著者
お問い合わせ

サインイン

このコンテンツを視聴するには、JoVE 購読が必要です。 サインイン又は無料トライアルを申し込む。

この記事について

  • 要約
  • 要約
  • 概要
  • プロトコル
  • 結果
  • ディスカッション
  • 開示事項
  • 謝辞
  • 資料
  • 参考文献
  • 転載および許可

要約

単純な ATP 測定法およびライブ/デッド染色法は、定量化し、セフトリアキソン、治療後の淋菌生存を視覚化する使用されました。このプロトコルを拡張して任意の抗生物質の抗菌効果を確認して、細菌バイオ フィルムにおける抗生物質の最小発育阻止濃度を定義する使用ことができます。

要約

抗生物質耐性淋菌(GC) の出現は、世界的な健康の脅威であるし、治療に失敗する人を識別する必要性を強調します。このグラム陰性細菌は、ヒトの排他的淋疾を引き起こします。感染、時にバイオ フィルムおよび/または集合体を形成することです。最小発育阻止濃度 (MIC) テストは、適切な治療の定義、抗生物質に対する感受性を決定するために使用されます。しかし、生体内での撲滅と検査結果の関係のメカニズムは知られていません。GC 集計の抗生物質感受性に影響を与えるし、骨材粒径と抗生物質感受性との関係を示していますどのように調べ方法が開発されました。GC 集計、彼らは抗生物質の殺害に抵抗力があるが、中心部の細菌の存続セフトリアキソン治療よりも周囲の。データを示す淋菌集計が標準寒天培地プレート ベース マイク メソッドを使用して反映されていないセフトリアキソンに感受性を減らすことができます。本研究で用いられた方法は臨床的に関連する条件の下で細菌の感受性をテストする研究者になります。

概要

淋病は、性感の一般的な感染症 (STI)1です。淋菌(GC)、グラム陰性菌 diplococcal 菌がこの病気の原因となるエージェントです。性器の感染症の症状は尿道分泌物、全身性器の痛み、排尿時の痛みになります。感染はしばしば無症候性2,の3,の4、5であり拡張植民地化できます。これらの未処理の伝染は、有機物の伝達を容易にする可能性がある、これは骨盤の炎症性病気 (PID) などの合併症につながることができ、播種性淋菌感染症 (DGI)6に主要な健康の心配。抗生物質耐性の淋病は主要な公衆衛生の危機および増加の社会経済的負担7 です。セファロスポリンに感受性の低下は、単一抗生物質から8セフトリアキソンとアジスロマイシンまたはドキシサイクリンを組み合わせたデュアル療法への治療レジメン変更になりました。セフトリアキソンとアジスロマイシン9,10, 無症候性感染症との組み合わせでの増加の障害は、淋病の治療の失敗を理解する必要性を強調表示します。

寒天培地希釈法とディスク拡散テストを含む、最小発育阻止濃度 (MIC) テストは、抗生物質への抵抗を識別する標準的な検査として使用されています。それにもかかわらず、マイクのテストは、生体内で細菌の抗生物質耐性を反映している場合は明らかです。抗生物質の殺菌濃度の存在下で細菌の生存に貢献する細菌バイオ フィルムの形成: マイクのテストはこの効果11を検出することができるではないです。我々 はその抗生物質仮説 GC は、粘膜の表面12バイオ フィルムを形作ることができる、ため凝集感受性は個人総合順位で見られると異なるでしょう。さらに、研究の 3 段階可変表面分子、Pili、不透明度関連タンパク質 (Opa)、異なった大きさで分類された骨材13,につながる細菌間の相互作用を調節する、lipooligosaccharides (ロサンゼルス)、示されています。14,15します。 適切な方法の不足のため抗生の抵抗をこれらのコンポーネントの貢献は検査されなかった。

現在、バイオ フィルム撲滅を測定するいくつかの方法があります。最も広く使用されている定量法は、クリスタル バイオレット染色16を用いたバイオマスの変化を測定することによってです。ただし、メソッドには、実験繰り返し17のエラー メッセージを生成することができます潜在的重要な実験操作が必要です。ここで使用されるライブ/デッド染色法では、ライブとデッドの細菌とバイオ フィルム内の分布の可視化ことができます。しかし、バイオ フィルムの構造は、染料の浸透を軽減する物理的な障壁として提起できます。したがって、グループ内でのライブ/デッド細菌を定量化する染色するは、小さなバイオ フィルムまたはその前駆体 microcolonies または集計に限定されます。寒天培地希釈法とディスク拡散テストを含む他の方法は、凝集の効果を測定することは。必要両方が測定できる定量細菌を生きていると、その分布を可視化する理想的な方法抗菌薬曝露後の集計内で GC の感受性を調べる。

ここで説明する手順を組み合わせた ATP 使用率測定して GC 感受性抗生物質の存在下で凝集を目視で調べてライブ/死んで染色定量的に分析します。

プロトコル

1 GC 系統の一般的なメンテナンス

  1. 淋菌株を連勝 GCK 1% 寒天培地にケロッグ サプリメント18 (表 1、表 2) 冷凍庫株からと 5% CO2 16 18 h. 使用 MS11 相変数 Opa (MS11Opa +)、ない Opa (MS11ΔOpa) を表現するために 37 ° C の孵化または切り捨てられたロス (MS11ΔLgtE)。
  2. Pili 負 (コロニー暗い縁なし) または解剖顕微鏡および新しい GCK プレート上に連勝を使用してコロニー形態19に基づいて各株から正 (暗いエッジを持つコロニー) 植民地を慎重に選択します。
  3. 16-18 時間使用する前に 5% CO2と 37 ° C で孵化させなさい。

2 GC の集計の生存率の定量化

  1. 滅菌アプリケータを使用して GC を収集します。綿棒プレートから GC と予め温めておいたスープ (GCP、表 3) で再停止 GC は 1% 4.2% NaHCO3とケロッグ ソリューション18を補った。650 の波長での吸光光度法を使用して nm (1 の OD650 = ~ 109 CFU/mL x 1) 浮遊菌の濃度を決定します。
  2. 1 ~ 10 x に GC の濃度を調整する8 CFU/mL。
  3. 96 ウェル プレートのウェルに調整された GC の懸濁液の 99 μ L を追加します。
  4. 細菌を許可する 5% CO2と 37 ° C で 6 時間プレートをインキュベート集計します。
  5. シリアル希薄セフトリアキソンの 1 μ L を追加 (1000、100、50、25、12.5、6.2、3.1、1.5、0.8、0.4 0.2 μ G/ml) を各ウェルに。未処理のコントロールとして機能するいくつかの井戸を残します。
  6. 5% CO2と 37 ° C で 24 時間のプレートを孵化させなさい。
  7. 3 回 5 144 W で s と 20 kHz の各ウェルの懸濁液を超音波照射します。
  8. 各ウェルに 100 μ L 市販 ATP 利用グロー試薬を追加、ピペットを- と 3 回にダウンし、5% CO2と 37 ° C で 15 分間インキュベートします。
  9. 慎重に各ウェルから黒 96 ウェル マイクロ プレートで新しい井戸に 150 μ L の混合物を転送し、気泡を導入することを避けるため。
  10. 560 で各ウェルの吸光度を測定プレート リーダーを使用して nm。
  11. 未処理井戸からの読み取り中にシリアル セフトリアキソン治療後に得られる読書の割合によって生存率を計算します。

3. 蛍光顕微解析 GC 骨材のライブ/デッド

  1. 滅菌アプリケータを使用して GC を収集します。プレートから綿棒 GC と予め温めておいた GCP メディア プラス 1% で再停止 GC ケロッグのサプリメントします。
  2. 650 の波長吸光光度法による細菌数を決定する nm 〜 10 x 1 GC の濃度を調整し、7 CFU/mL。
  3. 8 ウェル coverslip 下部チャンバ内に GC を懸濁液の 198 μ L を追加します。
  4. 商工会議所集約の形成を許可する 5% CO2と 37 ° C で 6 時間孵化させなさい。
  5. 各集計条件の中を各ウェルにセフトリアキソン (100 μ g/mL または様々 な希釈液) の 2 μ L を追加します。5% CO2と 37 ° C で希望の時間孵化させなさい。
  6. 各ウェルに生きる/デッド染色溶液の 0.6 μ L を追加し、5% CO2と 37 ° C で 20 分間インキュベートします。
  7. (相当顕微鏡を使用することができます)、共焦点顕微鏡を用いた Z シリーズ画像を取得します。
  8. GC の骨材とライブに死者染色各集計の蛍光強度比 (FIR) 径計測の ImageJ ソフトウェアを使用して画像を分析します。

4. 画像解析

  1. 細菌の集合体のサイズの推定。
    1. ImageJ、ImageJ メニュー バーに raw イメージ ファイルをドラッグして、イメージを開きます。
    2. ImageJ メニュー バーでフリーハンドの線をクリックし、サークルのイメージで各集計の領域。
    3. [分析 |メジャー ImageJ のメニュー バーにします。
    4. 分野] 列の下で新しいウィンドウの番号を取得します。
  2. 集計のライブに死者率の定量化
    1. ImageJ、ImageJ メニュー バーに raw イメージ ファイルをドラッグして、イメージを開きます。
    2. [分析 |測定を設定ImageJ のメニュー バーにします。
    3. ポップアップ ウィンドウに統合された密度を確認し、 [ok]をクリックします。
    4. 画像をクリックして |カラー |チャンネルはツールメニュー バーの色を選択します。
    5. 生きたバクテリア染色用蛍光としてチャネル 1を確認します。
    6. ImageJ メニュー バーでフリーハンドの線をクリックし、サークルの各集計の領域。
    7. [分析 |メジャー ImageJ のメニュー バーにします。
    8. [ IntDen ] 列の数を取得します。
    9. 死んだ細菌染色用蛍光としてチャネル 2を確認してください。4.2.6-4.2.8 の手順を繰り返します。
    10. 4.2.8 のステップからステップ 4.2.9 から番号の数で割ってライブに死者比率を取得します。
  3. 統計解析
    1. グラフパッド プリズムを開き、目的の列に ImageJ から得られた数字を入力します。
    2. 分析] をクリックし、列の解析でt 検定を選択します。
    3. 比較の目的の列を確認し、 [ok]をクリックします。
    4. 解析ウィンドウの下の P 値を取得します。
    5. 4.3.3 のステップからXY 分析の下で線形回帰を選択します。
    6. R 二乗と [解析] ウィンドウの下のP 値を取得します。

結果

2 つの方法を用いて: atp 利用と生きる/デッド染色法。結果は結合または、個別に集計内抗生物質治療後の生存細菌を検査するため使用できます。黄色ブドウ球菌のバイオ フィルム20,21正確に生菌数を測定する atp 利用を示されています。ここでは、抗生物質感受性で GC 集合の役割を調べる MS11Opa + ピル + ひずみが使用...

ディスカッション

細菌は、人間の体の感染時にバイオ フィルムを形成できます。従来のマイクのテストでは、バイオ フィルム中の細菌を根絶するために必要な濃度を表さない場合があります。バイオ フィルムに抗菌薬の効果をテストするため CFUs のめっきと同様にバイオ フィルムのバイオマスに基づくメソッドがバイオ フィルムの構造の影響により誤ったことができます。たとえば、めっき法は、バイオ ?...

開示事項

著者が明らかに何もありません。

謝辞

この作品は、D.C.S. と W.S. AI123340 に国立衛生研究所からの助成金によって支えられました。J.W.、l. c. w. a. c.、e. n. がパーツ/メリーランド大学によって資金を供給された「初年度イノベーション & 研究体験」プログラムに参加でサポートされていたとします。資金提供者を発行し、研究デザイン、データ収集、分析、決定または原稿の準備で役割がなかった。我々 はすべての顕微鏡実験のため UMD CBMG イメージング コアを認めます。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
100x Kellogg's supplement
AgarUnited States BiologicalA0930
BacTiter Assay PromegaG8232
CeftriaxoneTCIC2226
Difco GC medium base BD228950
Ferric nitrate, nonahydrate Sigma-Aldrich254223-10G
GlucoseThermo Fisher ScientificBP350-1
L-glutamine Crystalline PowderFisher ScientificBP379-100
BacLight live/dead stainingInvitrogenL7012
MS11 Neisseria gonorrhoeae strainkindly provided by Dr. Herman Schneider, Walter Reed Army Institute for Research
Potassium phosphate dibasic (K2HPO4)Fisher ScientificP290-500
Potassium phosphate monobasic (KH2PO4)Fisher ScientificBP329-1
Proteose Peptone BD Biosciences211693
Sodium chloride (NaCl)Fisher ScientificS671-10
Soluble StarchSigma-AldrichS9765
Thiamine pyrophosphateSigma-AldrichC8754-5G
Equipment
Petri DishesVWR25384-302
8-well coverslip-bottom chamber Thermo Fisher Scientific155411
96-well tissue culture plates Corning, Falcon3370
Biosafety Cabinet (NU-425-600 Class II, A2 Laminar Flow Biohazard Hood)Nuaire32776
CO2 IncubatorFisher Scientific Model 3530
Confocal microscope equipped with live imaging chamberLeicaSP5X
Corning  96 Well Black Polystyrene Microplate Corning3904
Glomax Illuminator PromegaE6521
Pipette tips (0.1-10 µL)Thermo Fisher Scientific02-717-133
Pipette tips (1000 µL)VWR83007-382
Pipette tips (200 µL)VWR53509-007
Spectrophotometer Ultrospec 2000 UVPharmacia Biotech80-2106-00
Sterile 15 ml conical tubesVWR21008-216
Sterile Microcentrifuge Tubes (1.7 mL)Sorenson BioScience16070
Sterile polyester-tipped applicatorsFisher Scientific23-400-122
SonicatorKontesEquivelent to 9110001

参考文献

  1. den Heijer, C. D., et al. A comprehensive overview of urogenital, anorectal and oropharyngeal Neisseria gonorrhoeae testing and diagnoses among different STI care providers: a cross-sectional study. BMC Infectious Diseases. 17 (1), (2017).
  2. Hein, K., Marks, A., Cohen, M. I. Asymptomatic gonorrhea: prevalence in a population of urban adolescents. The Journal of Pediatrics. 90 (4), 634-635 (1977).
  3. Hananta, I. P., et al. Gonorrhea in Indonesia: High Prevalence of Asymptomatic Urogenital Gonorrhea but No Circulating Extended Spectrum Cephalosporins-Resistant Neisseria gonorrhoeae Strains in Jakarta, Yogyakarta, and Denpasar, Indonesia. Sexually Transmitted Diseases. 43 (10), 608-616 (2016).
  4. Chlamydia, W. H. O. Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae, syphilis and Trichomonas vaginalis. Methods and results used by WHO to generate 2005 estimates. World Health Organisation, 2011. Prevalence and incidence of selected sexually transmitted infections. World Health Organisation. , (2011).
  5. Mayor, M. T., Roett, M. A., Uduhiri, K. A. Diagnosis and management of gonococcal infections. American Family Physician. 86 (10), 931-938 (2012).
  6. Alirol, E., et al. Multidrug-resistant gonorrhea: A research and development roadmap to discover new medicines. PLOS Medicine. 14 (7), (2017).
  7. Workowski, K. A., Bolan, G. A. Sexually transmitted diseases treatment guidelines, 2015. MMWR Recommendations and Reports. 64, 1-137 (2015).
  8. Lahra, M. M., et al. Cooperative Recognition of Internationally Disseminated Ceftriaxone-Resistant Neisseria gonorrhoeae Strain. Emerging Infectious Diseases. 24 (4), (2018).
  9. Wi, T., et al. Antimicrobial resistance in Neisseria gonorrhoeae: Global surveillance and a call for international collaborative action. PLOS Medicine. 14 (7), 1002344 (2017).
  10. Singh, S., Singh, S. K., Chowdhury, I., Singh, R. Understanding the Mechanism of Bacterial Biofilms Resistance to Antimicrobial Agents. Open Microbiology Journal. 11, 53-62 (2017).
  11. Greiner, L. L., et al. Biofilm Formation by Neisseria gonorrhoeae. Infection and Immunity. 73 (4), 1964-1970 (2005).
  12. Zollner, R., Oldewurtel, E. R., Kouzel, N., Maier, B. Phase and antigenic variation govern competition dynamics through positioning in bacterial colonies. Scientific Reports. 7 (1), (2017).
  13. Stein, D. C., et al. Expression of Opacity Proteins Interferes with the Transmigration of Neisseria gonorrhoeae. across Polarized Epithelial Cells. PLoS One. 10 (8), 0134342 (2015).
  14. LeVan, A., et al. Construction and characterization of a derivative of Neisseria gonorrhoeae strain MS11 devoid of all opa genes. Journal of Bacteriology. 194 (23), 6468-6478 (2012).
  15. Merritt, J. H., Kadouri, D. E., O'Toole, G. A. Growing and analyzing static biofilms. Curr Protoc Microbiol. , (2005).
  16. Peeters, E., Nelis, H. J., Coenye, T. Comparison of multiple methods for quantification of microbial biofilms grown in microtiter plates. Journal of Microbiological Methods. 72 (2), 157-165 (2008).
  17. White, L. A., Kellogg, D. S. Neisseria Gonorrhoeae Identification in Direct Smears by a Fluorescent Antibody-Counterstain Method. Journal of Applied Microbiology. 13, 171-174 (1965).
  18. Swanson, J., Kraus, S. J., Gotschlich, E. C. Studies on gonococcus infection. I. Pili and zones of adhesion: their relation to gonococcal growth patterns. Journal of Experimental Medicine. 134 (4), 886-906 (1971).
  19. Herten, M., et al. Rapid in Vitro Quantification of S. aureus Biofilms on Vascular Graft Surfaces. Frontiers in Microbiology. 8, 2333 (2017).
  20. Gracia, E., et al. In vitro development of Staphylococcus aureus biofilms using slime-producing variants and ATP-bioluminescence for automated bacterial quantification. Luminescence. 14 (1), 23-31 (1999).
  21. Webb, J. S., et al. Cell death in Pseudomonas aeruginosa biofilm development. Journal of Bacteriology. 185 (15), 4585-4592 (2003).
  22. Jurcisek, J. A., Dickson, A. C., Bruggeman, M. E., Bakaletz, L. O. In vitro biofilm formation in an 8-well chamber slide. Journal of visualized experiments. (47), (2011).
  23. Wang, L. C., Litwin, M., Sahiholnasab, Z., Song, W., Stein, D. C. Neisseria gonorrhoeae Aggregation Reduces Its Ceftriaxone Susceptibility. Antibiotics (Basel). 7 (2), (2018).
  24. Lebeaux, D., Ghigo, J. M., Beloin, C. Biofilm-related infections: bridging the gap between clinical management and fundamental aspects of recalcitrance toward antibiotics. Microbiology and Molecular Biology Reviews. 78 (3), 510-543 (2014).
  25. Hall-Stoodley, L., et al. Towards diagnostic guidelines for biofilm-associated infections. FEMS Immunology and Medical Microbiology. 65 (2), 127-145 (2012).

転載および許可

このJoVE論文のテキスト又は図を再利用するための許可を申請します

許可を申請

さらに記事を探す

144

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

個人情報保護方針

利用規約

一般データ保護規則

お問い合わせ

図書館への推薦

JoVE ニュースレター

研究

教育

著者

図書館員

JoVEについて

Copyright © 2023 MyJoVE Corporation. All rights reserved