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Il protocollo presentato descrive lo sviluppo e l'uso di una tecnica di colorazione filamentosa-actina a base di falloidina con microscopia a scansione laser confocale (CLSM) per visualizzare la struttura dello strato cellulare aderente nei canali di coltura dinamica microfluidica e nelle tradizionali camere di coltura statica a pozzo fisso. Questo approccio aiuta a valutare la confluenza dello strato cellulare, la formazione del monostrato e l'uniformità dello spessore dello strato.
La sperimentazione microfluidica in vitro ha un grande potenziale per rivelare molte informazioni sui fenomeni microfisiologici che si verificano in condizioni come la sindrome da distress respiratorio acuto (ARDS) e il danno polmonare indotto da ventilatore (VILI). Tuttavia, gli studi su canali microfluidici con dimensioni fisiologicamente rilevanti per i bronchioli terminali del polmone umano affrontano attualmente diverse sfide, soprattutto a causa delle difficoltà nello stabilire condizioni di coltura cellulare appropriate, comprese le velocità di flusso dei media, all'interno di un determinato ambiente di coltura. Il protocollo presentato descrive un approccio basato su immagini per valutare la struttura di cellule epiteliali polmonari umane NCI-H441 coltivate in un canale microfluidico impermeabile all'ossigeno con dimensioni fisiologicamente rilevanti per i bronchioli terminali del polmone umano. Utilizzando la colorazione filamentosa-actina a base di falloidina, le strutture citoscheletriche delle cellule vengono rivelate dalla microscopia a scansione laser confocale, consentendo la visualizzazione di cellule individuali e stratificate. La quantificazione successiva determina se le condizioni di coltura cellulare impiegate producono monostrati uniformi adatti per ulteriori sperimentazioni. Il protocollo descrive i metodi di coltura cellulare e di valutazione degli strati nei canali microfluidici e nei tradizionali ambienti a pozzetti fissi. Ciò include la costruzione del canale, la coltura cellulare e le condizioni richieste, la fissazione, la permeabilizzazione e la colorazione, l'imaging microscopico confocale, l'elaborazione delle immagini e l'analisi dei dati.
La sindrome da distress respiratorio acuto (ARDS) è una condizione acuta derivante dalla beffa e dalla propagazione di lesioni nel parenchima polmonare, con conseguente edema polmonare degli alveoli, scambio gassoso inadeguato e successiva ipossiemia1. Questo avvia un ciclo di rilascio di citochine pro-infiammatorie, reclutamento di neutrofili, rilascio di mediatori tossici e danno tissutale, che a sua volta comporta un'ulteriore risposta infiammatoria2. Inoltre, il tensioattivo polmonare, che stabilizza le vie aeree e previene i danni causati dal reclutamento / dereclutamento ripetitivo (R / D), può essere inattivato o altrimenti reso disfunzionale dai processi chimici che si verificano durante l'ARDS, con conseguente ulteriore stress e lesioni al parenchima circostante3. Se si verificano danni sufficienti, può essere necessaria la ventilazione meccanica per garantire un'adeguata ossigenazione sistemica4. Tuttavia, la ventilazione meccanica impone le proprie sfide e traumi, tra cui la possibilità di lesioni polmonari indotte dal ventilatore (VILI), caratterizzate come lesioni al parenchima polmonare causate dalle sollecitazioni meccaniche imposte durante il sovragonfiaggio (volutrauma) e/o la R/D dell'interfaccia aria-liquido nelle vie aeree occluse dal fluido (atelectrauma)5. Il gradiente di pressione sperimentato dalle cellule epiteliali esposte a un'interfaccia aria-liquido (come in un bronchiolo occluso con fluido) nel modello atelectrauma può provocare una risposta ostruttiva originata dalla permeabilità (POOR), portando a un ciclo virtuoso di lesione POOR-get-POORer 6,7,8.
La sperimentazione in vitro può fornire approfondimenti su micro-scala su questi fenomeni, ma gli studi attuali in ambienti di canali microfluidici con dimensioni fisiologicamente rilevanti affrontano diverse sfide9. Per uno, l'ottimizzazione delle condizioni di coltura cellulare rappresenta una barriera significativa all'ingresso per la ricerca sulle colture cellulari in ambienti microfluidici, poiché esiste una stretta intersezione all'interno della quale i parametri del flusso dei media, la durata della coltura e altre condizioni di coltura consentono la formazione ottimale dello strato cellulare. Ciò include le limitazioni di diffusione imposte dalla natura impermeabile all'ossigeno dell'involucro del canale di coltura microfluidico. Ciò richiede un'attenta considerazione dei parametri di flusso dei fluidi, poiché basse portate possono privare le cellule di ossigeno, specialmente quelle più lontane dall'ingresso; D'altra parte, portate elevate possono spingere le cellule fuori dal canale di coltura o provocare uno sviluppo improprio o irregolare dello strato. I limiti di diffusione possono essere risolti utilizzando materiali permeabili all'ossigeno come il polidimetilsilossano (PDMS) in un apparato di coltura aria-liquido (ALI); tuttavia, molti canali di coltura microfluidica convenzionali, come quelli del sistema ECIS (Electric Cell-Substrate Impedance Sensing), sono intrinsecamente impermeabili all'ossigeno, data la natura dell'involucro fabbricato10. Questo protocollo mira a fornire una tecnica per analizzare gli strati cellulari coltivati in un involucro impermeabile all'ossigeno.
Quando si confronta la vitalità delle condizioni di coltura, sono necessarie osservazioni di specifiche caratteristiche dello strato, come la presenza di un monostrato, la topologia superficiale, la confluenza e l'uniformità dello spessore dello strato, per determinare se lo strato cellulare prodotto da un particolare insieme di condizioni di coltura soddisfa le specifiche desiderate e sono effettivamente rilevanti per il disegno sperimentale. Una valutazione limitata può essere eseguita con metodi come ECIS, che utilizza misure del potenziale elettrico (tensione) creato dalla resistenza alla corrente alternata ad alta frequenza (AC) (impedenza) imposta da membrane elettricamente isolanti di celle coltivate su elettrodi d'oro all'interno della matrice di flusso. Modulando la frequenza di AC applicata alle cellule, possono essere mirateed esaminate specifiche proprietà cellulari dipendenti dalla frequenza delle cellule e degli strati cellulari, come la forza di aderenza superficiale, la formazione di giunzioni strette e la proliferazione o confluenza cellulare. Tuttavia, queste forme indirette di misurazioni sono alquanto difficili da interpretare all'inizio di un esperimento e potrebbero non quantificare tutti gli aspetti rilevanti dello strato cellulare. La semplice osservazione dello strato cellulare al microscopio a contrasto di fase può rivelare la natura di alcune qualità come la confluenza; tuttavia, molte caratteristiche rilevanti come la presenza di un monostrato e l'uniformità dello spessore dello strato richiedono una valutazione tridimensionale (3D) che non è possibile con l'imaging microscopico a campo chiaro, a contrasto di fase o fluorescente12.
L'obiettivo di questo studio era sviluppare una tecnica di colorazione filamentosa-actina per consentire la verifica basata sull'imaging di un monostrato e la valutazione dell'uniformità dello strato cellulare utilizzando la microscopia a scansione laser confocale (CLSM). L'actina filamentosa (F-actina) è stata ritenuta un bersaglio appropriato per il coniugato fluoroforo, in parte a causa del modo in cui la F-actina segue strettamente la membrana cellulare, consentendo un'approssimazione visiva dell'intero volume cellulare13. Un altro importante vantaggio del targeting di F-actina è il modo in cui la colorazione di F-actina chiarisce visivamente le interruzioni citoscheletriche o le alterazioni imposte dalle sollecitazioni e dalle tensioni sperimentate dalle cellule. La fissazione reticolante con formaldeide priva di metanolo è stata utilizzata per preservare la morfologia delle cellule e dello strato cellulare, poiché i fissativi disidratanti come il metanolo tendono ad appiattire le cellule, distorcendo grossolanamente lo strato cellulare e alterandone le proprietà14,15.
Per determinare la capacità della tecnica di valutazione dello strato di mitigare queste sfide, le cellule sono state coltivate in camere di coltura tradizionali a otto pozzetti e in canali microfluidici per valutare le differenze, se presenti, negli strati cellulari prodotti. Per i pozzetti di coltura fissi sono state utilizzate unità di vetro di copertura a otto pozzetti. Per la coltura microfluidica, array di flusso (lunghezza del canale 50 mm, larghezza 5 mm, profondità 0,6 mm) sono stati ottimizzati per la coltura di cellule epiteliali polmonari umane immortalizzate (NCI-H441) in un ambiente con dimensioni fisiologicamente rilevanti per i bronchioli terminali presenti nella zona respiratoria del polmone umano16. Sebbene questo protocollo sia stato sviluppato tenendo presente l'ambiente di coltura degli array di flusso ECIS, può essere applicato a qualsiasi ambiente di coltura dinamica impermeabile all'ossigeno per il quale è necessaria la valutazione delle caratteristiche dello strato cellulare in coltura o delle condizioni di coltura.
Per il presente studio è stata utilizzata la linea cellulare polmonare epiteliale umana NCI-H441 (vedere Tabella dei materiali).
1. Coltura cellulare nel canale microfluidico
Figura 1: Schema esploso della costruzione del canale microfluidico. L'elemento superiore è la parte superiore della matrice di flusso, gli elementi grigi sottili sono strisce adesive, gli elementi blu sottili sono distanziatori in mylar e l'elemento inferiore è il vetro di copertura rettangolare. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Figura 2: Cinque posizioni di imaging lungo la regione che produce costantemente strati del canale di coltura microfluidica. Le posizioni di imaging sono le seguenti: lato ingresso, vicino a dove si troverebbe il primo elettrodo sull'array di flusso intatto; a metà strada tra la posizione lato ingresso e il centro del canale; centro del canale; A metà strada tra il centro e la posizione lato uscita, e lato uscita, vicino a dove si troverebbe l'ultimo elettrodo sull'array di flusso intatto. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
2. Coltura cellulare nel vetro di copertura a otto pozzetti
Figura 3: Diagramma del vetro di copertura a otto pozzetti utilizzato per la coltura a pozzetto fisso, la colorazione e l'esperimento di imaging che confronta gli effetti della densità iniziale di semina cellulare e della durata della coltura sulla formazione degli strati cellulari. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Il metodo presentato consente la visualizzazione di strati cellulari epiteliali coltivati in canali di coltura microfluidica e utilizza una dimostrazione in ambienti tradizionali di coltura cellulare a pozzetto fisso come convalida. Le immagini acquisite esisteranno su uno spettro di qualità, intensità del segnale e specificità del bersaglio cellulare. Le immagini di successo dimostreranno un elevato contrasto, consentendo l'analisi delle immagini e la quantificazione dei dati per la successiva valutazione statistica....
Il protocollo presentato descrive la coltura, la fissazione della reticolazione, la colorazione, la permeabilizzazione e la visualizzazione microscopica confocale delle cellule epiteliali polmonari umane NCI-H441 nell'ambiente dinamico di un array di flusso microfluidico a canale singolo, nonché nell'ambiente statico di un tradizionale vetro di copertura a otto pozzetti. Con qualsiasi protocollo di coltura cellulare microfluidica, le condizioni di flusso dei terreni di coltura cellulare sono di fondamentale importanza, ...
Gli autori non dichiarano conflitti di interesse.
Gli autori ringraziano Alan Shepardson per aver progettato il modello di taglio per l'adesivo 3M e il foglio di mylar utilizzati nella costruzione di canali microfluidici e per aver testato la portata dei media di coltura cellulare e la programmazione della pompa a siringa. Il finanziamento è stato fornito da NIH R01 HL0142702, NSF CBET 1706801 e Newcomb-Tulane College Dean's Grant.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
A1R HD25 Confocal Microscope System | Nikon | A1R HD25 | https://www.microscope.healthcare.nikon. com/products/confocal-microscopes/a1hd25-a1rhd25/specifications |
ActinGreen 488 ReadyProbes Reagent (AlexaFluor 488 phalloidin) | Invitrogen | R37110 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/R37110 |
Adhesive Transfer Tape Double Linered | 3M | 468MP | https://gizmodorks.com/3m-468mp-adhesive-transfer-tape-sheet-5-pack/ |
Air-Tite HSW Soft-Ject Disposable Syringes | Air-Tite RL5 | 14-817-53 | https://www.fishersci.com/shop/products/air-tite-hsw-soft-ject-disposable-syringes-6/1481753#?keyword=syringe%20leur%20locking%205ml |
BAISDY 4 mil (0.1 mm) Thick Mylar Sheet | BAISDY | AS022 | https://www.amazon.ca/Stencil-Perfect-Silhouette-Machines-BAISDY/dp/B07RJJ9BNC |
Branson Ultrasonics M Series Ultrasonic Cleaning Bath | Branson Ultrasonics | 15-336-100 | https://www.fishersci.com/shop/products/m-series-ultrasonic-cleaning-bath/15336100 |
Corning Fibronectin, Human | Fisher Scientific | CB-40008 | https://www.fishersci.com/shop/products/corning-fibronectin-human-3/CB40008?keyword=true |
DPBS, calcium, magnesium | Gibco | 14040133 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/14040133?SID=srch-srp-14040133 |
ECIS Cultureware Disposable Electrode Arrays 8 x 10 ECIS Flow Array | Applied BioPhysics | 1F8x10E PC | https://www.biophysics.com/cultureware.php#1F8x10E |
Enterprise Technology Solutions UV Sterilizer Cabinet, White | Enterprise Technology Solutions | 50-211-1163 | https://www.fishersci.com/shop/products/uv-sterilizer-cabinet-white/502111163 |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Gibco | 26140079 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/26140079 |
Finnpipette F2 Variable Volume Pipettes | Thermo Scientific | 4642090 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/4642090 |
Fisherbrand 50mL Easy Reader Plastic Centrifuge Tubes | Fisher Scientific | 06-443-21 | https://www.fishersci.com/shop/products/fisherbrand-higher-speed-easy-reader-plastic-centrifuge-tubes-8/p-193269 |
Fisherbrand Cover Glasses: Rectangles (#1.5) | Fisher Scientific | 12-544-GP | https://www.fishersci.com/shop/products/cover-glasses-rectangles-promo-22/12544GP#coverglass |
Fisherbrand Sterile Syringes for Single Use | Fisher Scientific | 14-955-458 | https://www.fishersci.com/shop/products/sterile-syringes-single-use-12/14955458 |
Gibco RPMI 1640 Medium | Gibco | 11875093 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/11875093 |
Image-iT Fixative Solution (4% formaldehyde, methanol-free) | Invitrogen | FB002 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/FB002 |
ImageJ Fiji | ImageJ | ImageJ Fiji | https://imagej.net/downloads |
Immersion Oil F 30 cc | Nikon | MXA22168 | https://www.microscope.healthcare.nikon. com/products/accessories/immersion-oil/specifications |
Large-Capacity Reach-In CO2 Incubator, 821 L, Polished Stainless Steel | Thermo Scientific | 3950 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/3950 |
Laxco LMC-3000 Series Brightfield Compound Microscope System | Laxco | LMC3BF1 | https://www.fishersci.com/shop/products/lmc-3000-series-brightfield-compound-microscope-system-8/LMC3BF1 |
Masterflex Fitting, Nylon, Straight, Male Luer Lock to Hose Barb Adapters, 1/16" ID; 25/PK | Masterflex | ZY-45505-31 | https://www.masterflex.com/i/masterflex-fitting-nylon-straight-male-luer-lock-to-hose-barb-adapters-1-16-id-25-pk/4550531?PubID=ZY&persist=true&ip=no& gclid=Cj0KCQiA3rKQBhCNARIsAC UEW_Zb5yXy1em6bGs0a9KFOk5k pdlkHCvAEslHumdqcnlwSN0MdR0 udmwaAuDHEALw_wcB |
Microsoft Excel | Microsoft | 0016 | https://www.microsoft.com/en-us/download/details.aspx?id=56547 |
National Target All-Plastic Disposable Syringes | Thermo Scientific | 03-377-24 | https://www.fishersci.com/shop/products/national-target-all-plastic-disposable-syringes/0337724#tab8 |
NCI-H441 Human Epithelial Lung Cells | American Type Culture Collection (ATCC) | HTB-174 | https://www.atcc.org/products/htb-174 |
NE-1600 Six Channel Programmable Syringe Pump | New Era Pump Systems | NE-1600 | https://www.syringepump.com/NE-16001800.php |
NIS Elements AR | Nikon | NIS Elements AR | https://www.microscope.healthcare.nikon. com/products/software/nis-elements/nis-elements-advanced-research |
NucBlue Live ReadyProbes Reagent (Hoechst 33342) | Invitrogen | R37605 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/R37605?SID=srch-srp-R37605 |
Nunc Lab-Tek Chambered Coverglass | Thermo Scientific | 155411 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/155361 |
Parafilm M Wrapping Film | Fisher Scientific | S37441 | https://www.fishersci.com/shop/products/parafilm-m-wrapping-film-3/S37441 |
PendoTech 3-Way Stopcock, Polysulfone, Male/Female Luer Inlet x Female Luer Branch | PendoTech | ZY-19406-49 | https://www.masterflex.com/i/pendotech-3-way-stopcock-polysulfone-male-female-luer-inlet-x-female-luer-branch/1940649 |
Phosphate Buffered Solution (PBS), pH 7.4 | Gibco | 10010023 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/10010023 |
Poly-D-Lysine | Gibco | A3890401 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/A3890401#/A3890401 |
Reynolds Aluminum Wrap Foil | Reynolds | 458742928317 | https://www.amazon.com/Reynolds-Wrap-Aluminum-Foil-Square/dp/B00UNT0Y2M |
Saponin | Millipore Sigma (Sigma Aldrich) | 47036 | https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/sigma/47036 |
SlowFade Glass Soft-set Antifade Mountant | Invitrogen | S36917-5X2ML | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/S36917-5X2ML |
Thermo Scientific 1300 Series Class II, Type A2 Biological Safety Cabinet Package | Thermo Scientific | 13-100-752PM | https://www.fishersci.com/shop/products/1300-series-class-ii-type-a2-biological-safety-cabinet-package-promo/p-9049003#?keyword=biosafety%20hood |
Tygon Transfer Tubing, BioPharm Platinum-Cured Silicone, 1/16" ID x 1/8" OD; 50 Ft | Cole-Parmer | EW-95702-01 | https://www.coleparmer.com/i/tygon-transfer-tubing-biopharm-platinum-cured-silicone-1-16-id-x-1-8-od-50-ft/9570201?searchterm=95702-01 |
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