ב-Vivo הקרנה אימונוגנית של שלפוחיות חוץ-תאיות שמקורן בגידול על ידי ציטומטריית זרימה של תאי T טחול

Summary

כתב יד זה מתאר כיצד להעריך במערכת החיסונית של vivo של שלפוחיות חוץ-תאיות שמקורן בתאי הגידול (EVs) באמצעות ציטומטריית זרימה. רכבים חשמליים שמקורם בגידולים העוברים מוות תאי אימונוגני שנגרם כתוצאה מהטיפול נראים רלוונטיים במיוחד במערכון הגידול. פרוטוקול זה מדגים את ההערכה של אוקסליפלטין-induced emunostimulatory גידול EVs אבל יכול להיות מותאם להגדרות שונות.

Abstract

מוות תאי אימונוגני של גידולים, הנגרם על ידי כימותרפיה או הקרנה, יכול לעורר תגובות תאי T ספציפיים לגידול על ידי שחרור דפוסים מולקולריים הקשורים לסכנה וגרימת הייצור של סוג I אינטרפרון. אימונותרפיות, כולל עיכוב נקודת ביקורת, מסתמכות בעיקר על תאי T קיימים הספציפיים לגידול כדי לפתח אפקט טיפולי. לפיכך, גישות טיפוליות סינרגטיות המנצלות מוות תאי אימונוגני כחיסון אנטי-סרטני מהותי עשויות לשפר את יכולת התגובה שלהן. עם זאת, הספקטרום של גורמים אימונוגניים ששוחררו על ידי תאים תחת לחץ המושרה על ידי טיפול נשאר מאופיין באופן חלקי, במיוחד לגבי שלפוחיות חוץ תאיות (EVs). רכבים חשמליים, חלקיקים מממברניים בקנה מידה ננומטרי הנפלטים כמעט מכל התאים, נחשבים כמקלים על תקשורת בין-תאית, ובסרטן, הוכחו כמתווכים בין-ראשוניים נגד אנטיגנים של גידולים. כדי להעריך את ההשפעה החיסונית של רכבים חשמליים שמקורם בגידולים בתנאים שונים, שיטות הסתגלות, מדרגיות ותקיפות מבוקשות. לכן, כאן מוצגת גישה קלה וחזקה יחסית להערכת האימונוגניות של רכבים חשמליים . הפרוטוקול מבוסס על ניתוח ציטומטריית זרימה של תאי T טחול לאחר חיסון vivo של עכברים עם רכבים חשמליים, מבודד על ידי בדיקות מבוססות משקעים מתרביות תאים סרטניים תחת טיפול או מצב יציב. לדוגמה, עבודה זו מראה כי חשיפה oxaliplatin של B16-OVA מורין מלנומה תאים הביא לשחרור של רכבים חשמליים אימונוגניים שיכולים לתווך את ההפעלה של תאי T ציטוטוקסיים תגובתי הגידול. לפיכך, הקרנה של כלי רכב חשמליים באמצעות חיסון vivo וציטומטריית זרימה מזהה תנאים שבהם כלי רכב חשמליים אימונוגניים יכולים לצאת. זיהוי תנאים של שחרור EV אימונוגני מספק תנאי הכרחי לבדיקת היעילות הטיפולית של רכבים חשמליים נגד סרטן ובחינת המנגנונים המולקולריים הבסיסיים כדי לחשוף בסופו של דבר תובנות חדשות על תפקידם של כלי רכב חשמליים באימונולוגיה של סרטן.

Introduction

המערכת החיסונית ממלאת תפקיד מרכזי במאבק נגד סרטן, הן כאשר הוא מועלה על ידי עיכוב מחסום חיסוני והן על היעילות של טיפולים קונבנציונליים לסרטן. תאים סרטניים שנכנעים לטיפולים גנוטוקסיים כגון הסוכנים הכימותרפיים אוקסליפלטין ודוקסורוביצין, או טיפול קרינה מייננת יכולים לשחרר אנטיגנים ודפוסים מולקולריים הקשורים לסכנה (DAMPs) שעשויים ליזום תגובה חיסונית נוגדת גידולים ^{הסתגלות1}. ה- DAMPs הבולטים ביותר, בהקשר של מוות תאי אימונוגני, כוללים אותות find-me כגון ATP כימוטקטי, אותות eat-me כגון חשיפת calreticulin, המקדם את ספיגת תאי הגידול על ידי תאים המציגים אנטיגן, ואת שחרורו של HMGB1, המפעיל קולטני זיהוי דפוס, ובכך משפר את ההצגה הצולבת של אנטיגנים ^גידול2. יתר על כן, סוג I אינטרפרונים (IFN-I), המושרה באמצעות חומצות גרעין אימונוגניות שמקורן בגידול או גירויים אחרים, חשים על ידי תאים דנדריטיים, ומאפשרים להם ביעילות ראשונית תאי T ציטוטוקסיים ספציפיים ^{לגידול3,4}. מבחינה קלינית, תאי CD8⁺ T פעילים ומתרבים החודרים לגידול מספקים גורם פרוגנוסטי עצמאי להישרדות ממושכת בחולי סרטן רבים. שוחרר מתאי T מופעלים כאלה, IFN-γ מתווך השפעות אנטי-פרוליפרטיביות ישירות על תאים סרטניים ומניע את הקיטוב Th1 ובידול תאי T ציטוטוקסיים, ובכך תורם לחיסון יעיל נגד ^סרטן5,6. Oxaliplatin הוא ממריץ מוות תאי אימונוגני בתום לב, מתווך תגובה חיסונית אדפטיבית כזו נגד ^סרטן7. עם זאת, שפע של אותות אימונוגניים ראשוניים שפורסמו על ידי תאים סרטניים תחת לחץ המושרה על ידי טיפול נשאר להיחשף במלואו. למרות התקדמות משמעותית באימונותרפיה של סרטן, הרחבת היתרונות שלה לחלק גדול יותר של חולים נשאר אתגר. הבנה מפורטת יותר של אותות אימונוגניים היוזמים הפעלת תאי T עשויה להנחות את התפתחותם של טיפולים חדשניים.

קבוצה הטרוגנית של מבנים סגורים ממברנה, המכונה שלפוחיות חוץ תאיות (EVs), נראה לשמש התקני תקשורת בין תאיים. רכבים חשמליים הנפלטים כמעט מכל סוגי התאים נושאים חלבונים פונקציונליים, RNA, DNA ומולקולות אחרות לתא נמען או עשויים לשנות את מצבו התפקודי של התא רק על ידי קשירה לקולטנים על פני התא. המטען הפעיל ביולוגית שלהם משתנה באופן משמעותי לפי סוג ומצבו התפקודי של התא ^המפיק8. באימונולוגיה של סרטן, רכבים חשמליים המשתחררים מתאי הגידול נחשבו בעיקר כיריבים לאימונותרפיה מכיוון שהם בסופו של דבר מקדמים צמיחה פולשנית, נישות גרורתיות טרום-צורה9 ומדכאים את התגובה ^{החיסונית10}. לעומת זאת, מספר מחקרים הראו כי רכבים חשמליים יכולים להעביר אנטיגנים של גידולים לתאים דנדריטיים להצגה צולבת ^{יעילה11,12}. רכבים חשמליים עשויים לספק חומצות גרעין אימונוסטימולטוריות אם הם מגיחים תחת לחץ הנגרמת על ידי טיפול, מה שמקל על תגובה חיסונית נגד ^{גידולים13,14}. לאחרונה הוכח כי חישה של ליגנדים חיסוניים מולדים מסוג RNA ודנ"א במיקרו-סביבה של הגידול מווסתת את ההיענות למצור נקודת הביקורת באופן משמעותי ^15,16,17. לפיכך, התפקיד האימונוגני של רכבים חשמליים ששוחררו על ידי תאים סרטניים תחת לחץ טיפולי שונה צריך להיות מובהר עוד יותר. מכיוון שרכבים חשמליים מהווים תחום מחקר צעיר אך צומח, התקינה של השיטות עדיין נמשכת. לכן, שיתוף ידע חיוני כדי לשפר את רבייה המחקר על אינטראקציות בין כלי רכב חשמליים אימונולוגיה סרטן. לאור זאת, כתב יד זה מתאר פרוטוקול פשוט להערכת ההשפעה האימונוגנית של רכבים חשמליים שמקורם בגידול ב- vivo.

הערכה זו מתבצעת על ידי יצירת רכבים חשמליים שמקורם בגידול, חיסון עכברי נמענים עם רכבים חשמליים אלה, וניתוח תאי T טחול באמצעות ציטומטריית זרימה. דור EV מבוצע באופן אידיאלי על ידי זריעת תאי גידול מורין במדיום תרבית תאים ללא EV לרמה גבוהה של טוהר. תאים מטופלים עם גירוי סטרס תאי ספציפי, כגון כימותרפיה, כדי להשוות את ההשפעה של רכבים חשמליים הנגרמים על ידי טיפול נגד אימונוגניות בסיסית של רכבים חשמליים שמקורם בגידול בהתאמה. בידוד של רכבים חשמליים עשוי להתבצע בהחלט על ידי טכניקות שונות שיש לבחור על פי תחולת vivo וזמינות מקומית. הפרוטוקול הבא מתאר בדיקה מבוססת משקעים עם ערכה מסחרית לטיהור EV. עכברים מחוסנים פעמיים עם הרכבים החשמליים האלה. 14 ימים לאחר הזריקה הראשונה, תאי T מופקים מהטחול ומנותחים לייצור IFN-γ באמצעות ציטומטריית זרימה כדי להעריך תגובה חיסונית מערכתית. עם זאת, הפוטנציאל של רכבים חשמליים שמקורם בגידול, המתעוררים תחת משטרים טיפוליים שונים, כדי לגרום לתגובות תאי T אנטי סרטניים מוערך בקלות יחסית, במהירות, ועם תוקף ^גבוה13. לכן, שיטה זו מתאימה להקרנה אימונולוגית של רכבים חשמליים שמקורם בתאים סרטניים בתנאים שונים.

Protocol

בתחילת הניסויים, עכברים היו לפחות 6 שבועות של גיל נשמרו בתנאים ספציפיים ללא פתוגן. הפרוטוקול הנוכחי עומד בסטנדרטים האתיים המוסדיים ובתקנות המקומיות השוררות. מחקרים בבעלי חיים אושרו על ידי הסוכנות הרגולטורית המקומית (Regierung von Oberbayern, מינכן, גרמניה). הטיות אפשריות הקשורות למין לא נחקרו במחקרים אלה.

1. ייצור ובידוד של רכבים חשמליים שמקורם בתאי הגידול לאחר חשיפה לכימותרפיה

1. תרבית מורין B16 תאי מלנומה המבטאים אובלבומין (B16-OVA) ב- DMEM (המכיל 4 מ"מ L-גלוטמין ו 4.5 גרם / L D-גלוקוז) בתוספת FCS (10% v / v), פניצילין (100 יחידות / מ"ל) וסטרפטומיצין (100 מיקרוגרם / מ"ל) ב 37 °C (37 °C ,עד התאים לגדול בהתמדה והם כ 90% קונפלציה.
   הערה: בצע סעיף זה של הפרוטוקול לחלוטין בתנאים סטריליים באמצעות מכסה המנוע של תרבית התא. לניתוח של ישויות אחרות של סרטן, קווי תאים המבטאים אנטיגן חזק עדיפים להעריך תגובות תאי T ספציפיים לאנטיגן, שכן הם מאפשרים רסטימולציה ספציפית של אנטיגן ex vivo .
2. כדי להכין את מדיה תרבית התאים הנדרשת עבור יצירת EV, לרוקן רכבים חשמליים שור בתוך FCS על ידי ultracentrifugation ב 100,000 x g עבור 24 שעות ב 4 °C (4 °F), ולאחר מכן להשליך את הכדור. לחלופין, בחר הכנה מסחרית נמוכה ברכבים חשמליים בעלי חיים מראש.
3. לקצור תאי B16-OVA ולשטוף אותם פעמיים ב- PBS, ולאחר מכן זרע בריכוז של 400,000 תאים / מ"ל במדיה מדולדל EV.
   הערה: התאם את ריכוז התא לדינמיקת הצמיחה של קו התא הנחקר כך שהתאים לא יגדלו יתר על המידה.
4. לטפל בתאי B16-OVA על ידי הוספת 30 מיקרוגרם של oxaliplatin לכל mL ודגור במשך 24 שעות ב 37 °C (37 °F). השאר את תנאי הבקרה לא מטופלים. בשימוש הראשון של חומר גנוטוקסי, titrate את היעילות הציטוטוקסית הרצויה באמצעות בדיקות קיימא התא כגון הדרה כחולה ^{טריפאן18}.
   הערה: בדיקה זו עשויה גם להעריך רכבים חשמליים שנוצרו בתרביות תאים המטופלים בחומרים אחרים המווסתים את מערכת החיסון או הקרנה מייננת מלבד כימותרפיה.
   אזהרה: אוקסליפלטין גורם לעור וגירוי חמור בעיניים ועלול לגרום לתגובה אלרגית בעור ולגירוי נשימתי. אוקסליפלטין חשוד בגרימת סרטן. כאמצעי זהירות, יש להשתמש בציוד מגן אישי, כולל כפפות, משקפי מגן, משקפי מגן, מסכות ובגדים נאותים, לפני השימוש החוזר. יש להימנע משאיפה ולשטוף ידיים ביסודיות לאחר הטיפול. הימנע שחרור לסביבה ולהיפטר oxaliplatin על פי התקנות הקיימות. השג מידע מפורט מגליון נתוני הבטיחות.
5. לאסוף תרבית תאים סופר-נרטיבית. צנטריפוגה תחילה ב 400 x g במשך 5 דקות ב 4 °C (4 °F ), ולאחר מכן ב 2,000 x g במשך 30 דקות ב 4 °C (60 °F), בכל פעם להשליך את הכדור. לבסוף, לסנן דרך קרום PVDF 220 ננומטר. השתמש צינור טרי עבור כל צעד כדי להסיר את כל פסולת התא.
   הערה: בשלב זה, ניתן לאחסן את supernatant המכיל EV ב 4 °C (65 °F) ליום לפני חידוש הפרוטוקול. עם זאת, מומלץ מאוד לדבוק בלוח הזמנים המתואר עם טיהור מיידי של EV.
6. יש לערבב 1 מ"ל של סופר-נרטיב עם 0.5 מ"ל של ריאגנט בידוד אקסוזום ספציפי הזמין מסחרית (ראו טבלת חומרים) בצינור בצורת V של 1.5 מ"ל. ביסודיות פיפטה למעלה ולמטה או מערבולת כדי ליצור פתרון הומוגני. דגירה לילה ב-4 מעלות צלזיוס.
7. צנטריפוגה ב 10,000 x g במשך 60 דקות ב 4 °C (60 °F). בזהירות להשליך את supernatant. הסר את הטיפות הנותרות על ידי הקשה על צינור 1.5 מ"ל הפוך על מגבת נייר ועל ידי שאיפה דרך פיפטה עם קצה דק מבלי לגעת EV-גלולה בתחתית.
   1. הסר ביסודיות את כל הנוזלים כדי למנוע דילול בלתי מבוקר של כדור EV. כמו כן, לבצע משימות אלה במהירות כדי למנוע את הכדור להתייבש.
8. Resuspend את הרכבים החשמליים ב PBS קר על ידי צנרת למעלה ולמטה מבלי לגרד את הכדור מקיר הצינור עם הקצה. עכשיו, להעביר את ההשעיה צעד אחר צעד מהצינור הראשון עד האחרון כדי לאגד את הרכבים החשמליים.
   הערה: השתמש באמצעי אחסון של PBS השווה ל- 5 μL כפול מספר הצינורות. 5 μL של ההשעיה הסופית מכיל את EVs מבודד שוחרר מ 400,000 תאים תחת כימותרפיה או במצב יציב.
9. רצוי, להשתמש ברכבים חשמליים ישירות. אם זה לא אפשרי, לאחסן השעיות EV ב -80 °C (80 °F) בכלי סיליקון עד 28 ימים עד היישום.
   הערה: הרכבים החשמליים המתוארים כאן ובמספר פרסומים אחרים אינם מאבדים את התפקוד הביולוגי שלהם בהתאמה כאשר הם מאוחסנים בטמפרטורה של -80 °C (80 °F) עבור תקופה ^זו19.
10. לכמת ולאפיין מבודדי רכב חשמלי על פי הנחיות MISEV201820.
    הערה: שיטות אפשריות לכימות כוללות ניתוח מעקב חלקיקים ננו-חלקיקים (NTA)²¹ וזיהוי חלבונים הקשורים לממברנה של ^EV22. גישות אפשריות לאפיון נוסף של רכבים חשמליים כוללות מיקרוסקופיה ^{אלקטרונית23} ו-blot20 מערבית.

2. חיסון עכברים עם רכבים חשמליים

1. תכנן את הניסוי in vivo עם עכברי C57BL/6 (או עכברים סינגניים אחרים המתאימים לקו התא הגידולי), כולל קבוצות טיפול המקבלות רכבים חשמליים שמקורם בתאים שטופלו, תאים לא מטופלים ו- PBS (רכב), בהתאמה.
   הערה: רצוי, להשתמש בעכברים בגיל 6-8 שבועות כדי למנוע הזדקנות פיזיולוגית מהפחתת התגובה ^{החיסונית24}.
2. לערבב 5 μL של השעיית EV עם 55 μL PBS קר עבור כל עכבר בתוך קבוצת הטיפול המתאימה כדי לחסן אותו עם EVs מבודד מ 4.0 x ¹⁰⁵ B16-OVA תאים.
   הערה: כמות זו של רכבים חשמליים תואמת לכ-2 x ¹⁰⁹ חלקיקים הנמדדים על-ידי ניתוח מעקב אחר חלקיקים (נתונים אינם מוצגים). חלבון OVA מעורבב עם אדג'ובנט (למשל, LPS) יכול להיות מיושם כמו שליטה חיובית חיסון חזק.
   1. מלא מזרקים (גודל מחט 26-30 G) עם 60 μL של רכבים חשמליים מדוללים או PBS, בהתאמה ולשים מיד על קרח.
      הערה: בפרוטוקול, כמות הרכבים החשמליים המוזרקים מנורמלת למספר תאי הגידול משחררי הרכב החשמלי כדי לשקול באופן ניסיוני הן השפעות איכותיות והן השפעות כמותיות של אוקסליפלטין על תאי הגידול EV biogenesis. עבור חלק מהקוראים, נורמליזציה לריכוז מסוים של רכבים חשמליים המיוצרים עשויה להתאים טוב יותר למערך הניסיוני שלהם בהתאם לשאלה המדעית שלהם.
3. לחסן רכבים חשמליים או PBS תת עורית לתוך ההיבט המדיאלי של הירך של העכברים ולחזור על החיסון לאחר 7 ימים. 14 ימים לאחר הטיפול הראשון, להקריב עכברים, למשל, על ידי נקע צוואר הרחם כדי לנתח את התגובה החיסונית.
   הערה: ניתן להשתמש בנתיבי הזרקה תת עוריים חלופיים, בהתאם לסטנדרטים המקומיים.

3. ניתוח ציטומטריה זרימה של תאי T טחול

1. להכין ולקרר RPMI מלא (cRPMI), שכשהם RPMI-1640 עם FCS (10% v / v), פניצילין (100 יחידות / מ"ל), סטרפטומיצין (100 מיקרוגרם / מ"ל), L-גלוטמין (2 מ"מ) ו- β-mercaptoethanol (50 מיקרומטר).
2. חותכים את הטחול מחלל הבטן הפתוח. מועכים את הטחול עם מסננת תאים לחה של 100 מיקרומטר ובוכנה מפלסטיק של מזרק ושטפו את תאי הטחול לתוך צינור 50 מ"ל עם 5-10 מ"ל של cRPMI. צנטריפוגה ב 400 x g במשך 5 דקות ב 4 °C (4 °F) ולהשליך את supernatant.
   הערה: שמור תאים על קרח במידת האפשר. כדי לנתח את התגובה החיסונית המקומית ולא הטחול, לכרות את בלוטות הלימפה הפופליטיות והמפשעתיות המנקזות, בהתאם לאותו פרוטוקול. במקרה זה, דלג על השלב הבא עבור תמוגה של אריתרוציטים.
3. כדי להסיר אריתרוציטים מהשעיית התא, resuspend את הכדור עם 2 מ"ל של מאגר תמוגה תאי דם אדומים (ראה טבלת חומרים) ודגר במשך 5 דקות בטמפרטורת החדר. לאחר מכן, הפסק את התגובה על-ידי הוספת cRPMI. צנטריפוגה ב 400 x g במשך 5 דקות ב 4 °C (4 °F) ולהשליך את supernatant.
4. עבור זריעה, resuspend גלולה התא ב cRPMI ולספור את התאים למקם משולשים של 200,000 תאים עם 200 μL cRPMI לתוך כל באר, באמצעות צלחת 96-well עם תחתית בצורת U. דגירה עבור 48 שעות ב 37 °C (50 °F).
   הערה: כדי לטפל הספציפיות אנטיגן של תאי T מופעלים, להוסיף 1 מיקרוגרם / מ"ל מסיס אליבבומין (או אנטיגן גידול אחר המתאים לקו התא תחת חקירה) או לעזוב ללא גירוי נוסף, בהתאמה. הוספת אפיטופת הפפטיד הדומיננטית במערכת החיסון SIINFEKL, במקום אלילבומין באורך מלא, מאפשרת תקופת דגירה קצרה יותר. מלבד ציטומטריית זרימה, סרום העכברים ואת תרבית התא supernatant לאחר 48 שעות של דגירה ניתן לנתח עבור ציטוקינים שונים.
5. לאחר 48 שעות, כדי לשפר את הכתם התאי IFN-γ על ידי, בין היתר, חסימת הפרשת חלבונים בתיווך גולגי, להוסיף Brefeldin A (5 ng/mL), PMA (20 ng/mL) ו Ionomycin (1 מיקרוגרם / מ"ל) לתרבות התא. דגירה במשך 4 שעות ב 37 °C (50 °F).
6. לפני הכתמת סמנים ביולוגיים על פני השטח, העבירו את הטחול ללוח של 96 בארות עם תחתית בצורת V ושטפו פעמיים עם PBS. לאחר מכן, הוסף נוגדנים פלואורסצנטיים, התואמים לציטומטר הזרימה הזמין באופן מקומי, המכוונים נגד סמנים ביולוגיים על פני השטח, CD3, CD8 ו- CD4 (ראה טבלת חומרים), מדולל 1:400, בתוספת צבע כדאיות לתיקון, מדולל 1:1,000 ב- PBS. Resuspend גלולה גלולה בתמיסת הכתמה ודגור במשך 30 דקות ב 4 °C (4 °F), מוגן מפני אור.
7. לקיבעון וחדירות של טחול, לשטוף פעמיים במאגר FACS (PBS בתוספת 3% v / v FCS), ולאחר מכן resuspend ב 100 μL של קיבעון / מאגר חדירות (ראה טבלת חומרים) לבאר. דגירה במשך 30 דקות ב 4 °C (65 °F), מוגן מפני אור.
8. להכתמת Γ IFN-γ תאיים, יש לשטוף את הטחול במאגר קיבעון/פרמביליזציה ולחדש עם נוגדנים פלואורסצנטיים נגד γ IFN, מדוללים 1:200 במאגר. דגירה למשך שעה אחת לפחות (עד למקסימום של 12 שעות) בטמפרטורה של 4 °C (65 °F), מוגנת מפני אור.
9. לפני מדידת הדגימות על ידי ציטומטריית זרימה, לשטוף טחול פעמיים במאגר קיבעון / permeabilization ו resuspend במאגר FACS. נתח את ההפעלה של תאי T ציטוטוקסיים בהתאם לאסטרטגיית ההגאים המוצגת באיור 2.
   1. ראשית, כדי לזהות תאים בודדים, כתם FSC-H נגד FSC-A. לאחר מכן, כדי לזהות תאי לימפה, כתם SSC נגד FSC-A. לאחר מכן, בחר תאי CD3⁺, CD4^-, CD8⁺ חיים וקבע את קבוצת המשנה שלהם לייצור IFN-γ כדי לכמת את ההפעלה של תאי T ציטוטוקסיים בטחול.
      הערה: כלול כתם פלואורסצנטי-מינוס-אחד (FMO) עם כל הפלואורוכרום למעט הפלואורוכרום הממוקד נגד IFN-γ כבקרה טכנית שלילית.

תוצאות

פרוטוקול זה נועד להקל על הערכה פשוטה וקלה לשחזור של האימונוגניות של רכבים חשמליים שמקורם בגידול. בזאת, עכברים מחוסנים עם רכבים חשמליים הנגזרים מתרביות הפריה חוץ גופית של תאים סרטניים המבטאים את המודל אנטיגן עוף ovalbumin (OVA). התגובה החיסונית הבאה מנותחת בתאי T טחול באמצעות ציטומטריי?...

Discussion

פרוטוקול זה מספק הערכה אימונולוגית של vivo של כלי רכב חשמליים שמקורם בתאי מלנומה תחת לחץ הנגרמת על ידי כימותרפיה תוך הסתגלות לרכבים חשמליים הנפלטים מסרטן שונים תחת טיפולים שונים. חיסון עכברים עם רכבים חשמליים המופקים מתאי B16-OVA שטופלו באוקסליפלטין, למשל, מרחיב את תאי CD8⁺ T המייצרים ...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Anti-CD3 FITC	Biolegend	100204	Clone 17A2
Anti-CD4 PacBlue	Biolegend	100428	Clone GK1.5
Anti-CD8 APC	Biolegend	100712	Clone 53-6.7
Anti-IFNγ PE	eBioscience	RM90022	Clone XMG1.2
Brefeldin A	Biolegend	420601	Brefeldin A Solution (1,000x)
Cell Strainer, 100 µm	Greiner	542000	EASYstrainer 100 µm
DMEM	Sigma-Aldrich	D6429	Dulbecco's Modified Eagle's Medium with D-glucose (4.5 g/L) and L-glutamine (4 mM)
FBS Good Forte	PAN BIOTECH	P40-47500	Fetal Calf Serum (FCS)
Fixable Viability Dye eFluor 506	eBioscience, division of Thermo Fischer Scientific	65-0866-14
Fixation/Permeabilization Concentrate	eBioscience	00-5123-43	Fixation/Permeabilization Concentrate (10x)
Fixation/Permeabilization Diluent	eBioscience	00-5223-56
Ionomycin	Sigma-Aldrich	407952	From Streptomyces conglobatus - CAS 56092-82-1, ≥ 97% (HPLC)
L-Glutamine	Gibco	25030-032	L-Glutamine (200 mM)
Ovalbumin	InvivoGen	vac-pova	Ovalbumine with < 1 EU/mg endotoxin - CAS 9006-59-1
Oxaliplatin	Pharmacy of MRI hospital
PBS	Sigma-Aldrich	D8537	Phosphate Buffered Saline without calcium chloride and magnesium chloride
Penicillin-Streptomycin	Gibco	1514-122	Mixture of penicillin (10,000 U/mL) and streptomycin (10,000 ug/mL)
PMA	Sigma-Aldrich	P1585	Phorbol 12-myristate 13-acetate, ≥ 99% (HPLC)
PVDF filter, 0,22 µm, for syringes	Merck Millipore	SLGV033RS	Millex-GV Filter Unit 0.22 µm Durapore PVDF Membrane
Red Blood Cell Lysis Buffer	Invitrogen	00-4333-57
RPMI 1640	Thermo Fischer Scientific	11875	Roswell Park Memorial Institute 1640 Medium with D-glucose (2.00 g/L) and L-glutamine (300 mg/L), without HEPES
Syringe, 26 G	BD Biosciences	305501	1 mL Sub-Q Syringes with needle (0.45 mm x 12.7 mm)
Total Exosome Isolation Reagent	Invitrogen	4478359	For isolation from cell culture media
β-Mercaptoethanol	Thermo Fischer Scientific	31350	β-Mercaptoethanol (50 mM)