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* Questi autori hanno contribuito in egual misura
Qui presentiamo un protocollo per ottenere funghi entomopatogeni da una piralide forestale e un modo sostitutivo per valutare le loro attività entomopatogene utilizzando un insetto modello di Coleotteri. Questo metodo è efficiente e conveniente per esplorare le risorse fungine entomopatogene da insetti nocivi che perforano il legno nelle foreste naturali.
I piralidi forestali causano gravi danni agli alberi e perdite economiche in tutto il mondo. Il rilascio di funghi entomopatogeni (EPF) durante il periodo di emergenza FWB è considerato un'alternativa accettabile al controllo chimico. Tuttavia, le risorse EPF sono state significativamente meno esplorate per i FWB, a differenza degli insetti nocivi agricoli. Questo articolo presenta un protocollo per esplorare le risorse EPF dai FWB utilizzando come esempio le popolazioni selvatiche di Monochamus alternatus . In questo protocollo, l'assegnazione delle trappole innescate con M. Attrattivi alternatus a diverse popolazioni hanno garantito la raccolta di campioni adeguati con sintomi naturali di infezione, durante i periodi di emergenza del coleottero. Dopo aver sezionato finemente i tegumenti e averli posizionati su un mezzo selettivo, le specie fungine sono state isolate da ogni parte dei corpi dei coleotteri e identificate in base ai tratti molecolari e morfologici.
Diverse specie fungine sono state certificate come EPF parassite attraverso la reinfezione di M. alternatus sano con sospensioni di spore. I loro fenotipi comportamentali su M. alternatus sono stati osservati utilizzando la microscopia elettronica a scansione e ulteriormente confrontati con quelli sull'insetto modello di coleotteri Tribolium castaneum. Per gli EPF che presentano fenotipi di parassitismo coerenti su entrambe le specie di coleotteri, valutazione delle loro attività su T. castaneum ha fornito preziose informazioni sulla letalità per futuri studi su M. alternatus. Questo protocollo ha aiutato la scoperta di EPF recentemente segnalati sulle popolazioni di M. alternatus in Cina, che potrebbe essere applicato come approccio efficiente per esplorare più risorse di EPF da altri FWB.
La devastazione causata dagli insetti nocivi ha portato a grandi perdite ecologiche ed economiche sia negli ecosistemi forestali che in quelli agricoli. La maggior parte dei parassiti agricoli si espone a nemici naturali o agenti di controllo artificiali danneggiando le piante ospiti. Invece, i piralidi del legno forestale (FWB) completano quasi completamente i loro cicli di sviluppo all'interno dei tronchi degli alberi ospiti1, il che solleva grandi sfide per esplorare organismi di biocontrollo efficienti da FWB in campo selvatico. Quel che è peggio è che i FWB trasportano un gran numero di fitopatogeni
1. Isolamento di funghi da M. alternatus (Figura 1)
Isolamento e identificazione di isolati fungini da M. alternatus
Con l'aiuto di trappole attrattive, un gran numero (circa 500 coleotteri in totale) di M. Gli alternati sono stati raccolti da cinque regioni geografiche. Sono stati raccolti cadaveri di coleotteri con sintomi tipici di infezione da funghi entomopatogeni; Quindi, i tegumenti corporei di ogni coleottero sono stati sezionati in diverse posizioni come descritto nella fas.......
Diverse popolazioni geografiche di FWB possono sviluppare varie interazioni con i funghi entomopatogeni naturali, a causa dell'adattamento ambientale a lungo termine delle specie di EPF ai fattori climatici locali e alla specifica popolazione genotipica dell'insetto ospite44,45. L'espansione dei siti di campionamento a più regioni di presenza di insetti aiuta ad aumentare la possibilità di acquisire diversi ceppi o specie di EP.......
Gli autori dichiarano di non avere conflitti di interesse.
Questa ricerca è stata supportata dal National Key Research and Development Program of China (2021YFC2600100) e dalla Natural Science Foundation della provincia di Zhejiang (LY21C040001).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.5 mL, 2 mL centrifuge tubes | Biosharp | BS-15-M | |
10 µL pipet tips | Sangon Biotech | F601216 | |
10 µL, 20 µL, 100 µL, 200 µL, 1,000 µL pipettes | Rainin | ||
1,000 µL pipet tips | Sangon Biotech | F630102 | |
2 mL cryogenic vials | Corning | 430659 | |
20x PBS buffer | Sangon Biotech | B548117-0500 | |
200 µL pipet tips | Sangon Biotech | F601227 | |
2,000 bp maker | TaKaRar | SD0531 | |
50 mL tubes | Nest | 602052 | |
50% glutaraldehyde solution | Sangon Biotech | G916054 | |
50x TAE buffer | Sangon Biotech | B548101 | |
6x loading buffer | TaKaRar | SD0503 | |
Agarose | Sangon Biotech | A610013 | |
Anhydrous ethanol | Jkchemical | LB10V37 | |
Biochemistry Cultivation Cabinet | Shanghaiyiheng | LRH-250F | |
Chloroform | Juhua | 61553 | |
Commercial beetle traps | FEIMENGDI | BF-8 | www.yinyouji.com |
Gel imager | Bio-Rad | GelDoc XR+ | |
Glycerol | Sangon Biotech | A600232 | |
High speed refrigerated centrifuge | Sigma | D-37520 | |
High-Pressure Steam Sterilization Pot | Mettler Toledo | JA5003 | |
Isopropyl alcohol | General-reagent | G75885B | |
Nucleic acid dye | Sangon Biotech | A616696 | |
Optical Microscope, OM | Leica | DM2000 | |
Parafilm | Parafilm | PM996 | |
PCR meter | Heal Force | Trident960 | |
Penicillin G | Marklin | GB15743 | |
Potato dextrose agar, PDA | Oxoid | CM0139 | |
Potato dextrose broth, PDB | Solarbio | P9240 | |
Primers | Sangon Biotech | / | |
Primers Taq | TaKaRar | RR902A | |
Rapid Fungi Genomic DNA Isolation Kit | Sangon Biotech | B518229 | |
Scanning Electron Microscope, SEM | Hitachi | S-3400N | |
Streptomycin | Marklin | S6153 | |
Tetracycline | Marklin | T829835 | |
Tween-80 | Marklin | T6336 | |
Vacuum freeze dryer | Yamato | DC801 | |
Vortex Shaker | HLD | WH-861 | |
β-Mercaptoethanol | Marklin | M6230 |
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