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要約

不均一なヒトUC-MSCを構成する3つの主要なサブグループの1つであるBAMBIMFGE8 MSCの単離は、このサブタイプの特性と機能を完全に理解するために役立ち、特定の疾患における臨床効果を改善するための将来の応用に役立ちます。ここでは、BAMBIの高MFGE8 UC-MSCの選別方法を紹介します。

要約

臍帯由来間葉系間質間質/幹細胞(UC-MSC)は、さまざまな疾患の治療に低い免疫原性と強力な免疫調節効果を示します。ヒトUC-MSCは、細胞形状、増殖速度、分化能力、免疫調節機能が異なる3つの主要な亜集団からなる不均一な集団です。以前、UC-MSCから単離に成功した最初のサブグループであるBAMBIMFGE8 UC-MSCは、ループス腎炎を緩和できないことがわかりました。したがって、疾患の MSC 療法におけるこのサブグループの機能と根本的なメカニズムは不明のままです。このMSCサブグループの性質を完全に理解するには、BAMBIMFGE8 UC-MSCを分離し、その表現型、代謝、および機能の観点からさらに調査する必要があります。このプロトコルでは、ヒトUC-MSCからBAMBIMFGE8 亜集団を単離するための詳細な方法について説明します。UC-MSCの亜集団は、フローサイトメトリーソーティングにより、BAMBIとMFGE8の2つの表面マーカーで標識されます。単離された細胞を培養し、フローサイトメトリー分析によって検証します。BAMBIMFGE8 UC-MSCで発現する特異的遺伝子は、RT-qPCRによって同定されます。このプロトコルは、高効率で純粋な細胞ソーティングをもたらし、BAMBIMFGE8 UC-MSCのマーカープロファイルを説明しています。

概要

ヒト間葉系間質/幹細胞(MSC)は、骨細胞、脂肪細胞、軟骨細胞、およびその他の細胞型に分化することができる体細胞前駆細胞です1。MSCは最初に骨髄から単離され、臍帯、脂肪組織、およびその他の組織から広く由来します2。UC-MSCは容易に入手でき、免疫原性や免疫抑制効果が低いため、さまざまな疾患の治療のための臨床試験に広く適用されています3,4,5。MSC療法は疾患の治療に有望な可能性を示していますが、治療効果は個人間で一貫していません6。しかし、MSC療法が不安定な理由はまだ不明です。

分子の揺らぎ、形態、分化能力、および治療機能は、MSCの不均一性を構成します。いくつかの研究では、MSCが異なる機能を持つ亜集団を構成すると仮定し7,8、シングルセルRNAシーケンシング(scRNA-seq)9,10を通じてMSCの不均一性を調査しました。その結果、ヒトUC-MSCは特定のトランスクリプトーム特徴を持つ明確な亜集団を持っているのに対し、いわゆるMSC亜集団の単離に成功した研究はほとんどないことが明らかになりました。我々は以前に、scRNA-seqおよびバイオインフォマティクス解析により、ヒトUC-MSCをそのシグネチャーに従って3つのサブグループに解剖し、BAMBIMFGE8UC-MSC亜集団をさらに精製し、機能的に試験した11。しかし、このサブグループはループス腎炎を緩和することができませんでした。したがって、BAMBIMFGE8高MSCの治療効果を他の疾患でテストして、それらの真の機能を理解する必要があります。

このプロトコルでは、フローサイトメトリーによる蛍光活性化セルソーティング(FACS)を介してヒトUC-MSCからBAMBIMFGE8 サブグループを単離する方法と、BAMBIMFGE8 サブグループの特性について説明します。

プロトコル

本研究は、1989年のヘルシンキ宣言の原則に則り、南京大学医学部鼓楼病院の倫理委員会で承認されました(承認番号:202019701)。人間のへその緒は、自然分娩後に南京大学医学部の附属ドラムタワー病院の健康な母親から入手し、この作業での使用についてインフォームドコンセントを与えました。初代UC-MSCは、以前に報告されたようにヒトの臍帯から単離された11

1. 単離前のUC-MSCの培養と同定

  1. MSCが70〜80%のコンフルエンス(P0)に達したら、細胞をPBSで一度洗浄し、0.25%トリプシン-EDTAの1mLを37°Cで2分間加えます。 次に、9 mLの完全培地を加えてトリプシンを中和し、細胞懸濁液を15 mLの遠心チューブに移し、300 × g で5分間遠心分離して細胞を回収します。上清を捨て、適切な完全培地を添加して細胞を再懸濁します。各ディッシュの細胞を3つのT75フラスコ(P1)に移し、細胞インキュベーターで37°C、5%CO2で培養します。
  2. トリプシン化によりUC-MSCを2回継代した後、P3で、ステップ1.1で説明したのと同じステップで細胞を回収します。遠心分離後、上清を捨てます。細胞をFACS染色バッファー(2% FBSを含む1x PBS)に再懸濁し、カウントします。FACS染色バッファーを最終濃度5-10 × 106 細胞/mLまで加え、細胞懸濁液を氷上に保ちます。
  3. この細胞懸濁液のチューブあたり100 μLを異なる1.5 mLチューブに分配します。CD29、CD73、CD90、CD105、CD14、CD34、CD45、CD79、およびHLA-DR(すべて1:200)に対するアイソタイプコントロールとFACS抗体を細胞に4°Cで30分間添加します。
  4. 細胞をFACS染色バッファーで2回洗浄し、300 × gで5分間遠心分離します。上清を廃棄し、沈殿物を200 μLのFACS染色バッファーに再懸濁して、フローサイトメトリー分析を行い、MSCマーカーを同定します。

2. フローサイトメトリーによるBAMBI MFGE8 UC-MSCの単離

  1. BAMBIMFGE8UC-MSCsを単離する際に、UC-MSCを約5-10×106細胞の密度で培養します。細胞が丸い形態になり始めるまで、細胞を0.5 mM EDTAで5分間解離し、完全な培地を加えて細胞を15 mLのコニカルチューブに移し、細胞懸濁液を数回上下にピペットで動かして単一細胞懸濁液を調製します。10 μLの細胞懸濁液を使用して細胞をカウントし、採取した細胞の総数を計算します。細胞懸濁液を入れた円錐管を300 × gで5分間遠心分離し、細胞を回収します。
  2. 細胞を1 mLの完全培地に再懸濁し、最終濃度5〜10 ×10 6 細胞/mLまで戻し、細胞懸濁液を氷上に保ちます。
  3. 細胞を4本の1.5 mL微量遠心チューブ(ブランク細胞のみ;BAMBI標識細胞;MFGE8標識細胞;およびBAMBIおよびMFGE8標識細胞の両方)。
  4. 適切な濃度の一次抗体(MFGE8およびBAMBI、どちらも1:100)をチューブに添加し、混合し、細胞を室温で15分間インキュベートします。
  5. 標識した細胞を1x PBSで一度洗浄し、300×gで5分間遠心分離します。上清を捨てます。細胞を1 mLの完全培地に再懸濁し、標識蛍光二次抗体(ヤギ抗ウサギIgG H&L Alexa Fluor 488およびAlexa Fluor 647、すべて1:1,000)を細胞に添加し、混合し、細胞を室温で暗所で15分間インキュベートします。
  6. ステップ2.5で説明したように、標識した細胞を1x PBSで一度洗浄します。細胞を500 μLの完全培地に再懸濁し、70 μmの細胞ストレーナーでろ過して凝集物や破片を取り除き、濾液を15 mLチューブに移してフローサイトメトリーソーティングを行います。
  7. 抗体を添加せずにブランクセルチューブを泳動し(ネガティブコントロール)、前方散乱光(FSC)と側方散乱(SSC)を調整して、抗体染色でネガティブ集団のスケールをゲートします。
  8. 単一の抗体標識細胞チューブ(すなわち、MFGE8 + ヤギ抗ウサギIgG H&L Alexa Fluor 488、またはBAMBI+ヤギ抗ウサギIgG H&L Alexa Fluor 647)をゲーティングコントロールとして実行し、プロットのどこから陽性が始まるかを決定します。
  9. 実験用サンプルチューブを走らせて、BAMBIMFGE8高細胞集団 を選別し、回収します。
  10. 選別したBAMBIMFGE8MSCを24ウェルプレートに播種し、細胞インキュベーターで37°Cおよび5%CO2で細胞を培養します。
  11. 選別したBAMBIMFGE8MSCが2継代で増殖して十分な細胞を得たら、ステップ2.1〜2.9で説明したように、細胞を解離し、選別後の分析を実行して、フローサイトメトリーによって選別された細胞集団の純度を確保します。あるいは、採取した細胞の数が少なすぎる場合は、ヒトBAMBIおよびMFGE8の発現に対して従来の免疫蛍光法を用いて、選別した細胞の純度を調べます。

3. BAMBI MFGE8 MSCの特性評価

  1. 選別したBAMBIMFGE8MSCを12ウェルプレートで増殖させ、顕微鏡で細胞形態を調べ、未選別MSCと比較します。
    注:一般に、BAMBIの高MFGE8 細胞は、未分類のUC-MSCよりも速く増殖します。
  2. 12ウェルプレートで細胞が約90%コンフルエントになったら、細胞培養培地を吸引し、細胞を1x PBSで1回洗浄し、500 μLのRNA抽出試薬を細胞に加えます。プレートを室温(RT)で5分間ゆっくりと振ってください。
  3. 混合物をピペットで移し、RNaseおよびDNaseフリーのチューブに移します。100 μLのクロロホルムを加え、チューブにキャップをし、15秒間ボルテックスして混合物を激しく振とうします。次に、チューブをRTで3分間放置します。
  4. チューブを11,000 × g 、4°Cで15分間遠心分離します。
  5. 上部水層の約200μLを新しいチューブに移します。同量のイソプロパノールを加え、ピペットで数回上下に完全にピペットします。次に、混合物を室温で10分間放置します。
  6. 11,000 × g 、4°Cで15分間遠心分離します。 上清を捨てます。
  7. チューブ内のペレットに500μLの75%エタノールを加え、チューブを数回穏やかに反転させます。
  8. チューブを6,000 × g 、4°Cで5分間遠心分離します。 上清を捨てます。遠心分離を6,000 × gで10秒間1回繰り返し、残りの液体をピペットで慎重に吸引し、RTでチューブを乾燥させます。
  9. RNaseを含まない水10μLを加えてRNAペレットを溶解し、分光光度計を用いてRNA濃度を測定します。
  10. 製造元の指示に従って、最大1 μgの全RNAから一本鎖cDNAを合成します。
  11. qPCRキットを使用して、製造元の指示に従って遺伝子発現を検出および定量します。
    注:使用したDNAプライマーの配列を 表1に示します。

結果

図1は、ヒトUC-MSCの細胞表面マーカー発現プロファイルを示しています。培養MSCは、CD44、CD73、CD90、およびCD105の発現に対して強く陽性であり、CD14、CD34、CD45、CD79、およびHLA-DRの発現に対して陰性でした。BAMBIの高MFGE8MSCは、培養されたヒトUC-MSCから選別し、そのBAMBIおよびMFGE8の発現を3-4継代拡大した後、フローサイトメトリ?...

ディスカッション

このプロトコルは、ヒトUC-MSCからBAMBIMFGE8 亜集団を単離し、濃縮する方法を説明しています。この方法は、このMSCサブグループの形態、成長、および機能をさらに研究するために重要です。BAMBIMFGE8 細胞の単離を成功させ、高収率にするためには、いくつかのステップが不可欠です。

まず、考慮すべき最?...

開示事項

著者は、利益相反がないことを宣言します。

謝辞

この研究は、中国国家自然科学基金会(助成金第82271843号)の支援を受けました。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
0.6 mL microcentrifuge tubeCorning Axygen MCT-060-A
1.5 mL microcentrifuge tubesBeijing Labgic TechnologyMCT-001-150
100 mm cell culture dish Beijing Labgic Technology12311
12 well plateBeijing Labgic Technology11210
15 mL centrifuge tubeNanjing Vazyme Material TechnologyTCF00115
24 well plateBeijing Labgic Technology11310
50 mL centrifuge tubeNanjing Vazyme Material TechnologyTCF00150
5 mL Round-Bottom TubesCorningFALCON 352003
70 μm cell strainerFalcon352350Dilution: 1:1000
APC anti-human CD79a (Igα) AntibodyBioLegend333505581
Dilution: 1:200
APC/Cyanine7 anti-human CD73 (Ecto-5'-nucleotidase) AntibodyBioLegend344022G46-6
Dilution: 1:200
APC-Cy7 Mouse IgG1, κ Isotype ControlBD Bioscience557873MOPC-31C (Isotype Control)
Dilution: 1:200
BAMBI antibodyBiossbs-12418R
Brilliant Violet 510 anti-mouse/human CD44 AntibodyBioLegend1030445E10
Dilution: 1:200
Brilliant Violet 510 Rat IgG2b, κ Isotype Ctrl AntibodyBioLegend400646MOPC-21 (Isotype Control)
Dilution: 1:200
CD105 (Endoglin) Monoclonal Antibody  APCeBioscience17-1057-42HM47
Dilution: 1:200
Cell Counting Chamber SlidesShanghai QIUJINGXB-K-25
CentrifugeBeijing BAIYANGBY-320C
ChamQ Universal SYBR qPCR Master MixVazymeQ711-02
ChloroformXILONG Scientific13700908
DMEM/F-12 (1:1) basic (1x)GibcoC11330500BT
EDTA (0.5 M), pH 8.0, Rnase freeInvitrogenAM9260GDilution: 1:1000
Ethanol  XILONG Scientific12803405
Fetal Bovine Serum (FBS)Gibco10099-141C 
FITC Mouse Anti-Human CD34BD Bioscience555821IM7
Dilution: 1:200
FITC Mouse Anti-Human CD45BD Bioscience555482AD2
Dilution: 1:200
FITC Mouse Anti-Human HLA-DRBD Bioscience555811SN6
Dilution: 1:200
Flow CytometerBD BioscienceFACSAria™ III Cell SorterAria
FlowjoBD BioscienceV10
Gentle Cell Dissociation ReagentSTEMCELL Technologies100-0485
Goat Anti-Mouse IgG H&L (Alexa Fluor 488)abcamab150113HI30
Dilution: 1:200
Goat Anti-Rabbit IgG H&L (AlexaFluor 594)abcamab150080Dilution: 1:1000
HiScript II Q RT SuperMix for qPCR (+gDNA wiper)VazymeR223-01
Inverted MicroscopesNikonECLIPSE Ts2
Isopropyl AlcoholXILONG Scientific12802505
MFGE8 antibodyBiorbytorb388429Dilution: 1:100
MicrocentrifugeThermo Fisher ScientificFRESCO 21
Mouse IgG1 kappa Isotype Control APCeBioscience17-4714-42P3.6.2.8.1 (Isotype Control)
Dilution: 1:200
Mouse IgG1 kappa Isotype Control FITCeBioscience11-4714-42eBMG2b (Isotype Control)
Dilution: 1:200
Mouse IgG2b kappa Isotype Control FITCeBioscience11-4732-42RTK4530 (Isotype Control)
Dilution: 1:200
PBS (10x)Sangon Biotech (Shanghai)E607016-0500
PE-Cy5 Mouse Anti-Human CD90 BD Bioscience555597P3.6.2.8.1 (Isotype Control)
Dilution: 1:200
PE-Cy5 Mouse IgG1 κ Isotype ControlBD Bioscience550618
Penicillin-Streptomycin 100xCytivaSV30010Dilution: 1:100
Real-Time PCR SystemApplied Biosystems byThermo Fisher ScientificQ6
RNase-free waterQIAGEN129112
SpectrophotometerThermo Fisher ScientificNanoDrop One(840-317400)
Sterile micropipette tipsBeijing Labgic TechnologyDilution: 1:100
T75 cell culture flaskBeijing Labgic Technology13212A
Thermal CyclerApplied Biosystems byThermo Fisher ScientificVeriti
Tri reagentSigma AldrichT9424
Typsin-EDTA SolutionBio-Channel BiotechnologyBC-CE-005
Water-Jacketed CO2  IncubatorThermo Fisher Scientific3111

参考文献

  1. Liechty, K. W., et al. Human mesenchymal stem cells engraft and demonstrate site-specific differentiation after in utero transplantation in sheep. Nat Med. 6 (11), 1282-1286 (2000).
  2. Zhou, T., et al. Challenges and advances in clinical applications of mesenchymal stromal cells. J Hematol Oncol. 14 (1), 24 (2021).
  3. Xie, Z., et al. Tnf-alpha-mediated m(6)a modification of elmo1 triggers directional migration of mesenchymal stem cell in ankylosing spondylitis. Nat Commun. 12 (1), 5373 (2021).
  4. Mcguire, J. J., et al. Mesenchymal stem cell-derived interleukin-28 drives the selection of apoptosis resistant bone metastatic prostate cancer. Nat Commun. 12 (1), 723 (2021).
  5. Yuan, X., et al. Mesenchymal stem cell therapy induces flt3l and cd1c(+) dendritic cells in systemic lupus erythematosus patients. Nat Commun. 10 (1), 2498 (2019).
  6. Wang, D., et al. Umbilical cord mesenchymal stem cell transplantation in active and refractory systemic lupus erythematosus: A multicenter clinical study. Arthritis Res Ther. 16 (2), R79 (2014).
  7. Ortiz, L. A., et al. Mesenchymal stem cell engraftment in lung is enhanced in response to bleomycin exposure and ameliorates its fibrotic effects. Proc Natl Acad Sci U S A. 100 (14), 8407-8411 (2003).
  8. Phinney, D. G. Functional heterogeneity of mesenchymal stem cells: Implications for cell therapy. J Cell Biochem. 113 (9), 2806-2812 (2012).
  9. Wang, Z., et al. Single-cell transcriptome atlas of human mesenchymal stem cells exploring cellular heterogeneity. Clin Transl Med. 11 (12), e650 (2021).
  10. Chen, P., et al. Single-cell and spatial transcriptomics decodes wharton's jelly-derived mesenchymal stem cells heterogeneity and a subpopulation with wound repair signatures. Adv Sci (Weinh). 10 (4), e2204786 (2023).
  11. Chen, H., et al. Dissecting heterogeneity reveals a unique bambi(high) mfge8(high) subpopulation of human uc-mscs. Adv Sci (Weinh). 10 (1), e2202510 (2022).
  12. Tsuji, K., et al. Effects of different cell-detaching methods on the viability and cell surface antigen expression of synovial mesenchymal stem cells. Cell Transplant. 26 (6), 1089-1102 (2017).
  13. Lai, T. Y., et al. Different methods of detaching adherent cells and their effects on the cell surface expression of fas receptor and fas ligand. Sci Rep. 12 (1), 5713 (2022).
  14. Avinash, K., Malaippan, S., Dooraiswamy, J. N. Methods of isolation and characterization of stem cells from different regions of oral cavity using markers: A systematic review. Int J Stem Cells. 10 (1), 12-20 (2017).
  15. Galvao, I., et al. Rock inhibition drives resolution of acute inflammation by enhancing neutrophil apoptosis. Cells. 8 (9), 964 (2019).

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