The authors have no acknowledgements.

NOTA: Tutte le procedure sugli animali sono state eseguite con l&#39;approvazione della Cura e uso Comitato Animal Istituzionale (IACUC) dell &#39;Università di Cincinnati ed in conformità con la guida per la cura e l&#39;uso di animali da laboratorio dal National Institutes of Health (NIH Publication No . 85-23, Revised 1996). 1. Euthanize e sterilizzare il mouse <ol><li> Posizionare il mouse in un set contenente una dose supratheraputic di isoflurano e permettono di inalare a effetto. Una volta che il mouse è eutanasia, rimuoverlo dalla scatola. </li><li> Cervicale dislocate come un secondo mezzo di eutanasia. </li><li> Sterilizzare la superficie esterna del mouse dalla pulizia del animale con etanolo al 70%. </li></ol> 2. Identificazione e isolamento di tre diversi Depositi adipose <ol><li> Brown Tessuto adiposo (BAT) Isolamento: <ol><li> Assicurarsi che il pelo è bagnato dalla pulizia alcol per facilitare il taglio attraverso la epidermico e dermico Layers. </li><li> Posizionare il mouse in posizione supina con la schiena contro il tavolo. </li><li> Afferra la pelle appena sotto il diaframma con una pinza, ascensore e incidere con le forbici. </li><li> Tagliare trasversalmente attorno alla circonferenza del mouse per esporre il peritoneo. </li><li> Rivela il deposito BAT a forma di farfalla dal degloving la metà superiore del mouse. Tenere le appendici inferiori e dell&#39;addome in una mano e tirando la pelle verso la testa. </li><li> Orientare il mouse, in modo che sia posizionato prono sul tavolo. Fare attenzione a non contaminare il deposito a vista con i capelli. </li><li> Strumenti chirurgici pulite e cambiamento per un nuovo paio di guanti. </li><li> Individuare le scapole e deposito corrispondente. Rimuovere con cautela qualsiasi adiposo bianco superficiale in cima la farfalla e poi sezionare la farfalla di interscapolare grasso bruno. Fare attenzione a evitare il muscolo strettamente associato con il grasso marrone. NOTA: L&#39;uso di un microscopio dissezione è raccomandato per la rimozione del white adiposo, così come nella separazione del adiposo marrone dal scapole. </li><li> Rimuovere deposito di grasso e trasferire in una provetta 2 ml. </li><li> Se RNA o proteina deve essere estratta, congelare il tessuto mediante immersione in azoto liquido e conservare a -80 ° C. Congelare il campione in una sola volta per evitare il degrado. Se coltura, coprire il tessuto in DMEF-12 e impostare su ghiaccio fino a che tutti i campioni vengono raccolti per la cultura (info supplementare). </li></ol></li><li> Isolamento di sottocutaneo tessuto adiposo (SQ), un bianco Tessuto adiposo Depot (WAT): <ol><li> Mettere su un nuovo paio di guanti per non contaminare tra depositi di grasso. </li><li> Rivela il inguinale, depositi SQ triangolari da DE-guanto la metà inferiore del mouse. Tenere le appendici superiori e torace in una mano e tirando la pelle verso i piedi con l&#39;altra mano. </li><li> Orientare il mouse in posizione supina facendo attenzione a non contaminare il deposito a vista con i capelli. </li><li> Clean surgicastrumenti l e passare a un nuovo paio di guanti. </li><li> Sezionare con cura i triangoli di grasso SQ. Fare attenzione a non contaminare il campione con il muscolo, la vicina di grasso, ghiandole mammarie o tagliando le navi e contaminare il campione di sangue. NOTA: L&#39;uso di un microscopio dissezione è consigliata se i confini non sono chiaramente definiti. </li><li> Rimuovere depositi di grasso e trasferire a 2 ml microprovette. </li><li> Se RNA o proteina deve essere estratta, congelare il tessuto mediante immersione in azoto liquido e conservare a -80 ° C. Congelare il campione in una sola volta per evitare il degrado. </li><li> Per la colorazione, correggere o incorporare in ottobre Se coltura, coprire il tessuto in DMEF-12 e impostare su ghiaccio fino a che tutti i campioni vengono raccolti per la cultura (info supplementare). </li></ol></li><li> Isolamento di gonadica Fat un tessuto adiposo viscerale (VAT) e Bianco Tessuto adiposo (WAT) Depot: <ol><li> Mettere su un nuovo paio di guanti per non contaminare tra depositi di grasso. </li><li> Con scissors, tagliate il peritoneo trasversalmente, direttamente sotto il diaframma. Tagliare il peritoneo dal diaframma alla metà del retto coronale per esporre gli organi addominali. </li><li> Individuare i testicoli o delle ovaie e identificare il tessuto adiposo bianco attaccato, noto come il adiposo epididimale nei maschi o adiposo gonadica nelle femmine. </li><li> Strumenti chirurgici puliti e cambiare per un nuovo paio di guanti </li><li> Sezionare con cura entrambi i depositi di grasso dell&#39;epididimo dal testicoli, epididimi, e vasi deferenti. Oppure, se femmina, sezionare accuratamente entrambi cuscinetti di grasso gonadici dalle ovaie. </li><li> Rimuovere i depositi di grasso e trasferirli a 2 tubi ml microcentrifuga. </li><li> Se RNA o proteina deve essere estratta, congelare il tessuto mediante immersione in azoto liquido e conservare a -80 ° C. Congelare il campione in una sola volta per evitare il degrado. </li><li> Per la colorazione, correggere o incorporare in ottobre Se coltura, coprire il tessuto in DMEF-12 e impostare su ghiaccio fino a che tutti i campioni vengono raccolti per la cultura (info supplementare). </li&gt; </ol></li></ol> 3. Isolamento di Perivascolare Tessuto adiposo (PVAT) <ol><li> Isolamento del Cuore: <ol><li> Disporre il mouse in posizione supina con appendici superiori e inferiori estesi verso l&#39;esterno. </li><li> Appendici protetta tramite nastro chirurgico. </li><li> Dopo aver posizionato il mouse, come riportato sopra, creare tensione sollevando il processo xifoideo con una pinza. Tagliare orizzontalmente attraverso la membrana, esponendo la parte inferiore della cavità toracica. </li><li> Pur mantenendo la tensione, sollevando il processo xifoideo, tagliare la gabbia toracica superiormente verso la testa, appena a lato dello sterno. </li><li> Sollevare la gabbia toracica appena inferiore alla clavicola, e tagliare lungo la lunghezza inferiore della clavicola verso il cavo ascellare in entrambe le direzioni. La cavità toracica e il suo contenuto (cuore, polmoni, ecc) ora dovrebbero essere chiaramente visibili. </li><li> Pulire la cavità toracica di sangue estraneo e fluido usando ga sterileuze di assorbire il liquido. Se gli organi di raccolta o navi sono sicuri profusa (info supplementare). </li><li> Una volta che la superficie è eliminato da fluido, tagliare i vasi bronchi e connessi per rimuovere i polmoni, permettendo una migliore esposizione del cuore. </li></ol></li><li> Localizzazione e Asportazione di aortica Perivascolare Tessuto adiposo (PVAT): <ol><li> Rimuovere i seguenti organi per identificare meglio le parti inferiori della aorta: fegato, stomaco, milza, pancreas, intestino, e colon. </li><li> Prima iniziare con l&#39;identificazione dello stomaco e dell&#39;esofago. Tagliare dell&#39;esofago alla giunzione gastro-esofageo per liberare lo stomaco dal corpo. </li><li> Avanti, individuare l&#39;intestino e mesentere circostante. Tagliare superficialmente attraverso mesentere, in quanto si trova molto vicino alla parte renale dell&#39;aorta, poi &quot;eseguire l&#39;intestino.&quot; </li><li> Tagliare il colon liberare il più vicino al retto possibile. Così, liberando lo stomaco, intestino e colon dal mouse. </li><li> Respostare lo stomaco, intestino, colon, pancreas e milza tagliando attraverso il mesentere Collegamento e vasi. Il pancreas e la milza dovrebbe venire gratis con lo stomaco, intestino e colon. </li><li> Rimuovere il fegato tagliando attraverso le vene epatiche e allegando mesentere, rimuovere tutti i lobi. </li><li> Tagliare via lo strato di grasso viscerale e circondano i reni. Lasciare i reni allegate all&#39;aorta in vivo per servire come marcatori geografiche per diversi segmenti dell&#39;aorta. </li><li> Risciacquare la zona con 1x PBS sterile e rimuovere tutto il fluido per assorbimento con una garza sterile. </li><li> Utilizzando micro-forbici e micro-pinza, separare l&#39;aorta dal suo attaccamento dorsale per la colonna vertebrale e il suo attaccamento ventrale all&#39;esofago. </li><li> Isolare l&#39;aorta seguendo e staccando l&#39;aorta la lunghezza dell&#39;aorta discendente dall&#39;origine nel cuore alla biforcazione della regione iliaca. </li><li> Identificare e isolare i vasi succlavi. Isolare questi vasidal collo alla radice aortica per esporre meglio la giunzione aortica e la radice nel cuore. </li><li> Rimuovere il timo poi tagliare l&#39;arteria brachiocefalico, l&#39;arteria carotide comune sinistra, e succlavia sinistra, permettendo il movimento del cuore. </li><li> Con l&#39;aiuto di un microscopio dissezione, visualizzare il tessuto adiposo (PVAT) strato perivascolare che circonda l&#39;aorta. </li><li> Facendo molta attenzione a non schiacciare o spremere il PVAT, tirare delicatamente il modo PVAT dall&#39;aorta con micro-pinza. Tagliare delicatamente il fissaggio del PVAT all&#39;aorta con micro-forbici a partire regione toracica appena superiore al punto in cui si trova il diaframma. NOTA: Si consiglia un microscopio a dissezione. </li><li> Ripetere questo processo l&#39;intera lunghezza dell&#39;aorta, terminando a regione aortica sottorenale, che si trova appena superiore alla biforcazione iliaca del vaso aortico. </li><li> Se aortico PVAT è desiderato, utilizzato lo stesso metodo per rimuovere il PVAT dalla minore curvature dell&#39;arco. </li><li> Posizionare i campioni PVAT in 2 ml provetta (s). </li><li> Se RNA o proteina deve essere estratta, congelare il tessuto mediante immersione in azoto liquido e conservare a -80 ° C. Congelare il campione in una sola volta per evitare il degrado. Se coltura, coprire il tessuto in DMEF-12 e impostare su ghiaccio fino a che tutti i campioni vengono raccolti per la cultura (info supplementare). NOTA: ulteriori depositi adiposi da considerare se interessati in una completa analisi depot adiposo includono: retroperitoneale, mesenterica, omentale, pericardico e poplitea. </li></ol></li></ol>

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</ol>

The authors declare that they have no competing financial interests or other conflicts of interest.

L&#39;obesità può portare a una grande serie di morbilità e la piena comprensione del ruolo che svolge adiposo non è pienamente compreso; ricerca pertanto continuato nel campo della adiposo è necessaria. I modelli animali, in particolare i modelli murini sono ideali per la ricerca iniziale nella progressione delle malattie e la sperimentazione di potenziali trattamenti farmaceutici. Utilizzando questi modelli, isolamento precisa e escissione di depositi adiposi è uno strumento estremamente importante e necessario ...

Adiposa fatto un&#39;apparizione notevole sotto i riflettori dei media, a causa della notevole aumento di obesità negli ultimi decenni del 20 ° secolo. L&#39;obesità colpisce attualmente più di un terzo degli adulti e il 17% di bambini e adolescenti negli Stati Uniti (US) 1. Spanning tutti i gruppi etnici, ricerca statistica che circonda l&#39;epidemia di obesità ha mostrato che i neri non ispanici hanno il tasso aggiustato per età più alta di obesità (49,5%) rispetto ai messicani americani (40,4%), tutti gli ispanici (39,1%), e non bianchi ispanici (34,3%) 2. L&#39;effetto economico di obesità è anche una preoccupazione crescente per il sistema sanitario. Nel 2012, è stato stimato che il costo medico annuale delle cure per l&#39;obesità negli Stati Uniti nel 2005 è stato di 190,2 miliardi dollari, quasi il 21% del bilancio complessivo di spesa medica. Purtroppo, l&#39;obesità infantile è stata stimata essere responsabile a $ 14 miliardi di dollari in costi medici diretti da solo. Statisticamente, è stato determinato che il costo medio di medicaindividui con obesità è stato $ 2741 superiore di un anno rispetto a quelli senza questa morbosità 3-5. L&#39;obesità è un importante fattore di rischio per una serie di condizioni, quali: diabete di tipo 2, dislipidemia, malattie cardiovascolari, cancro, disturbi muscolari e scheletrici infiammazione cronica. L&#39;obesità è profondamente legata alla patogenesi della sindrome metabolica e di altre malattie croniche 6-8. Con tali connessioni drastiche e negativi tra obesità e altre patologie concomitanti, la ricerca scientifica si è concentrata l&#39;attenzione per capire meglio l&#39;epidemia attuale e le diverse e cardine ruoli adiposo. Storicamente, il tessuto adiposo è stato considerato irrilevante ed è stato considerato solo come un semplice tessuto di riempimento. Attualmente, adiposo ha dimostrato di giocare molti ruoli essenziali nella funzione del corpo in: metabolismo, regolazione ormonale, l&#39;infiammazione, la protezione e l&#39;isolamento 9. Il tessuto adiposo è composto principalmente daadipociti, ma contiene anche periciti, le cellule endoteliali, monociti, macrofagi e cellule staminali pluripotenti 8. Il tessuto adiposo è distribuito in tutto il corpo in depositi distinti. I principali depositi si trovano subdermally, per via sottocutanea, intramuscolare, e visceralmente 10. Depositi adiposi hanno dimostrato di avere deposito specifici profili metabolici, che hanno mostrato una predisposizione specifica depot di obesità e disturbi correlati 8. Tradizionalmente, il tessuto adiposo è stata classificata in due tipi principali: tessuto adiposo bianco (WAT) e tessuto adiposo bruno (BAT); anche se recente letteratura indica le presenze di un terzo gruppo battezzato brite o beige adiposo 11. Il tessuto adiposo è stato dimostrato di avere colori diversi, morfologie, funzioni metaboliche, le caratteristiche biochimiche e modelli genetici di espressione 10. Gli adipociti in WAT hanno un unico, grande goccia di lipidi e di quantità variabili di mitocondri. WATsi trova in località prevalentemente sottocutaneo e viscerale del corpo. Funzioni WAT principalmente come un sito di stoccaggio di energia e di protezione d&#39;organo. Gli adipociti in BAT hanno una morfologia multiloculare e mitocondri abbondanti. BAT si trova principalmente nel collo e grandi vasi sanguigni del torace, nonché le scapole 12. BAT funzioni principalmente a comportamenti dispendio energetico che regolano la termogenesi 7. Adiposo Brite o beige ha dimostrato di condividere una morfologia analogo ed espressione BAT, ma è stato trovato per essere originato da adipociti bianchi 11. Il metodo chirurgico descritto in questo manoscritto fornisce ai ricercatori con la capacità di analizzare diversi effetti che fattori quali: l&#39;ambiente, i prodotti farmaceutici, e la genetica, hanno sulla adiposo; così come il ruolo adiposo benefico o dannoso gioca nella malattia e la salute generale. Inoltre, fornendo un modo per identificare e isolare diversi tipi di tessuto adiposopermettere una migliore comprensione delle relazioni biochimiche e le differenze tra depositi. Questo può aiutare a determinare il rapporto tra posizione, la funzione, e tipi di grassi nel corpo. Questo metodo descritto realizza questo fornendo i mezzi per la visualizzazione lordo, analisi di espressione genica, analisi di espressione della proteina, l&#39;esame istologico, e l&#39;isolamento di linee cellulari primarie per studi in vitro. Attualmente non ci sono molti articoli che forniscono informazioni sul comportamento metabolico dei diversi depositi adiposi, nonché le loro sedi anatomiche; ma non forniscono un metodo di approfondimento su come localizzare in particolare, di identificare e isolare questi depositi. Questo metodo fornisce una tecnica chirurgica precisa che permette l&#39;isolamento di più depositi con una quantità minima di dissezione e la contaminazione rispetto ad altri metodi progettati per l&#39;isolato di uno o due depositi 13-14. L&#39;obiettivo di questo protocollo è quello di fornireun metodo preciso per l&#39;identificazione e l&#39;isolamento di diversi tipi di depositi di grasso di molteplici posizioni anatomiche.

<table><tbody><tr><td>Isoflurane</td><td>Med-Vet International</td><td>#RXISO-250</td><td></td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td>Fisher</td><td>07-678-001</td><td></td></tr><tr><td>DMEF-12</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D-6421</td><td>Warm in waterbath before putting on tissue.</td></tr><tr><td>2 ml Microcentrifuge tubes</td><td>Midsci</td><td>MCT-200-C-S</td><td></td></tr><tr><td>Phosphate buffered saline</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P5368-10PAK</td><td></td></tr></tbody></table>

localization, identification, and excision of murine adipose depots

Obesity has increased dramatically in the last few decades and affects over one third of the adult US population. The economic effect of obesity in 2005 reached a staggering sum of $190.2 billion in direct medical costs alone. Obesity is a major risk factor for a wide host of diseases. Historically, little was known regarding adipose and its major and essential functions in the body. Brown and white adipose are the two main types of adipose but current literature has identified a new type of fat called brite or beige adipose. Research has shown that adipose depots have specific metabolic profiles and certain depots allow for a propensity for obesity and other related disorders. The goal of this protocol is to provide researchers the capacity to identify and excise adipose depots that will allow for the analysis of different factorial effects on adipose; as well as the beneficial or detrimental role adipose plays in disease and overall health. Isolation and excision of adipose depots allows investigators to look at gross morphological changes as well as histological changes. The adipose isolated can also be used for molecular studies to evaluate transcriptional and translational change or for in vitro experimentation to discover targets of interest and mechanisms of action. This technique is superior to other published techniques due to the design allowing for isolation of multiple depots with simplicity and minimal contamination.

Identificazione e localizzazione delle adiposo sottocutaneo inguinale, interscapolare adiposo bruno, viscerale adiposo epididimale (figura 1), nonché la aortico adiposo perivascolare arco, toracica adiposo aortica, suprarenal adiposo aortica e dell&#39;aorta infrarenale adiposo (Figura 2) è stata ottenuta con successo usando il metodo chirurgico descritto. L&#39;esame istologico e la differenziazione tra i campioni BAT e Wat sono stati positivamente valutati usando ematossilina e eosi...

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Localization, Identification, and Excision of Murine Adipose Depots

Grazie al collegamento drastica e negativa tra obesità e altre patologie concomitanti, la ricerca sul adiposo giochi di ruolo nella malattia e la salute generale è garantito. Presentiamo un protocollo per l&#39;isolamento e l&#39;escissione di depositi adiposi consentano lo studio della adiposo usare in situ e metodi in vitro.

Localizzazione, identificazione, e l&#39;escissione dei Depositi Murine adipose

Obesity has increased dramatically in the last few decades and affects over one third of the adult US population. The economic effect of obesity in 2005 ...

localization-identification-and-excision-of-murine-adipose-depots

Research

JoVE Journal

Medicine

41.0K Views.  University of Cincinnati College of Medicine.  Grazie al collegamento drastica e negativa tra obesità e altre patologie concomitanti, la ricerca sul adiposo giochi di ruolo nella malattia e la salute generale è garantito. Presentiamo un protocollo per l'isolamento e l'escissione di depositi adiposi consentano lo studio della adiposo usare in situ e metodi in vitro. 

Video: Localization, Identification, and Excision of Murine Adipose Depots

Immunomagnetic Separation of Fat Depot-specific Sca1high Adipose-derived Stem Cells (ASCs)

The isolation of adipose-derived stem cells (ASCs) is an important method in the field of adipose tissue biology, adipogenesis, and extracellular matrix (ECM) remodeling. In vivo, ECM-rich environment consisting of fibrillar collagens provides a structural support to adipose tissues during the progression and regression of obesity. Physiological ECM remodeling mediated by matrix metalloproteinases (MMPs) plays a major role in regulating adipose tissue size and function1,2. The loss of physiological collagenolytic ECM remodeling may lead to excessive collagen accumulation (tissue fibrosis), macrophage infiltration, and ultimately, a loss of metabolic homeostasis including insulin resistance3,4. When a phenotypic change of the adipose tissue is observed in gene-targeted mouse models, isolating primary ASCs from fat depots for in vitro studies is an effective approach to define the role of the specific gene in regulating the function of ASCs. In the following, we define an immunomagnetic separation of Sca1high ASCs.

Immunomagnetic Separation of Fat Depot-specific Sca1high Adipose-derived Stem Cells ASCs

We present the techniques required to isolate the stromal vascular fraction (SVF) from mouse inguinal (subcutaneous) and perigonadal (visceral) adipose tissue depots to assess their gene expression and collagenolytic activity. This method includes the enrichment of Sca1high adipose-derived stem cells (ASCs) using immunomagnetic cell separation.

Separazione immunomagnetica di Sca1 Fat Depot-specifica<sup&gt; alta</sup&gt; derivate da tessuto adiposo cellule staminali (ASC)

The isolation of adipose-derived stem cells (ASCs) is an important method in the field of adipose tissue biology, adipogenesis, and extracellular matrix ...

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Preparation, Administration, and Assessment of In Vivo Tissue-Specific Cellular Uptake of Fluorescent Dye-Labeled Liposomes

There is a growing interest in using liposomes to deliver compounds in vivo particularly for targeted treatment approaches. Depending on the liposome formulation, liposomes may be preferentially taken up by different cell types in the body. This may influence the efficacy of the therapeutic particle as progression of different diseases is tissue- and cell-type-specific. In this protocol, we present one method for synthesizing and fluorescently labeling liposomes using DSPC, cholesterol, and PEG-2000 DSPE and the lipid dye DiD as a fluorescent label. This protocol also presents an approach for delivering liposomes in vivo and assessing cell-specific uptake of liposomes using flow cytometry. This approach can be used to determine the types of cells that take up liposomes and quantify the distribution and proportion of liposome-uptake across cell types and tissues. While not mentioned in this protocol, additional assays such as immunofluorescence and single-cell fluorescence imaging on a cytometer will strengthen any findings or conclusions made as they permit assessment of intracellular staining. Protocols may also need to be adapted depending on the tissue(s) of interest.

The goal of this protocol is to synthesize fluorescently-labeled liposomes and use flow cytometry to identify in vivo localization of liposomes at a cellular level.

Preparazione, somministrazione e valutazione dell'assorbimento cellulare tessuto-specifico in vivo di liposomi marcati con coloranti fluorescenti

There is a growing interest in using liposomes to deliver compounds in vivo particularly for targeted treatment approaches. Depending on the liposome ...

Bioingegneria

Isolation of Adipogenic and Fibro-Inflammatory Stromal Cell Subpopulations from Murine Intra-Abdominal Adipose Depots

The stromal-vascular fraction (SVF) of white adipose tissue (WAT) is remarkably heterogeneous and consists of numerous cell types that contribute functionally to the expansion and remodeling of WAT in adulthood. A tremendous barrier to studying the implications of this cellular heterogeneity is the inability to readily isolate functionally distinct cell subpopulations from WAT SVF for in vitro and in vivo analyses. Single-cell sequencing technology has recently identified functionally distinct fibro-inflammatory and adipogenic PDGFR&#946;+ perivascular cell subpopulations in intra-abdominal WAT depots of adult mice. Fibro-inflammatory progenitors (termed, &#8220;FIPs&#8221;) are non-adipogenic collagen producing cells that can exert a pro-inflammatory phenotype. PDGFR&#946;+ adipocyte precursor cells (APCs) are highly adipogenic both in vitro and in vivo upon cell transplantation. Here, we describe multiple methods for the isolation of these stromal cell subpopulations from murine intra-abdominal WAT depots. FIPs and APCs can be isolated by fluorescence-activated cell sorting (FACS) or by taking advantage of biotinylated antibody-based immunomagnetic bead technology. Isolated cells can be used for molecular and functional analysis. Studying the functional properties of stromal cell subpopulation in isolation will expand our current knowledge of adipose tissue remodeling under physiological or pathological conditions on the cellular level.

This protocol describes the technical approach to isolate adipogenic and fibro-inflammatory stromal cell subpopulations from murine intra-abdominal white adipose tissue (WAT) depots by fluorescence-activated cell sorting or immunomagnetic bead separation.

Isolamento di sottopopolazioni di cellule stromali adipogeniche e fibro-infiammatorie da depositi adiposi intra-addominali murini

The stromal-vascular fraction (SVF) of white adipose tissue (WAT) is remarkably heterogeneous and consists of numerous cell types that contribute ...

Immunologia e infezioni

Lymphatic and Blood Network Analysis During Obesity

Lymphatic collecting vessels and lymph nodes are inevitably embedded in adipose tissue. The physiological significance of this observation remains still not elucidated. However, obesity is characterized by impaired lymphatic function and increased vessel permeability. Inversely, lymphatic dysfunction induces obesity in mice, suggesting a significant interplay between lymphatic vessels and the adipose tissue. Therefore, understanding factors leading to lymphatic dysfunction might open new therapeutic windows to prevent obesity and associated comorbidities. The first step in this process requires a precise and detailed visualization of the lymphatic network in healthy and inflamed adipose tissue. Here, we describe a rapid, inexpensive, and efficient method that allows to label and analyze lymphatic and blood vessels. This approach takes advantage of the skin-draining brachial lymph node localization within the subcutaneous adipose tissue. The lymphatic arborization of this tissue can be revealed by injecting fluorochrome-conjugated lectins subcutaneously. Moreover, the in vivo labeling approach provides a way to evaluate lymphatic vessel density and functions. Coupled to blood vessel, adipocyte and immune cell staining, the protocol allows for high-resolution mapping of the subcutaneous adipose tissue by 3D imaging.

<meta charset="utf8"></head><body>Analisi delle reti linfatiche e sanguigne durante l'obesità

Obesity is a growing global public health issue. It has been previously associated with lymphatic dysfunction, suggesting a vital crosstalk between the adipose tissue and the lymphatic system. Here, we propose an accessible methodology allowing the distinct labeling of blood and lymphatic vasculatures within the subcutaneous adipose tissue.

Analisi delle reti linfatiche e sanguigne durante l'obesità

Lymphatic collecting vessels and lymph nodes are inevitably embedded in adipose tissue. The physiological significance of this observation remains still ...

Medicina

Identification and Dissection of Diverse Mouse Adipose Depots

Adipose tissues are complex organs with a wide array of functions, including storage and mobilization of energy in response to local and global needs, uncoupling of metabolism to generate heat, and secretion of adipokines to regulate whole-body homeostasis and immune responses. Emerging research is identifying important regional differences in the developmental, molecular, and functional profiles of adipocytes located in discrete depots throughout the body. Different properties of the depots are medically relevant since metabolic diseases often demonstrate depot-specific effects. This protocol will provide investigators with a detailed anatomic atlas and dissection guide for the reproducible and accurate identification and excision of diverse mouse adipose tissues. Standardized dissection of discrete adipose depots will allow detailed comparisons of their molecular and metabolic characteristics and contributions to local and systemic pathologic states under various nutritional and environmental conditions.

Adipocytes exist in discrete depots and have diverse roles within their unique microenvironments. As regional differences in adipocyte character and function are uncovered, standardized identification and isolation of depots is crucial for advancement of the field. Herein, we present a detailed protocol for the excision of various mouse adipose depots.

Identificazione e dissezione dei diversi depositi di adiposi del mouse

Adipose tissues are complex organs with a wide array of functions, including storage and mobilization of energy in response to local and global needs, ...

Biologia

Isolation and Identification of Vascular Endothelial Cells from Distinct Adipose Depots for Downstream Applications

Vascular endothelial cells lining the wall of the vascular system play important roles in a variety of physiological processes, including vascular tone regulation, barrier functions, and angiogenesis. Endothelial cell dysfunction is a hallmark predictor and major driver for the progression of severe cardiovascular diseases, yet the underlying mechanisms remain poorly understood. The ability to isolate and perform analyses on endothelial cells from various vascular beds in their native form will give insight into the processes of cardiovascular disease. This protocol presents the procedure for the dissection of mouse subcutaneous and mesenteric adipose tissues, followed by isolation of their respective arterial vasculature. The isolated arteries are then digested using a specific cocktail of digestive enzymes focused on liberating functionally viable endothelial cells. The digested tissue is assessed by flow cytometry analysis using CD31+/CD45&#8722; cells as markers for positive endothelial cell identification. Cells can be sorted for immediate downstream functional assays or used to generate primary cell lines. The technique of isolating and digesting arteries from different vascular beds will provide options for researchers to evaluate freshly isolated vascular cells&#160;from arteries of interest and allow them to perform a wide range of functional tests on specific cell types.

This protocol details a method for the dissection of mouse adipose depots and the isolation and digestion of respective arteries to liberate and then identify the endothelial cell population. Freshly isolated cells used in downstream applications will advance the understanding of vascular cell biology and the mechanisms of vascular dysfunction.

Isolamento e identificazione di cellule endoteliali vascolari da depositi adiposi distinti per applicazioni a valle

Vascular endothelial cells lining the wall of the vascular system play important roles in a variety of physiological processes, including vascular tone ...

Isolamento semi-automatico del tessuto adiposo bianco murino

Semi-Automated Isolation of the Stromal Vascular Fraction from Murine White Adipose Tissue Using a Tissue Dissociator

The in vitro study of white, brown, and beige adipocyte differentiation enables the investigation of cell-autonomous functions of adipocytes and their mechanisms. Immortalized white preadipocyte cell lines are publicly available and widely used. However, the emergence of beige adipocytes in white adipose tissue in response to external cues is difficult to recapitulate to the full extent using publicly available white adipocyte cell lines. Isolation of the stromal vascular fraction (SVF) from murine adipose tissue is commonly executed to obtain primary preadipocytes and perform adipocyte differentiation. However, mincing and collagenase digestion of adipose tissue by hand can result in experimental variation and is prone to contamination. Here, we present a modified semi-automated protocol that utilizes a tissue dissociator for collagenase digestion to achieve easier isolation of the SVF, with the aim of reducing experimental variation, reducing contamination, and increasing reproducibility. The obtained preadipocytes and differentiated adipocytes can be used for functional and mechanistic analyses.

Autore in primo piano: Isolamento semi-automatico della frazione vascolare stromale dal tessuto adiposo bianco murino utilizzando un dissociatore tissutale  

This protocol describes the semi-automated isolation of the stromal vascular fraction (SVF) from murine adipose tissue to obtain preadipocytes and achieve adipocyte differentiation in vitro. Using a tissue dissociator for collagenase digestion reduces experimental variation and increases reproducibility.

Isolamento semi-automatico della frazione vascolare stromale dal tessuto adiposo bianco murino mediante un dissociatore tissutale

The in vitro study of white, brown, and beige adipocyte differentiation enables the investigation of cell-autonomous functions of adipocytes and their ...

Localizzazione, identificazione, e l'escissione dei Depositi Murine adipose

Riepilogo

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Analisi delle reti linfatiche e sanguigne durante l'obesità

Analisi delle reti linfatiche e sanguigne durante l'obesità

Identificazione e dissezione dei diversi depositi di adiposi del mouse

Isolamento e identificazione di cellule endoteliali vascolari da depositi adiposi distinti per applicazioni a valle

Isolamento semi-automatico della frazione vascolare stromale dal tessuto adiposo bianco murino mediante un dissociatore tissutale

Isolamento semi-automatico della frazione vascolare stromale dal tessuto adiposo bianco murino mediante un dissociatore tissutale

Isolamento semi-automatico della frazione vascolare stromale dal tessuto adiposo bianco murino mediante un dissociatore tissutale