JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

כאן אנו מציגים את מודל נגע הסחוס התוך-מפרקי הנגרם על ידי העמסה מחזורית של ברך החולדה, שנוצר על ידי 60 לחיצות מחזוריות מעל 20 N, וכתוצאה מכך נזק לסחוס הקונדילרי של הירך בחולדות.

Abstract

הפתופיזיולוגיה של דלקת מפרקים ניוונית ראשונית (OA) עדיין אינה ברורה. עם זאת, תת-סיווג ספציפי של OA בקבוצות גיל צעירות יחסית נמצא ככל הנראה בקורלציה עם היסטוריה של פגיעה בסחוס המפרקי ופגיעה ברצועות. מודלים כירורגיים של OA של הברך ממלאים תפקיד חשוב בהבנת ההתחלה וההתקדמות של OA פוסט טראומטי ומסייעים בפיתוח טיפולים חדשניים למחלה זו. עם זאת, מודלים לא כירורגיים נחשבו לאחרונה כדי למנוע דלקת טראומטית שעלולה להשפיע על הערכת ההתערבות.

במחקר זה פותח מודל של חולדות סחוס תוך-מפרקיות המושרה על-ידי העמסה מחזורית של דחיסה מחזורית in vivo , מה שאיפשר לחוקרים (1) לקבוע את הגודל, המהירות ומשך העומס האופטימליים שעלולים לגרום לנזק לסחוס המוקדי; (2) להעריך שינויים פתולוגיים מרחביים פוסט-טראומטיים בחיוניות כונדרוציטים; ו-(3) להעריך את הביטוי ההיסטולוגי של מולקולות הרסניות או מגינות המעורבות במנגנוני ההסתגלות והתיקון כנגד עומסי דחיסה של המפרקים. דו"ח זה מתאר את פרוטוקול הניסוי של נגע סחוס חדשני זה במודל של חולדה.

Introduction

באופן מסורתי, טרנסקציה של רצועה צולבת קדמית (ACL) או ערעור היציבות של המניסקוס המדיאלי נחשבו אופטימליים לחקר דלקת מפרקים ניוונית פוסט טראומטית (PTOA) בחיות קטנות. בשנים האחרונות נעשה שימוש במודלים לא פולשניים של דחיסה מחזורית כדי לחקור PTOA. דגם זה תוכנן במקור כדי לחקור את תגובת העצם להעמסה מכנית1 ולאחר מכן שונה כמודל בעלי חיים לא ניתוחי עבור מחקרי PTOA 2,3,4,5,6. הרציונל הוא להתנגש בסחוס המפרקי על ידי הפעלת כוח חיצוני מחזורי, המעורר סדרה של תגובות דלקתיות. עם זאת, מודל זה הוחל רק על עכברים, ואת הגודל המתאים של העמסה על בעלי חיים גדולים יותר לא נדון.

בעיה נוספת עם המודל הקודם היא שהפרוטוקול בנפח גבוה כלל יותר מדי מחזורים, מה שגרם לעיבוי מוגזם של העצם התת-כונדרלית, תופעת לוואי לא רצויה, במספר דגימות7. לכן, פותחה שיטה חדשנית של דחיסה מחזורית עם הגודל המתאים לבעלי חיים גדולים ותופעת לוואי של העמסה נמוכה יותר8. המטרה הכוללת של המאמר הנוכחי היא לתאר את הפרוטוקול של מודל הדחיסה המחזורית הלא פולשנית בחולדות ולבחון את התוצאות המייצגות של ניוון הסחוס. הפרוטוקול הנוכחי יעזור לקוראים המעוניינים ביישום מודל הדחיסה המחזורית הלא פולשנית על חולדות.

Protocol

הפרוטוקול אושר על ידי ועדת המחקר בבעלי חיים של אוניברסיטת קיוטו (מספר אישור: Med kyo 17616).

1. בצע דחיסה מחזורית in vivo על ברך החולדה

  1. לגרום להרדמה ניסיונית של בעלי חיים
    1. השרה הרדמה בחולדת Wistar בת 12 שבועות (256.8 ± 8.7 גרם) על ידי שאיפה של תמיסת איזופלורן 5% בתיבת ההרדמה.
    2. יש להזריק באופן תוך-צפקי תערובת של שלושה חומרי הרדמה9, כולל מדטומידין, מידזולם ובוטורפנול, במינון 2 מ"ג/ק"ג ממשקל גוף החולדה, ולגלח את האזור סביב מפרק ברך ימין. אשרו הרדמה מספקת על ידי חוסר רפלקס דוושה לצביטת בוהן.
  2. הר את החולדה המורדמת על מכשיר הקיבוע.
    1. הניחו את החולדה המורדמת שוכבת על בטנה על לוחית הבסיס (איור 1), כאשר ברך ימין מחוברת לחתיכת שרף קטנה עם חריץ קעור. מקמו את הגפה האחורית הימנית בתנוחות הארכת הירך, כיפוף הברך והארכת הקרסול, כאשר הברך מכופפת בטמפרטורה של כ-140 מעלות. התאימו את העקב של החולדה על החריץ בצורת טריז על המתקן הנייד.
    2. העבר את מכשיר הקיבוע למכשיר בדיקת הלחץ/מתיחה (ראה טבלת חומרים). לאחר שווידאתם שאין מגעים עם תא העומס, פתחו את תוכנת בקרת מכשיר בדיקת הלחץ/מתיחה (Table of Materials) ולחצו על כפתור הכיול . לאחר הכיול, חבר את החלק העליון של המסגרת לתא הטעינה בזהירות. כדי לשמור על מפרק הברך מחובר היטב למסגרת, הפעל את הידית הסיבובית בלוח התפעול הראשי הנייד באיטיות עד שהעומס מראש מגיע ל-5 N.
  3. בנה שיטת טעינה והגדר את בדיקת הדחיסה.
    1. בתפריט הראשי, לחץ על צור שיטה חדשה | תווית מערכת . הגדר את מצב הבדיקה למחזור, ואת סוג הבדיקה לדחיסה. לחץ על תווית החיישן ובחר בכרטיסייה בדיקה כדי לבדוק שהמגבלה היא בטווח של 60 N. בנוסף, בחר את הכרטיסייה קו ולבדוק כי המגבלה היא בתוך 500 מ"מ.
      הערה: השלב לעיל יפסיק את הפעולה באופן מיידי אם יש תזוזה גדולה על נקודת הלחץ.
    2. תחת תווית בקרת הבדיקה, בחר מקור הצמיחה כדי להתחיל את התוכנית הראשית עם קנה מידה מלא של 0.3%. מבין ארבעת המקטעים במחזור טעינה, הגדר את מהירות השבץ בשליטה בקטעים 1 st ו- 3 ל- 1 מ"מ לשנייה. הגדר את כוח הבדיקה המרבי בחלקהשני ל- 20 N, ואת כוח הבדיקה המינימלי בחלקהרביעי עד 5 N. הגדר את "משך ההחזקה" ל- 0.5 שניות עבור עומס השיא ו- 10 שניות עבור העומס המינימלי (איור 2).
      הערה: מכיוון ששלב זה מגדיר כל מחזור, ודא שמשטחי המפרקים נמצאים במגע זה עם זה ונעים במהירות סבירה ושהתנועה נשמרת.
    3. בכרטיסייה Pre-load בתחתית הדף, ודא שהאפשרות מופעל מסומנת, מהירות הסרת הסטייה מוגדרת ל- 100 מ"מ לדקה, והכוח המרבי הוא 5 N. בתווית 'דגימה', הגדר את החומר כמתכת.
      הערה: הגדרות מפורטות אלה עשויות להיות ספציפיות עבור כל יצרן.
    4. בתפריט הראשי, תחת הקטע בחר שיטה ובדיקה, בחר את השיטה שזה עתה נבנתה ולחץ על התחל כדי להתחיל בבדיקה.
      הערה: הטבלה בתחתית מציגה את המדידות בפועל של עומס השיא והתזוזה.
    5. הגדר את מספר המחזורים ל- 60.
      הערה: כל סשן הטעינה כולל 60 מחזורים, שנמשכים כ-12 דקות. בקבוצת הביקורת, החולדות עברו 5 N טעינה מוקדמת במשך 12 דקות לפני הטעינה באותם תנאים.
  4. לאחר הטעינה, החזירו את החולדה לכלוב שלה ועקבו אחריה עד להחלמה מלאה. שמרו על לוח זמנים של 12-12 שעות בהיר-חושך בכלוב עם מספיק מקום ומזון עד ליביטום. לאחר תקופות הניסוי הנדרשות, להקריב את החולדות עם מנת יתר של תערובת של שלושת חומרי ההרדמה מוזרק תוך צפק או שאיפת פחמן דו חמצני לניתוח (1 h-8 שבועות).

תוצאות

התקבלה תוצאה מייצגת של השינויים קצרי הטווח (1 שעות ו-12 שעות) בכדאיות הכונדרוציטים בדגימות שהיו נתונות להעמסה מחזורית של 20 N. כפי שניתן לראות באיור 3, מספר הכונדרוציטים המתים (פלואורסצנציה אדומה) עלה ב-12 שעות לאחר טראומה. לעומת זאת, מספר הכונדרוציטים החיים (פלואורסצנציה ירוקה) ...

Discussion

לראשונה, הפרוטוקול הנוכחי מראה כיצד לבסס מודל של נגע סחוס הנגרם על ידי העמסה על קונדיל הירך הלטרלי בחולדות, בדומה למודל הנזק התוך-מפרקי במכרסמים קטנים יותר כמו העכבר2. עם זאת, פרוטוקול ההעמסה בעכברים גרם להיווצרות אוסטאופיטים חמורים ונגעים ברצועות צלב, מה שלא היה אידיאלי להער?...

Disclosures

המחברים מצהירים על היעדר ניגוד עניינים.

Acknowledgements

מחקר זה נתמך בחלקו על ידי מענק JSPS KAKENHI (מספרים JP18H03129 ו- JP18K19739).
מחקר זה קיבל מימון גם מהברית למחקר והכשרה של שיקום רגנרטיבי (AR3T), הנתמכת על ידי המכון הלאומי לבריאות הילד והתפתחות האדם על שם יוניס קנדי שרייבר (NICHD), המכון הלאומי להפרעות נוירולוגיות ושבץ מוחי (NINDS), והמכון הלאומי לדימות ביו-רפואי וביו-הנדסה (NIBIB) של המכונים הלאומיים לבריאות תחת פרס מספר P2CHD086843. התוכן הוא באחריותם הבלעדית של המחברים ואינו מייצג בהכרח את העמדות הרשמיות של המכונים הלאומיים לבריאות.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Anesthetic Apparatus for Small AnimalsSHINANO MFG CO.,LTD.SN-487-0T
Autograph AG-XShimadzu CorpN.A.Precision Universal / Tensile Tester
Fluoview FV10i microscopeOlympus CorpN.A.A fully automated confocal laser-scanning microscope
ISOFLURANE Inhalation SolutionPfizer Japan Inc.(01)14987114133400
LIVE/DEA Viability/Cytotoxicity KitThermo Fisher Scientific Japan IncL3224A quick and easy two-color assay to determine viability of cells
TRAPEZIUM X SoftwareShimadzu CorpN.A.Data processing software for Autograph AG-X

References

  1. De Souza, R. L., et al. Non-invasive axial loading of mouse tibiae increases cortical bone formation and modifies trabecular organization: a new model to study cortical and cancellous compartments in a single loaded element. Bone. 37 (6), 810-818 (2005).
  2. Poulet, B., Hamilton, R. W., Shefelbine, S., Pitsillides, A. A. Characterizing a novel and adjustable noninvasive murine joint loading model. Arthritis and Rheumatism. 63 (1), 137-147 (2011).
  3. Wu, P., et al. Early response of mouse joint tissue to noninvasive knee injury suggests treatment targets. Arthritis and Rheumatism. 66 (5), 1256-1265 (2014).
  4. Poulet, B., et al. Intermittent applied mechanical loading induces subchondral bone thickening that may be intensified locally by contiguous articular cartilage lesions. Osteoarthritis Cartilage. 23 (6), 940-948 (2015).
  5. Ko, F. C., et al. Progressive cell-mediated changes in articular cartilage and bone in mice are initiated by a single session of controlled cyclic compressive loading. Journal of Orthopaedic Research. 34 (11), 1941-1949 (2016).
  6. Adebayo, O. O., et al. Role of subchondral bone properties and changes in development of load-induced osteoarthritis in mice. Osteoarthritis Cartilage. 25 (12), 2108-2118 (2017).
  7. Ko, F. C., et al. In vivo cyclic compression causes cartilage degeneration and subchondral bone changes in mouse tibiae. Arthritis and Rheumatism. 65 (6), 1569-1578 (2013).
  8. Ji, X., et al. Effects of in vivo cyclic compressive loading on the distribution of local Col2 and superficial lubricin in rat knee cartilage. Journal of Orthopaedic Research. 39 (3), 543-552 (2021).
  9. Kawai, S., Takagi, Y., Kaneko, S., Kurosawa, T. Effect of three types of mixed anesthetic agents alternate to ketamine in mice. Experimental Animals. 60 (5), 481-487 (2011).
  10. Iijima, H., et al. Destabilization of the medial meniscus leads to subchondral bone defects and site-specific cartilage degeneration in an experimental rat model. Osteoarthritis Cartilage. 22 (7), 1036-1043 (2014).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

173in vivo

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved