L'isolamento e arricchimento di fegato progenitrici sottoinsiemi identificati da un marcatore combinazione romanzo di superficie

Riepilogo

lesioni al fegato sono accompagnate da espansione di cellule progenitrici che rappresenta una popolazione cellulare eterogenea. Classificazione Novel di questo compartimento cellulare consente di distintivo più sottoinsiemi. Il metodo qui descritto illustra l'analisi citofluorimetrica ed elevato isolamento purezza vari sottogruppi che possono essere utilizzati per ulteriori analisi.

Abstract

Durante lesioni croniche del fegato, cellule progenitrici espandono in un processo chiamato reazione duttulare, che comporta anche la comparsa di infiltrato cellulare infiammatorio e l'attivazione delle cellule epiteliali. La popolazione di cellule progenitrici durante tali reazioni infiammatorie è stato per lo più studiata utilizzando marcatori di superficie singoli, sia per l'analisi istologica o con tecniche di citometria a base di flusso. Tuttavia, nuovi marcatori di superficie identificati vari sottoinsiemi funzionalmente distinte all'interno del progenitore di fegato / stelo vano cella. Il metodo presentato qui descrive l'isolamento e il flusso dettagliata analisi di citometria di sottoinsiemi progenitrici utilizzando combinazioni marcatori romanzo di superficie. Inoltre, dimostra come i vari sottogruppi di cellule progenitrici possono essere isolati con metodi di elevata purezza con modalità automatizzate magnetico e FACS ordinamento-based. Importante, novel ed enzimatica semplificato dissociazione del fegato consente l'isolamento di queste popolazioni cellulari rare con un'alta redditivitàche è superiore rispetto ad altri metodi esistenti. Questo è particolarmente rilevante per studiare ulteriormente cellule progenitrici in vitro o per isolare l'RNA di alta qualità per analizzare il profilo di espressione genica.

Introduzione

la rigenerazione del fegato è principalmente associato con la capacità di auto-rinnovamento degli epatociti. Tuttavia, le lesioni croniche del fegato si verificano con l'attivazione delle cellule progenitrici e di espansione, che sono stati associati con la loro capacità di differenziarsi in epatociti e colangiociti ^{1, 2, 3, 4.} Questo è particolarmente rilevante in quanto, durante lesioni croniche, epatociti proliferazione non è efficace. Nonostante diversi studi di tracciabilità genetica di targeting cellule progenitrici, il loro ruolo nella rigenerazione del fegato rimane controverso ^{5, 6, 7, 8.} Inoltre, l'attivazione delle cellule progenitrici è stato collegato ad un aumento della risposta fibrotica nel fegato, che solleva domande sul loro ruolo esatto durante lesioni ⁹, ^10.

La natura eterogenea del compartimento di cellule progenitrici è stato a lungo suggerito da studi di espressione genica che isolate cellule progenitrici che esprimono un unico marcatore di superficie utilizzando microdissezione o cella metodi basati su di smistamento ^{1, 11.} Infatti, di recente, una nuova combinazione marcatore superficie con gp38 (podoplanin) inequivocabilmente legata precedenti marcatori singoli di cellule progenitrici di vari sottoinsiemi ^12. È importante sottolineare che questi sottoinsiemi non solo differivano nella loro espressione marcatore di superficie, ma anche esposte le alterazioni funzionali durante ferite ^12.

Molteplici modelli animali sono stati utilizzati per studiare l'attivazione delle cellule progenitrici e la rigenerazione del fegato. Sembra che i vari tipi di lesioni promuovere l'attivazione di diversi sottoinsiemi di cellule progenitrici ^12. Questo potrebbe spiegare il phdivergenza enotypic della reazione duttulare osservato negli esseri umani ^4. Così, i complessi fenotipiche e funzionali analisi di cellule progenitrici sono fondamentali per comprendere il loro ruolo nella infortuni e il vero significato della reazione duttulare in malattie del fegato.

Oltre combinazioni marcatore di superficie, le differenze cruciali nei protocolli isolamento delle cellule complicano ulteriormente le conclusioni sulla base di studi precedenti ^2. Una notevole quantità di studi affrontato il ruolo delle cellule progenitrici che notevolmente differiscono per il protocollo di isolamento (ad esempio, dissociazione fegato (combinazione enzima e durata del processo), media densità, e la velocità di centrifugazione) ^2. Una tecnica di isolamento ottimizzato, fornendo una migliore sopravvivenza per le popolazioni di cellule rare e riflessivo della composizione sottoinsieme, è stato sviluppato e pubblicato di recente ^12. Lo scopo di questo articolo è di fornire una più detprotocollo soffriva esattamente di questa procedura di isolamento delle cellule del fegato e il sottoinsieme di analisi per consentire la corretta riproduzione della tecnica. Inoltre, il protocollo include un confronto con il metodo di isolamento precedente per dimostrare le differenze rispetto al nuovo protocollo.

Protocollo

Tutte le procedure sperimentali sono state condotte con l'approvazione dei comitati di etica e cura degli animali di Homburg University Medical Center.

1. Preparazione dei Materiali e tamponi

1. Appena preparare tutti i buffer necessari per la digestione fegato utilizzando componenti sterili e una cappa laminare per evitare la contaminazione batterica.
2. Preparare il tampone di raccolta (CB) mescolando 49,5 ml di terreno RPMI e 0,5 ml di siero bovino fetale (FBS, bassa endotossina, inattivati ​​al calore) per ottenere una soluzione all'1% (v / v). Conservare la soluzione in ghiaccio fino a nuovo uso.
   NOTA: Circa 25 ml di CB è necessario per digerire un fegato intero.
3. Preparare il tampone di digestione (DB) utilizzando i seguenti ingredienti: terreno RPMI, 1% (v / v) di FBS (basso endotossina, inattivato con il calore), collagenasi P (0,2 mg / mL), DNase-I (0,1 mg / ml) e dispasi (0,8 mg / mL).
   NOTA: Circa 25 ml di DB è necessario per digerire un fegato intero. Pre-riscaldare il DB in tlui 37 ° C bagnomaria prima dell'uso.
4. Ricostituire gli enzimi all'arrivo in soluzione salina bilanciata Hanks '(HBSS; collagense P e dispasi) o in DNasi-I Buffer (50% (v / v) glicerolo, 1 mM MgCl _2, e 20 mm Tris-HCl, pH 7,5) , aliquote, e conservarlo a -20 ° C. Conservare il DNase-I tampone a 4 ° C ed utilizzare entro due mesi.

2. Preparazione di fegato cella singola sospensione

1. Euthanize topi wild-type non trattati da dislocazione cervicale in conformità con l'etica locali e dei comitati per la cura degli animali.
2. Mettere i topi su una tavola di dissezione e bagnare il pelo con il 70% di etanolo. Utilizzando le forbici, aprire l'addome con una incisione mediana della pelle, seguita da un Y incisione verso gli arti. Aprire il peritoneo fino allo sterno usando le forbici. Al fine di scoprire il fegato, l'intestino spostare delicatamente sul lato destro usando un tampone di cotone.
3. Con l'aiuto di forbici e pinze, rimuovere i lobi del fegato,lasciando la cistifellea dietro, e evitare la contaminazione con il tessuto connettivo. Pesare il fegato e posizionarlo sul ghiaccio in una capsula di Petri contenente HBSS.
4. Posizionare i lobi del fegato su un piatto a secco di Petri e tagliare il tessuto epatico a cubetti omogenee circa 2 mm a lato utilizzando un bisturi. Trasferire i pezzi in un tubo da centrifuga conica da 15 ml.
5. Aggiungere 2,5 ml di DB nella provetta conica da centrifuga da 15 mL contenente i pezzi fegato e trasferirla in un bagno di acqua a 37 ° C per avviare il processo di digestione (un fegato sano prende 60-70 min e un fegato cirrotico prende 80-90 min ).
   NOTA: Se una intera fegato viene digerito, il fegato deve essere separato in due provette da 15 ml conica centrifuga per assicurare una buona vitalità cellulare.
6. Preparare un nuovo tubo conico da centrifuga da 15 ml per raccogliere le cellule del fegato rilasciati. Inserire una poliammide maglia filtrante 100 micron sulla parte superiore del tubo e bagnare la maglia con 800 microlitri di CB. Posizionare il tubo da centrifuga conica sul ghiaccio.
7. Mescolare il samples nel bagno d'acqua 37 ° C dopo 5 e 10 minuti al fine di sostenere il processo di digestione agitando la provetta conica da centrifuga da 15 mL contenente i pezzi fegato.
8. 15 min dopo l'inizio la digestione, mescolare delicatamente i pezzi di fegato utilizzando una pipetta da 1.000 ml con una punta di taglio che permette i pezzi di fegato di passare attraverso facilmente. Posizionare i tubi di nuovo nel bagno di acqua e lasciare i pezzi di accontentarsi di 2 min.
9. Rimuovere il surnatante contenente le cellule disseminate (tipicamente 2x 700 ml) e aggiungerlo al tubo preparato al punto 2.6. Sostituire il surnatante rimosso con DB (2x 700 ml) e metterlo di nuovo in bagno d'acqua a 37 ° C.
10. Ripetere la procedura descritta al punto 2.8 (tipicamente a 30, 40, 50, 55 e 60 min) fino a circa 60-70 min hanno trascorso dall'inizio della digestione. Da 40 min in poi, i pezzi di fegato rimanenti dovrebbero essere abbastanza piccole da passare attraverso un non tagliato 1.000 microlitri punta della pipetta.
    NOTA: fegato sano è Digested completamente entro 60-70 minuti, mentre il fegato fibrotico deve di solito 80-90 min. A questo punto di tempo, il tessuto epatico non dovrebbe essere visibile nella conico provetta da centrifuga da 15 ml contenente i pezzi di fegato, e tutte le cellule rilasciati dovrebbe essere trasferito nel tubo preparato al punto 2.6.
11. Al termine del processo di digestione, raccogliere le cellule e centrifugare per 8 minuti a 180 xg e 4 ° C (con accelerazione ridotta / 4 e decelerazione / 2).
12. Risospendere il pellet di cellule in 1 ml di ammonio-cloruro di potassio (ACK) tampone di lisi e incubare per 1 min a temperatura ambiente per lisare i globuli rossi. Arrestare la reazione aggiungendo 5 ml di CB, e centrifugare le cellule per 8 minuti a 180 xg e 4 ° C (con accelerazione ridotta / 4 e decelerazione / 2). Risospendere le cellule in 4 ml di CB e memorizzarli sul ghiaccio. Contare le cellule, come descritto al punto 3.
    NOTA: Il pellet cellulare è allentato, e quindi il surnatante viene pipettato distanza invece di essere travasato.

3. Determinazione del Cell Count citometria a flusso

NOTA: Per determinare i conteggi delle cellule, un contatore di cellule automatizzato o, idealmente, la quantificazione delle cellule citometria a base di flusso descritto di seguito si suggerisce invece che il metodo della camera a base classica Neubauer. La sospensione del fegato cella singola descritto al punto 2 contiene cellule parenchimali e non parenchimali (NPC) con dimensioni molto diverse e granularità. La corretta esclusione di detriti cellulari insieme alla-on gating scatter in avanti, side scatter (FSC SSC) caratteristico della NPC quando citometria a flusso garantisce il successo del protocollo descritto ^12.

1. Preparare una aliquota della sospensione di cellule del fegato (20 ml) e aggiungere 174 ml di PBS (PBS) e 6 ml di ioduro di propidio (PI; concentrazione finale 0,375 mg / ml). Aggiungere il conteggio sfere che consentono la quantificazione delle cellule.
2. Gate SSC-A-FSC-A per evitare i detriti ed escludere ulteriori doppiette con FSC-H e FCS-A.
   NOTA: E 'importante seguire la strategia di gating illustrato nella figura 2.
3. Porta fuori le cellule morte della PI-positivo, misurano 30 microlitri dai vostri campioni, e registrare gli eventi. Seguire linee guida del produttore per calcolare il numero di celle.
   NOTA: Seguire i passaggi 4 per citometria a flusso misura, punti 5 e 6 per l'isolamento di cellule progenitrici a base magnetica, e passaggi da 7 per citometria a flusso sorta di sottopopolazioni progenitrici.

4. La colorazione della cella singola sospensione del fegato per la Fow analisi di citometria Progenitor sottoinsiemi

Anticorpo	Clone	Host / Isotipo	Della Concentrazione [mg / ml]	Diluizione
CD64	X54-5 / 7.1	IgG1 di topo, κ	0.5	1: 100
CD16 / 32	93	Rat IgG2a, λ	0.5	1: 100
CD45	30-F11	Rat IgG2b, κ	0.2	1: 200
CD31	MEC13.3	Rat IgG2a, κ	0.5	1: 200
ASGPR1		Policlonale di capra IgG	0.2	1: 100
Podoplanin	1/8/2001	Criceto siriano IgG	0.2	1: 1.400
Podoplanin	1/8/2001	Criceto siriano IgG	0.5	1: 1.400
CD133	Mb9-3G8	IgG1 Rat	0.03	3 ml
CD133	315-2C11	Rat IgG2A, λ	0.5	1: 100
CD34	RAM34	Rat IgG2a, κ	0.5	1: 100
CD90.2	53-2,1	Rat IgG2, κ	0.5	1: 800
CD157	BP-3	Mouse IgG2b, κ	0.2	1: 600
EpCAM	G8.8	Rat IgG2a, κ	0.2	1: 100
Sca-1	D7	Rat IgG2a, κ	0.03	10 microlitri
Mouse IgG2b, κ	MPC-11		0.2
IgG1 Rat	RTK2071		0.2
Rat IgG2b, κ	RTK4530		0.2
Rat IgG2a, κ	RTK2758		0.5
Rat IgG2a, κ	RTK2758		0.2
Criceto siriano IgG	SHG-1		0.2
Criceto siriano IgG	SHG-1		0.5
Controllo di capra IgG Normale		Policlonale di capra IgG	1
Donkey anti-IgG di capra		Donkey IgG	2	1: 800
streptavidina			1	1: 400

Tabella 1.

Anticorpo	1	2	3	4	5
CD45 APC / Cy7	Rat IgG2b, κ 0,5 ml	+	+	+	+
CD31 biotina	+	Rat IgG2a, κ 0,5 ml	+	+	+
ASGPR1 purificato	+	+	Controllo di capra IgG Normale 0,2 ml	+	+
Podoplanin APC	+	+	+	Criceto siriano IgG 1 ml di una diluizione 1:14	+
CD133 PE	+	+	+	+	IgG1 Rat 0,45 ml
Donkey anti-capra Alexa Fluor 488	+	+	+	+	+
streptavidina Alexa Fluor 405	+	+	+	+	+

Tavolo 2.

1. Inserire una aliquota della sospensione cellulare dal passo 2.11 in un tubo di reazione (1,5 mL) contenente 2,5 x 10 ⁵ cellule, determinato come descritto nel passaggio 3.
2. Centrifugare le cellule per 3 min a 300 xg e 4 ° C usando una microcentrifuga.
   NOTA: A questo punto, una pompa a vuoto può essere utilizzata per rimuovere con attenzione il surnatante.
3. Risospendere il pellet cellulare in mix Fc-blocco e incubare per 5 minuti in ghiaccio. Preparare mix Fc-blocco con un volume totale di 50 microlitri per macchia. Aggiungere 10 microlitri di reagente FCR-bloccante, 1 ml di purificato anti-CD64 (1: 100; 0,5 mg / macchia), e 40 ml di tampone colorazione (ST buffer: HBSS, 1% (v / v) di FBS, e 0,01% azide di sodio) per macchia.
   NOTA: Il sodio azide è altamente tossico. Utilizzare dispositivi di protezione adeguati, come ad esempio guanti di nitrile, un camice da laboratorio, e una maschera.
4. Aggiungere 50 ml di colorazione mix alle cellule (il volume totale di cellule è ora 100 ml) e incubare le cellule con la miscela anticorpale, protette dalla luce e per 20 min in ghiaccio.
5. Preparare la miscela anticorpale con un volume totale di 50 microlitri per macchia. Per 50 ml di ST tampone, aggiungere i seguenti anticorpi coniugati per la colorazione di base: CD45 (0,5 microlitri; 1: 200; 0.1 mg / macchia), CD31 (0,5 microlitri; 1: 200; 0,25 mg / macchia), ASGPR1 (1 ml ; 1: 100; 0,2 mg / macchia), podoplanin (1 ml di una diluizione 1,14; diluizione 1: 1.400 fine; 0,014 mg / macchia), e CD133 (3 ml; 0,09 mg / macchia).
   NOTA: Tabella1 riassume i cloni di anticorpi e diluizioni utilizzate per le macchie di base e per i marcatori di superficie supplementari dei vari sottoinsiemi. Preparare sospensioni cellulari supplementari per la miscela anticorpale contenente i comandi isotipo corrispondenti e / o fluorescenza meno uno controlli (QOR), come illustrato nella Tabella 2.
6. Aggiungere 400 ml di tampone ST per ogni campione e centrifugare le cellule per 4 min a 300 xg e 4 ° C.Discard il surnatante e risospendere le cellule in 100 ml di miscela anticorpo secondario contenente 0,125 ml di asino anti-IgG di capra (1: 800; 0,25 mg / macchia) e 0,25 ml di streptavidina fluorescente coniugato (1: 400; 0,25 mg / macchia) in 100 ml di tampone ST.
7. Incubare le cellule mentre protettivo dalla luce e con la miscela di anticorpi per 20 min in ghiaccio. Aggiungere 400 ml di ST buffer per ogni campione e centrifugare le cellule per 4 min a 300 xg e 4 ° C. Eliminare il surnatante e risospendere le cellule in 300 ml di ST appassionatoer contenente 0,25 mg PI / mL.
   NOTA: La vitalità cellulare delle cellule progenitrici diminuisce con il tempo; Pertanto, si suggerisce di misurare campioni freschi appena possibile.

5. magnetico arricchimento microperla a base di cellule progenitrici

1. Trasferire un'aliquota della sospensione fegato singola cella contenente 1,5-2 x 10 ⁶ cellule, sulla base del numero di celle determinato come descritto nel passaggio 3, in un nuovo tubo conico da centrifuga da 15 ml.
2. Centrifugare le cellule per 8 minuti a 180 xg e 4 ° C (usando ridotta accelerazione / 4 e decelerazione / 2).
   NOTA: in genere, un sano / 6 fegato di topo C57Bl (o 1 g di tessuto epatico) dovrà essere suddiviso in tre da 15 ml conica provetta.
3. Risospendere le cellule in 400 ml di HBSS 0,5% (v / v) di albumina sierica bovina (BSA) e aggiungere 40 ml di microsfere anti-CD31-e 30 ml di microsfere anti-CD45. Incubare le cellule per 15 minuti a 4 ° C.
   NOTA: Non superare tha Incubazione, come la purezza della separazione sarà notevolmente ridotto.
4. Aggiungere 5 ml di HBSS 0,5% (v / v) BSA alle cellule e centrifugare per 8 minuti a 180 xg e 4 ° C (con accelerazione ridotta / 4 e decelerazione / 2).
5. Risospendere il pellet cellulare in 100 ml di morti perline di rimozione delle cellule e incubare a temperatura ambiente per 15 min. Nel frattempo, preparare una colonna di separazione LS e calibrare con 3 mL di HBSS 0,5% (v / v) BSA.
   NOTA: Non superare il tempo di incubazione, la purezza della separazione sarà notevolmente ridotto.
6. Aggiungere 900 ml di HBSS 0,5% (v / v) BSA alle cellule, filtrata utilizzando 100 micron filtro a rete in poliammide, e caricarli sulla colonna di separazione LS.
   NOTA: Caricare un intero fegato su una colonna di separazione LS.
7. Lavare la colonna tre volte con 3 ml di HBSS 0,5% (v / v) BSA e raccogliere il flusso passante.
8. Centrifugare il flusso passante per 8 minuti a 180 xg e 4 ° C (con ridotta accecome repentine / 4 e decelerazione / 2).
9. Risospendere il pellet cellulare sia in risciacquo tampone (RB) (PBS e 2 mM di acido etilendiamminotetraacetico (EDTA)) contenente 0,5% (v / v) BSA o di tampone ST, a seconda del procedimento ulteriormente sperimentale.

A base di microperla 6. magnetica automatizzata delle cellule progenitrici Purificazione di sottopopolazioni cellulari combinato da fegati più

NOTA: Dal momento che i sottoinsiemi di cellule progenitrici rappresentano popolazioni di cellule rare, le cellule che conciliano da più fegato è spesso necessario per raggiungere il numero di cellule sufficiente per ulteriori esperimenti. Come esempio, CD133 ⁺ e gp38 ⁺ separazione cellulare è descritta sotto.

1. Isolamento di CD133 ⁺ progenitori
   1. Dopo il punto 5.9, contare le cellule, come descritto al punto 3, e sospendere nuovamente fino a 10 ⁶ cellule (tipicamente pooling 4-6 campioni di fegato sani) in 100 ml di RB.
   2. Aggiungere anti-CD64 1: 100 e anti-CD16 / 32 1: 100 alle cellule e incubli mangiava in ghiaccio per 5 min. Aggiungere 1: 100 contro CD133-anticorpo biotinilato alle cellule e incubare su ghiaccio per ulteriori 10 min.
   3. Aggiungere 5 ml di RB e centrifugare per 8 minuti a 180 xg e 4 ° C (con riduzione di accelerazione / decelerazione 4 e / 2).
   4. Risospendere le cellule in 400 ml di RB e aggiungere 10 ml di microsfere anti-biotina. Incubare il campione per 15 minuti a 4 ° C. Non superare il tempo di incubazione, in quanto ciò riduce la purezza dei campioni.
   5. Aggiungere 5 ml di RB e centrifugare per 8 minuti a 180 xg e 4 ° C (con riduzione di accelerazione / decelerazione 4 e / 2). Risospendere il pellet in 1 ml di RB.
2. Isolamento di gp38 ⁺ progenitori
   1. Dopo il punto 5.9, contare le cellule, come descritto al punto 3, e sospendere nuovamente fino a 10 ⁶ cellule (tipicamente pooling 4-6 campioni di fegato sani) in 100 ml di RB.
   2. Aggiungere anti-CD64 1: 100 e anti-CD16 / 32 1: 100 per le cellule e incubare in ghiaccio per 5 min. Successivamente, aggiungere 1:100 contro gp38 biotinilato anticorpi alle cellule e incubare su ghiaccio per ulteriori 10 min.
   3. Aggiungere 5 ml di RB e centrifugare per 8 minuti a 180 xg e 4 ° C (con riduzione di accelerazione / decelerazione 4 e / 2).
   4. Risospendere le cellule in 400 ml di RB e aggiungere 5 ml di microsfere anti-biotina. Incubare il campione per 15 minuti a 4 ° C. Non superare il tempo di incubazione, in quanto ciò riduce la purezza dei campioni.
   5. Aggiungere 5 ml di RB e centrifugare per 8 minuti a 180 xg e 4 ° C (con riduzione di accelerazione / decelerazione 4 e / 2).
   6. Risospendere il pellet di cellule in 1 ml di RB.
3. passaggi comune dopo passo 6.1 o 6.2
   1. Posizionare il tubo conico da centrifuga da 15 mL contenente le sospensioni di cellule marcate magneticamente su un freddo 5 rastrelliera con due tubi vuoti aggiuntivi per la raccolta delle frazioni positive e negative. Inserire la griglia freddo sulla piattaforma di separazione del separatore.
   2. Utilizzare il programma di selezione positiva(Possel_d2) con una vasta fase di lavaggio tra ciascun campione (opzione di risciacquo).
      NOTA: Usando basata su colonne separazione manuale delle cellule al posto del separatore automatico ridurrà la purezza del campione.
   3. Raccogliere la frazione positiva e centrifugare per 8 minuti a 180 xg e 4 ° C (con accelerazione ridotta / 4 e decelerazione / 2).
   4. Risospendere il pellet cellulare sia in RB o buffer di ST, a seconda del procedimento ulteriormente sperimentale.
   5. Per un controllo della purezza, prendere una aliquota di cellule e macchiare come descritto al punto 4.

7. Citometria a Flusso di separazione delle cellule

NOTA: una elevata purezza sorta di ogni sottoinsieme di cellule progenitrici potrebbe essere raggiunto con il protocollo descritto di seguito. La resa complessiva delle cellule è molto inferiore a quello descritto nel passaggio 6 ed è migliore per l'analisi di espressione genica.

Parametro	Ambientazione
Dimensioni ugello	85 micron
Frequenza	46,00-46,20
Ampiezza	38,30-55,20
Fase	0
goccia di ritardo	28,68-28,84
Attenuazione	via
Prima goccia	284 - 297
obiettivo Gap	9.-14
Pressione	45 psi

Tabella 3.

1. Acquisire le cellule dalla arricchimento magnetico-based (descritto al punto 5); contarli, come descritto al punto 3; e li macchiare per i marcatori progenitrici (CD133, gp38), CD31, CD45 e ASGPR1, come spiegato al punto 4.
2. Preparare medio di smistamento (SM): fenolo-rosso libera DulbecModified medio di co Eagle (DMEM) contenente 0,5% (v / v) BSA e 0,01% (v / v) di sodio azide. Risospendere le cellule colorate in SM, trasferirli in una provetta a fondo tondo in polipropilene, e disporli sul ghiaccio.
   NOTA: Il sodio azide è altamente tossico. Utilizzare dispositivi di protezione adeguati, come ad esempio guanti di nitrile, un camice da laboratorio, e una maschera. Non utilizzare sodio azide se vengono utilizzate le cellule ordinati per test funzionali.
3. Utilizzare il software appropriato per il tipo di selezionatrice utilizzato per l'isolamento delle cellule. Aprire il software e seguire le istruzioni del produttore per impostare i parametri di ordinamento e le specifiche della macchina.
   NOTA: Le specifiche della macchina sono riassunti nella Tabella 3. Mentre specifiche macchine potrebbero essere differenti a varie istituzioni, è importante notare che la riduzione della pressione di ordinamento e un ugello più grande è necessaria (45 psi e l'ugello 85 micron) per aumentare la vitalità delle cellule progenitrici populationi e la qualità del RNA preparato da cellule filtrate. E 'importante utilizzare cellule progenitrici epatiche arricchito per l'impostazione della compensazione. Altre popolazioni fegato o leucociti hanno diverse auto-fluorescenza e risultato in una risoluzione non ottimale della popolazione stromale e in una strategia di gating falso.
4. Calibrare la macchina e mettere a 5 ml in polipropilene tubo a fondo rotondo contenente 350 ml di SM nel dispositivo di raccolta sorta. Avviare l'acquisizione dei campioni e ordinare. Raccogliere 1.000 eventi della sottopopolazione e fermare il flusso del campione.
5. Prendere il tubo dal dispositivo di smistamento e misurare le cellule ordinati sul citofluorimetro. Identificare la percentuale della popolazione cellulare ordinato presente tra le cellule viventi. Questa percentuale dà la purezza delle cellule ordinati.
6. Se sorta di purezza superiore al 95%, posto a 5 ml in polipropilene tubo a fondo rotondo contenente 350 ml di tampone di lisi RLT nel dispositivo di raccolta sorta.
7. Avviare il tipo e raccogliere 7,000-10.000 eventi al stromale sottopopolazione.
8. Trasferire il tampone di lisi RLT contenente le cellule ordinati in un tubo di reazione DNase- e RNase-free e conservare i campioni a -80 ° C fino ad ulteriore analisi.

Risultati

La procedura qui presentata per la digestione del fegato utilizzando una nuova miscela di enzimi risultati in una cella singola sospensione contenente parenchimali e le cellule epatiche non parenchimali (Figure 1 e 2a). Dopo l'ACK-lisi dei globuli rossi, il flusso diretto analisi di citometria di cella singola sospensione è possibile (figure 1 e 2). La strategia di gating comporta l'esclusione di doppietti e cel...

Discussione

Infiammazione del fegato e lesioni di diversa origine innescano processi rigenerativi del fegato che sono accompagnati da espansione di cellule progenitrici e l'attivazione ^{2, 3.} Queste cellule progenitrici epatiche possiedono staminali caratteristiche cellulari e probabilmente svolgono un ruolo significativo nel meccanismo patogenetico di varie malattie del fegato.

L'eterogeneità delle cellule progenitrici epatiche è stato...

Materiali

Name	Company	Catalog Number	Comments
RPMI	Life Technologies	21875-034
phenol red free DMEM	Life Technologies	31053-028
FBS	Life Technologies	10270-106
Collagenase P	Sigma-Aldrich	11249002001
DNAse-I	Sigma-Aldrich	10104159001
Dispase	Life Technologies	17105041
ACK Lysing Buffer	Life Technologies	A10492-01
HBSS	Life Technologies	14025-050
PBS	Sigma-Aldrich	D8537
Sodium Azide	Sigma-Aldrich	S2002	Prepare 1% stock solution
10% BSA	Miltenyi Biotec	130-091-376
autoMACS Rinsing Solution	Miltenyi Biotec	130-091-222	add 0.5% (v/v) BSA and store on ice
Phenol-red free DMEM	Sigma-Aldrich	D1145
counting Beads Count Bright	Life Technologies	C36950
PI	Miltenyi Biotec	130-093-233
FcR Blocking Reagent	Miltenyi Biotec	130-092-575
anti-CD31 MicroBeads	Miltenyi Biotec	130-097-418
anti-CD45 MicroBeads	Miltenyi Biotec	130-052-301
Dead Cell Removal Kit	Miltenyi Biotec	130-090-101
anti-Biotin MicroBeads	Miltenyi Biotec	130-090-485
CD64 Purified	BioLegend	139302	Dilution: 1:100
CD16/32 Purified	BioLegend	101302	Dilution: 1:100
CD45 APC/Cy7	BioLegend	103116	Dilution: 1:200, marks hematopoetic cells
CD31 Biotin	BioLegend	102504	Dilution: 1:200, marks endothelial cells
ASGPR1 Purified	Bio-Techne	AF2755-SP	Dilution: 1:100, marks hepatocytes
Podoplanin APC	BioLegend	127410	Dilution: 1:1,400, marks progenior cells
Podoplanin Biotin	BioLegend	127404	Dilution: 1:1,400
CD133 PE	Miltenyi Biotec	130-102-210	use 3 µL, marks progenitor cells
CD133 Biotin	BioLegend	141206	Dilution: 1:100
CD34 Biotin	eBioScience	13-0341-81	Dilution: 1:100
CD90.2 Pacific Blue	BioLegend	140306	Dilution: 1:800
CD157 PE	BioLegend	140203	Dilution: 1:600
EpCAM Brilliant Violet 421	BioLegend	118225	Dilution: 1:100
Sca-1 Biotin	Miltenyi Biotec	130-101-885	use 10 µL
Mouse IgG2b, κ PE	BioLegend	400311
Rat IgG1 PE	BioLegend	400407
Rat IgG2b, κ APC/Cy7	BioLegend	400624
Rat IgG2a, κ Biotin	BioLegend	400504
Rat IgG2a, κ Brilliant Violet 421	BioLegend	400535
Syrian Hamster IgG APC	BioLegend	402012
Syrian Hamster IgG Biotin	BioLegend	402004
Normal Goat IgG Control Purified	Bio-Techne	AB-108-C
Donkey anti-Goat IgG Alexa Fluor 488	Life Technologies	A11055	Dilution: 1:800
Streptavidin Alexa Fluor 405	Life Technologies	S32351	Dilution: 1:400
100 µm Filter mesh	A. Hartenstein	PAS3
LS Column	Miltenyi Biotec	130-042-401
QuadroMACS separator	Miltenyi Biotec	130-090-976
MACSQuant Analyzer 10	Miltenyi Biotec	130-096-343
AutoMACS Pro Separator	Miltenyi Biotec	130-092-545
FACS AriaTMIII	BD Biosciences
FACSDiva sofware	BD Biosciences
Polypropylene Round bottom tube	Falcon	352063
Rneasy plus mini kit	Qiagen	74134	RLT lysis buffer is included