精巣上体白色脂肪組織を用いた脂肪被覆膵島移植

要約

この脂肪で覆われた膵島移植法は、腹腔内に生着した膵島の検出に適しています。特に、それは生体結合剤の使用または縫合を必要としない。

要約

膵島移植は、重度の糖尿病の細胞補充療法です。腹腔内腔は、典型的には、この手順の移植部位である。しかし、腹腔内膵島移植には、移植効果が低い、移植片の検出能力が難しい、移植後分析のための移植片切除能力の欠如など、いくつかの制限があります。本論文では、精巣上体の白色脂肪組織を利用した腹腔内膵島移植法「脂肪で覆われた膵島移植」を用いて、バイオエンジニアリングされた膵島の治療効果を評価します。この方法の単純さは、精巣上体の白色脂肪組織に膵島を播種し、その組織を使用して膵島を覆うことにあります。この方法は腹腔内膵島移植技術に分類できるが、脂肪内組織膵島移植と特徴がある。脂肪で覆われた膵島移植法は、脂肪内組織膵島移植よりも強力な治療効果を示しますが、血糖値と血漿インスリン値の改善、移植片除去の可能性などが含まれます。白色脂肪組織への膵島生着のメカニズムとバイオエンジニアリングされた膵島の治療効果を評価するために、この方法の採用をお勧めします。

概要

膵島移植は、重度の糖尿病患者に対する細胞補充療法です。最近の報告によると、移植後3年後のインスリン非依存性の割合は最大44%1に改善し^、 合計60万を超える膵島を投与されたレシピエントの約80%がインスリン非依存性を達成しています²。さらに、最新の共同膵島移植レジストリレポートでは、膵島移植のみを受けた患者の70%以上で、空腹時血糖値が5年間にわたって60〜140 mg / dLに維持されていることが明らかになりました。この研究では、膵島移植単独または腎臓移植後に膵島移植を受けた患者の約90%が、5年以上にわたって重度の低血糖イベントを発症しなかったことも判明しました³。

この治療の臨床成績は改善していますが、最適な移植部位を確立する必要性など、いくつかの制限に対処する必要があります。肝臓は、大量の膵島を収容できる最大の臓器であるため、臨床膵島移植の典型的な移植部位です。ただし、一部の患者では、肝臓が利用できないため(例:.、門脈圧亢進症、肝炎、および/または肝硬変⁴)、したがって、腎嚢下腔^5,6、大網袋7,8,9,10、腸間膜11、胃腸管12、骨格筋13、皮下組織13、骨髄14、および脾臓¹⁵を含む他の部位,^16,17は、代替移植部位として考えられている。

局所麻酔下で腹腔内移植が容易に行えるため、腹腔内腔は臨床膵島移植の魅力部位であるが、移植時には膵島が腹腔全体に分散するため、膵島生着の検出や生着確認の成功が困難である。したがって、腹腔内腔は理想的な臨床移植部位として広く認識されていません。代わりに、移植されたカプセル化^された18 およびバイオエンジニアリングされた膵島¹⁹の有効性を調査するための前臨床試験の対照モデルとして頻繁に利用される。しかし、バイオエンジニアリングされた膵島と対照膵島の正確な比較は、正確な生着評価を行う上での課題のために達成することは困難です。

対照的に、大網ポーチ⁸、腸間膜、およびその他の肝外位置における腹腔内白色脂肪組織の使用は十分に報告されており¹⁰、^20、21、²²、^23、および白色脂肪組織を使用して移植されたバイオエンジニアリングされた膵島の機能を調査する多くの研究は、有望な治療結果を報告することができました^20、24、^25、26.精巣上体脂肪組織を用いることで移植膵島の検出が容易になるため、腹腔内移植の限界を克服するために精巣上体脂肪組織を利用した「脂肪被覆膵島移植法」が開発されました。本稿では、精巣上体脂肪組織を用いた脂肪被覆膵島移植について述べる。

プロトコル

次の手順は、3 つの手順で実行されます。第1段階は、レシピエントマウスにおける糖尿病の誘導およびドナー膵島の単離を含む。第二段階は移植前の膵島の準備を含みます。第3工程では、精巣上体脂肪組織への膵島移植と、脂肪組織を用いた膵島の被覆を行う。その後、治療効果を評価した。本研究で実施したマウスの取り扱いおよび実験手順は、「実験動物管理の原則」(実験動物の管理と使用に関するガイド、国立衛生研究所発行第8^版、2011年)に準拠しており、実験プロトコルは福岡大学動物管理使用委員会によって承認されました(承認番号: 186018).

1.手術の準備

1. 糖尿病の誘発:0.1Mクエン酸緩衝液(180 mg / kg体重)に調製した18 mg / mLストレプトトシン溶液を静脈内注射することにより、体重20〜25 g、8〜12週齢のレシピエントオスマウスに糖尿病を誘発します。.血糖値が400 mg / dLを超えるマウスは糖尿病と見なされます。糖尿病誘発後1週間以内に膵島を覆うために精巣上体白色脂肪組織の過度の萎縮の前に糖尿病マウスを使用する。
2. 膵島分離:後藤の膵島分離法²⁷ に従って、移植の1日前にマウス膵島分離を行います。
3. 簡単に説明すると、コラゲナーゼ溶液を用いて膵臓組織を消化する。適切な細胞分離溶液を用いた密度勾配遠心分離により膵島を単離する。その後、22°Cおよび5%_CO2のインキュベーター内で膵島を一晩培養した(<37°Cでの培養は^膵島死を予防することが報告されている²⁸、^29、30、31)。
   注意: 精製された膵島培養物は安全キャビネットで取り扱ってください。膵島の分離と培養に使用するすべての溶液を0.22 μmのフィルターを使用してフィルター滅菌します。

2.移植用膵島の準備

1. 図1Aに示すように、適切な機器と材料を収集します。
2. アミラーゼやリパーゼなどの消化酵素は、単離および移植された膵島に損傷を与える可能性があり、培養皿内の汚染された線維組織に閉じ込められることで膵島が失われる可能性があるため、移植前に、鉗子を使用して、腺房組織や線維組織を含む膵臓から余分な膵島成分を手で摘み取ります(図1B)。 解剖顕微鏡下。ピッキング後、セルストレーナーを使用して単一の腺房細胞をろ過します。
3. ろ過した膵島を、プラスチックへの膵島付着を防ぐためにウシ血清またはアルブミンを添加した適切な培地または緩衝液(低グルコースを含むDMEM、RPMI1640、CMRL1066、またはHBSSなど)を含む新しい培養皿に移し、皿を旋回させて膵島を皿の中央に配置します(図1C)。P200マイクロピペットと顕微鏡を使用して、個々の膵島を適切な収集チューブにピックします(図1D)。
4. 新しい40 μmのセルストレーナーを50 mLプラスチックチューブの上に置き(図1E左と中央)、フィルターを新しい培地で洗浄します(図1E右)。
5. 1000 μLのピペットを使用して膵島をストレーナーに加え、膵島と単一の腺房細胞を分離します(図1 F1および図1F2)。
   注:セルストレーナーの精製された膵島は、約100%純粋です。
6. 鉗子を使用して、培養培地またはウシ血清またはアルブミンを添加した適切な緩衝液を含む新しい60mmまたは100mmサイズの未処理培養皿でストレーナーを反転させます(図1 F3および図1F4)。新鮮な培地/バッファーを使用して、膵島を新しい培養皿に洗い流します。次に、約20 mLの総容量に達するのに十分な培地/バッファーを培養皿に追加します。
7. 顕微鏡下で膵島を数え、ドナー動物の数に応じて、個々の1.5 mLプラスチック遠心チューブ間で膵島の数を均等に分割します(図1G)。例えば、2匹のマウスからの200個の100〜200μmの膵島当量(IEQ)が2本のチューブのそれぞれに追加されます。
8. 膵島を室温で1分以内に2,100 x gで遠心分離し、上清を廃棄します。通常、約20〜30μLの残留溶液がチューブ内に残ります(図1H)。

3.精巣上体脂肪組織への膵島移植と精巣上体白色脂肪組織による被覆

1. 手術の前に、小動物用の麻酔器、実体顕微鏡、光源、200 μLのマイクロピペットチップを備えた50-200 μLのマイクロピペット、綿棒、4-0縫合セット、および消毒された手術器具を収集します(図2A)。クーパーはさみ、眼科用はさみ、ピーン鉗子、ピンセット、および針ホルダーをオートクレーブします。オートクレーブ処理後、装置を1%ポビドンヨード溶液に浸します(図2A)。精巣上体の白色脂肪組織の動員および出血の場合の止血のために綿棒を使用してください。膵島移植には、50〜200μLのチップが付いたマイクロピペットを使用してください。
2. 吸入麻酔薬(酸素中の2%イソフルラン)を使用して糖尿病レシピエントマウスに麻酔を送達する。眼科用潤滑剤を両眼に塗布し、乾燥を防ぎます。次に、マウスを仰臥位に置き(図2B左)、バリカンや脱毛クリームを使用して感染を防ぐために腹部から毛を取り除きます。少なくとも3ラウンドのポビドンヨード溶液とそれに続く70%エタノールを交互に使用して、腹部と鼠径部を消毒します(図2B右)。手術の前に、つま先のピンチ反射がないことで麻酔の深さを確認します。加熱パッドを使用して術中の熱サポートを提供し、外科用ドレープを使用して無菌手術領域を固定します。
3. 中央下部の皮膚を切開します(図2C左)。長さ約2cmの皮膚切開をお勧めします。Pean鉗子(非外傷性鉗子または開創器も使用できます)で左腹壁をクランプし、組織をマウスの左側に引っ張って手術野を固定します(図2C右)。開腹後、麻酔維持のためにイソフルランの割合を1.0〜1.5%に減らす。
4. 綿棒を使用して、小腸と大腸をマウスの右側(つまり、オペレーターの左側)に動員します。腹腔内の左精巣上体白色脂肪組織は左鼠径部に位置する。精巣上体の白色脂肪組織と左精巣を腹部の外側に動員し(図2D左)、組織を伸ばします(2D右)。
5. 200 μLのピペットチップを備えたP200マイクロピペットを使用して、採取時にチューブ内に膵島が残らないように注意しながら、穏やかなピペットで1.5 mLチューブから膵島の全容量を採取します(図2E左)。採取した膵島を重力によってピペットの先端に沈降させます(図2E右)。
6. マイクロピペットチップを膨張した脂肪組織に軽く置きます。先端の培地/バッファーが過度に洗い流されないように注意しながら、膵島を組織に慎重に播種します(図2F左)。播種後、解剖顕微鏡で膵島の正しい配置を確認します(図2F右)。
7. 精巣上体の白色脂肪組織で膵島を覆います(図2G)。縫合糸または生体結合剤の使用は必要ありません。
8. 左精巣を精巣上体の白色脂肪組織の下に置き、組織を腹腔に戻します(図2H)。4-0縫合糸を使用して、皮膚を2層(腹膜、次に筋肉、皮膚)で閉じます(ナイロンや吸収性縫合糸などの任意の縫合糸を使用できます)(図2I)。アセチルサリチル酸を注射します(300 mg / kg;SQ)術後鎮痛のための創傷の近く。次に、マウスをヒートランプの下に置き、完全に回復するまで監視します。

4. 膵島移植後のモニタリング(概要)

1. 血糖値、耐糖能試験、および術後(POD)の組織学的評価を監視することにより、膵島移植の治療効果を評価します28。
   1. 血糖値をモニターし、耐糖能試験での血糖値の測定を含めて、小型のグルコースメーターを使用する。
   2. 尾静脈から血液サンプル(数マイクロリットル)を収集します。組織学的評価では、免疫組織化学により回収した精巣上体脂肪組織の移植膵島からマウスインスリン(生着膵島検出用)とフォンビルブランド因子(血管検出用、膵島生着の証拠)を検出した。

結果

脂肪で覆われた膵島移植と腹腔内膵島移植後の移植効果を比較するために、対照レシピエント糖尿病動物の左傍結腸腔の腹膜に同数の膵島を移植した。脂肪で覆われた膵島移植マウスの血糖値は、腹腔内膵島移植マウスと比較して徐々に有意に低下することが観察されました(p = 0.0023; 図3A)。移植後1ヶ月で、脂肪で覆われた膵島移植マウスの血糖値は、腹腔内ブドウ糖?...

ディスカッション

脂肪で覆われた膵島移植法は、腹腔内膵島移植と脂肪内組織膵島移植の2つの異なる移植技術の技術を取り入れています。精巣上体白色脂肪組織の表面膜は腹膜で覆われ、精巣上体に付着している白色脂肪組織であると考えられることから、脂肪で覆われた膵島移植法は腹腔内膵島移植の一種として解剖学的に分類することができる。しかしながら、膵島がレシピエント動物に送達される技術...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
4-0 Nylon	Alfresa	ER2004NA45-KF2	Closing abdomen
Alexa 488-conjugated donkey anti-guinea pig	Jackson Immunoresearch	706-546-148	Secondary antibody for insulin antibody
Alexa 647-conjugated donkey anti-rabbit	Jackson Immunoresearch	711-606-152	Secondary antibody for von Willebrand factor antibody
DMEM, low glucose, pyruvate	ThermoFisher Scientific	11885084	Culturing islets, transplanting islets
Eosin	Fujifilm Wako Chemicals	051-06515	Using for staining tissue by eosin
Eppendorf Safe-Lock Tubes, 1.5 mL	Eppendorf	30120086	Collecting islets
Falcon 15 mL Conical Centrifuge Tubes	Corning	352095	Collecting islets
Falcon 40 µm Cell Strainer	Falcon	352340	Using for separating islets from other pancreatic tissue
Falcon 50 mL Conical Centrifuge Tubes	Corning	352070	Discarding excessive medium/buffer
Guinea pig anti-insulin	Agilent Technologies Japan, Ltd. (Dako)	IR002	Primary antibody for murine insulin
Hematoxylin	Muto Pure Chemicals Co., Ltd.	30002	Using for staining tissue by hematoxylin
Isodine solution 10%	Shionogi&Co., Ltd.	no catalog number	Using for disinfection
Isoflurane	Fujifilm Wako Chemicals	095-06573	Using for anesthesia
Labcon 1000 µL ZapSilk Low Retention Pipette Tips	Labcon	1177-965-008	Using for separating islets from other pancreatic tissue
Labcon 200 µL ZapSilk Low Retention Pipette Tips	Labcon	1179-965-008	Using for seeding islets onto epididymal white adipose tissue
Mintsensor	Sanwa Kagaku Kenkyusho Co. Ltd.,	8AEB02E	Using for monitoring blood glucose
Pipetteman P-1000	Gilson	F123602	Using for separating islets from other pancreatic tissue
Pipetteman P-200	Gilson	F123601	Using for seeding islets onto epididymal white adipose tissue
Rabbit anti-vWF	Abcam	ab6994	Primary antibody for murine von Willebrand factor