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アクトミオシンの収縮性は、細胞および組織の形態形成において重要な役割を果たす。しかし、 生体内で アクトミオシンの収縮性を鋭く操作することは困難である。このプロトコルは、 ショウジョウバエ 胚におけるRho1を介したアクトミオシン収縮性を迅速に阻害する光遺伝学的システムを記述し、 in vivoでのアクトミオシンの不活性化後の上皮張力の即時喪失を明らかにしています。
アクチンおよび非筋肉ミオシンIIによって生成される収縮力(「アクトミオシン収縮性」)は、細胞分裂、細胞遊走、上皮折り畳み、分岐形態形成など、複数の長さスケールでの細胞および組織の形態学的変化にとって重要です。形態形成におけるアクトミオシン収縮性の役割を深く理解するには、従来の遺伝学的または薬理学的アプローチでは達成が困難なアクトミオシンの迅速な不活性化を可能にするアプローチが必要です。提示されたプロトコルは、CRY2-CIBNベースの光遺伝学的二量体化システムであるOpto-Rho1DNを使用して、ショ ウジョウバエ 胚のアクトミオシン収縮性を阻害し、正確な時間的および空間的制御を行うことを実証しています。このシステムでは、CRY2はドミナントネガティブ型のRho1(Rho1DN)に融合し、CIBNは原形質膜に固定されています。CRY2とCIBNの青色光を介した二量体化は、細胞質から原形質膜へのRho1DNの急速な移行をもたらし、内因性Rho1を阻害することによってアクトミオシンを不活性化します。さらに、この記事では、ショウ ジョウバエ 腹側溝形成中の上皮張力の生成におけるアクトミオシンの役割を調査するために、Opto-Rho1DNを介したアクトミオシンの不活性化とレーザーアブレーションを組み合わせるための詳細なプロトコルを紹介します。このプロトコルは、ショ ウジョウバエ 胚におけるアクトミオシン収縮性を含む他の多くの形態学的プロセスに最小限の修飾で適用することができる。全体として、この光遺伝学的ツールは、動的組織リモデリング中の組織力学の制御におけるアクトミオシン収縮性の機能を分析するための強力なアプローチです。
アクトミオシンの収縮性は、非筋ミオシンII(以下、ミオシン)がF-アクチンネットワークに及ぼす収縮力であり、細胞の形状を変化させ、組織レベルの形態形成を促進する上で最も重要な力の1つです1,2。例えば、上皮細胞の頂端ドメインにおけるアクトミオシン収縮性の活性化は、頂端狭窄をもたらし、これは、上皮折り畳み、細胞押し出し、層間剥離、および創傷治癒を含む様々な形態形成プロセスを促進する3,4,5,6,7 .ミオシンの活性化は、その調節軽鎖のリン酸化を必要とする。この修飾は、ミオシン分子の阻害的立体配座を緩和し、それらが両端に複数のヘッドドメインを有する双極性ミオシンフィラメントバンドルを形成することを可能にする。バイポーラミオシンフィラメントは、アクチンフィラメントの反平行運動を駆動し、収縮力の生成をもたらします1,8,9。<....
1.遺伝子交配の設定と採卵カップの準備
頂端狭窄を受けた無刺激胚では、Sqh-mCherryは腹側中胚葉細胞の中頂部で濃縮されたのに対し、CRY2-Rho1DN-mCherryは細胞質ゾルであった(図1A)。狭窄領域内でのレーザーアブレーションは、A-P軸に沿った急速な組織反動をもたらしました(図1B、C)。刺激された胚では、CRY2-Rho1DN-mCherryシグナルは原形質膜に局在するようになりましたが、Sqh-mCherr.......
このプロトコルは、アクトミオシン収縮性の不活性化直後の組織張力の変化をプローブするためのオプトジェネティクスとレーザーアブレーションの併用について説明しました。ここで説明する光遺伝学的ツールは、Rho1(Rho1DN)のドミナントネガティブ型を利用して、内因性Rho1およびRho1依存性アクトミオシン収縮性を急激に阻害します。ショウジョウバエ腹側溝形成の文脈におけるOpto-.......
著者らは、この研究は、潜在的な利益相反と解釈される可能性のある商業的または金銭的関係がない状態で実施されたと宣言しています。
著者らは、画像のサポートについてAnn Lavanwayに感謝しています。著者らは、試薬を共有してくれたヴィーシャウス研究所とデ・レンツィス研究所、フライストックについてブルーミントンショウジョウバエストックセンターに感謝しています。この研究は、NIGMS ESI-MIRA R35GM128745および米国癌協会機関研究助成金 #IRG-82-003-33からBHの支援を受けています。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
35 mm glass-bottom dish | MatTek | P35G-1.5-10-C | Used for sample preparation |
60 mm × 15 mm Petri dish with lid | Falcon | 351007 | Used for sample preparation |
Black cloth for covering the microscope | Online | NA | Used to avoid unwanted light stimulation |
Clorox Ultra Germicadal Bleach (8.25% sodium hypochlorite) | VWR | 10028-048 | Used for embryo dechorination |
CO2 pad | Genesee Scientific | 59-114 | Used for cross set-up |
ddH2O | NA | NA | Used for sample preparation |
Dumont Style 5 tweezers | VWR | 102091-654 | Used for sample preparation |
Eyelash tool (made from pure red sable round brush #2) | VWR | 22940-834 | Used for sample preparation |
FluoView (Software) | Olympus | NA | Used for image acquisition and optogenetic stimulation |
Halocarbon oil 27 | Sigma Aldrich | H8773-100ML | Used for embryo stage visualization |
ImageJ/FIJI | NIH | NA | Used for image analysis |
MATLAB | MathWorks | NA | Used for image analysis |
Nikon SMZ-745 stereoscope | Nikon | NA | Used for sample preparation |
Olympus FVMPE-RS multiphoton microscope with InSight DS Dual-line Ultrafast Lasers for simultaneous dual-wavelength multiphoton imaging, , a 25x/NA1.05 water immersion objective (XLPLN25XWMP2), and an IR/VIS stimulation unit for photo-activation/stimulation. This system is also equipped with a TRITC filter (39005-BX3; AT-TRICT-REDSHFT 540/25x, 565BS, 620/60M), and a fluorescence illumination unit that emits white light. | Olympus | NA | Used for image acquisition and optogenetic stimulation |
SP Bel-Art 100-place polypropylene freezer storage box (Black, light-proof box for sample transfer) | VWR | 30621-392 | Used to avoid unwanted light stimulation |
UV Filter Shield for FM1403 Fluores (Orange-red plastic shield) | Bolioptics | FM14036151 | Used to avoid unwanted light stimulation |
VITCHELO V800 Headlamp with White and Red LED Lights | Amazon | NA | Used to avoid unwanted light stimulation |
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