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In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

Qui presentiamo come esporre il ganglio genicolato di un topo da laboratorio vivo e anestetizzato e come utilizzare l'imaging del calcio per misurare le risposte degli insiemi di questi neuroni agli stimoli del gusto, consentendo prove multiple con diversi stimolanti. Ciò consente confronti approfonditi di quali neuroni rispondono a quali tastants.

Abstract

Negli ultimi dieci anni, i progressi negli indicatori di calcio geneticamente codificati (GECI) hanno promosso una rivoluzione nell'imaging funzionale in vivo. Utilizzando il calcio come proxy per l'attività neuronale, queste tecniche forniscono un modo per monitorare le risposte delle singole cellule all'interno di grandi insiemi neuronali a una varietà di stimoli in tempo reale. Noi, e altri, abbiamo applicato queste tecniche per immaginare le risposte dei singoli neuroni gangliali genicolati agli stimoli gustavi applicati alle lingue di topi vivi anestetizzati. Il ganglio genicolato è composto dai corpi cellulari dei neuroni gustativi che innervano la lingua e il palato anteriori e da alcuni neuroni somatosensoriali che innervano la pinna dell'orecchio. L'imaging delle risposte evocate dal gusto dei singoli neuroni gangliosi genicolati con GCaMP ha fornito importanti informazioni sui profili di sintonizzazione di questi neuroni nei topi wild-type e un modo per rilevare i fenotipi di errore di gusto periferico nei topi geneticamente manipolati. Qui dimostriamo la procedura chirurgica per esporre il ganglio genicolato, l'acquisizione dell'immagine di fluorescenza GCaMP, i passaggi iniziali per l'analisi dei dati e la risoluzione dei problemi. Questa tecnica può essere utilizzata con GCaMP codificato transgenicamente o con espressione GCaMP mediata da AAV e può essere modificata per l'immagine di particolari sottoinsiemi genetici di interesse (ad esempio, espressione GCaMP mediata da Cre). Nel complesso, l'imaging del calcio in vivo dei neuroni gangliari genicolati è una tecnica potente per monitorare l'attività dei neuroni gustativi periferici e fornisce informazioni complementari alle registrazioni più tradizionali della corda timpani a nervi interi o ai saggi del comportamento del gusto.

Introduzione

Un componente chiave del sistema gustatico periferico dei mammiferi è il ganglio genicolato. Oltre ad alcuni neuroni somatosensoriali che innervano la pinna dell'orecchio, il genicolato è costituito dai corpi cellulari dei neuroni gustativi che innervano la lingua e il palato anteriori. Simile ad altri neuroni sensoriali periferici, i neuroni gangliogenici sono pseudo-unipolari con un lungo assone che si proietta perifericamente verso le papille gustative e centralmente verso il nucleo del tronco cerebrale del tratto solitario1. Questi neuroni sono attivati principalmente dal rilascio di ATP da parte delle cellule del recettore del gusto che ri....

Protocollo

I protocolli sugli animali sono stati esaminati e approvati dai comitati istituzionali per la cura e l'uso degli animali dell'Università del Texas a San Antonio.

1. Configurazione pre-operatoria

NOTA: Si prega di notare che la configurazione iniziale dell'apparecchiatura non è affrontata qui, in quanto varierà in base al sistema di pompaggio, al microscopio, alla fotocamera e al software di imaging utilizzato. Per le istruzioni di configurazione, fare riferimento ai materiali didattici forniti dal fornitore dell'apparecchiatura. Per le attrezzature utilizzate dagli autori, si prega di consultare la Tabella ....

Risultati

Seguendo il protocollo, un animale transgenico Snap25-GCaMP6s è stato sedato, i gangli genicolati sono stati esposti e il tastant è stato applicato alla lingua durante la registrazione del video. Lo scopo dell'esperimento era quello di definire quali tastants hanno suscitato risposte da ciascuna cellula. I tanci (30 mM AceK, 5 mM chinino, 60 mM NaCl, 50 mM IMP + 1 mM MPG, 50 mM acido citrico)18 sono stati disciolti in acqua DI e sono stati applicati alla lingua per 2 s separati da 13 s di acqua .......

Discussione

Questo lavoro descrive un protocollo passo-passo per esporre chirurgicamente il ganglio genicolato e registrare visivamente l'attività dei suoi neuroni con GCaMP6s. Questa procedura è molto simile a quella descritta in precedenza17, con alcune eccezioni degne di nota. In primo luogo, l'uso di un palo della testa consente una facile regolazione del posizionamento della testa durante l'intervento chirurgico. In secondo luogo, per quanto riguarda la consegna dello stimolo, l'approccio di Wu e Dvory.......

Divulgazioni

Gli autori non hanno alcun conflitto di interessi da segnalare.

Riconoscimenti

Gli autori ringraziano S. Humayun per l'allevamento dei topi. Il finanziamento per questo lavoro è stato fornito in parte dal Brain Health Consortium Graduate and Postdoctoral Seed Grant (B.E.F.) dell'UTSA e dal NIH-SC2-GM130411 a L.J.M.

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Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
1 x #5 Inox ForcepsFine Science ToolsNC9792102
1ml Syringe with luer lockFisher Scientific14-823-30
2 x #3 Inox ForcepsFine Science ToolsM3S 11200-10
27 Gauge Blunt Dispensing NeedleFisher ScientificNC1372532
3M VetbondFisher ScientificNC0398332
4-40 Machine Screw Hex NutsFastenere3SNMS004C
4-40 Socket Head Cap ScrewFastenere3SSCS04C004
Absorbent PointsFisher Scientific50-930-668
Acesulfame KFisher ScientificA149025G
Artificial TearsAkorn59399-162-35
BD Allergist Trays with Permanently Attached NeedleFisher Scientific14-829-6D
Blunt RetractorsFST18200-09
BreadboardThor LabsMB8
Citric AcidFisher ScientificA95-3
Cohan-Vannas Spring ScissorsFine Science Tools15000-02
Contemporary Ortho-Jet LiquidLang1504
Contemporary Ortho-Jet PowderLang1520
Cotton Tipped ApplicatorsFisher19-062-616
Custom Head Post HoldereMachineShopSee attached file 202410.ems
Custom Metal Head PosteMachineShopSee attached file 202406.ems
DC Temperature ControllerFHC40-90-8D
Digital Camera, sCMOS OrcaFlash4 Microscope MountedHamamatsuC13440
Disection ScopeLeicaM80
Hair ClippersKent ScientificCL7300-Kit
IMPFisher ScientificAAJ6195906
KetamineKetavedNDC 50989-996-06
LED Cold Light SourceLeica McrosystemsKL300LED
Luer Lock 1/16" Tubing AdaptersFisher01-000-116
MicroscopeOlympusBX51WI
Mini-series Optical PostsThorlabsMS2R
MPGFisher ScientificAAA1723230
MXC-2.5 Rotatable probe ClampSiskiyou14030000E
NaClFisher Scientific50-947-346
petri dishesFisher ScientificFB0875713A
Pressurized airAirgasAI Z300
QuinineFisher ScientificAC163720050
Self Sticking Labeling TapeFisher Scientific159015R
Silicone Pinch Valve Tubing 1/32" x 1/16" o.d. (per foot)Automate Scientific05-14
Sola SM Light EngineLumencor
Snap25-2A-GCaMP6s-DJAX025111
Student Fine ScissorsFine Science Tools91460-11
Surgical ProbeRoboz Surgical StoreRS-6067
Surgical Probe HolderRoboz Surgical StoreRS-6061
ThreadGütermann02776
BD Intramedic TubingFisher Scientific22-046941
Two Stage Gas RegulatorAirgasY12FM244B580-AG
Tygon vinyl tubing - 1/16"Automate Scientific05-11
Valvelink8.2 digital/manual controllerAutomate Scientific01-18
Valvelink8.2 Pinch Valve Perfusion SystemAutomate Scientific17-pp-54
XylazineAnasedNADA# 139-236

Riferimenti

  1. Krimm, R. F. Factors that regulate embryonic gustatory development. BMC Neuroscience. 8, 4 (2007).
  2. Taruno, A., Matsumoto, I., Ma, Z., Marambaud, P., Foskett, J. K. How do taste cells lacking synapses ....

Ristampe e Autorizzazioni

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