組織工学のための熱応答性ナノ構造表面の調製

要約

Nanoscaled sea-island surfaces composed of thermoresponsive block copolymers were fabricated by the Langmuir-Schaefer method for controlling spontaneous cell adhesion and detachment. Both the preparation of the surface and the adhesion and detachment of cells on the surface were visualized.

要約

Thermoresponsive poly(N-isopropylacrylamide) (PIPAAm)-immobilized surfaces for controlling cell adhesion and detachment were fabricated by the Langmuir-Schaefer method. Amphiphilic block copolymers composed of polystyrene and PIPAAm (St-IPAAms) were synthesized by reversible addition-fragmentation chain transfer (RAFT) radical polymerization. A chloroform solution of St-IPAAm molecules was gently dropped into a Langmuir-trough apparatus, and both barriers of the apparatus were moved horizontally to compress the film to regulate its density. Then, the St-IPAAm Langmuir film was horizontally transferred onto a hydrophobically modified glass substrate by a surface-fixed device. Atomic force microscopy images clearly revealed nanoscale sea-island structures on the surface. The strength, rate, and quality of cell adhesion and detachment on the prepared surface were modulated by changes in temperature across the lower critical solution temperature range of PIPAAm molecules. In addition, a two-dimensional cell structure (cell sheet) was successfully recovered on the optimized surfaces. These unique PIPAAm surfaces may be useful for controlling the strength of cell adhesion and detachment.

概要

ナノ構造化表面は、最近によるパターニング、細胞培養、洗浄、表面切り替えを含め、さまざまな潜在的用途にかなりの注目を集めています。例えば、蓮の葉やその他の応答性表面のナノ構造に触発された超疎水性表面は、外部からの刺激^1-4に反応することができます。

ラングミュア膜は、最も広く研究され、ポリマーコーティングの一つです。ラングミュアフィルムを空気-水界面^5-8に両親媒性分子を滴下することにより形成されます。フィルムは、その後、物理的または化学的吸着によって、固体表面に転写することができ、固体表面上の分子の立体配座は、垂直および水平転送方式^9-12を用いて制御することができます。ラングミュア膜の密度が正確に空気 - 水界面を圧縮することによって調節することができます。最近、この方法はまた、ナノスケール海島structurを製造するための効果的であることが証明されています両親媒性ブロックコポリマーを利用することにより、ES。ナノ構造体は、疎水性セグメントのコアと親水性セグメント^13-17の殻から成っているものとします。また、表面上のナノ構造の数は、界面でのブロック共重合体の分子当たりの面積_（m）を制御することによって調節されます。

我々は、温度応答性培養表面を用いて、元の、ユニークな足場フリー組織工学アプローチ、細胞シート工学に焦点を​​当てています。開発した技術は、様々な器官¹⁸のための再生治療に適用されています。温度応答性培養表面は、表面^19-27上に、ポリ（N -isopropylacrylamide）（PIPAAm）、温度応答性分子をグラフトすることにより作製しました。 PIPAAmおよびそのコポリマーは、32℃付近の温度で、水性媒体中で下限臨界溶液温度（LCST）を示します。培養表面は、温度応答性alternatiを示しました疎水性と親水性の間に。 37℃で、PIPAAmグラフト化表面は疎水性になり、細胞が容易に取り付けられ、表面上だけでなく、従来の組織培養ポリスチレン上で増殖しました。温度を20℃に下げたときに、表面が親水性となり、細胞が自然に表面から剥離します。従って、表面上で培養したコンフルエントな細胞は、温度を変化させることにより、完全なシートとして回収することができます。これらの細胞接着及び剥離特性はまた、研究室のデモンストレーション^26、27ラングミュアフィルムコーティングによって製造面で表示した。ポリスチレン（P（ST））からなるブロック共重合体のラングミュア膜とPIPAAm（ST-IPAAm）を作製しました。特定のA _mのラングミュア膜が水平に疎水的に修飾されたガラス基板に転写することができました。また、温度に応答して調製された表面からの細胞の接着および剥離を評価しました。

_content ">ここでは、ガラス基板上に熱応答性両親媒性ブロックコポリマーからなるナノ構造ラングミュア膜の製造のためのプロトコルを記述している。我々の方法は、表面科学の様々な分野において有機ナノフィルムのための効果的な製造技術を提供することができ、より多くのを容易にすることができます上の細胞接着を効果的に制御し、表面からの自然剥離。

プロトコル

ツーステップ可逆的付加-フラグメンテーション連鎖移動（RAFT）ラジカル重合によるポリポリスチレンブロックの1の合成（N -isopropylacrylamide）

1. スチレン（153.6ミリモル）を溶​​解させ、4-シアノ-4-（ethylsulfanylthiocarbonyl）sulfanylpentanoic酸（ECT; 0.2ミリモル）、及び4,4'-アゾビス（4-シアノ吉草酸）（ACVA; 0.04ミリモル）を1 40ml中、 1,4-ジオキサン。反応性種を除去し、徐々に室温で解凍する15〜20分間真空下で液体窒素中で溶液をフリーズします。溶液が完全に解凍されていることを確認し、この凍結 - ポンプ - 解凍脱ガスサイクルを3回繰り返します。
2. オイルバスで15時間、70℃で重合によるマクロRAFT剤として：ポリスチレン（PST）（13500 Mw）を取得します。
3. 真空中でエーテルとドライの800ミリリットルと沈殿物たPStマクロRAFT剤。
4. 1,4-ジオキサン4ml中IPAAmモノマー（4.32ミリモル）、たPStマクロRAFT剤（0.022ミリモル）、及びACVA（0.004ミリモル）を溶​​解させます。
5. 削除しますステップ1.1で述べたように凍結 - ポンプ - 融解脱気サイクルによって溶液中の酸素。
6. 脱気後の油浴中で15時間70℃で重合を行います。たPStマクロRAFT剤と同様の方法で：合成セントIPAAm分子（32800 Mw）を取得します。

シラン処理疎水性修飾ガラス基板の作製

1. 表面汚染物を除去するために5分間、アセトンとエタノールと超音波処理の過剰な洗浄ガラス基板（×50mmの24 mm）です。
2. 30分間65℃のオーブン中に基板を乾燥させます。その後、室温で基板の表面を活性化するために酸素プラズマ（400 W、3分）を使用します。
3. 基板をsilanizeするRTで一晩、1％ヘキシルを含むトルエン中に基板を浸し。
4. トルエン中でシラン化された基板を洗浄し、未反応物質を除去するために、30分間アセトンに浸します。
5. 110℃で2時間アニール基質は完全にSを固定しますurface。
6. 細胞培養皿（：φ35ミリメートルディッシュサイズ）に合うように25ミリメートル×24ミリメートルにガラスカッターでシラン化基板をカットします。

ラングミュアフィルムおよびフィルム転写表面の調製

1. 埃の蓄積を防ぐために、キャビネットにラングミュア膜装置を配置します。
2. （580ミリメートル×145ミリメートルサイズ）、蒸留水や汚染物質を除去するためにエタノールで障壁ラングミュアトラフを洗ってください。
3. リントフリータオルで拭いてトラフや障壁を乾燥させます。その後、蒸留水約110ミリリットルでトラフを記入し、トラフの両側に障壁を設定します。蒸留水を3.5から3.13には、次の手順にこぼすことなく添加されるべきであることに注意してください。
4. プレートが赤に変わるまで、ガスバーナーで表面張力を監視するために、その後、汚染物質を除去するために蒸留水で洗う：白金ウィルヘルミー板（39.24ミリメートル周囲を）加熱します。に取り付けられたワイヤ上ウィルヘルミープレートをサスペンド表面圧力測定機器。
5. 製造業者のプロトコルに従ってゼロ面圧測定器。インタフェースは、ポリマーの任意の低下なしに約50 cm ²で達するまで溝の両側に障壁によってトラフの空気-水界面を圧縮します。
6. 面圧まで吸引し、小さな汚染物質はほぼ0 MN / mです。
7. 両側の障壁を再配置し、ステップ3.6から蒸留水の減少を補うために蒸留水を追加します。
8. クロロホルムの現像液の5mlに合成されたサンIPAAm分子5mgを溶解させます。
   注：ジクロロメタンまたはトルエンを溶媒として使用することもできます。
9. 静かにマイクロシリンジまたはマイクロピペットを用いて、トラフ上にクロロホルムに溶解サンIPAAmの27μLをドロップします。
10. クロロホルムを完全に蒸発を可能にするために5分間待った後、サンIPAAm molecuを圧縮するために、水平方向の両方の障壁を移動ル界面で。 cm ^2で達成される50の標的領域まで0.5 mm /秒での障壁の圧縮率を維持します。
    注：急速な圧縮率は、ラングミュア膜中の欠陥を引き起こします。
11. 製造業者のプロトコルに従って、圧縮中の表面圧力測定機器に接続されている白金ウィルヘルミー板と面圧（π）-A _{メートル等温}線を測定します。
12. 対象領域の大きさに達した後、サンIPAAm分子がリラックスできるようにするために5分間表面を維持します。分子は、圧縮後すぐに平衡状態に達していません。
13. 確実にフィルムを吸着するため5分間転写装置を用いて、疎水的に改質されたガラス基板にラングミュアフィルムを転送します。デバイス上で並列に疎水性のガラス基板を固定してください。アライメントステージにデバイスを接続し、垂直に移動します。
14. desiccatoでの1日の転送装置と乾燥して水平に基板を持ち上げrを。

4.細胞を培養し、ラングミュアフィルム転写面上の細胞接着と剥離の最適化

1. 10％の胎児を含むダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）で組織培養ポリスチレン（TCPS）上のCO _2、95％空気、5％中で37℃で三分の一コンフルエンスまで細胞懸濁液を、培養ウシ頸動脈内皮細胞（BAECs）を調製しウシ血清（FBS）および100 U / mlペニシリン。
2. コンフルエンスに達した後、0.25％トリプシン-EDTAを3分間37℃、5％CO ₂及び95％空気中で3mlでBAECsを扱います。
3. DMEM、10％FBSを含有する10mlのを添加することによりトリプシン-EDTAを非アクティブ化し、50mlコニカルチューブに細胞懸濁液を収集します。
4. 5分間、120×gで遠心分離し、上清を吸引除去します。再懸濁DMEMの10ミリリットルで細胞を。
5. 5分間滅菌するためのクリーンベンチに紫外線下でサンIPAAm面を配置します。
6. 回収されたCEの種子サンIPAAmのLLSは、使い捨て血球計により計数し、1.0×10 ⁴細胞/ cm ²の濃度で表面及び5％CO ₂および95％で37℃のインキュベーターを備えた顕微鏡で表面上の細胞を観察します空気。
   注：クリーンベンチに搭載した紫外線によりサンIPAAm表面を滅菌します。
7. 10倍の倍率で位相差顕微鏡により、37℃で約24.5時間、付着BAECsのレコードタイムラプス画像。 BAEC接着、約3.5時間、20℃でのSt-IPAAm表面からBAECsのレコード剥離後。

ラングミュアフィルム転写表面上5.細胞シートの作製

1. セクション4で説明したのと同じ方法で使用される培養BAECs。
2. サンIPAAm表面に1.0×10 ⁵細胞/ cm ²の合計に播種し、5％CO ₂中、37℃で3日間インキュベートします。コンフルエントBAECsは自発的に20℃で切り離さ。

結果

ポリスチレン、特定の分子量を有するポリ（Nの -isopropylacrylamide）（ST-IPAAms）からなるブロックコポリマーは、RAFTラジカル重合によって合成しました。 Moad ら ²⁸に記載されるようにECTは、連鎖移動剤として調製しました。異なるPIPAAm鎖長の二サンIPAAm分子を合成し、得られたブロックポリマーは^、1 H核磁気共鳴（NMR）、ゲル浸透クロマト?...

ディスカッション

温度応答性表面は、ラングミュア - シェーファー法により作製し、細胞接着/剥離および細胞シートの回収のために表面特性を最適化しました。表面を製造するためのこの方法を使用する場合、いくつかのステップは重要です。サンIPAAm分子の分子組成物は、表面構造および表面の安定性、ひいては、細胞接着および剥離に大きな影響を与えます。特に、サンIPAAm分子は、狭い分子量分布を有?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
N-isopropylacrylamide	Kohjin		No catalog number
Azobis(4-cyanovaleric acid)	Wako Pure Chemicals	016-19332
Styrene	Sigma-Aldrich	S4972
1,3,5-trioxane	Sigma-Aldrich	T81108
1,4-Dioxane	Wako Pure Chemicals	045-24491
DMEM	Sigma	D6429
PBS	Nakarai	11482-15
Streptomycin	GIBCO BRL	15140-163
Penicillin	GIBCO BRL	15140-122
Trypsin-EDTA	Sigma	T4174
FBS	Japan Bioserum	JBS-11501
BAECs	Health Science Reserch Resources Bank	JCRB0099
Cover Glasses	Matsunami Glass Industry	C024501
AFM NanoScope V	Veeco
1H NMR INOVA 400	Varian, Palo Alto
ATR/FT-IR NICOLET 6700	Thermo Scientific
GPC HLC-8320GPC	Tosoh
TSKgel Super AW2500, AW3000, AW4000	Tosoh
Langmuir-Blodgett Deposition Troughs	KSV Instruments	KN 2002	KSV NIWA Midium trough
Nikon ECLIPSE TE2000-U	Nikon