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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Ici, nous présentons le modèle de lésion cartilagineuse intra-articulaire induite par la charge cyclique du genou du rat, générée par 60 compressions cycliques sur 20 N, entraînant des dommages au cartilage condylien fémoral chez le rat.

Résumé

La physiopathologie de l’arthrose primaire (OA) reste incertaine. Cependant, une sous-classification spécifique de l’arthrose dans des groupes d’âge relativement plus jeunes est probablement corrélée à des antécédents de lésions du cartilage articulaire et d’avulsion ligamentaire. Les modèles chirurgicaux animaux de l’arthrose du genou jouent un rôle important dans la compréhension de l’apparition et de la progression de l’arthrose post-traumatique et aident au développement de nouvelles thérapies pour cette maladie. Cependant, des modèles non chirurgicaux ont récemment été envisagés pour éviter une inflammation traumatique qui pourrait affecter l’évaluation de l’intervention.

Dans cette étude, un modèle de lésion intra-articulaire du cartilage chez le rat induit par une charge compressive cyclique in vivo a été développé, ce qui a permis aux chercheurs (1) de déterminer l’ampleur, la vitesse et la durée optimales de la charge qui pourrait causer des lésions cartilagineuses focales; (2) évaluer les changements pathologiques spatio-temporels post-traumatiques de la vitalité des chondrocytes; et (3) évaluer l’expression histologique de molécules destructrices ou protectrices impliquées dans les mécanismes d’adaptation et de réparation contre les charges de compression articulaire. Ce rapport décrit le protocole expérimental pour cette nouvelle lésion cartilagineuse dans un modèle de rat.

Introduction

Traditionnellement, la transsection ou la déstabilisation du ménisque croisé antérieur (LCA) a été considérée comme optimale pour étudier l’arthrose post-traumatique (PTOA) chez les petits animaux. Ces dernières années, des modèles de compression cyclique non invasifs ont été utilisés pour étudier le PTOA. Ce modèle a été conçu à l’origine pour étudier la réponse osseuse spongieuse à la charge mécanique1 et a ensuite été modifié en tant que modèle animal non chirurgical pour les études PTOA 2,3,4,5,6.

Protocole

Le protocole a été approuvé par le Comité de recherche animale de l’Université de Kyoto (numéro d’approbation: Med kyo 17616).

1. Effectuer une compression cyclique in vivo sur le genou du rat

  1. Induire une anesthésie animale expérimentale
    1. Induire l’anesthésie chez un rat Wistar âgé de 12 semaines (256,8 ± 8,7 g) par inhalation d’une solution d’isoflurane à 5% dans la boîte d’anesthésie.
    2. Injecter par voie intrapéritonéale un mélange de trois agents anesthésiques9, y compris la médétomidine, le midazolam et le butorphanol, à 2 mg / kg du poids corporel du rat, et raser la zone autour....

Résultats

Un résultat représentatif des changements à court terme (1 h et 12 h) de la viabilité des chondrocytes dans des échantillons soumis à une charge cyclique de 20 N a été obtenu. Comme le montre la figure 3, le nombre de chondrocytes morts (fluorescence rouge) a augmenté 12 h après le traumatisme. Inversement, le nombre de chondrocytes vivants (fluorescence verte) a continué de diminuer, certains échantillons ne contenant aucun chondrocytes vivants dans la zone touchée.

Discussion

Pour la première fois, le protocole actuel montre comment établir un modèle de lésion cartilagineuse induite par la charge sur le condyle fémoral latéral chez le rat, similaire au modèle de lésions intra-articulaires chez les rongeurs plus petits tels que la souris2. Cependant, le protocole de charge chez la souris a provoqué une formation sévère d’ostéophytes et des lésions ligamentaires croisées, ce qui n’était pas idéal pour évaluer les effets de la compression cyclique. Le.......

Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Cette étude a été financée en partie par une subvention JSPS KAKENHI (numéros JP18H03129 et JP18K19739).
Cette recherche a également reçu un financement de l’Alliance for Regenerative Rehabilitation Research & Training (AR3T), qui est soutenue par l’Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development (NICHD), le National Institute of Neurological Disorders and Stroke (NINDS) et le National Institute of Biomedical Imaging and Bioengineering (NIBIB) des National Institutes of Health sous le numéro d’attribution P2CHD086843. Le contenu relève de la seule responsabilité des auteurs et ne représente pas nécessairement les opinions officielles....

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
Anesthetic Apparatus for Small AnimalsSHINANO MFG CO.,LTD.SN-487-0T
Autograph AG-XShimadzu CorpN.A.Precision Universal / Tensile Tester
Fluoview FV10i microscopeOlympus CorpN.A.A fully automated confocal laser-scanning microscope
ISOFLURANE Inhalation SolutionPfizer Japan Inc.(01)14987114133400
LIVE/DEA Viability/Cytotoxicity KitThermo Fisher Scientific Japan IncL3224A quick and easy two-color assay to determine viability of cells
TRAPEZIUM X SoftwareShimadzu CorpN.A.Data processing software for Autograph AG-X

Références

Réimpressions et Autorisations

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M decineNum ro 173Compression cyclique in vivoArthrose post traumatiqueD g n rescence du cartilageMod le de rat

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