השתלת מכשירי טלמטריה אלקטרואנצפלוגרמה ואלקטרוקרדיוגרמה בערכות ארנב יילודים

Summary

מנגנונים של מוות פתאומי בלתי צפוי באפילפסיה (SUDEP) אינם מובנים היטב ומאתגרים לתרגום מהמודלים הנוכחיים. ארנבים טרנסגניים עשויים להציע תובנות לגבי מנגנונים אלה. אנו מתארים שיטה להקלטות אלקטרואנצפלוגרפיה ואלקטרוקרדיוגרפיה ארוכות טווח בערכות ארנבים טרנסגניות כדי להעריך אירועים חמורים שעלולים להוביל למוות.

Abstract

וריאנטים פתוגניים בגנים של תעלות יונים קשורים לשיעור גבוה של מוות פתאומי בלתי צפוי באפילפסיה (SUDEP). מנגנוני SUDEP אינם מובנים היטב אך עשויים לכלול הפרעות בתפקוד אוטונומי והפרעות קצב לב בנוסף להתקפים. חלק מהגנים של תעלות יונים באים לידי ביטוי הן במוח והן בלב, מה שעלול להגביר את הסיכון ל-SUDEP בחולים עם תעלות יונים הקשורות לאפילפסיה והפרעות קצב לב. ארנבים טרנסגניים המבטאים גרסאות אפילפסיה מספקים אורגניזם שלם לחקר הפיזיולוגיה המורכבת של SUDEP. חשוב לציין, ארנבים משכפלים יותר את הפיזיולוגיה של הלב האנושי מאשר מודלים של עכברים. עם זאת, למודלים של ארנבים יש שיקולי בריאות והרדמה נוספים כאשר הם עוברים הליכי ניטור פולשניים. פיתחנו שיטה חדשנית להשתלה כירורגית של מכשיר טלמטריה לניטור ארוך טווח של אלקטרואנצפלוגרמה סימולטנית (EEG) ואלקטרוקרדיוגרמה (ECG) בערכות ארנב יילודים. כאן, אנו מדגימים שיטות כירורגיות להשתלת מכשיר טלמטריה בערכות P14 (טווח משקל 175-250 גרם) עם תשומת לב מפורטת לגישה כירורגית, הרדמה וניטור מתאימים וטיפול לאחר הניתוח, וכתוצאה מכך שיעור סיבוכים נמוך. שיטה זו מאפשרת ניטור רציף של אלקטרופיזיולוגיה עצבית ולבבית בנקודות קריטיות בהתפתחות הפרעות קצב לב, התקפים ו-SUDEP פוטנציאלי במודלים של ארנבים של אפילפסיה גנטית או נרכשת.

Introduction

מוות פתאומי בלתי צפוי באפילפסיה (SUDEP) הוא גורם מוביל למוות בחולי אפילפסיה. המנגנונים של SUDEP אינם מובנים היטב אך עלולים לכלול הפרעות בתפקוד אוטונומי, דום נשימה והפרעות קצב לב בנוסף להתקפים 1,2,3,4,5,6,7. לחולים עם אפילפסיה גנטית הקשורה לתעלה יש את השיעורים הגבוהים ביותר של SUDEP. לדוגמה, SUDEP מתרחש אצל עד 20% מהחולים עם וריאנטים בגן תעלת הנתרן SCN1A⁸, הגן האחראי לתסמונת דרבט, אפילפסיה גנטית עם הופעה בשנה הראשונה לחיים. גנים רבים הקשורים לאפילפסיה מתבטאים הן במוח והן בלב, כאשר נתוני מעבדה וקליניים מצביעים על כך שהפרעות קצב לב עשויות להיות קיימות בחולים עם אפילפסיות גנטיות הקשורות לתעלה^7, 9,10,11,12, מה שעלול להגביר את הסיכון שלהם ל-SUDEP עקב הפרעת קצב לב קטלנית הנגרמת על ידי התקפים או התרחשות בו-זמנית של התקפים והפרעות קצב. הערכת SUDEP במסגרת המעבדה מציבה אתגרים רבים. מנקודת מבט לבבית, פוטנציאל הפעולה הלבבית בעכברים שונה מאוד מאשר בבני אדם¹³, ומודלים אנושיים של iPSC-מיוציטים לבביים¹⁴ אינם יכולים לשכפל את המורכבות של האורגניזם כולו. מודלים של ארנב טרנסגני של אפילפסיה גנטית מספקים מערכת אידיאלית לחקר SUDEP, שכן פיזיולוגיה של לב ארנב משכפלת יותר את זו של האדם^13,15, תוך מתן אורגניזם שלם לחקר פתופיזיולוגיה מורכבת. מכיוון ש-SUDEP עשוי להתרחש כבר בהתקף הראשון, הערכת מודלים של בעלי חיים אלה מנקודת זמן מוקדמת חיונית להבנת הופעת ההתקפים והפרעות קצב הלב. הקלטת וידאו בתקופת היילוד היא מאתגרת, מכיוון שערכות ארנב עדיין נמצאות לעתים קרובות בקן. הקלטת אלקטרואנצפלוגרמה רציפה (EEG) או אלקטרוקרדיוגרמה (ECG) עם מערכת קווית מסורתית אינה אפשרית כאשר הערכות נמצאות עם הסכר. הקלטה לסירוגין לא צפויה ללכוד אירועים נדירים וסופיים הקשורים ל-SUDEP. לכן פנינו לניטור טלמטריה מושתל אלחוטי כדי לספק רישום EEG ו-ECG לטווח ארוך, רציף ובו זמנית בערכות ארנבות.

המפתחות להצלחה בפרוטוקול זה הם הרדמה מתאימה ותמיכה לאחר הניתוח לבעלי חיים פגיעים אלה. ארנבים נמצאים בסיכון גבוה בהרבה למוות בהרדמה (1.39%-4.8%) בהשוואה לכלבים וחתולים (0.17%-0.24%) בשל מאפיינים אנטומיים ופיזיולוגיים ייחודיים^16,17. התורמים העיקריים לסיכון הרדמה מוגבר זה כוללים ניהול דרכי נשימה לא אופטימלי וסיבוכים חריפים לאחר הניתוח. גורמים מרובים תורמים לקושי באינטובציה אצל ארנבים, כולל פה ארוך וצר עם לשון רחבה, זווית חדה בין הפה לגרון, תזוזה גבית של האפיגלוטיס, רגישות מוגברת לטראומה גרונית ונטייה מוגברת לעוויתות גרון 18,19,20. לאחר פרק ההרדמה המיידי, ארנבים נמצאים בסיכון לפתח תסמונת קיפאון במערכת העיכול מסכנת חיים. זוהי בעיה מורכבת ורב-גורמית, וההרדמה מניחה כתורמת באמצעות השפעות תרופתיות ישירות המעכבות את תנועתיות הקיבה ו/או אנורקסיה משנית לאחר ההליך מכל סיבה שהיא (כאבים ללא הקלה, בחילות וכו').²¹.

הפיזיולוגיה הייחודית של יילודים ותינוקות של ארנבים מחמירה את האתגרים הקשורים להרדמה וניתוח. לארנבים יש צעירים שנולדו עם מנגנונים לא מפותחים להומאוסטזיס פיזיולוגי ושיקולים אנטומיים מיוחדים. גישה וניטור תוך ורידי קשים מכיוון שרוב המוצרים המסחריים אינם מותאמים לגודל כלי הדם הקטן, קצב הלב הגבוה במנוחה והעור הפיגמנטי של ערכות ארנב צלב לבן הולנדי וניו זילנדי. מכיוון שתפוקת הלב תלויה בקצב הלב ביילודים²², ובאופן כללי, פינוי התרופה בדרך הכליות או הכבד יורד בהשוואה למבוגרים²³, שיקולים לבחירת תרופות ומינון מתאימים הם קריטיים. הגורם העיקרי למוות בהרדמה אצל ארנבים נחשב משני לדיכאון נשימתי ודום נשימה. בנוסף לבעיות ניהול דרכי הנשימה שכבר נדונו עבור כל הארנבים, ליילודים יש דחף נשימתי מדוכא לנוכח היפוקסמיה והיפרקפניה, מה שהופך את ההיבט המאתגר ממילא של ההרדמה למסוכן^יותר.

בפרוטוקול הזה אנו מתארים שיטה מוצלחת להשתלת טלמטריה של EEG ו-ECG (איור 1) במודל של ארנב יילוד של אפילפסיה עם שיעור הישרדות גבוה של ניתוח והרדמה. מידע זה יאפשר לחוקרים אחרים להתמודד עם מודלים מאתגרים של ארנבות יילודים כדי לקדם את המחקר על אפילפסיה, הפרעות קצב לב והפרעות נוירו-התפתחותיות קשורות.

Protocol

כל העבודה המתוארת נבדקה ואושרה על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים של אוניברסיטת מישיגן כחלק מפרוטוקול שימוש בבעלי חיים מאושר ועולה בקנה אחד עם החוקים וההנחיות הפדרליים הרלוונטיים, כולל חוק רווחת בעלי החיים של USDA ומדיניות שירותי בריאות הציבור של NIH. אוניברסיטת מישיגן היא מוסד מוסמך AAALACi.

1. הכנת בעלי חיים

1. ערכות גילוח גס (גיל P14-P19, משקל >175 גרם) 1-2 ימים לפני ההליך כדי למזער את זמן ההרדמה ביום הניתוח באמצעות קוצץ.
2. חיטוי או גז מעקרים את כל הכלים והחומרים הכירורגיים (ככל האפשר) לקראת ההליך.
3. השראת הרדמה עם קטמין (10 מ"ג/ק"ג IM), בופרנורפין הידרוכלוריד (0.01 מ"ג/ק"ג IM) 0.3 מ"ג/מ"ל מדולל ל-0.03 מ"ג/מ"ל, וסבופלורן וחמצן באמצעות הרדמה במסכה באמצעות מעגל ללא נשימה חוזרת.
4. הנח קטטר תוך-ורידי (IV) בגודל 26 גרם 3/4 אינץ' בווריד האפרכסת (מועדף) או בווריד הצפאלי ושטוף עם מי מלח הפריניים 10 יחידות/מ"ל.
5. גלח את הבטן, החזה, הגב, הצוואר והראש קרוב ככל האפשר לעור באמצעות להב #40 או #50.
6. יש למרוח משחת עיניים סיכה ללא תרופות למניעת כיב בקרנית.
7. מתן משככי כאבים (קרפרופן 4 מ"ג/ק"ג SQ - מדולל ל-25 מ"ג/מ"ל) ואנטיביוטיקה סביב הניתוח (צפזולין 20 מ"ג/ק"ג IV מדולל ל-50 מ"ג/מ"ל). יש לתת מחדש אנטיביוטיקה כל 90-180 דקות מזמן הניתוח.

2. הכנה כירורגית (איור 2)

1. העבירו את ערכת ההרדמה לשולחן הניתוחים והניחו אותה על כרית חימום אינפרא אדום הנשלטת באמצעות מדחום רקטלי.
2. הנח את האף והפה במסכת פנים מודפסת בתלת מימד מותאמת אישית המחוברת עם מחבר מסתובב למעגל ג'קסון-ריס שאינו נושם מחדש (שקית 0.5 ליטר) ושמור על הרדמה סבופלורן (1.5%-7% לביצוע) עם זרימת חמצן ב-2 ליטר לדקה.
3. שמרו על הרדמה עם סבופלורן ועקבו אחר עומק ההרדמה באמצעות אוקסימטר דופק על האוזן או הכפה ו/או דופלר על עורק הירך או ישירות על הלב.
4. התאם את ההרדמה לאורך כל ההליך כדי לשמור על דופק (HR) בין 180-260, ריווי חמצן >85% וקצב נשימה בין 10-50 נשימות לדקה (הדמיה ישירה של טיולים או תנועה של שקית הנשימה מחדש).
   הערה: יש תרופות חירום זמינות (גליקופירולאט, אפינפרין, דוקספרם).
5. אבטח את הערכה למסכת הפנים על ידי הדבקה עדינה של הגפיים הקדמיות למסכה.
6. מקם את הערכה במצב מעט ימני-צדדי על ידי הצמדת הרגל האחורית השמאלית לשולחן הניתוחים.
7. הכינו את כל הבטן עם קרצוף כירורגי מחומם לסירוגין בטדין ומי מלח סטריליים.
   הערה: ניתן להשתמש בתמיסה כירורגית נוספת לסיום השפשוף אם רוצים. המנתח, לובש קרצוף ייעודי, מצנפת שיער וכיסויי נעליים, ישפשף באופן אספטי וילבש חלוק וכפפות סטריליות כדי לבצע את ההליך בתנאים סטריליים.
8. הניחו מגבות כירורגיות דביקות משני צידי הערכה וכסו אותה בווילון כירורגי גדול. חותכים חור בגודל מתאים כדי לחשוף את הבטן והחזה.
9. פתח את השתל על השדה הניתוחי והנח תפרי עיגון שאינם נספגים בכל אחד מחורי העיגון של השתל. השאירו את התפר מחובר עם זנב של 5-6 ס"מ (איור 3A). מניחים את השתל בקערה של מי מלח סטריליים מחוממים.

3. מיקום השתל בבטן

1. לאחר הקפדה על הרדמה מספקת, בצע חתך של 3 ס"מ דרך העור לאורך הלינאה אלבה בעזרת אזמל.
2. בצע חתך זהיר דרך השריר כדי לפתוח את חלל הצפק.
3. הנח את השתל בחלק הגולגולתי של חלל הבטן ומקם אותו משמאל לחתך.
4. השתמש בטרוקר כדי להוציא את חוט האק"ג השלילי מחלל הצפק והעור כ-2 ס"מ מימין לחתך. מנהרה את 3 החוטים הנותרים 3-4 ס"מ משמאל לחתך כדי לאפשר לשתל לשבת בנוחות בתוך חלל הצפק.
5. אבטח את השתל עם תפרי העיגון לדופן הגחון של חלל הצפק, כדי להבטיח שלא יילכד מעיים (איור 3B).
6. סגור את דופן הבטן בתפר נספג בתבנית רציפה.
7. סגור את חתך העור עם תפר שאינו נספג בתבנית מופרעת.

4. מיקום מובילי האק"ג

1. מנהרה את עופרת האק"ג השלילית תת עורית לחזה העליון הימני בגובה הצלע הראשונה.
2. נתח בצורה בוטה כיס תת עורי כדי לסלסל באופן רופף כ -10 ס"מ חוט.
   הערה: סלילים הדוקים מתחת לעור עלולים להוביל לשחיקת העור ולחשיפה לחוטים.
3. חותכים את החוט העודף ויוצרים לולאה עם החוט החשוף על ידי קשירת הקצה לחוט המבודד בתפר שאינו נספג.
4. אבטח את הלולאה לשריר עם 2 תפרים שאינם נספגים.
5. סגור את שריר הצפק מימין סביב החוט עם 1-2 תפרים נספגים בתבנית מופרעת.
6. סגור את העור בחזה העליון הימני ובבטן הימנית עם 2-3 תפרים שאינם נספגים בתבנית מופרעת.
7. מנהרה את כבל האק"ג החיובי לצלע התחתונה השמאלית וחזור על השלבים לעיל כדי להדק אותו לשריר ולסגור את החתך.
8. מנהרה ה-EEG מוביל תת עורית לצד הצדדי השמאלי ככל האפשר בשדה הניתוח.
9. הוסף תפר נספג אחד לשריר הצפק משמאל סביב החוטים המתהווים. סגור את העור עם תפר שאינו נספג בתבנית מופרעת.
10. עטפו את חוטי ה-EEG החשופים בנייר אלומיניום סטרילי.

5. הכנת משטח הגב

1. לאחר מכן עוזר לא סטרילי יסיר את הווילון הסטרילי ואת עניבת הרגליים.
2. סובב את הערכה למצב שכיבה (איור 2B) תוך הקפדה על מסכת הפנים להישאר במקומה היטב על ידי סיבוב באמצעות מחבר המסתובב בין מסכת הפנים למעגל. התאם את צגי הדופק ו/או הדופלר לפי הצורך כדי להבטיח ניטור הרדמה רציף.
3. הכן את שדה הניתוח עם קרצוף בטדין שיכלול את הראש, הצוואר והגב כולו תוך הקפדה על קרצוף סביב אזור החוטים היוצאים בצד שמאל.
4. לאחר מכן המנתח יניח מגבת דבק סטרילית מתחת לצד שמאל בעוד חבילת חוטי נייר האלומיניום מוחזקת על ידי עוזר לא סטרילי.
5. הסר בצורה סטרילית ובעדינות את החוטים מחבילת האלומיניום והנח אותם על השדה הסטרילי. מסיימים את העטיפה במגבות סטריליות.
6. מכסים בווילון סטרילי וחותכים חלון גדול מספיק כדי לחשוף את כל השדה הסטרילי.

6. מיקום מוליכי EEG

1. בצע חתך של 3 ס"מ דרך הקרקפת בקו האמצע כדי לחשוף את הגולגולת.
2. השתמש בטרוקאר כדי לחפור באופן תת עורי את מובילי ה-EEG מהצד השמאלי לגולגולת.
3. נקו וגרדו את הפריאוסטאום מהעצמות הקודקודיות החשופות בעזרת אזמל.
4. הכנס מקדחה כף יד לכיסוי אולטרסאונד סטרילי. הכנס מקדחה 1.0 מ"מ למקדחה.
5. קדחו חורי קוצים דו-צדדיים לעצמות הקודקודיות כ-0.5 ס"מ לפני הלמבדה ו-0.5 ס"מ לרוחב התפר הסגיטלי.
   הערה: היזהר עם כמות הלחץ המופעלת על הגולגולת הגבית מכיוון שהדבר יכול לחסום את דרכי הנשימה הגחוניות, ולכן ניטור נשימתי הוא המפתח בשלב זה של ההליך. ירידה קבועה או משמעותית בקצב הלב עשויה להצביע על חסימה נשימתית (ברדיקרדיה משנית לדום נשימה) ואמורה לעורר הערכה ופעולה מיידית.
6. השתמש במלקחיים עדינים כדי להכניס בורג לתוך חור הבור. השתמש במברג כדי להכניס בערך באמצע הדרך (איור 3C).
7. נתח בצורה בוטה כיס תת עורי לאורך החלק האחורי של הצוואר כדי לסלסל באופן רופף כ -10 ס"מ של חוט.
8. חותכים את החוט העודף. הפשיט את הבידוד מהקצה ומתח את החוט.
9. צור לולאה בקצה החוט החשוף על ידי קשירת קשר, תוך שמירה על לולאה קטנה. הנח את הלולאה מעל הבורג והדק את הבורג לגולגולת, וודא שהחוט נוגע בבורג. הנח את חוט ההארקה משמאל ואת חוט ההקלטה מימין.
10. הערך את אותות הטלמטריה בתוכנת הניתוח לנאמנות לאחר שכל החוטים נמצאים במקומם. אות ה- EEG יופיע במשרעת נמוכה בזמן שהערכה מורדמת.
11. אבטח את הברגים והחוטים לגולגולת בעזרת אקריליק דנטלי ואפשר לה להתקשות לחלוטין.
12. סגור את העור עם תפר שאינו נספג על הראש והצד השמאלי.
13. יש להזריק בופיבקאין (מינון מקסימלי של 2 מ"ג/ק"ג של 5 מ"ג/מ"ל מדולל ל-2.5 מ"ג/מ"ל) תת עורית בכל חתך. יש לכסות כל חתך בכמות קטנה של דבק עור הניתן באמצעות מזרק טוברקולין.

7. התאוששות בהרדמה

1. כבה את הרדמת הסבופלוראן וספק רק חמצן למשך 5 דקות לפחות תוך הסרת הסרט שנותר, העטיפה וניטור ההרדמה.
2. יש לבדוק את רמות הגלוקוז בדם באמצעות גלוקומטר ולתת נוזלים תת עוריים מחוממים ב-10% ממשקל הגוף (ק"ג).
3. ברגע שהחיה מגיבה לגירוי כואב (צביטת הבוהן), עברו לאינקובטור התאוששות המוגדר ל-37-38 מעלות צלזיוס.
   הערה: לעתים קרובות, טמפרטורת הערכה תרד משמעותית במהלך העברה זו. זה עשוי להיות מועיל להחזיר את הערכה לכרית החימום האינפרא אדום של הביופידבק או לספק חום משלים נוסף.
4. עקוב חזותית באופן רציף ורשום את טמפרטורת פי הטבעת, קריאות אוקסימטר דופק, דופק וקצב נשימה כל 10-15 דקות.
5. ברגע שהחיה אמבולטורית וערנית באופן עקבי, הסר את הקטטר התוך ורידי והפעל לחץ על המקום עד שהדימום ייפסק.

8. טיפול וניטור לאחר הניתוח

1. החזר את הערכה לסכר ולחברי המלטה. ודא שחומרי קינון ותזונה משלימה (טבלת חומרים) זמינים בכלוב כדי לסייע בוויסות חום והתאוששות.
2. בדקו את הערכה מדי יום במשך 7-10 ימים לאחר הניתוח, שקלו מדי יום וספקו תזונה משלימה בכלוב.
3. ביומיים הראשונים לאחר ההחלמה (D1 ו-D2), יש לתת משככי כאבים נוספים כל 24 שעות (קרפרופן 4 מ"ג/ק"ג רבוע - מדולל ל-5 מ"ג/מ"ל) ונוזלים תת עוריים (5-7 מ"ל).
4. בשלושת הימים הראשונים לאחר ההחלמה (D1, D2 ו-D3), בדקו את הערכה פעמיים ביום, והעריכו אם יש עדויות לכאב, אמבולציה, מראה חתך והידרציה. פעם ביום במהלך פרק זמן זה, יש למדוד את טמפרטורת הערכה כדי להבטיח שאין עדות לזיהום וויסות חום מתאים.
5. הסר תפרים אם החתכים נרפאים כראוי לאחר 7-10 ימים.

תוצאות

התוצאה המוצלחת של פרויקט זה דרשה פיתוח של פרמטרים מרובים בהליך השתל ופרוטוקול ההקלטה. ניתוח השתלה נוסה או בוצע ב-16 ערכות ארנבות, כאשר 14 שרדו בהצלחה את ההליך. מתוכם, 12 שרדו עד לנקודת הסיום של הניסוי. הסיבות למוות במהלך הניתוח או לאחר הניתוח מודגשות בטבלה 1, יחד עם ש?...

Discussion

הפרוטוקול המתואר לזירוז הרדמה, ניטור ותמיכה מאזן את צרכי המחקר לגישה כירורגית וקלות עם תקני הזהב של טיפול וטרינרי. לפני שהמעבדה אימצה את הפרוטוקול המתואר כנוהל סטנדרטי, נוסו מספר שיפורים פוטנציאליים אחרים, כולל מיקום שתל תת עורי גבי, שימוש בצינור אנדוטרכיאלי או בדרכי הנ...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
1 inch elastic wrap - Coban or Vetwrap	3M	https://www.3m.com/3M/en_US/p/d/b00003186/
4-0 PDS monofilament suture	Ethicon	https://www.jnjmedtech.com/en-US/company/ethicon/all-products
5-0 Ethilon nylon suture	Ethicon	https://www.jnjmedtech.com/en-US/company/ethicon/all-products
Acquisition computer	Dell	https://www.dell.com/en-us
Adhesive surgical towels	N/A	N/A
Anesthesia circuit - Jackson-Reevs with 0.5 L rebreathing bag	JorVet	J0248GA
Betadine scrub	N/A	N/A
Bupivicaine (0.5%)	N/A	N/A	Diluted to 2.5 mg/mL prior to administration
Buprenorphine (0.3 mg/mL)	N/A	N/A	Diluted to 0.03 mg/mL prior to administration
Burr - 1.00 mm	Cell Point Scientific	60-1000	to drill skull
Cafazolin (1 g lypholized)	N/A	N/A	Diluted to 50 mg/mL
Carprofen (50 mg/mL)	MWI Veterinary		Diluted to 25 mg/mL prior to administration
Cotton tipped applicators	N/A	N/A
Custom 3-D printed face mask	N/A	https://www.thingiverse.com/thing:923725
Dental acrylic	N/A	N/A
Diet Gel Criticare	Clear H2O	72-05-5042	Nutritional support
Dopper Gel - Aquasonic	Patterson	07-890-5542
Doppler - Vet-Dop2	Patterson	07-888-8986
Doxapram (20 mg/mL)	MWI Veterinary	N/A	Emergency only
Dumont #5 Fine Forceps	Fine Science Tools	11254-20	For holding screws
Duraprep	3M	8630	Final skin prep
ecgAuto data analysis software	emka technologies	N/A
Epinephrine (1:1000)	MWI Veterinary	N/A	Emergency only
Gauze	N/A	N/A
Glucometer ipet Pro	MWI Veterinary	63867	Monitor if poor recovery
Glycopyrrolate (0.2 mg/mL)	MWI Veterinary	N/A	Emergency only
Gram scale	N/A	N/A
Hemostats	Fine Science Tools	13008-12	Hold wire loops while tying the loop in place
Ideal Micro-drill	Cell Point Scientific	67-1204	To drill skull
Incubator	DRE-veterinary (Infantia - NB1)	N/A
Induction box	VetEquip	941444
Infared heating pad - RightTemp Jr	Kent Scientific Corporation	RT-0502
IOX2 data acquisition software	emka technologies	N/A
IV Catheter - Covidein Monoject 26 G, 3/4 inch PTFE	Patterson	07-836-8494
ketamine (100 mg/mL)	MWI Veterinary	N/A
Medical tape	N/A	N/A
Narrow Pattern Forceps - Straight/12 cm	Fine Science Tools	11002-12
Neonatal stethescope	Ultrascope	N/A
Olsen-Hegar Needle holder with scissors - 12 cm	Fine Science Tools	12002-12	For suturing
Ophthalmic ointment Puralube	MWI Veterinary	N/A	Administered to both eyes during anesthesia
Opthalmic Lubricant - Paralube Vet	Patterson	07-888-2572
Pulse oximeter (AccuWave Portable )	Patterson	07-892-9128	For prep and recovery; reads HR up to 400
Pulse oximeter (SDI - Vet/Ox plus 4700)	Heska	N/A	Intra-operative; no longer producted
Receiver	emka technologies	N/A	1 receiver for every 4 telemetry implants
Rectal thermometer	N/A	N/A
Scalpel	Fine Science Tools	10003-12
Scissors	Fine Science Tools	14002-12	To cut drape
Screw driver - 1.0 mm	N/A	N/A	From mini-screwdriver set for electronics
Screws 00-96 x 3/32 (2.4 mm)	Protech International	8L0X3905202F
Sevoflurane	MWI Veterinary		Maintenance anesthesia
Sevoflurane vaporizer and anesthesia machine	N/A	N/A
Skin glue, Gluture	MWI Veterinary	34207	Apply sparingly with syringe
Small scissors	Fine Science Tools	14084-08
Sterile aluminum foil	N/A	N/A	To wrap wires prior to rotating animal
Sterile paint brush	N/A	N/A	To apply dental acrylic
Sterile Saline	N/A	N/A
Sterile surgical gloves	N/A	N/A
Sterile ultrasound cover	N/A	N/A	To cover the drill
Sterile Water	N/A	N/A	For cefazolin reconstitution
Surgical blade no. 15	N/A	N/A
Surgical drape	N/A	N/A
Surgical gown	N/A	N/A
Swivel connector - Jorgensen Labs	Patterson	07-802-2349	To connect anesthesia circuit to face mask
Telemetry implant	emka technologies	easyTEL+_M1_EETA_B_35
Trocar	SAI	TRO-10-6	To tunnel wires