בבקת עם תמיסת מלח סטרילית ב 26 מעלות צלזיוס.
    הערה: הסרת התוכן של זקיקים > 2 מ"מ הוא צעד קריטי כדי להסיר ככל האפשר את המקור של oocytes גדל במלואו כי יהיה 'לזהם' את הניסוי.
  6. תחת מכסה מנוע זרימה למינאר אופקי, מניחים שחלה אחת באותו הזמן על קרש חיתוך פוליטרפלואורואתילן סטרילי. באמצעות להב כירורגי מס ' 22 רכוב על ידית אזמל, לחתוך פרוסות של קליפת השחלות (החלק החלק החלקי של השחלה, אשר מכיל את הזקיקים), 1.5 – 2 מ"מ עבה במקביל לציר העיקרי של האיבר.
  7. מניחים את פרוסות קליפת השחלות בצלחת פטרי מזכוכית סטרילית מכוסה במדיום ניתוח על צלחת חמה ב-38.5°C.
    הערה: מעתה כל ההליכים מבוצעים ב- 38.5 °C באמצעות צלחת חמה.

3. בחירה ובידוד של הזקיקים ואחזור של COCs

  1. מניחים פרוסת קליפת שחלות אחת בצלחת פטרי זכוכית 60 מ"מ עם 2-3 מ"ל של M199-D.
  2. באמצעות מיקרוסקופ ניתוח, בחר את הזקיקים בין 0.5 – 2 מ"מ באמצעות עינית מצויד מיקרומטר.
  3. זהה את הזקיקים הבריאים, הלא-אקרטיים מתחת לסטריאומיקרוסקופ. להעריך אטרזיה זקיק על ידי התבוננות פרמטרים מורפולוגיים, כגון מראה שקוף מאוד ברור, עם COC כהה בפנים. זרוק את הזקיקים הירקתיים ועבד את כל האחרים.
  4. באמצעות להב כירורגי מס ' 22 רכוב על ידית אזמל להסיר את רקמת השחלות המקיפה את הזקיק בצד אחד עד הזקיק נחשף בקצה אחד.
  5. באמצעות מחט 26G רכוב על מזרק, בזהירות לעשות חתך בקיר הזקיק החשוף. פעולה זו תשחרר את התוכן הזקיק, הכולל COC, נוזל זקיקים וגוזלים של תאים.
  6. זהה את ה-COC תחת המיקרוסקופ ובחן את שלמות הקומולוס, שלמות הזונה פלוצ'ידה והומוגניות של צטופלסמה. אם קריטריונים אלה מתקיימים, שאף את ה-COC באמצעות פיפטה P20.
  7. מקם את ה-COC המבודד ב-M199-D cilostamide.
  8. המשך בהליך הבידוד למשך 30 דקות.

4. מבחר של COCs להיות נתון בתרבות המבחנה

  1. תחת מיקרוסקופ הפירוק, בחר COCs בריא בהתבסס על הקריטריונים בשלב 3.6.
  2. בצלחת פטרי 60 מ"מ, להכין 16 טיפות של 20 μL של M199-D cilostamide ולהניח COC בריא אחד לכלירידה (איור 1A).
  3. באמצעות מיקרוסקופ הפוך המחובר למצלמה למדוד את קוטר oocyte, לא כולל zona pellucida, באמצעות התוכנה שסופקה עם המצלמה.
  4. עם הדמיה ברורה של oocyte, לעשות שתי מדידות ניצב למעט pellucida (איור 1B).
  5. להבטיח אם ממוצע של שני המדידה של oocyte, למעט פלושה zona, הוא בטווח של 100 – 110 μm. בטל COCs עם oocyte בצורת לא מעוגל או עם oocytes אינם מדידים.
  6. מעבירים את ה-COCs הנבחרים בצלחת של 35 מ"מ המכילה M199-H בינונית ולשמור אותם באינקובטור ב-38.5°C ו-5% CO2 באוויר, לחות מרבית עד לשלב 5.1.
  7. חזור על שלבים 3 ו- 4 עד 4x. זמן העבודה הכולל אינו יכול לחרוג מ- 2 שעות.

5. ארוך בתרבות המבחנה של oocytes (L-IVCO)

  1. העבר COC אחד לכל באר במרכז באר של צלחת 96 היטב כדי להיות מוכן בשלב 1.1.5.
  2. דגירה את הצלחת במשך 5 ימים ב 38.5 ° C ו 5% CO2 באוויר, לחות מקסימלית.
  3. כל יומיים (יום 2 ויום 4) להכין M199-L טרי כמתואר בשלב 1.
  4. לחדש מחצית המדיום על ידי הסרת 100 μL של בינוני והחלפה עם 100 μL של M199-L מוכן טרי. בצע את החידוש הבינוני תחת הסטריאומיקרוסקופ והימנע מהעברת ה-COCs לבאר.

6. סיווג COC לאחר התרבות

  1. בסוף L-IVCO, לנתח את המורפולוגיה של COCs תחת מיקרוסקופ הניתור.
  2. סווג כמתואר באות 2.
    1. לסווג כמו Class 1 אם COCs להראות השקעה קומפקטית תא cumulus ללא סימן של הרחבת קומולוס ניוון תאים.
    2. לסווג כמו Class 2 אם COCs להראות השקעה קומפקטית תא cumulus ללא סימן של הרחבת קומולוס ניוון תאים עם היווצרות כמו antrum במסה cumulus.
    3. לסווג כמו מחלקה 3 אם COCs להראות כמה שכבות של תא cumulus ללא סימן של הרחבת קומולוס וכמה תאים מופרדים בשכבה החיצונית של תאי קומולוס ואין היווצרות כמו antrum.
    4. לסווג כמו מחלקה 4 אם COCs מראה אובדן בשפע של תאי קומולוס המשתרע עבור יותר מ 50% של פני השטח oocyte, וסימנים של ניוון תאים ופסולת תא.

7. הערכת ההתקדמות המיוטית לאחר התרבות

  1. התרעה אוציטה
    1. מניחים כל COC בבאר אחת של צלחת ארבע באר המכילה 400 μL של 199D לכל באר.
    2. תחת מיקרוסקופ פירוק להסיר בעדינות את תאי cumulus מכנית על ידי pipetting חוזר באמצעות סט pipette ב 130-140 μL.
    3. ברגע שה-oocytes חופשיים מההשקעה בקומולוס, להעביר אותם לבאר אחרת המכילה 199D.
    4. חזור על התהליך עד שכל האוציטים יתנועו לחלוטין.
  2. כתמים גרעיניים Oocyte
    הערה: מעתה כל ההליכים מבוצעים בטמפרטורת החדר. הריגנטים בטמפרטורת החדר.
    1. לתקן את oocytes paraformaldehyde 4% ב תמיסת מלח מאגר פוספט (PBS) עבור 1 שעה.
      התראה: לבשו ציוד מגן אישי בעת טיפול בפרפורמלדהיד והישלמו מחומרים מזוהמים בהתאם להנחיות לסילוק פסולת מסוכנת.
    2. שוטפים את ה-oocytes 3x במשך 5 דקות כל אחד ב-PBS המכיל 1% פוליוינילקוהול (PVA).
      הערה: ניתן לעבד את הדגימות באופן אוטומטי או לאחסן אותה ב- 4 °C למשך שבוע אחד לכל היותר.
    3. מקם את האוציטים ב-PBS המכילים 0.1% Triton X למשך 10 דקות.
    4. יש לשטוף את האוציטים 3x במשך 5 דקות כל אחד ב- PBS המכיל 1% PVA.
    5. מניחים את oocytes באופן ייחודי בטיפות של 5 μL של אנטי-פיד בינוני בתוספת עם 4 ',6-diamidino-2-פנילינדול (DAPI) דילקט (1 μg /mL) על שקופית.
    6. מקם שני פסים של סרט הדבקה דו-צדדי לאורך הצדדים הארוכים של השקופית, כדי למנוע שיטוח מוגזם של האוציטים בעת הצבת החלק העליון של הכיסוי.
    7. מניחים את פתק הכיסוי למעלה, הפוך אותה לדבוק בקלטת ולשמור בחושך תוך עיבוד כל הדגימות.
    8. נתח את האוציטים באמצעות מיקרוסקופ אפיפלואורסצינטי קונבנציונלי המצויד במסנני DAPI (Excitation/Emission: 358,461) כדי להעריך את ההתקדמות המיוטית של האוציטים.
    9. לסווג את oocytes על פי ההתקדמות meiotic שלהם: GV - oocytes עם דרגות שונות של עיבוד כרומטין בתוך GV; MI – oocytes מ GV פירוק מטה-פאזה I; ומנוון – oocytes שלא ניתן לזהות כלהיות בכל השלבים הקודמים.

תוצאות

בסוף ה-L-IVCO, המורפולוגיה הגולמית של COCs השתנתה ו-4 מחלקות זוהו בהתבסס על המראה של תאי קומולוס, כפי שמופף באות 2. בהתבסס על הקריטריונים המורפולוגיים שאומצו בדרך כלל כדי לבחור COCsבריאים 11,26,27, כיתה 1, 2 ו 3 נשפטו בריאים, בעוד בכיתה 4, ...

Discussion

כאן אנו מתארים מערכת תרבות לגידול oocytes המקדמת פיתוח oocyte במשך 5 ימים על ידי תמיכה בכדאיות שלהם ומניעת חידוש מיוטי. היבט זה הוא בעל חשיבות עליונה כדי לאפשר את המשך הצמיחה והבידול הדרושים כדי לחולץ את האוציט עם יכולת התפתחותית מיוטיתועוברית 2,,20, שאחרת היה נחסם ע...

Disclosures

לסופרים אין מה לחשוף.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי Regione Lombardia PSR INNOVA n.201801061529 ו- UNIMI n.PSR 2019_DIP_027_ALUCI_01

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
4-well dishesNunclon179830
96-well dishBecton Dickinson Biosciences356649BioCoat™ Collagen I
Bovine Serum Albumin (Fatty acid free)SigmaA8806
Bovine Serum Albumin (Fraction V)SigmaA3311
Cell culture waterSigmaW3500
CilostamideSigmaC7971
CysteamineSigmaM9768
Digital cameraNikon CorpCamera DS-5M
Disodium phosphateSigmaS5136
EstradiolSigmaE2758
Glutamax SupplementThermo Fisher Scientific35050061
Gonal FMerck Serono
HeparinSigmaH3149
HepesSigmaH3784
Vacuum pumpCook-IVF
IncubatorSanyo
Kanamycin sulfate from Streptomyces kanamyceticusSigmaK1377
Medium 199SigmaM3769Powder for hepes-buffered TCM199
Medium 199SigmaM2520Powder for M199-D
MicroscopeNikon CorpNikon Diaphot
MicroscopeNikon CorpEclipse E 600
Monopotassium phosphateSigmaP5655
ParaformaldehydeSigma158127
PenicilinSigmaP3032
Phenol RedSigmaP5530
Polyvinyl alcoholSigmaP8137
PolyvinylpyrrolidoneSigmaP5288360k molecular weight
Potassium chlorideSigmaP5405
ProgesteroneSigmaP8783
Sodium bicarbonateSigmaS5761
Sodium chorideSigmaP5886
Sodium pyruvateSigmaP4562
StreptomycinSigmaS9137
TestosteroneSigma86500
Triton XSigmaT9284
Vectashield with DAPIVector LaboratoriesH1200
WaterSigmaW3500
Zinc sulfate heptahydrateSigmaZ0251

References

  1. Lonergan, P., Fair, T. Maturation of Oocytes in Vitro. Annual Review of Animal Biosciences. 4, 255-268 (2016).
  2. Luciano, A. M., Franciosi, F., Modina, S. C., Lodde, V. Gap junction-mediated communications regulate chromatin remodeling during bovine oocyte growth and differentiation through cAMP-dependent mechanism(s). Biology of Reproduction. 85 (6), 1252-1259 (2011).
  3. McLaughlin, M., Telfer, E. E. Oocyte development in bovine primordial follicles is promoted by activin and FSH within a two-step serum-free culture system. Reproduction. 139 (6), 971-978 (2010).
  4. Galli, C. Achievements and unmet promises of assisted reproduction technologies in large animals: a per-sonal perspective. Animal Reproduction. 14 (3), 614-621 (2017).
  5. Luciano, A. M., Sirard, M. A. Successful in vitro maturation of oocytes: a matter of follicular differentiation. Biology of Reproduction. 98 (2), 162-169 (2018).
  6. Lonergan, P., Fair, T. In vitro-produced bovine embryos: dealing with the warts. Theriogenology. 69 (1), 17-22 (2008).
  7. Clement, M. D. F., Dalbies-Tran, R., Estienne, A., Fabre, S., Mansanet, C., Monget, P. The ovarian reserve of primordial follicles and the dynamic reserve of antral growing follicles: what is the link. Biology of Reproduction. 90 (4), 85 (2014).
  8. Lussier, J. G., Matton, P., Dufour, J. J. Growth rates of follicles in the ovary of the cow. Journal of Reproduction and Fertility. 81 (2), 301-307 (1987).
  9. Fair, T., Hulshof, S. C., Hyttel, P., Greve, T., Boland, M. Oocyte ultrastructure in bovine primordial to early tertiary follicles. Anatomy and Embryology (Berlin). 195 (4), 327-336 (1997).
  10. Pavlok, A., Lucas-Hahn, A., Niemann, H. Fertilization and developmental competence of bovine oocytes derived from different categories of antral follicles. Molecular Reproduction and Development. 31 (1), 63-67 (1992).
  11. Blondin, P., Sirard, M. A. Oocyte and follicular morphology as determining characteristics for developmental competence in bovine oocytes. Molecular Reproduction and Development. 41 (1), 54-62 (1995).
  12. Harada, M., et al. Bovine oocytes from early antral follicles grow to meiotic competence in vitro: effect of FSH and hypoxanthine. Theriogenology. 48 (5), 743-755 (1997).
  13. Hirao, Y., et al. In vitro growth and development of bovine oocyte-granulosa cell complexes on the flat substratum: effects of high polyvinylpyrrolidone concentration in culture medium. Biology of Reproduction. 70 (1), 83-91 (2004).
  14. Alm, H., Katska-Ksiazkiewicz, L., Rynska, B., Tuchscherer, A. Survival and meiotic competence of bovine oocytes originating from early antral ovarian follicles. Theriogenology. 65 (7), 1422-1434 (2006).
  15. Taketsuru, H., et al. Bovine oocytes in secondary follicles grow in medium containing bovine plasma after vitrification. Journal of Reproduction and Development. 57 (1), 99-106 (2011).
  16. Endo, M., et al. Estradiol supports in vitro development of bovine early antral follicles. Reproduction. 145 (1), 85-96 (2013).
  17. Makita, M., Miyano, T. Steroid hormones promote bovine oocyte growth and connection with granulosa cells. Theriogenology. 82 (4), 605-612 (2014).
  18. Yamamoto, K., et al. Development to live young from bovine small oocytes after growth, maturation and fertilization in vitro. Theriogenology. 52 (1), 81-89 (1999).
  19. Alam, M. H., Lee, J., Miyano, T. Inhibition of PDE3A sustains meiotic arrest and gap junction of bovine growing oocytes in in vitro growth culture. Theriogenology. 118, 110-118 (2018).
  20. Lodde, V., Modina, S., Galbusera, C., Franciosi, F., Luciano, A. M. Large-scale chromatin remodeling in germinal vesicle bovine oocytes: interplay with gap junction functionality and developmental competence. Molecular Reproduction and Development. 74 (6), 740-749 (2007).
  21. Lodde, V., et al. Oocyte morphology and transcriptional silencing in relation to chromatin remodeling during the final phases of bovine oocyte growth. Molecular Reproduction and Development. 75 (5), 915-924 (2008).
  22. Dieci, C., et al. Differences in cumulus cell gene expression indicate the benefit of a pre-maturation step to improve in-vitro bovine embryo production. Molecular Human Reproduction. 22 (12), 882-897 (2016).
  23. Soares, A. C. S., et al. Steroid hormones interact with natriuretic peptide C to delay nuclear maturation, to maintain oocyte-cumulus communication and to improve the quality of in vitro-produced embryos in cattle. Reproduction, Fertililty and Development. 29 (11), 2217-2224 (2017).
  24. Soares, A. C. S., et al. Characterization and control of oocyte large-scale chromatin configuration in different cattle breeds. Theriogenology. 141, 146-152 (2020).
  25. Franciosi, F., et al. Natriuretic peptide precursor C delays meiotic resumption and sustains gap junction-mediated communication in bovine cumulus-enclosed oocytes. Biology of Reproduction. 91 (3), 61 (2014).
  26. Luciano, A. M., et al. Effect of different levels of intracellular cAMP on the in vitro maturation of cattle oocytes and their subsequent development following in vitro fertilization. Molecular Reproduction and Development. 54 (1), 86-91 (1999).
  27. Bilodeau-Goeseels, S., Panich, P. Effects of oocyte quality on development and transcriptional activity in early bovine embryos. Animal Reproduction Science. 71 (3-4), 143-155 (2002).
  28. Dieci, C., et al. The effect of cilostamide on gap junction communication dynamics, chromatin remodeling, and competence acquisition in pig oocytes following parthenogenetic activation and nuclear transfer. Biology of Reproduction. 89 (3), 68 (2013).
  29. Shu, Y. M., et al. Effects of cilostamide and forskolin on the meiotic resumption and embryonic development of immature human oocytes. Human Reproduction. 23 (3), 504-513 (2008).
  30. Lodde, V., et al. Zinc supports transcription and improves meiotic competence of growing bovine oocytes. Reproduction. 159 (6), 679-691 (2020).
  31. Henderson, K. M., McNeilly, A. S., Swanston, I. A. Gonadotrophin and steroid concentrations in bovine follicular fluid and their relationship to follicle size. Journal of Reproduction and Fertility. 65 (2), 467-473 (1982).
  32. Kruip, T. A., Dieleman, S. J. Steroid hormone concentrations in the fluid of bovine follicles relative to size, quality and stage of the oestrus cycle. Theriogenology. 24 (4), 395-408 (1985).
  33. Sakaguchi, K., et al. Relationships between the antral follicle count, steroidogenesis, and secretion of follicle-stimulating hormone and anti-Mullerian hormone during follicular growth in cattle. Reproductive Biology and Endocrinology. 17 (1), 88 (2019).
  34. Makita, M., Miyano, T. Androgens promote the acquisition of maturation competence in bovine oocytes. Journal of Reproduction and Development. 61 (3), 211-217 (2015).
  35. Walters, K. A., Allan, C. M., Handelsman, D. J. Androgen actions and the ovary. Biology of Reproduction. 78 (3), 380-389 (2008).
  36. Luciano, A. M., Pappalardo, A., Ray, C., Peluso, J. J. Epidermal growth factor inhibits large granulosa cell apoptosis by stimulating progesterone synthesis and regulating the distribution of intracellular free calcium. Biology of Reproduction. 51 (4), 646-654 (1994).
  37. Gordon, I. . Laboratory Production of Cattle Embryos, 2nd edn. , (2003).
  38. Telfer, E. E., McLaughlin, M., Ding, C., Thong, K. J. A two-step serum-free culture system supports development of human oocytes from primordial follicles in the presence of activin. Human Reproduction. 23 (5), 1151-1158 (2008).
  39. McLaughlin, M., Albertini, D. F., Wallace, W. H. B., Anderson, R. A., Telfer, E. E. Metaphase II oocytes from human unilaminar follicles grown in a multi-step culture system. Molecular Human Reproduction. 24 (3), 135-142 (2018).
  40. Fair, T., Hyttel, P., Greve, T. Bovine oocyte diameter in relation to maturational competence and transcriptional activity. Molecular Reproduction and Development. 42 (4), 437-442 (1995).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

161oocyteoocyteatresiaIVPFSH

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved