著者は、フライブルク大学（CSに）医学部からドイツ学術振興SI-1281/4-1とBIOSにからの補助金によって支援を認める。

1。病原性抗体の作製注意：抗体は一晩0.1MグリシンpHは2.5から3（溶出バッファー）（ON）に格納されるべきではないとして精製と抗体の濃度は、同じ日に行われるべきである。 IgGのアフィニティー精製：免疫ウサギ血清25mlを使用します。 <ol><li> 4でONウサギ血清を融解℃で、20℃で1xPBS（バッファを実行している）と、それを1:1で混合し、10分間1260 xgでそれを遠心血清脂肪酸である場合には必要に応じて、ろ紙でろ過工程は、遠心分離後に含まれている場合があります。 </li><li>一方、G行列は1XPBSの10ベッドボリューム（ベッドボリューム=マトリックス容積（）バッファを実行している）でカラムを充填したタンパク質を洗う。 </li><li>カラムに希釈し、濾過した血清を適用して、室温（RT）でロッキングプラットフォーム上で1時間インキュベートする。 </li><li>フロースルー（FT）は50ミリリットルの小瓶チューブ内を収集します。濃度までそれを捨てないでくださいと精製IgGの力価が知られている。 </li><li> 1XPBSの5ベッドボリュームで行列を洗い、その間に溶出したIgG画分を収集するために50mlのFalconチューブを準備する。ピペット1ミリリットルのpH中和バッファー：各チューブの1MトリスpH 10（そうでなければ、収集する溶出液の量に対する1時20分TRIS緩衝液の割合）。 </li><li>カラムに0.1MグリシンpHは2.5から3と50 mlの画分（s）を収集してください。100〜150ミリリットルの溶出バッファーを適用する。 2〜3倍管を裏返して、pHを測定し、pHが7.2から7.4に達するまで中和バッファーを追加します。 </li><li> IgGの溶出液数滴を収集し、エタロンは280nmでODを測定するよう溶出緩衝液を用いて。 ODは&lt;0.1ストップ収集している場合。 </li><li>プロテインG行列を再生成し、製造元の指示に従って保管してください。 </li></ol>アミコン管と限外ろ過による濃縮： <ol><li> 15-20分を遠心分離することによって1XPBSとアミコンウルトラ（15ミリリットル/ 30KDa）限外濾過管を洗う4℃、3220×gでアミコンからFTを捨ててください。 </li><li> 3220 xgで25から30分間溶出したIgG画分、遠心15mlでAmiconsと4を埋める℃、遠心分離時間は常に溶出液のタンパク質含有量に依存します。 </li><li> FTを捨て、あなたは残っていない溶出画分を持っていないまで限外ろ過を繰り返す。 </li><li>遠心分離により1XPBS 25から30分間で、広範囲に、2回濃縮したIgGを洗ってください。 </li><li> 1XPBSの1,500-2,000最終量100μlのアミコンフィルターから &quot;スティッキー&quot;、黄色がかった抗体溶液を収集します。 </li><li>分光光度計や光度計を用いてIgG調製物の濃度を測定します。 コンク。 （mg / ml）でA = A（280 nm）の×希釈率/ 1,4 </li><li>製造元の指示に従ってAmiconsを洗って保管してください。 </li></ol> 2。マウスにVII型コラーゲン特異的IgGの注射実際の実験手順を開始する前に、次のことを確認した実験プロトコールが書き込まれ、すべての材料は、実験のために用意されている。 <ol><li>病気の得点、ELISA法、蛍光抗体法（IF）の分析とミエロペルオキシダーゼ（MPO）アッセイ4のデータシートを準備します。 </li><li>血液や臓器、cryomoldsならびに組織像処理や埋カセット用チューブにラベルする。 </li><li>抗体溶液を、新しく調製または株式から解凍し、その反応性（IF顕微鏡および/またはELISAによる力価）に関して特徴付けられるべきである。滅菌濾過抗体溶液を注入するために必要な線量は250から1000μlの間で変化するようにPBSで希釈する必要があります。あなたは全体の実験を実行するための十分なIgGを持っていることを確認してください。 </li><li>ヘパリン20単位/ mlおよび8.7 mg / mlのケタミン/麻酔用1.3 mg / mlのキシラジン混合物：新鮮な抗凝固剤を準備します。マウスを犠牲にすると準備3.7％ホルムアルデヒドでチューブラベルを貼っている。 </li><li> （メス、はさみ、細かい点とcurv手術器具を滅菌エドforcepsの複数形）と注射器（インスリン注射器、1と2 mLシリンジ）、針、デジタルカメラや余分なメモリカードを準備します。 </li></ol> 注：ケタミン/キシラジンまたはイソフルラン麻酔マウス上のすべての手順を実行したマウスは素早く回復としてイソフルランは、毎日の肌チェックのための好ましい麻酔のオプションです。しかし、写真を撮るときに、87 mg / kgのケタミンおよび13 mg / kgをキシラジンは、通常、皮下注射する。安楽死のためにケタミン/キシラジン投与量は130 mg / kgのケタミンおよび20 mg / kgをキシラジンに増加しています。 <ol><li>彼らの一般的な健康状態、皮膚、毛皮の外観のために既にマークの動物を確認し、それらを比較検討すると、（常に同じ耳に固執する）は、その耳の厚さを測定します。 </li><li>観測値と臨床評価シート内の変更を登録します。 </li><li>抗凝固剤の同じボリュームを含むシリンジで尾静脈20から30μL（2〜3滴）の血液を採取します。 </li><li>毛皮を消毒し、80％エタノールを使用した肌。 </li><li> 。皮下インスリン注射器を使用して、バックに抗体溶液を注入する（特定のサイト（例えば、耳）の場合のみの小さなボリューム（10-50μL）を注入することが可能です。） </li></ol>注射は、一日おきに4回繰り返す必要があります。 BALB / cおよび約20グラムの体重のC57BL6マウスは3-4日最大750μg/ gの体重/注射自己抗体に400から500の最初の投与後に疾患の開発を開始。 実験を終了する場合： <ol><li>皮下に130 mg / kgおよび20 mg / kgのケタミン/キシラジンを注入することにより、深い麻酔下にマウスを置き、後部大静脈からそれらを血を抜くと心臓を切り取ってください。 </li><li>皮膚などの器官/組織サンプル収集：尻尾、耳、血液や食道を、以前にラベル付けされ、PBSまたは3.7％ホルムアルデヒドは充填チューブに入れます。 </li></ol>に戻るとき実験室： <ol><li> 1200×gで、独立したプラズマに室温で10分間で血液を遠心分離し、適切にラベルしたチューブにプラズマを転送し、それに応じてそれらを格納します。 </li><li>皮膚が正常cryomolds、ラベルを使用して最適なカット温度培地で生検し、-80℃で保管して埋め込む℃に</li><li>ラベルされた埋め込み型の組織学のために意味の組織サンプルを配置し、パラフィン包埋までの3.7％ホルムアルデヒドに保管してください。 </li></ol> 3。疾患の重症度の臨床評価マウスは、皮膚や粘膜の病変を毎日検討すべきであるとの知見は、適切なフォームを使用して記録されるべきである。早期に安楽死のための基準は、5の疾患スコア（ 表1）のカウントは、よりその20体表面の％と3日間連続で全体重の5〜10％の体重減少に影響を与え、皮膚病変です。 <ol><li>その腹の上にマウスを置きます。右側で、すなわち頭部領域で開始耳と内側にだけでなく、外側に水疱、びらん、地殻を確認してください。左耳と同じように続ける。 </li><li>左右の目が脱毛症、紅斑の徴候を制御し、びらん及び/又はクラストしています。 </li><li>おでこと鼻領域は鼻、唇や口の粘膜の腹の部分を続けると、次の通ってブラッシングされています。 </li><li>上向きに動く、足から始めて右前脚を調べ、左前脚に切り替えます。左右の後ろ足と同じ手順。 </li><li>湾曲した細かい点鉗子で首と背中エリアの毛皮を介してブラシ。 </li><li>その背中の上でマウスの電源を入れ、腹側だけでなく、手足の腹側以前と同じようにチェックしてください。 </li><li>尾を確認してください。 </li><li>マウスは疾患を発症関連の身体の部分の写真を撮る。注目は写真の質と量に支払わなければならない。 </li><li>臨床疾患スコアを計算。 </li></ol> 4。皮膚および血漿サンプルの分析<ol><li> 、店の準備をし、および/または計画に従って収集したすべての組織を処理します。 </li><li>ウサギ抗体とマウス補体系成分のIFを検出するための凍結組織切片を切り取ります。 </li><li>凍結組織および/または器官抽出物の異なるタンパク質と酵素含量（MPOアッセイ）を分析します。 </li><li>セクションパラフィン包埋組織と組織の損傷の程度を視覚化するためにH＆Eで染色。 </li><li> ELISA、イムノブロットにより血漿を分析します。 </li></ol>

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	<li>Sitaru, C., Mihai, S., Otto, C., Chiriac, M. T., Hausser, I., Dotterweich, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+dermal-epidermal+separation+in+mice+by+passive+transfer+of+antibodies+specific+to+type+VII+collagen.">Induction of dermal-epidermal separation in mice by passive transfer of antibodies specific to type VII collagen.</a> J. Clin. Invest. 115, 870-878 (2005).</li><li>Kopecki, Z., Arkell, R. M., Strudwick, X. L., Hirose, M., Ludwig, R. J., Kern, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Overexpression+of+the+Flii+gene+increases+dermal-epidermal+blistering+in+an+autoimmune+ColVII+mouse+model+of+epidermolysis+bullosa+acquisita.">Overexpression of the Flii gene increases dermal-epidermal blistering in an autoimmune ColVII mouse model of epidermolysis bullosa acquisita.</a> J. Pathol. 225, 401-413 (2011).</li><li>Kulkarni, S., Sitaru, C., Jakus, Z., Anderson, K. E., Damoulakis, G., Davidson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=PI3K&#946;+plays+a+critical+role+in+neutrophil+activation+by+immune+complexes.">PI3K&#946; plays a critical role in neutrophil activation by immune complexes.</a> Sci. Signal. 4, 23-23 (2011).</li><li>Chiriac, M. T., Roesler, J., Sindrilaru, A., Scharffetter-Kochanek, K., Zillikens, D., Sitaru, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=NADPH+oxidase+is+required+for+neutrophil-dependent+autoantibody-induced+tissue+damage.">NADPH oxidase is required for neutrophil-dependent autoantibody-induced tissue damage.</a> J. Pathol. 212, 56-65 (2007).</li><li>Mihai, S., Chiriac, M. T., Takahashi, K., Thurman, J. M., Holers, V. M., Zillikens, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+alternative+pathway+of+complement+activation+is+critical+for+blister+induction+in+experimental+epidermolysis+bullosa+acquisita.">The alternative pathway of complement activation is critical for blister induction in experimental epidermolysis bullosa acquisita.</a> J. Immunol. 178, 6514-6521 (2007).</li><li>Sesarman, A., Sitaru, A. G., Olaru, F., Zillikens, D., Sitaru, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neonatal+Fc+receptor+deficiency+protects+from+tissue+injury+in+experimental+epidermolysis+bullosa+acquisita.">Neonatal Fc receptor deficiency protects from tissue injury in experimental epidermolysis bullosa acquisita.</a> J. Mol. Med. 86, 951-959 (2008).</li><li>Huang, X. R., Holdsworth, S. R., Tipping, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Th2+responses+induce+humorally+mediated+injury+in+experimental+anti-glomerular+basement+membrane+glomerulonephritis.">Th2 responses induce humorally mediated injury in experimental anti-glomerular basement membrane glomerulonephritis.</a> J. Am. Soc. 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A., Troy, J. L., Taylor, A. F., Emery, D. J., Fairley, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+passive+transfer+model+of+the+organ-specific+autoimmune+disease,+bullous+pemphigoid,+using+antibodies+generated+against+the+hemidesmosomal+antigen,+BP180.">A passive transfer model of the organ-specific autoimmune disease, bullous pemphigoid, using antibodies generated against the hemidesmosomal antigen, BP180.</a> J. Clin. Invest. 92, 2480-2488 (1993).</li><li>Anhalt, G. J., Labib, R. S., Voorhees, J. J., Beals, T. F., Diaz, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+pemphigus+in+neonatal+mice+by+passive+transfer+of+IgG+from+patients+with+the+disease.">Induction of pemphigus in neonatal mice by passive transfer of IgG from patients with the disease.</a> N. Engl. J. 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特別な利害関係は宣言されません。

実験動物への自己抗体の受動的な転送は、その病原性7、-12を実証するための主要なアプローチです。この方法により得られた動物モデルは、自己免疫13の間接的な証拠であることに加えて、病原性機構の遠心性の相の調査を可能にします。後天性表皮水疱症（EBA）の膨れ抗体誘導性顆粒球依存皮膚の受動的伝達モデルは、自己免疫性皮膚疾患における組織損傷のメカ?...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> 注釈 </td></tr><tr><td>組換え抗原</td><td></td><td></td><td>マウスVII型コラーゲンの組換え形態をコードするプラスミドは、対応する著者から提供されています。 </td></tr><tr><td>免疫ウサギ血清</td><td> <a href="http://www.eurogentec.com/" target="_blank">www.eurogentec.com</a> </td><td></td><td>我々は、抗原200μgの、2週間隔で3回で免疫されたニュージーランドホワイトウサギを持っていた。このために、我々はEurogentec、SA、ベルギーのサービスを使用している。 </td></tr><tr><td>プロテインGアガロース</td><td>ロシュ·ダイアグノスティックス</td><td> 11243233001 </td><td></td></tr><tr><td> Balb / cマウス</td><td>チャールズ·リバー·ラボラトリーズ</td><td></td><td></TD&gt; </tr><tr><td> OCTコンパウンド、ティッシュテック</td><td>サクラファインテック</td><td> 4583 </td><td> 10月、最適な切削温度</td></tr><tr><td> Cryomold標準</td><td>サクラファインテック</td><td> 4557 </td><td> 25ミリメートル×20ミリメートル×5ミリメートル</td></tr><tr><td> Cryomold中間</td><td>サクラファインテック</td><td> 4566 </td><td> 15ミリメートル×15ミリメートル×5ミリメートル</td></tr><tr><td>ユニリンクEinbettkassette </td><td> R. Langenbrinck </td><td> 09から0503 </td><td>組織学処理や埋カセット</td></tr><tr><td> SPEZIAL-Tatowierfarbeシュワルツ</td><td> H. Hauptnerund＆リチャードHerberholz社＆Co KG </td><td> 71492000 </td><td>ペーストを刺青</td></tr><tr><td> Tatowierzange TZ1 </td><td> EBECO E.ベッカー＆カンパニー社</td><td></td><td>刺青装置</td></tr><tr><td>ヘパリン</td><td>カール·ロート社＆Co。 </td><td> 7692.1 </td><td></td></tr><tr><td> 37％ホルムアルデヒド</td><td>カール·ロート社＆Co。 </td><td> 7386 </td><td></td></tr><tr><td>塩酸ケタミン</td><td>シグマアルドリッチケミー</td><td> K2753-1G </td><td></td></tr><tr><td>キシラジン塩酸塩</td><td>シグマアルドリッチケミー</td><td> X1251-1G </td><td></td></tr><tr><td>滅菌PBS </td><td> Biochrom </td><td> L182-50 </td><td></td></tr><tr><td>デジタルカメラ</td><td>ニコン</td><td> COOLPIX 5400 </td><td></td></tr><tr><td>シリンジフィルターユニット0.45μmのを牽引</td><td>ミリポア</td><td></td><td></td></tr><tr><td>キャリパー</td><td>ミツトヨ7309 </td><td> 1667338 </td><td>ファーネル（ディストリビュータ） </td></tr><tr><td>病気のスコアシート</td><td></td><td></td><td>柵の例SED </td></tr></tbody></table>

granulocyte-dependent autoantibody-induced skin blistering

自己免疫現象は、健康な個体で発生しますが、自己寛容が失敗したときに、自己免疫応答が特定の病状になることがあります。によるWitebskyのは、自己免疫疾患などの診断の基準のいずれかを仮定すると、自己抗体の受動的伝達によって、実験動物における疾患の再生です。後天性表皮水疱症（EBA）、皮膚や粘膜の原型の臓器特異的自己免疫疾患のために、いくつかの実験モデルは、最近設立された。 VII型コラーゲンの200アミノ酸（aa 757から967）のストレッチに対してIgG抗体を精製し、我々の現在の仕事で説明する動物モデルで猛烈な表現型だけでなく、人間に特徴的な病理組織および免疫病理学的特徴を再現したマウスに繰り返し注入されEBA 1。本格的な広範な疾患は、通常、最初の注射後5-6日見られ、疾患の程度は、投与されたCの線量と相関しているollagen VII-特異的IgG。実験EBAにおける組織損傷（ブリスター形成）-4組織結合自己抗体2によって顆粒球の動員および活性化に依存している。モデルは唯一の遠心性自己免疫応答のT細胞非依存位相を再現したがって、このモデルでは、自己免疫組織損傷に関与する顆粒球依存性炎症経路の解剖を可能にします。また、その値は、in vivoで自己抗体のブリスター誘導可能性を示すとEBA 1,3、-6における水疱形成のメカニズムを調査研究の数によって強調される。最後に、このモデルでは、大幅に自己抗体によって誘発される疾患における新たな抗炎症治療薬の開発を容易にするでしょう。全体的に、EBAの受動転送動物モデルがアクセス可能で有益な疾患モデルであると研究者はEBAの病因ではないだけを分析するのではなく、基本的な生物学的にも臨床的に答えるのに役立ちます本質的な自己免疫の質問。

マウスでは、本格的な疾患における抗原特異的抗体結果の受身伝達、臨床組織学的および免疫病理学的なレベルで人間EBA似ている。水疱、痂皮、びらん、脱毛症は、耳、鼻、足、脚、背中、マウスの目の周りに開発しています。病気の最初の臨床症状は、おそらく耳および/または頭部領域に表示されます。特定ウサギIgG、およびマウス補体C3の沈着は、IF病変部周囲の皮膚の凍結切片で真皮?...

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Granulocyte-dependent Autoantibody-induced Skin Blistering

VII型コラーゲンの200アミノ酸（aa 757から967）のストレッチに対してIgG抗体を精製し、我々の現在の仕事で説明する動物モデルで猛烈な表現型だけでなく、人間に特徴的な病理組織および免疫病理学的特徴を再現したマウスに繰り返し注入され後天性表皮水疱症（EBA）<sup&gt; 1</sup&gt;。

顆粒球に依存する自己抗体誘発皮膚水疱形成

Autoimmune phenomena occur in healthy individuals, but when self-tolerance fails, the autoimmune response may result in specific pathology. According to ...

granulocyte-dependent-autoantibody-induced-skin-blistering

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

10.4K ビュー.  University of Freiburg. VII型コラーゲンの200アミノ酸（aa 757から967）のストレッチに対してIgG抗体を精製し、我々の現在の仕事で説明する動物モデルで猛烈な表現型だけでなく、人間に特徴的な病理組織および免疫病理学的特徴を再現したマウスに繰り返し注入され後天性表皮水疱症（EBA） 1。