אנו מודים מנואלה Weitkunat על רכישת הסרט S3. אנחנו מודים Reinhard Fässler לתמיכה נדיבה. עבודה זו נתמכה על ידי EMBO יאנג החוקר התוכנית (יצירות), המועצה האירופית למחקר תחת תכנית המסגרת השביעית של האיחוד האירופי (FP/2007-2013) / 310939 גרנט ERC (יצירות), חברת מקס פלנק (S.B.L., יצירות), את המרכז הלאומי דה לה רשרש של (CNRS) (יצירות), יוזמה מצוינות AMIDEX באוניברסיטת אקס-מרסיי (יצירות), הודיעו LabEX (יצירות) ו- Boehringer Ingelheim Fonds (S.B.L.).

1. שלב הגלמים
<ol><li>להגדיר את צלב עם 20-40 בתולה נקבות וזכרים כ-20 לכל בקבוק של אוכל לעוף (איור 1 א'). לחלופין, אם ייעשה שימוש במניות, להעיף כל מניה לתוך בקבוקים חדשים. כדי לקבל מספיק הגלמים, שקול להגדיר שני בקבוקים לכל גן # מושגים בסיסיים.</li>
	<li>תקופת דגירה את הבקבוקים-25 ° C (או 27 ° C לפי הדגם ניסיוני) של 5-6 ימים (איור 1B). הערה: תמשיך לדפדף הזבובים כל שלושה ימים כדי למנוע צפיפות יתר ולהבטיח אספקה רציפה של הגלמים.</li>
	<li>להשתמש במברשת רטובה לאסוף prepupae לבן מן הקירות של הבקבוקים ולהעביר אותם על השקופיות זכוכית (איור 1C). הגיע הזמן הזמני כך הגלמים להשיג את הרצוי גיל בעת התחלת חיים הדמיה במיקרוסקופ. הערה: prepupae האלה נראים כמו גלמים מבוגרת מבחינת צורתם, אבל הם עדיין לבן כמו הזחלים. תחילת השלב prepupal מוגדר 0 h לאחר היווצרות puparium (0 h APF).</li>
	<li>להסיר גושים של אוכל לטוס נדבקות הגלמים עם מברשת רטובה, אוריינט הצד הבטני של הגלמים לעבר השקופית זכוכית באמצעות של stereomicroscope (איור 1D). למחוק את הגלמים זה עדיין עוברים (גם צעירים) או זה החלו להיות חומים (זקן). פעולה זו מבטיחה כי כל גלמי יש באותו הגיל (0 - 1 h APF).</li>
	<li>תווית של השקופיות עם גנוטיפ, התאריך והשעה של אוסף. להעביר את השקופיות זכוכית אחד פטרי כל ולהוסיף ממחטה רטובה כדי למנוע הגלמים מתייבש (איור 1E).</li>
	<li>חנות הגלמים בתוך אינקובטור 25 ° C או 27 ° C עד שיגיעו לגיל הרצוי. להמשיך לשלבים הבאים h 1 לפני הדמיה, כך הגלמים יש את הרצוי גיל בעת הפעלת הדמיה בשידור חי (שלב 3), לדוגמה בשעה 13h APF בשביל הסרט שמוצג איור 2A-D. הערה: המוקדם ריאלי הזמן ונקודת ההתחלה היא לאחר ראש-eversion של הגלמים המתרחשים 8-10 h APF ב-27 º c</li>
</ol>2. מכינים את הגלמים עבור הדמיה
<ol><li>ודא כי הגלמים עכשיו לדבוק השקופית זכוכית בדיוק כמו הם מקל באופן טבעי הקירות של הבקבוקים בגלל שאריות אוכל לעוף. דבק נוספת נדרשת. אם הגלמים לא מקל מספיק טוב בגלל לחות גבוהה, פתח את צלחת פטרי למשך כמה דקות לאפשר להן להתייבש. לחלופין, להעביר אותם ל סרט הדבקה דו-צדדי על משטח זכוכית, אך בדרך כלל, זה לא נחוץ.</li>
	<li>
חלון פתוח במקרה הגולמי עבור הדמיה של שרירי תעופה עקיף (איור 1F; דלג לסעיף 2.3 עבור הדמיה של שרירי הבטן).<ol>
<li>אוריינט הגלמים נדבקות השקופית זכוכית עם הפונה הקדמי הרחק החוקר תחת stereomicroscope. כוונן את הזום 2 X.</li>
		<li>משתמש קצה אחד של ביולוגיה כיתה #5 מלקחיים, בעדינות דקרו לתוך החקירה הגולמי הגבי לאגף מסתיים בבטן, בית החזה מתחילה.</li>
		<li>כדי לחתוך פתח את התיק הגולמי, בעדינות להזיז את המלקחיים לקצה הקדמי של בית החזה לאורך האגף אך למנוע נזק לרקמת הכנף פגיע. הערה: אם נוזל ידלוף מן הגולם, ניזוק; למחוק אותו ולהתחיל מחדש עם גולם שונים.</li>
		<li>להרים את המקטע של המקרה הגולמי מעל בית החזה עם המלקחיים, ואז לחתוך את סעיף זה בעזרת מספריים בסדר, חדים בצד השני של הקו האמצעי הגבי.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
חלון פתוח במקרה הגולמי עבור הדמיה של שרירי הבטן (איור 1 ג'י)<ol>
<li>אוריינט הגלמים נדבקות השקופית זכוכית עם הפונה הקדמי לכיוון החוקר תחת stereomicroscope. כוונן את הזום 2 X.</li>
		<li>משתמש קצה אחד של ביולוגיה כיתה #5 מלקחיים, בעדינות דקרו לתוך החקירה הגולמי הגבי לאגף מסתיים בית החזה, הבטן מתחילה.</li>
		<li>כדי לחתוך פתח את התיק הגולמי, הזז בעדינות המלקחיים לקראת הקצה האחורי של הבטן. הערה: אם נוזל ידלוף מן הגולם, ניזוק; למחוק אותו ולהתחיל מחדש עם גולם שונים.</li>
		<li>להרים את המקטע של המקרה הגולמי מעל הבטן עם המלקחיים, ואז לחתוך את סעיף זה בעזרת מספריים בסדר, חדים בצד השני של הקו האמצעי הגבי.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
הגלמים הר (איור 1 H)<ol>
<li>השתמש במברשת רטובה להעברת הגלמים עד חמישה לשקופית פלסטיק עם חריץ (לפי הזמנה, לשימוש חוזר, ראה דיון ורשימת חומרים). להוסיף coverslips מרווח אחד או שניים בכל צד בהתאם העומק של groove ואת העובי של הגלמים. לשים טיפה קטנה של מים מתחת לכל coverslip מרווח כדי להפוך אותו לדבוק השקופית ולהשאיר קצת מקום בין החריץ על coverslips מרווח בכל צד. הערה: coverslips מרווח יכול גם להיות לצמיתות מצורף אל השקופית עם דבק סופר, מראש.</li>
		<li>אוריינט הגלמים כזה כי הפתח במקרה הגולמי פונה כלפי מעלה באמצעות המברשת. ודא מיצוב זהיר של הגלמים בזווית הנכונה עבור איכות הדמיה טובה. למטב את הזווית עבור כל רקמות ונקודת הזמן התפתחותית. הערה: כמות קטנה של מים ב- groove הופך מיצוב של הגלמים קל יותר. מרוקנים את המים העודפים עם המברשת לאחר מכן כדי למנוע טביעה.</li>
		<li>החזק של coverslip (18 פרק 18 מ מ) מעל הגלמים מבלי לגעת בהם. תרסיס (כ- 0.5 µL) של 50% גליצרול פתרון מעל כל מקרה הגולמי הנפתחות coverslip באמצעות פיפטה 20 µL של המקום. הערה: הליך זה מבטיח כי טיפות יש את המרווח זהה כמו הגלמים.</li>
		<li>. תהפוך את coverslip ומקם אותה מעל הגלמים ביד או בעזרת מלקחיים (#5) בזמן מנוחה צד אחד של coverslip על coverslips מרווח ליד הגלמים. בשלב הבא, ירידה בעדינות את coverslip על הגלמים. ודא כי הפתחים במקרה הגולמי, מכוסים כהלכה גליצרול 50% עבור איכות הדמיה טובה וכדי למנוע הגלמים מתייבשת.</li>
		<li>מקפלים קצה אחד של פיסת סקוטש ולתפוס את זה עם מלקחיים (#5) בקצה הזה. מניחים בעדינות את הקלטת כזה כי זה מכסה את קצה אחד של coverslip העליון של coverslip(s) את מרווח, השקופית פלסטיק בצד אחד. אל תלחץ הקלטת, עדיין. ראשית, תסתובב השקופית וחזור עבור הצד השני.</li>
		<li>השתמש בשתי אצבעות אינדקס כדי לחץ כלפי מטה הקלטת בו זמנית בשני הצדדים. הליך זה מבטיח כי הגלמים הם לא שנעקרו מבתיהם.</li>
		<li>בדוק אם הגלמים נמצאים גם coverslip. לקבלת איכות הדמיה מיטבית הגלמים צריך בעדינות להתמצות מתחת coverslip. להתאים את מספר מרווח coverslips במידת הצורך.</li>
		<li>תווית בשקופית על-ידי כתיבה בקלטת דביק.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. חיים הדמיה של הגלמים
<ol><li>שיטת הרכבה מאפשרת הדמיה של הגלמים על הפוך מיקרוסקופים (איור 1I), וגם על זקוף מיקרוסקופים (איור 1J). במיוחד מתאים עבור סריקת הדמיה חיה מיקרוסקופ קונפוקלי, מיקרוסקופ שני הפוטונים, מיקרוסקופ קונפוקלי דיסק מסתובב ללא קשר אם הם הם הפוכים או זקוף. סרטים לטווח ארוך, להשתמש במה מבוקרי טמפרטורה אם הם זמינים.</li>
	<li>באמצעות את העינים, מנורת UV או שידור אור, אתר של גולם ונוחות בתוך הגולם.</li>
	<li>שימוש במצלמה, למצוא את המבנה הרצוי, התאימו את רמת הזום.</li>
	<li>סרטים לטווח ארוך, להגדיר z-מחסנית שמקיף את המבנה של עניין טוב (לדוגמה, השרירים טיסה עקיף, האתרים שלהם מצורף, תאי גיד או שילוב האמור), לבחור מרווח זמן. שקול עושה ממוצע של איכות תמונה טובה יותר. סרטים במהירות גבוהה, לטווח קצר, בחרו z-מטוס בודד כדי להשיג קצב מסגרות גבוה.</li>
	<li>התאם את עוצמת הלייזר כדי לתת את האות האפשרי הטוב ביותר אבל רוויה קטנה. עם זאת, עוצמת הלייזר גבוהה מדי עלולה לגרום נזק הגולם לאורך זמן.</li>
	<li>להתחיל הדמיה ולחזור מפעם לפעם לבדוק את הסרט, להתאים מחדש את מיקום z-מחסנית במידת הצורך.</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57312/57312fig1.jpg"> איור 1: זרימת עבודה עבור הדמיה חיה של גיד השריר מורפוגנזה ב הגלמים דרוזופילה . ראה פרוטוקול לקבלת פרטים. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57312/57312fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>

<ol>
	<li>Brand, A. H., Perrimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeted+gene+expression+as+a+means+of+altering+cell+fates+and+generating+dominant+phenotypes.">Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes.</a> Development. 118 (2), 401-415 (1993).</li><li>Morin, X., Daneman, R., Zavortink, M., Chia, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+protein+trap+strategy+to+detect+GFP-tagged+proteins+expressed+from+their+endogenous+loci+in+Drosophila.">A protein trap strategy to detect GFP-tagged proteins expressed from their endogenous loci in Drosophila.</a> P. Natl. Acad. Sci. USA. 98 (26), 15050-15055 (2001).</li><li>Venken, K. J. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MiMIC:+a+highly+versatile+transposon+insertion+resource+for+engineering+Drosophila+melanogaster+genes.">MiMIC: a highly versatile transposon insertion resource for engineering Drosophila melanogaster genes.</a> Nat. Meth. 8 (9), 737-743 (2011).</li><li>Sarov, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+genome-wide+resource+for+the+analysis+of+protein+localisation+in+Drosophila.">A genome-wide resource for the analysis of protein localisation in Drosophila.</a> eLife. 5, e12068 (2016).</li><li>Ranganayakulu, G., Schulz, R. A., Olson, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Wingless+signaling+induces+nautilus+expression+in+the+ventral+mesoderm+of+the+Drosophila+embryo.">Wingless signaling induces nautilus expression in the ventral mesoderm of the Drosophila embryo.</a> Dev. Biol. 176 (1), 143-148 (1996).</li><li>Roy, S., Raghavan, K. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Homeotic+genes+and+the+regulation+of+myoblast+migration,+fusion,+and+fibre-specific+gene+expression+during+adult+myogenesis+in+Drosophila.">Homeotic genes and the regulation of myoblast migration, fusion, and fibre-specific gene expression during adult myogenesis in Drosophila.</a> Development. 124 (17), 3333-3341 (1997).</li><li>Bryantsev, A. L., Baker, P. W., Lovato, T. L., Jaramillo, M. S., Cripps, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+requirements+for+Myocyte+Enhancer+Factor-2+during+adult+myogenesis+in+Drosophila.">Differential requirements for Myocyte Enhancer Factor-2 during adult myogenesis in Drosophila.</a> Dev. Biol. 361 (2), 191-207 (2012).</li><li>Gordon, S., Dickinson, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+calcium+in+the+regulation+of+mechanical+power+in+insect+flight.">Role of calcium in the regulation of mechanical power in insect flight.</a> P. Natl. Acad. Sci. USA. 103 (11), 4311-4315 (2006).</li><li>Jin, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genome-Wide+Screens+for+In+Vivo+Tinman+Binding+Sites+Identify+Cardiac+Enhancers+with+Diverse+Functional+Architectures.">Genome-Wide Screens for In Vivo Tinman Binding Sites Identify Cardiac Enhancers with Diverse Functional Architectures.</a> PLoS Genet. 9 (1), e1003195 (2013).</li><li>Chen, E. H., Olson, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Antisocial,+an+intracellular+adaptor+protein,+is+required+for+myoblast+fusion+in+Drosophila.">Antisocial, an intracellular adaptor protein, is required for myoblast fusion in Drosophila.</a> Dev. Cell. 1 (5), 705-715 (2001).</li><li>Clyne, P. J., Brotman, J. S., Sweeney, S. T., Davis, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Green+Fluorescent+Protein+Tagging+Drosophila+Proteins+at+Their+Native+Genomic+Loci+With+Small+P+Elements.">Green Fluorescent Protein Tagging Drosophila Proteins at Their Native Genomic Loci With Small P Elements.</a> Genetics. 165 (3), 1433-1441 (2003).</li><li>Katzemich, A., Liao, K. A., Czerniecki, S., Sch&#246;ck, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alp/Enigma+Family+Proteins+Cooperate+in+Z-Disc+Formation+and+Myofibril+Assembly.">Alp/Enigma Family Proteins Cooperate in Z-Disc Formation and Myofibril Assembly.</a> PLoS Genet. 9 (3), e1003342 (2013).</li><li>Klapholz, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alternative+mechanisms+for+talin+to+mediate+integrin+function.">Alternative mechanisms for talin to mediate integrin function.</a> Curr. Biol. 25 (7), 847-857 (2015).</li><li>Schnorrer, F., Kalchhauser, I., Dickson, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+transmembrane+protein+Kon-tiki+couples+to+Dgrip+to+mediate+myotube+targeting+in+Drosophila.">The transmembrane protein Kon-tiki couples to Dgrip to mediate myotube targeting in Drosophila.</a> Dev. Cell. 12 (5), 751-766 (2007).</li><li>Menon, S. D., Chia, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+rolling+pebbles:+a+multidomain+protein+required+for+myoblast+fusion+that+recruits+D-Titin+in+response+to+the+myoblast+attractant+Dumbfounded.">Drosophila rolling pebbles: a multidomain protein required for myoblast fusion that recruits D-Titin in response to the myoblast attractant Dumbfounded.</a> Dev. Cell. 1 (5), 691-703 (2001).</li><li>Bloor, J. W., Kiehart, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=zipper+Nonmuscle+myosin-II+functions+downstream+of+PS2+integrin+in+Drosophila+myogenesis+and+is+necessary+for+myofibril+formation.">zipper Nonmuscle myosin-II functions downstream of PS2 integrin in Drosophila myogenesis and is necessary for myofibril formation.</a> Dev. Biol. 239 (2), 215-228 (2001).</li><li>Millard, T. H., Martin, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+analysis+of+filopodial+interactions+during+the+zippering+phase+of+Drosophila+dorsal+closure.">Dynamic analysis of filopodial interactions during the zippering phase of Drosophila dorsal closure.</a> Development. 135 (4), 621-626 (2008).</li><li>Hatan, M., Shinder, V., Israeli, D., Schnorrer, F., Volk, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Drosophila+blood+brain+barrier+is+maintained+by+GPCR-dependent+dynamic+actin+structures.">The Drosophila blood brain barrier is maintained by GPCR-dependent dynamic actin structures.</a> J. Cell Biol. 192 (2), 307-319 (2011).</li><li>Lee, T., Luo, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mosaic+Analysis+with+a+Repressible+Cell+Marker+for+Studies+of+Gene+Function+in+Neuronal+Morphogenesis.">Mosaic Analysis with a Repressible Cell Marker for Studies of Gene Function in Neuronal Morphogenesis.</a> Neuron. 22 (3), 451-461 (1999).</li><li>Roy, S., Huang, H., Liu, S., Kornberg, T. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cytoneme-mediated+contact-dependent+transport+of+the+Drosophila+decapentaplegic+signaling+protein.">Cytoneme-mediated contact-dependent transport of the Drosophila decapentaplegic signaling protein.</a> Science. 343 (6173), 1244624 (2014).</li><li>F&#246;rster, D., Luschnig, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Src42A-dependent+polarized+cell+shape+changes+mediate+epithelial+tube+elongation+in+Drosophila.">Src42A-dependent polarized cell shape changes mediate epithelial tube elongation in Drosophila.</a> Nat. Cell Biol. 14 (5), 526-534 (2012).</li><li>Weitkunat, M., Schnorrer, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+guide+to+study+Drosophila+muscle+biology.">A guide to study Drosophila muscle biology.</a> Methods. 68 (1), 2-14 (2014).</li><li>Weitkunat, M., Kaya-&#199;opur, A., Grill, S. W., Schnorrer, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tension+and+force-resistant+attachment+are+essential+for+myofibrillogenesis+in+Drosophila+flight+muscle.">Tension and force-resistant attachment are essential for myofibrillogenesis in Drosophila flight muscle.</a> Curr. Biol. 24 (7), 705-716 (2014).</li><li>Guirao, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Unified+quantitative+characterization+of+epithelial+tissue+development.">Unified quantitative characterization of epithelial tissue development.</a> eLife. 4, e08519 (2015).</li><li>Etournay, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interplay+of+cell+dynamics+and+epithelial+tension+during+morphogenesis+of+the+Drosophila+pupal+wing.">Interplay of cell dynamics and epithelial tension during morphogenesis of the Drosophila pupal wing.</a> eLife. 4, e07090 (2015).</li><li>Weitkunat, M., Brasse, M., Bausch, A. R., Schnorrer, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanical+tension+and+spontaneous+muscle+twitching+precede+the+formation+of+cross-striated+muscle+in+vivo.">Mechanical tension and spontaneous muscle twitching precede the formation of cross-striated muscle in vivo.</a> Development. 144 (7), 1261-1272 (2017).</li><li>Sellin, J., Albrecht, S., K&#246;lsch, V., Paululat, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamics+of+heart+differentiation,+visualized+utilizing+heart+enhancer+elements+of+the+Drosophila+melanogaster+bHLH+transcription+factor+Hand.">Dynamics of heart differentiation, visualized utilizing heart enhancer elements of the Drosophila melanogaster bHLH transcription factor Hand.</a> Gene Expr. Patterns. 6 (4), 360-375 (2006).</li><li>Lemke, S. B., Schnorrer, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanical+forces+during+muscle+development.">Mechanical forces during muscle development.</a> Mech. Develop. 144 (Pt A), 92-101 (2017).</li><li>Classen, A. -. K., Aigouy, B., Giangrande, A., Eaton, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Imaging+Drosophila+pupal+wing+morphogenesis.">Imaging Drosophila pupal wing morphogenesis.</a> Methods Mol. Biol. 420, 265-275 (2008).</li><li>Gratz, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genome+engineering+of+Drosophila+with+the+CRISPR+RNA-guided+Cas9+nuclease.">Genome engineering of Drosophila with the CRISPR RNA-guided Cas9 nuclease.</a> Genetics. 194 (4), 1029-1035 (2013).</li><li>Zhang, X., Koolhaas, W. H., Schnorrer, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+versatile+two-step+CRISPR-+and+RMCE-based+strategy+for+efficient+genome+engineering+in+Drosophila.">A versatile two-step CRISPR- and RMCE-based strategy for efficient genome engineering in Drosophila.</a> G3. 4 (12), 2409-2418 (2014).</li><li>Port, F., Chen, H. -. M., Lee, T., Bullock, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimized+CRISPR/Cas+tools+for+efficient+germline+and+somatic+genome+engineering+in+Drosophila.">Optimized CRISPR/Cas tools for efficient germline and somatic genome engineering in Drosophila.</a> P. Natl. Acad. Sci. USA. 111 (29), E2967-E2976 (2014).</li></ol>

המחברים אין לחשוף.

פרוטוקול הציג מתאר כיצד תמונת גיד השריר מורפוגנזה חי הגלמים דרוזופילה באמצעות מגוון של חלבונים fluorescently מתויגות. זה ויוו הדמיה אסטרטגיה יכול לשמש כדי לחקור תהליכים פיתוחיים בסביבתם הטבעית של האורגניזם כולו.
זה הכרחי עבור ניסוי יירוט מוצלח לאתר את הנקודה הנכונה זמן התפתחותית לנתח. לדוגמה, שרירי תעופה עקיף dorsolongitudinal ליזום מצורף אל המטרות שלהם גיד-≈16 h APF23 בזמן שרירי הבטן לפתח מאוחר יותר ולצרף משני הכיוונים רק בין 30 ל-40 h APF26. כתוצאה מכך, ספרות שפורסמו קודם לכן יש להשתמש כדי למצוא את הנקודות בזמן הנכון של פיתוח לנתח או, אם רקמות או מבנה עניין לא נחקרה בהרחבה בעבר, ההתפתחות הכללית חייב להיות מאופיין קודם.
על הגלמים הרכבה בהצלחה בשקופיות פלסטיק לפי הזמנה, חשוב החריצים שיש מידות מתאים: חריצים צורך להיות 1.0-1.5 מ מ רחב ו- 0.3 - 0.4 מ מ עמוק. לעומק הזה מאפשרת כוונון המרחק המדויק coverslip העליון עם מרווח coverslips כנדרש. עם זאת, coverslip מרווח אחד לפחות אמור לשמש כדי למנוע ייבוש של גליצרול 50% מן המדגם על-ידי כוחות נימי. למקם נכון את הגלמים ב- groove דורש קצת ניסיון צריך להיות מותאם כזה כי המבנה של עניין הוא הכי קרוב ככל האפשר כדי coverslip.
אם מספר גדול של הגלמים אמור לדימות בהפעלה מיקרוסקופ אחד, הם יכולים כל להיות מותקן מראש, ולאחר מכן מאוחסנים בתוך אינקובטור עד הדמיה כדי להבטיח תזמון התפתחותי תקין. הגלמים עליו לשרוד את כל ההליך, גם לפחות לנסות eclose אם שמר על השקופית לאחר דימות. שיעור ההישרדות יכול לשמש את הבדיקה כדי לבדוק אם התנאים הדמיה לפגוע הגלמים.
ההגדרות הדימות צריך להיבחר בקפידה בהתאם לדרישות ניסיוני. סרטים לטווח קצר, קצב גבוה לעומת יחס אות לרעש גבוה צריך להיות מאוזן, בעוד צריכת חשמל גבוהה יחסית לייזר יכול לשמש מבלי להזיק הגלמים מדי. עם זאת, סרטים לטווח ארוך, עוצמת הלייזר יש להישמר ברמה מתונה, הגלמים צריך לא לדימות באופן רציף אלא בנקודות מסוימות הזמן, לדוגמה, כל 20 דקות. כדי להבטיח כי המבנה של עניין לא זזה מתוך בתחום התצוגה, ייתכן צורך להתאים מחדש את מיקום z-המחסנית בין נקודות זמן. לידע שלנו, פתיחת התיק הגולמי כשלעצמה אינה משפיעה על תזמון התפתחותית. עם זאת, שלב מבוקרי טמפרטורה אמור לשמש לסרטים לטווח ארוך כדי להבטיח תזמון התפתחותי תקין. שמירה על שיקולים אלה בחשבון, סרטים מאוד אינפורמטיבי ניתן לרכוש.
פרוטוקול שהוצגו ניתן להמחיש לא רק מורפוגנזה גיד השריר, אלא גם רקמות מתפתחות אחרות, לדוגמה, האגף אפיתל29. רק שלושה שינויים בפרוטוקול זה נדרשים: (1) פתיחה של המקרה הגולמי מעל הכנף במקום בית החזה או בבטן, (2) מיקום של הגלמים עם האגף לכיוון של coverslip העליון ו- (3) שימוש שונה פלורסנט סמן חלבונים. עם ההתקדמות של CRISPR/Cas9-הטכנולוגיה, חלבונים פלורסנט מתויג יותר endogenously יהיו זמינים, כי זה הפך להיות יותר ישירה למטרה לוקוסים אנדוגני ב דרוזופילה30,31 , 32. בעתיד, זה יאפשר שחקרתי את הדינמיקה של מספר חלבונים, תאים ורקמות כולו בסביבה הפיזיולוגית שלהם בפירוט.

המנגנון גיד השריר מאפשר בעלי חיים, כולל האדם כדי להעביר חלקי גופם. אבני הבניין מולקולרית של מערכת השריר-גיד מאוד נשמרים. לכן, המושגים של גיד השריר פיתוח שרלוונטית הכוח האנושי ביולוגיה, לדוגמה מורפוגנזה שריר, גיד השריר המצורף, ארגון עצמי myofibril, ניתן יהיה ללמוד באמצעות דרוזופילה melanogaster כמו נגישה בקלות מערכת מודל. מערכת הגולמי דרוזופילה יש מספר יתרונות ניסיוני. ראשית, על השלב הגולמי – כאשר השרירים למבוגרים נוצרות – האורגניזם הוא sessile וקל לכן תמונה על מיקרוסקופ על פני תקופה של שעות או אפילו ימים. שנית, רבים טופס השרירים קרוב מספיק מתחת לפני השטח הגולמי כך הם יכולים לדימות בתוך האורגניזם ללא פגע, שקוף חלקית. שלישית, השרירים יכול ייחקרו בתוך הסביבה הטבעית שלהם, הם מחוברים ויוצרים שלד חיצוני באמצעות גיד תאים בהם המתח רקמות נבנית. . זה לא אפשרי במערכות תרבות תא השריר. לבסוף, שפע של כלים גנטיים זמינה בדרוזופילה. בין אלה הם סמנים מתויגות fluorescently רבות המאפשרות תיוג של סוגי תאים מסוים או מבני subcellular עבור דימות in vivo.
טבלה 1 מסכמת את סמני החשוב ביותר עבור מורפוגנזה גיד השריר. זה כולל סמני overexpressed באמצעות ה GAL4-UAS-מערכת1 ו מתויג endogenously חלבון סמני2,3,4. היתרון של GAL4-UAS-המערכת הוא כי סמני מתבטאים בדרך כלל ברמה גבוהה, וכתוצאה מכך אות חזק זה יכול בקלות לדימות בכולה-הר הגלמים. בנוסף, ירידה לפרטים רקמות יכולה להיות מושגת על-ידי בחירה GAL4 נהגי בזהירות. היתרון של חלבונים פיוז'ן לידי ביטוי בשליטה אנדוגני הוא כי הדינמיקה של החלבונים המתאימים ניתן למדה ויוו, בעוד הם יכולים לשמש גם סמנים לסוגי תאים שונים או מבנים subcellular ספציפיים, לדוגמה, ΒPS-אינטגרין-GFP לאתרים המצורפים שריר. . יחד, סמנים אלה מספקות גמישות גבוהה עיצוב ניסיוני, הבחירה של מחקר בעיות יכולות להיפתר עכשיו ובעתיד.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td colspan="2">מבנה עם תוויות</td>
			<td colspan="2">סמן</td>
			<td colspan="2">הביטוי ולוקליזציה</td>
			<td colspan="2">מחלקה</td>
			<td colspan="2">מספר מניות</td>
			<td colspan="2">תגובה</td>
			<td>Ref.</td>
		</tr><tr><td colspan="2" rowspan="15">שריר</td>
			<td colspan="2">
Mef2-GAL4</td>
			<td colspan="2">כל myoblasts ואת כל השרירים בכל שלבי</td>
			<td colspan="2">GAL4 קו</td>
			<td colspan="2">BL 27390</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>5</td>
		</tr><tr><td colspan="2">
1151-GAL4</td>
			<td colspan="2">מבשרי שריר למבוגרים, myotubes מוקדמת עד ≈24 h APF</td>
			<td colspan="2">GAL4 קו, משפר מלכודת</td>
			<td colspan="2">-</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>6</td>
		</tr><tr><td colspan="2">
Act79B-GAL4</td>
			<td colspan="2">לקפוץ שריר על בידול</td>
			<td colspan="2">GAL4 קו</td>
			<td colspan="2">-</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>7</td>
		</tr><tr><td colspan="2">
Act88F-GAL4</td>
			<td colspan="2">שרירי תעופה עקיף החל ≈14 h APF</td>
			<td colspan="2">GAL4 קו</td>
			<td colspan="2">-</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>7</td>
		</tr><tr><td colspan="2">
Act88F- Cameleon 3.1</td>
			<td colspan="2">שרירי תעופה עקיף החל ≈14 h APF</td>
			<td colspan="2">Act88F משפר יזם נהיגה Cameleon 3.1</td>
			<td colspan="2">-</td>
			<td colspan="2">Ca2 + מחוון</td>
			<td>8</td>
		</tr><tr><td colspan="2">Act88F-GFP</td>
			<td colspan="2">שרירי תעופה עקיף החל ≈14 h APF</td>
			<td colspan="2">GFP-פיוז'ן (קו TransgeneOme לעוף)</td>
			<td colspan="2">fTRG78, fTRG10028</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>4</td>
		</tr><tr><td colspan="2">
GFP - nls אותו</td>
			<td colspan="2">מבשרי שריר למבוגרים, גרעיני, עד ≈24 h APF בשרירי טיסה עקיף</td>
			<td colspan="2">משפר/יזם עם הכתב nls-GFP</td>
			<td colspan="2">-</td>
			<td colspan="2">פרגמנט משפר 1.5 kb</td>
			<td>9</td>
		</tr><tr><td colspan="2">
Mhc-טאו-GFP</td>
			<td colspan="2">microtubules DLM תבניות, המבדילים השרירים</td>
			<td colspan="2">משפר/יזם עם טאו-GFP כתב</td>
			<td colspan="2">BL 53739</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>10</td>
		</tr><tr><td colspan="2">ΒTub60D-GFP</td>
			<td colspan="2">microtubules ב- myotubes (למשל, שרירי תעופה עקיף של ≈14 h AFP, הפחתת בחריפות לאחר ≈48 h APF)</td>
			<td colspan="2">GFP-פיוז'ן (קו TransgeneOme לעוף)</td>
			<td colspan="2">fTRG958</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>4</td>
		</tr><tr><td colspan="2">Mhc-GFP (weeP26)</td>
			<td colspan="2">sarcomeres (עבה פילמנט) של כל השרירים בגוף (למשל, שרירי תעופה עקיף החל מ≈30 h APF)</td>
			<td colspan="2">GFP-השמנה</td>
			<td colspan="2">-</td>
			<td colspan="2">השתמש משפחתית ולא משפחתית הטרוזיגוטיים, תוויות תת-קבוצה של isoform</td>
			<td>11</td>
		</tr><tr><td colspan="2">Sls-GFP</td>
			<td colspan="2">sarcomeres (Z-דיסק) של כל השרירים בגוף (למשל, שרירי תעופה עקיף החל מ≈30 h APF)</td>
			<td colspan="2">GFP-השמנה (לגלי קו)</td>
			<td colspan="2">-</td>
			<td colspan="2">G53, שימוש משפחתית ולא משפחתית הטרוזיגוטיים</td>
			<td>2</td>
		</tr><tr><td colspan="2">Zasp66-GFP</td>
			<td colspan="2">Z-דיסק של כל השרירים בגוף</td>
			<td colspan="2">GFP-השמנה (לגלי קו)</td>
			<td colspan="2">BL 6824</td>
			<td colspan="2">ZCL0663</td>
			<td>
2 , 12
</td>
		</tr><tr><td colspan="2">Zasp52-GFP</td>
			<td colspan="2">Z-דיסק של כל השרירים בגוף</td>
			<td colspan="2">GFP-השמנה (לגלי קו)</td>
			<td colspan="2">BL 6838</td>
			<td colspan="2">G00189</td>
			<td>
2 , 12
</td>
		</tr><tr><td colspan="2">. השודדים-GFP</td>
			<td colspan="2">אקטין מחייב; לידי ביטוי אפיתל, myoblasts, myotubes</td>
			<td colspan="2">GFP-פיוז'ן (קו TransgeneOme לעוף)</td>
			<td colspan="2">fTRG585</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>4</td>
		</tr><tr><td colspan="2">Dlg1-GFP</td>
			<td colspan="2">צמתי תא אפיתל, myoblasts וממברנות שרירים בכל שלבי</td>
			<td colspan="2">GFP-פיוז'ן (קו TransgeneOme לעוף)</td>
			<td colspan="2">fTRG502</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>4</td>
		</tr><tr><td colspan="2" rowspan="5">האתר המצורף שריר</td>
			<td colspan="2">ΒPS-אינטגרין-GFP</td>
			<td colspan="2" fo:page-break-inside="avoid">שריר מצורף אתרים (למשל, החל ≈18 h AFP בשרירי טיסה עקיף)</td>
			<td colspan="2">GFP-טוק-ב</td>
			<td colspan="2">-</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>13</td>
		</tr><tr><td colspan="2">Talin-GFP ו- mCherry</td>
			<td colspan="2">שריר מצורף אתרים (למשל, החל ≈18 h AFP בשרירי טיסה עקיף)</td>
			<td colspan="2">GFP-השמנה (לחקות קו)</td>
			<td colspan="2">-</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>3</td>
		</tr><tr><td colspan="2">Talin-GFP</td>
			<td colspan="2">שריר מצורף אתרים (למשל, החל ≈18 h AFP בשרירי טיסה עקיף)</td>
			<td colspan="2">GFP-פיוז'ן (קו TransgeneOme לעוף)</td>
			<td colspan="2">fTRG587</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>4</td>
		</tr><tr><td colspan="2">אפשריים-GFP</td>
			<td colspan="2">שריר מצורף אתרים (למשל, החל ≈18 h AFP בשרירי טיסה עקיף)</td>
			<td colspan="2">GFP-השמנה (לגלי קו)</td>
			<td colspan="2">קיוטו 110951 (ZCL3111)</td>
			<td colspan="2">ZCL3111, ZCL3192</td>
			<td>2</td>
		</tr><tr><td colspan="2">יקבלו-GFP ו- RFP</td>
			<td colspan="2">שריר מצורף אתרים (למשל, החל ≈18 h AFP בשרירי טיסה עקיף)</td>
			<td colspan="2">GFP-פיוז'ן (transgene)</td>
			<td colspan="2">-</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>13</td>
		</tr><tr><td colspan="2">גיד</td>
			<td colspan="2">
sr-GAL4</td>
			<td colspan="2">תאי גיד החזה, לאורך כל השלב הגולמי</td>
			<td colspan="2">GAL4 קו, משפר מלכודת</td>
			<td colspan="2">BL 26663</td>
			<td colspan="2">homozygous קטלני</td>
			<td>14</td>
		</tr><tr><td colspan="2">שריר וגיד</td>
			<td colspan="2">
Duf-GAL4</td>
			<td colspan="2">השרירים ואת epithelia, התפרצות מוקדמת.</td>
			<td colspan="2">GAL4 קו</td>
			<td colspan="2">BL 66682</td>
			<td colspan="2">kirre-rP298, מייסד תא סמן</td>
			<td>15</td>
		</tr><tr><td colspan="2" rowspan="7">UAS-כתבים</td>
			<td colspan="2">
UAS- GFP-Gma</td>
			<td colspan="2">איגוד אקטין</td>
			<td colspan="2">קו UAS</td>
			<td colspan="2">BL 31776</td>
			<td colspan="2">תחום הכריכה אקטין Moesin דבוקה GFP</td>
			<td>16</td>
		</tr><tr><td colspan="2">
UAS- mCherry-Gma</td>
			<td colspan="2">איגוד אקטין</td>
			<td colspan="2">קו UAS</td>
			<td colspan="2">-</td>
			<td colspan="2">Gma דבוקה mCherry</td>
			<td>17</td>
		</tr><tr><td colspan="2">
UAS- Lifeact-GFP</td>
			<td colspan="2">איגוד אקטין</td>
			<td colspan="2">קו UAS</td>
			<td colspan="2">BL 35544</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>18</td>
		</tr><tr><td colspan="2">
UAS- Lifeact-רובי</td>
			<td colspan="2">איגוד אקטין</td>
			<td colspan="2">קו UAS</td>
			<td colspan="2">BL 35545</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>18</td>
		</tr><tr><td colspan="2">
UAS-CD8-GFP</td>
			<td colspan="2">איגוד ממברנה</td>
			<td colspan="2">קו UAS</td>
			<td colspan="2">מניות שונות, למשל: BL 32184</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>19</td>
		</tr><tr><td colspan="2">
UAS-CD8-mCherry</td>
			<td colspan="2">איגוד ממברנה</td>
			<td colspan="2">קו UAS</td>
			<td colspan="2">BL 27391 ו 27392</td>
			<td colspan="2"></td>
			<td>20</td>
		</tr><tr><td colspan="2">
UAS-דקל-mCherry</td>
			<td colspan="2">ממברנה מחייב דרך palmitoylation</td>
			<td colspan="2">קו UAS</td>
			<td colspan="2">BL 34514</td>
			<td colspan="2">
UAS- brainbow</td>
			<td>21</td>
		</tr></tbody></table>טבלה 1: מתויגות Fluorescently סמני חלבונים מתאימים ללמוד גיד השריר מורפוגנזה ויוו.
כאן, אנו מתארים בפרוטרוט איך ניתן לבצע הדמיה של גיד השריר מורפוגנזה ב חי הגלמים ומוצלחת (איור 1). לחלופין, ניתן לתקן הגלמים, גזור, immunostained, אשר מאפשר באמצעות נוגדנים לתייג גם חלבונים אשר לא גרה סמני הינם זמינים22. במקרה זה, איכות הדמיה היא בדרך כלל גבוה יותר כי יש תנועה, ניתן למקם את המבנה של עניין בסמיכות coverslip. אולם, ניתוח של קיבוע יכול להוביל לנזק ומולקולרית או דינמיקה רקמות, לדוגמה, עוויתות שרירים, יכול להילמד רק בתוך האורגניזם החי.

<table><tbody><tr><td>Stereomicroscope</td><td>Leica</td><td>MZ6</td><td>product has been replaced by Leica M60</td></tr><tr><td>fly food in bottles (or vials)</td><td>-</td><td>-</td><td>standard culture medium</td></tr><tr><td>paint brush</td><td>da Vinci</td><td>1526Y</td><td>size 1</td></tr><tr><td>microscope slides</td><td>Thermo Scientific</td><td>VWR: 631-1303</td><td>76 x 26 mm</td></tr><tr><td>double-sided tape (optional)</td><td>Scotch</td><td>6651263</td><td>12 mm x 6.3 m</td></tr><tr><td>petri dishes</td><td>Greiner Bio-One</td><td>632102</td><td>94 x 16 mm</td></tr><tr><td>paper tissues</td><td>Th.Geyer</td><td>7695251</td><td></td></tr><tr><td>forceps #5 (Dumont, inox, standard)</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-20</td><td>0.1 mm x 0.06 mm tip</td></tr><tr><td>forceps #5 (Dumont, inox, biology grade)</td><td>Fine Science Tools</td><td>11252-20</td><td>0.05 mm x 0.02 mm tip</td></tr><tr><td>Cohan-Vannas spring scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-02</td><td>straight tip</td></tr><tr><td>plastic slides with a groove (reusable)</td><td>custom-built</td><td>-</td><td>75 x 26 x 4 mm plexi glass slide with 1.0-1.5 mm wide and 0.3-0.4 mm deep groove</td></tr><tr><td>coverslips</td><td>Marienfeld</td><td>107032</td><td>18 x 18 mm, No. 1.5H</td></tr><tr><td>glycerol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>49781</td><td>dilute to 50 % in water</td></tr><tr><td>adhesive tape</td><td>Tesa</td><td>57370-02</td><td>1.5 mm x 10 m</td></tr></tbody></table>

in vivo imaging of muscle-tendon morphogenesis in drosophila pupae

השרירים יחד עם הגידים, השלד מאפשרים בעלי חיים, כולל האדם כדי להעביר חלקי גופם. מורפוגנזה שריר מאוד כולו מבעלי חיים לבני אדם. לכן, שיטת מודל דרוזופילה ניתן ללמוד מושגים של פיתוח שרירים-הגיד כי ניתן להחיל גם הכוח האנושי לביולוגיה. כאן, אנו מתארים בפרוטרוט איך מורפוגנזה של מערכת השריר למבוגרים-הגיד יכול בקלות לדימות חיי, פיתוח הגלמים דרוזופילה . לפיכך, השיטה מאפשרת לחקור חלבונים, תאים ורקמות בסביבה הפיזיולוגית שלהם. בנוסף פרוטוקול צעד אחר צעד עם עצות מועילות, אנו מספקים סקירה מקיפה של חלבונים סמן מתויגות fluorescently המתאימים הלומדים מערכת השריר-גיד. כדי להבליט את היישומים תכליתי של הפרוטוקול, אנחנו מקרינים סרט דוגמה החל ויזואליזציה של אירועים morphogenetic לטווח ארוך – המתרחשים על ציר הזמן של שעות וימים – כדי ויזואליזציה של תהליכים דינאמיים לטווח קצר כמו רעד שרירי המתרחשים סרגל זמן של שניות. יחדיו, פרוטוקול זה צריך לאפשר לקורא לעצב ולבצע הדמיה לחיות ניסויים על חקירת גיד השריר מורפוגנזה באורגניזם ללא פגע.

רקמות שונות יכולים להיות שבעורך ויוו בפיתוח הגלמים לעוף, הפיכתם מערכת מודל אידיאלי ללמוד מורפוגנזה איברים למבוגרים. בין אלה הם השרירים טיסה עקיף, האפיתל החזה כולל תאי גיד, האפיתל כנף, שרירי הבטן, הלב22,23,24,25,26 , 27. כאן, אנו מתמקדים הדמיה חיה של שריר וגיד מורפוגנזה. לקבלת תיאור מפורט של טיסה עקיף שריר, שריר הבטן מורפוגנזה ושיטות נוספים ללמוד ביולוגיה השריר ב דרוזופילה, אנו מכנים את הקורא Weitkunat ו- Schnorrer 201422.
חיים הדמיה של שרירי תעופה עקיף
לימוד פיתוח ארוכת טווח של השרירים טיסה עקיף המורכב של השרירים dorsolongitudinal (DLMs) ואת השרירים dorsoventral (DVMs), Moesin הכדוריים אקטין מחייב תחום מתויג עם GFP (UAS -GFP-Gma) בא לידי ביטוי בכל השרירים באמצעות Myocyte משפר פקטור 2 (Mef2)-הנהג GAL4 (איור 2 א-D, הסרט S1). לפני הדמיה, חלון במקרה הגולמי נפתח מעל בית החזה, כפי שמוצג באיור 1F. במיקרוסקופ שני הפוטונים, z-במחסן נרכשו בכל 20 דקות עבור h 21 החל מ- ≈11 h לאחר היווצרות puparium (11 h APF). במסגרת זמן זו, DLMs (ירוק כיסויי איור2 א'-D') קודם ליזום מצורף אל תאי גיד (איור 2 א) ולאחר מכן תפצל בזמן הקבצים המצורפים שריר בוגר (איור 2B). בשלב הבא, myotubes לקצר (איור 2C) עד שיגיעו לבסוף הבמה מקסימאלית הדחוס ב 30 אבני APF (איור דו-ממדי). יחדיו, הסרט הזה מדגיש כי השינויים הדרמטיים של שריר מורפולוגיה המתרחשות על ציר הזמן של שעות.
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57312/57312fig2.jpg"> איור 2: לחיות הדמיה של טיסה עקיף שריר וגיד מורפוגנזה. (י-ם) נקודות מתוך סרט שני הפוטונים (סרט S1) באמצעות Mef2זמן-GAL4, UAS- GFP-Gma כסמן של אקטין בשרירי טיסה עקיף המורכב של השרירים dorsolongitudinal (DLMs, מודגשים בירוק א' '-D'), (את השרירים dorsoventral DVMs, מוארים בכחול א' '-ד' '). גודל ברים הם 100 מיקרומטר. (E-H) זמן נקודות סרט שני הפוטונים (סרט S2) באמצעות Duf-GAL4UAS-CD8-GFP כסמן שרירי תעופה עקיף, לרבות גיד תאי האפיתל החזה. פנלים E'-H' הצג כיסוי עם מודל של מערכת השריר-גיד בכל נקודה בזמן, הדגשת בהרחבות זמן רב תאית הנוצרת על-ידי האפיתל גיד (מגנטה) בקשר עם השרירים (ירוק). גודל ברים הם 100 מיקרומטר (משוער לפי גודל מבני הדמיה). (אני-L) זמן נקודות מסרט שני צבעים, ספינינג דיסק קונאפוקלית (סרט S3) התמקדות גיד השריר מצורף חניכה. תאי גיד מסומנים בכיתוב sr-GAL4UAS-דקל-mCherry (מגנטה), את dorsolongitudinal עקיף טיסה שרירי עם Mhc -טאו-GFP (ירוק). גודל ברים הם 10 מיקרומטר. הזמן מסומן בתור hh: mm לאחר היווצרות puparium (APF). שים לב כי לא כל הסרטים נרכשו על הבמה מבוקרי טמפרטורה, לכן, תזמון התפתחותי עלול לסטות. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57312/57312fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
לימוד מורפוגנזה בגיד ו שרירים בו זמנית, ממברנה מכורך GFP (UAS -CD8-GFP) בא לידי ביטוי באמצעות Dumbfounded (Duf)-GAL4 כנהג, הבאה לידי ביטוי הן ב התאים הגיד והשרירים טיסה עקיף (איור 2E -H, הסרט S2). Z-מחסנית צולמה במיקרוסקופ שני הפוטונים כל 20 דקות החל מ- 16 ה APF עבור 20 h. ואילו myotubes קומפקטי (כיסוי ירוק באיור 2E'-H'), הגיד תאים הרחבות זמן הסלולר טופס להאריך עם הזמן (כיסוי מגנטה ב 2E איור'-H'). יחדיו, הסרט הזה מדגיש הגומלין קרוב בין ה גיד ושרירים תאים ויוו.
לחקור אותו גיד השריר אינטראקציה בפירוט רב יותר, בוצעה הדמיה שני צבעים, ההגדלה גבוהה. הגלמים עם שרשרת כבדה צולבות הקישור חוטים שרירן (Mhc)-טאו-GFP ב DLMs ו UAS -palmitoylated-mCherry (UAS -דקל-mCherry) מונעים על ידי פס (sr)-GAL4 ב הגידים היו עם תמונה כל 5 דקות החל מ- 12 שעות APF במשך 4.5 h בדיסק מסתובב מיקרוסקופ קונפוקלי (איור 2I-L, הסרט S3). ב 12 שעות APF, myotubes נודדים לכיוון תאי היעד שלהם גיד תוך יצירת filopodia ארוך-הטיפים (איור 2I). לאחר מכן, שריר וגיד הרקמות interdigitate (דמות 2J, K) כדי ליצור קובץ מצורף יציב. כפי המצורף מתבגר, פחות filopodia טופס וממשק גיד השריר smoothens (איור 2 L). לפיכך, הדמיה שני צבעים, ההגדלה גבוהה יכול לשמש כדי לחשוף דינמיקה סלולר בפירוט האורגניזם החי.
חיים הדמיה של שרירי הבטן
עבור הדמיה חיה של שרירי הבטן (איור 3הסרט S4), Mef2-GAL4> UAS-CD8-GFP שימש כסמן ונפתח חלון מעל הבטן במקרה הגולמי כמו מפורט ב איור 1 ג'י. בדומה לסרט שריר טיסה עקיף מיוצג באיור 2A-D, ההיווצרות והגידול של שרירי הבטן ניתן בעקבות במשך שעות רבות של פיתוח (h 55 ב S4 הסרט). במהלך תקופה זו, myoblasts הפתיל טופס גדל myotubes (איור 3 א). העצות myotube להגר ממטרותיהם גיד, לאחר צירוף אל תאי גיד, נוצרות היחידות כויץ של השרירים, sarcomeres, (איור 3B-D).
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57312/57312fig3.jpg"> איור 3: לחיות הדמיה של שריר הבטן מורפוגנזה. (י-ם) נקודות מתוך סרט (סרט S4) באמצעות Mef2זמן-GAL4UAS-CD8-GFP כסמן לעקוב מורפוגנזה שריר הבטן. לוחות א '-ה ' הצג שכבות-על של מודלים של ערכה שריר הבטן (ירוק) המהווה de novo במהלך השלב הגולמי. גודל ברים הם 100 מיקרומטר. הזמן מסומן בתור hh: mm APF. הסרט נרכשה בטמפרטורת החדר. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57312/57312fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
חיים הדמיה של בפקעת השרירים
בניגוד איור 2 ו- 3 איור, איור 4 מראה dynamics שרירים המתרחשים על ציר הזמן של שניות: הקלטה חיה של התכווצות שרירים. הגלמים לבטא βPS-אינטגרין-GFP תחת שליטה אנדוגני היו עם תמונה עם רזולוציה זמן של 0.65 s ב- z-מטוס בודד במיקרוסקופ קונפוקלי (S5 הסרט). בדוגמה המוצגת באיור4, האתרים מצורף של שלוש DVMs (איור 4A) היו עם תמונה 10 דקות החל מ- 42 h APF. בתקופה זו העיוות חמישה אירועים נצפו (איור 4B-F), מראה כי sarcomeres הם כבר התאספו מספיק טוב כדי לתמוך התכווצויות מתואמת בשלב זה הזמן בפיתוח. לפיכך, הדמיה של רעד שרירי יכול לשמש read-out תפקודית sarcomerogenesis כבר במהלך הטיסה עקיף שרירים פיתוח28, בניגוד למשל טיסה בדיקות, אשר יכול להתבצע רק לאחר וגיחתו.
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57312/57312fig4.jpg"> איור 4: חיים הדמיה של בפקעת השרירים. (א) קודם הזמן-נקודת מסרט (סרט S5) מציג בפקעת של שרירי תעופה עקיף dorsoventral ב 42 h APF באמצעות βPS-אינטגרין-GFP כסמן. בתוך שדה הראייה הם השריר מצורף אתרים של DVM II 2, DVM III 1 ו 2 השלישי (אנגלית). (B-נ) צבע שכבות-על חמישה אירועים עווית בודדים, כל אחד מציג את המסגרת לפני העווית (מגנטה) ואת המסגרת הראשונה של האירוע עווית (ירוק). שימו לב כי סיבי השריר בודדים עווית בנפרד אחד מהשני. חצים להדגיש את התנועה עוויתות. הפתרון הזמן של הסרט הוא הם 0.65 סרגלי קנה מידה ס' 25 מיקרומטר. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57312/57312fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
חיים הדמיה של חלבונים מתויגות endogenously
דומה βPS-אינטגרין-GFP, אוסף גדול של חלבונים פיוז'ן לידי ביטוי דרוזופילה תחת שליטה אנדוגני היה שנוצר2,3,4. קווים אלה לעוף ניתן ללמוד לדוגמה subcellular לוקליזציה או את פרופילי ביטוי של חלבונים עניין. האוסף שימושי במיוחד אם נוגדנים ספציפיים אינם זמינים או דינמיקה חלבון צריך ובדוקים ויוו בלי קיבוע. איור 5 מציג שלוש דוגמאות של פיוז'ן endogenously ביטוי חלבונים מספריית TransgeneOme (fTRG) לעוף, Hu li shao טאי (Hts)-GFP (איור 5 א, ב'), Talin-GFP (איור 5C, D) וβtubulin60d-GFP ( איור 5E, F). הביטוי של חלבונים אלה ניתן יהיה ללמוד ברקמות כל לבטא אותם באופן טבעי. . הנה, אנחנו מראים האפיתל בית החזה (איור 5AC, E) ואת השרירים טיסה עקיף או האתרים שלהם מצורף (איור 5BD, F) כדוגמאות.
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57312/57312fig5.jpg"> איור 5: הדמיה חיה של endogenously מתויג חלבונים. (A, B) השלכות המרבי של z-במחסן של הגלמים לבטא Hts-GFP. (C, D) השלכות המרבי של z-במחסן של הגלמים לבטא Talin-GFP. (E, F) השלכות המרבי של z-במחסן של הגלמים לבטא βTubulin60D-GFP. לוחות A, C ו- E במופע האפיתל החזה 18, 24, 18 h APF, בהתאמה, לוחות B, D ו- F להראות את השרירים טיסה עקיף או האתרים שלהם מצורף ב 30 אבני APF. גודל ברים הם 25 מיקרומטר. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57312/57312fig5large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>

Watch this Scientific Journal Video about In Vivo Imaging of Muscle-tendon Morphogenesis in Drosophila Pupae at JoVE.com

In Vivo Imaging of Muscle-tendon Morphogenesis in Drosophila Pupae

כאן, אנו מציגים שיטה קלה לשימוש, רב-תכליתי לביצוע חי הדמיה של תהליכים התפתחותיים מורפוגנזה הכללי של גיד השריר בפרט חי הגלמים דרוזופילה .

אין ויוו הדמיה של גיד השריר מורפוגנזה ב דרוזופילה הגלמים

Muscles together with tendons and the skeleton enable animals including humans to move their body parts. Muscle morphogenesis is highly conserved from ...

in-vivo-imaging-of-muscle-tendon-morphogenesis-in-drosophila-pupae

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

In Vivo Imaging of Muscle-tendon Morphogenesis in Drosophila Pupae

11.3K Views.  Max Planck Institute of Biochemistry. כאן, אנו מציגים שיטה קלה לשימוש, רב-תכליתי לביצוע חי הדמיה של תהליכים התפתחותיים מורפוגנזה הכללי של גיד השריר בפרט חי הגלמים דרוזופילה .

Video: In Vivo Imaging of Muscle-tendon Morphogenesis in Drosophila Pupae

Live-imaging of the Drosophila Pupal Eye

Inherent processes of Drosophila pupal development can shift and distort the eye epithelium in ways that make individual cell behavior difficult to track during live cell imaging. These processes include: retinal rotation, cell growth and organismal movement. Additionally, irregularities in the topology of the epithelium, including subtle bumps and folds often introduced as the pupa is prepared for imaging, make it challenging to acquire in-focus images of more than a few ommatidia in a single focal plane. The workflow outlined here remedies these issues, allowing easy analysis of cellular processes during Drosophila pupal eye development. Appropriately-staged pupae are arranged in an imaging rig that can be easily assembled in most laboratories. Ubiquitin-DE-Cadherin:GFP and GMR-GAL4&#8211;driven UAS-&#945;-catenin:GFP are used to visualize cell boundaries in the eye epithelium 1-3. After deconvolution is applied to fluorescent images captured at multiple focal planes, maximum projection images are generated for each time point and enhanced using image editing software. Alignment algorithms are used to quickly stabilize superfluous motion, making individual cell behavior easier to track.

Live-imaging of the Drosophila Pupal Eye

This protocol presents an efficient method for imaging the live Drosophila pupal eye neuroepithelium. This method compensates for tissue movement and uneven topology, enhances visualization of cell boundaries through the use of multiple GFP-tagged junction proteins, and uses an easily-assembled imaging rig.

Live-הדמיה של<em&gt; דרוזופילה</em&gt; גלמי עין

Inherent processes of Drosophila pupal development can shift and distort the eye epithelium in ways that make individual cell behavior difficult to track ...

Long-term Live Imaging of Drosophila Eye Disc

Live imaging provides the ability to continuously track dynamic cellular and developmental processes in real time. Drosophila larval imaginal discs have been used to study many biological processes, such as cell proliferation, differentiation, growth, migration, apoptosis, competition, cell-cell signaling, and compartmental boundary formation. However, methods for the long-term ex vivo culture and live imaging of the imaginal discs have not been satisfactory, despite many efforts. Recently, we developed a method for the long-term ex vivo culture and live imaging of imaginal discs for up to 18 h. In addition to using a high insulin concentration in the culture medium, a low-melting agarose was also used to embed the disc to prevent it from drifting during the imaging period. This report uses the eye-antennal discs as an example. Photoreceptor R3/4-specific m&#948;0.5-Ga4 expression was followed to demonstrate that photoreceptor differentiation and ommatidial rotation can be observed during a 10 h live imaging period. This is a detailed protocol describing this simple method.

Long-term Live Imaging of Drosophila Eye Disc

This protocol describes a detailed method for the long-term ex vivo culture and live imaging of a Drosophila imaginal disc. It demonstrates photoreceptor differentiation and ommatidial rotation within the 10 h period of live imaging of the eye disc. The protocol is simple and does not require expensive setup.

הדמיה לטווח ארוך בשידור חי של<em&gt; דרוזופילה</em&gt; דיסק העין

Live imaging provides the ability to continuously track dynamic cellular and developmental processes in real time. Drosophila larval imaginal discs have ...

Dissection of Drosophila melanogaster Flight Muscles for Omics Approaches

Drosophila flight muscle is a powerful model to study diverse processes such as transcriptional regulation, alternative splicing, metabolism, and mechanobiology, which all influence muscle development and myofibrillogenesis. Omics data, such as those generated by mass spectrometry or deep sequencing, can provide important mechanistic insights into these biological processes. For such approaches, it is beneficial to analyze tissue-specific samples to increase both selectivity and specificity of the omics fingerprints. Here we present a protocol for dissection of fluorescent-labeled flight muscle from live pupae to generate highly enriched muscle samples for omics applications. We first describe how to dissect flight muscles at early pupal stages (&#60;48 h after puparium formation [APF]), when the muscles are discernable by green fluorescent protein (GFP) labeling. We then describe how to dissect muscles from late pupae (&#62;48 h APF) or adults, when muscles are distinguishable under a dissecting microscope. The accompanying video protocol will make these technically demanding dissections more widely accessible to the muscle and Drosophila research communities. For RNA applications, we assay the quantity and quality of RNA that can be isolated at different time points and with different approaches. We further show that Bruno1 (Bru1) is necessary for a temporal shift in myosin heavy chain (Mhc) splicing, demonstrating that dissected muscles can be used for mRNA-Seq, mass spectrometry, and reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) applications. This dissection protocol will help promote tissue-specific omics analyses and can be generally applied to study multiple biological aspects of myogenesis.

Dissection of Drosophila melanogaster Flight Muscles for Omics Approaches

Drosophila flight muscle is a powerful model to study transcriptional regulation, alternative splicing, metabolism, and mechanobiology. We present a protocol for dissection of fluorescent-labeled flight muscle from live pupae to generate highly enriched samples ideal for proteomics and deep-sequencing. These samples can offer important mechanistic insights into diverse aspects of muscle development.

חיתוך של דרוזופילה מלאנוסטר שרירי הטיסה לגישות omics

Drosophila flight muscle is a powerful model to study diverse processes such as transcriptional regulation, alternative splicing, metabolism, and ...

Genetics

Mesoscopic Fluorescence Tomography for In-vivo Imaging of Developing Drosophila

Visualizing developing organ formation as well as progession and treatment of disease often heavily relies on the ability to optically interrogate molecular and functional changes in intact living organisms. Most existing optical imaging methods are inadequate for imaging at dimensions that lie between the penetration limits of modern optical microscopy (0.5-1mm) and the diffusion-imposed limits of optical macroscopy (&gt;1cm) [1]. Thus, many important model organisms, e.g. insects, animal embryos or small animal extremities, remain inaccessible for in-vivo optical imaging. 
Although there is increasing interest towards the development of nanometer-resolution optical imaging methods, there have not been many successful efforts in improving the imaging penetration depth. The ability to perform in-vivo imaging beyond microscopy limits is in fact met with the difficulties associated with photon scattering present in tissues. Recent efforts to image entire embryos for example [2,3] require special chemical treatment of the specimen, to clear them from scattering, a procedure that makes them suitable only for post-mortem imaging. These methods however evidence the need for imaging larger specimens than the ones usually allowed by two-photon or confocal microscopy, especially in developmental biology and in drug discovery.
We have developed a new optical imaging technique named Mesoscopic Fluorescence Tomography [4], which appropriate for non-invasive in-vivo imaging at dimensions of 1mm-5mm. The method exchanges resolution for penetration depth, but offers unprecedented tomographic imaging performance and it has been developed to add time as a new dimension in developmental biology observations (and possibly other areas of biological research) by imparting the ability to image the evolution of fluorescence-tagged responses over time. As such it can accelerate studies of morphological or functional dependencies on gene mutations or external stimuli, and can importantly, capture the complete picture of development or tissue function by allowing longitudinal time-lapse visualization of the same, developing organism.
The technique utilizes a modified laboratory microscope and multi-projection illumination to collect data at 360-degree projections. It applies the Fermi simplification to Fokker-Plank solution of the photon transport equation, combined with geometrical optics principles in order to build a realistic inversion scheme suitable for mesoscopic range. This allows in-vivo whole-body visualization of non-transparent three-dimensional structures in samples up to several millimeters in size.
We have demonstrated the in-vivo performance of the technique by imaging three-dimensional structures of developing Drosophila tissues in-vivo and by following the morphogenesis of the wings in the opaque Drosophila pupae in real time over six consecutive hours.

Mesoscopic Fluorescence Tomography for In-vivo Imaging of Developing Drosophila

Mesoscopic fluorescence tomography operates beyond the penetration limits of tissue-sectioning fluorescence microscopy. The technique is based on multi-projection illumination and a photon transport description. We demonstrate in-vivo whole-body 3D visualization of the morphogenesis of GFP-expressing wing imaginal discs in Drosophila melanogaster.

Mesoscopic Fluorescence טומוגרפיה עבור In-vivo הדמיה של פיתוח תסיסנית</em

Visualizing  developing organ formation as well as progession and treatment of disease often  heavily relies on the ability to optically interrogate ...

Biology

Live Imaging and Analysis of Muscle Contractions in Drosophila Embryo

Coordinated muscle contractions are a form of rhythmic behavior seen early during development in Drosophila embryos. Neuronal sensory feedback circuits are required to control this behavior. Failure to produce the rhythmic pattern of contractions can be indicative of neurological abnormalities. We previously found that defects in protein O-mannosylation, a posttranslational protein modification, affect the axon morphology of sensory neurons and result in abnormal coordinated muscle contractions in embryos. Here, we present a relatively simple method for recording and analyzing the pattern of peristaltic muscle contractions by live imaging of late stage embryos up to the point of hatching, which we used to characterize the muscle contraction phenotype of protein O-mannosyltransferase mutants. Data obtained from these recordings can be used to analyze muscle contraction waves, including frequency, direction of propagation and relative amplitude of muscle contractions at different body segments. We have also examined body posture and taken advantage of a fluorescent marker expressed specifically in muscles to accurately determine the position of the embryo midline. A similar approach can also be utilized to study various other behaviors during development, such as embryo rolling and hatching.

Live Imaging and Analysis of Muscle Contractions in Drosophila Embryo

Here, we present a method to record embryonic muscle contractions in Drosophila embryos in a non-invasive and detail-oriented manner.

הדמיה חיה וניתוח של התכווצויות שרירים בתוך העובר דרוזופילה

Coordinated muscle contractions are a form of rhythmic behavior seen early during development in Drosophila embryos. Neuronal sensory feedback circuits ...

Imaging and Analysis of Tissue Orientation and Growth Dynamics in the Developing Drosophila Epithelia During Pupal Stages

Within multicellular organisms, mature tissues and organs display high degrees of order in the spatial arrangements of their constituent cells. A remarkable example is given by sensory epithelia, where cells of the same or distinct identities are brought together via cell-cell adhesion showing highly organized planar patterns. Cells align to one another in the same direction and display equivalent polarity over large distances. This organization of the mature epithelia is established over the course of morphogenesis. To understand how the planar arrangement of the mature epithelia is achieved, it is crucial to track cell orientation and growth dynamics with high spatiotemporal fidelity during development in vivo. Robust analytical tools are also essential to identify and characterize local-to-global transitions. The Drosophila pupa is an ideal system to evaluate oriented cell shape changes underlying epithelial morphogenesis. The pupal developing epithelium constitutes the external surface of the immobile body, allowing long-term imaging of intact animals. The protocol described here is designed to image and analyze cell behaviors at both global and local levels in the pupal abdominal epidermis as it grows. The methodology described can be easily adapted to the imaging of cell behaviors at other developmental stages, tissues, subcellular structures, or model organisms.

Imaging and Analysis of Tissue Orientation and Growth Dynamics in the Developing Drosophila Epithelia During Pupal Stages

This protocol is designed for the imaging and analysis of the dynamics of cell orientation and tissue growth in the Drosophila abdominal epithelia as the fruit fly undergoes metamorphosis. The methodology described here can be applied to the study of different developmental stages, tissues, and subcellular structures in Drosophila or other model organisms.

הדמיה וניתוח של כיוון רקמות ודינמיקה בפיתוח הדרוזולה אפיתליה במהלך שלבי pupal

Within multicellular organisms, mature tissues and organs display high degrees of order in the spatial arrangements of their constituent cells. A ...

In vivo Imaging of Intact Drosophila Larvae at Sub-cellular Resolution

Recent improvements in optical imaging, genetically encoded fluorophores and genetic tools allowing efficient establishment of desired transgenic animal lines have enabled biological processes to be studied in the context of a living, and in some instances even behaving, organism. In this protocol we will describe how to anesthetize intact Drosophila larvae, using the volatile anesthetic desflurane, to follow the development and plasticity of synaptic populations at sub-cellular resolution1-3. While other useful methods to anesthetize Drosophila melanogaster larvae have been previously described4,5,6,7,8, the protocol presented herein demonstrates significant improvements due to the following combined key features: (1) A very high degree of anesthetization; even the heart beat is arrested allowing for lateral resolution of up to 150 nm1, (2) a high survival rate of &gt; 90% per anesthetization cycle, permitting the recording of more than five time-points over a period of hours to days2 and (3) a high sensitivity enabling us in 2 instances to study the dynamics of proteins expressed at physiological levels. In detail, we were able to visualize the postsynaptic glutamate receptor subunit GluR-IIA expressed via the endogenous promoter1 in stable transgenic lines and the exon trap line FasII-GFP1. (4) In contrast to other methods4,7 the larvae can be imaged not only alive, but also intact (i.e. non-dissected) allowing observation to occur over a number of days1. The accompanying video details the function of individual parts of the in vivo imaging chamber2,3, the correct mounting of the larvae, the anesthetization procedure, how to re-identify specific positions within a larva and the safe removal of the larvae from the imaging chamber.

In vivo Imaging of Intact Drosophila Larvae at Sub-cellular Resolution

This protocol describes a reliable method for anesthetization and imaging of intact Drosophila melanogaster larvae. We have utilized the volatile anesthetic desflurane to allow for repetitive imaging at sub-cellular resolution and re-identification of structures for up to a few days1.

בתחום ההדמיה vivo של הזחלים תסיסנית אינטקט ברזולוציה משנה הסלולר

Recent improvements in optical imaging, genetically encoded fluorophores and genetic tools allowing efficient establishment of desired transgenic animal ...

<meta charset="utf8"></head><body>הדמיה חיה מורחבת של מורפוגנזה של רגל גולם דרוזופילה ללא פופריום

Long-Term Live Imaging of Drosophila Pupal Leg Development After Puparium Removal

Over the past decades, significant progress has been made in understanding the mechanisms of cell fate determination. However, the process by which fate-determined cells form three-dimensional organismal shapes remains unclear. Recent advances in confocal microscopy have facilitated efforts to observe cell dynamics during development through live imaging. The Drosophila melanogaster pupa is ideal for live imaging due to its immobility, transparent pupal cuticle, and the availability of fluorescent reporter lines. A primary challenge for imaging is the puparium, the cuticle surrounding the pupa, which obstructs optical imaging. While previous methods involved either partial or complete removal of the puparium, maintaining pupal viability for extended periods after this procedure has remained challenging. Here, a simple method is presented for days-long live imaging of the Drosophila leg during the pupal stage, involving complete puparium removal. The method includes removing the puparium from a pupa adhered to double-sided tape, followed by assembling a small chamber on a glass-bottom dish to enclose the pupa and a drop of water. This setup is straightforward, reliable, and supports extended pupal survival by preventing desiccation. Long-term live imaging of the Drosophila pupa has significantly contributed to capturing how the adult leg undergoes dramatic three-dimensional structural changes over 2-3 days. These changes include the transient formation of an intriguing structure (the Parthenon-like structure) by epithelial cells, rapid tissue narrowing, joint formation, and bristle elongation. This method is applicable to the observation of various tissues and can potentially be combined with other techniques, such as optical gene induction, to advance the understanding of cell dynamics during the final shape formation of tissues in the pupal stage.

<meta charset="utf8"></head><body>זרקור המחבר: חשיפת מבנים אפיתל דינמיים במהלך התפתחות דרוזופילה

Here, a protocol is presented for long-term live imaging of the Drosophila leg during the pupal stage, involving complete removal of the puparium. This protocol can also be applied to other tissues.

הדמיה חיה לטווח ארוך של התפתחות רגל גולם דרוזופילה לאחר הסרת פופריום

Over the past decades, significant progress has been made in understanding the mechanisms of cell fate determination. However, the process by which ...

אין ויוו הדמיה של גיד השריר מורפוגנזה ב דרוזופילה הגלמים

Summary

Explore More Videos

Live-הדמיה של

הדמיה לטווח ארוך בשידור חי של

חיתוך של דרוזופילה מלאנוסטר שרירי הטיסה לגישות omics

Mesoscopic Fluorescence טומוגרפיה עבור In-vivo הדמיה של פיתוח תסיסנית

הדמיה חיה וניתוח של התכווצויות שרירים בתוך העובר דרוזופילה

הדמיה וניתוח של כיוון רקמות ודינמיקה בפיתוח הדרוזולה אפיתליה במהלך שלבי pupal

בתחום ההדמיה vivo של הזחלים תסיסנית אינטקט ברזולוציה משנה הסלולר

הדמיה חיה לטווח ארוך של התפתחות רגל גולם דרוזופילה לאחר הסרת פופריום

הדמיה חיה לטווח ארוך של התפתחות רגל גולם דרוזופילה לאחר הסרת פופריום

הדמיה חיה לטווח ארוך של התפתחות רגל גולם דרוזופילה לאחר הסרת פופריום