Name: quantitation of intra-peritoneal ovarian cancer metastasis
Uploaded: 2016-07-18T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 58 s
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This research was supported by research grants RO1CA109545 and RO1CA086984 to M.S.S. by the National Institutes of Health/National Cancer Institute and by an award from the Leo and Ann Albert Charitable Trust (to M.S.S.).

すべてのin vivo試験は、ノートルダム動物実験委員会の大学によって承認され、雌のC57 / BL6Jマウスを用いました。 1.マウス卵巣癌細胞の培養<ol><li>次のようにID8マウス卵巣癌細胞培養培地を作る：4％ウシ胎児血清（FBS）、1％ペニシリン/ストレプトマイシン、5μg/ mlのインスリン、5μg/ mlのトランスフェリンを補充したダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）の1 Lおよび5 ngの/ mlの亜セレン酸ナトリウム。 </li><li> RFPおよび選択マーカー（遺伝子ブラスチシジン）を発現する、商業的に調達するレンチウイルス粒子を用いた赤色蛍光タンパク質（RFP）を発現するID8マウス卵巣癌細胞13に伝達します。緑色蛍光タンパク質を用いることができるが、より弱い蛍光シグナルを提供します。 <ol><li>直前伝達に、培養細胞50 - 70％、最終1ミリリットルポリブレン（5μg/ mlのを含んで合流し、（ペニシリン/ストレプトマイシンなし）新鮮な培地を追加濃度）。 </li><li>静かにピペットRFP-レンチウイルス（20μl）をシャーレに滴下し、72時間、37 O Cでインキュベートします。培地を除去し、24時間新鮮な培地で培養します。培地（5μg/ mlの）にブラストサイジンを添加することにより形質導入された細胞の選択を開始し、蛍光顕微鏡（ 図1.）を用いて赤血球を監視します。 </li></ol></li><li>文化の組織培養皿に約10 6個の細胞を播種し、細胞単層がコンフルエントになるまで、光学顕微鏡を用いて毎日可視化することにより、ID8媒体におけるRFPタグ付き細胞。 </li><li>ときにコンフルエントは、トリプシン（0.25％、3分）を使用して細胞を採取し、細胞が分離されるまで、37°C ​​のインキュベーターにフラスコを返します。 </li><li>血清を含むID8培地を6 mlのトリプシンを中和します。アップピペットと皿の底に対して下落し、15ミリリットルコニカルチューブに移します。 2分間1,200rpmで遠心分離し、その後、GLを使用して、培地を吸引お尻ピペット。 </li><li>優しく温かいPBS 6mlに再懸濁し、上記1.5のように遠心分離することにより、リン酸緩衝生理食塩水（PBS）で細胞を洗浄。 5×10 6細胞/ mlの最終濃度になるようにPBSに再懸濁します。注射まで暖かい細胞（37 O C）を保管してください。 </li></ol> 2.腹腔内ID8細胞の注入およびin vivoイメージングで <ol><li>腹腔内（IP）注射を介して、1000万個の細胞の合計のための暖かいID​​8-PBS溶液2mLで各マウスに注入します。腫瘍細胞は毎週ライブイメージングで約10週間のためにin vivoで成長させます。 </li><li>すぐに（0.5リットル/分のO 2流量で2.5％流量）イソフルランを用いて、各マウスを麻酔後、マウスの重量を量ると、その後の注射と毎週以下。注：マウスはない腫瘍負荷の定量的尺度ではなく、研究を通して、個々のマウスの物理的な進行のより一般的な対策として、秤量しました。マウスは、重量を量りますTSは、自分の前の重み値と比較しました。 <ol><li>イソフルランチャンバー内に配置することにより、マウスを麻酔。手順全体で2.5％の流量イソフルランへの曝露のためにノーズコーンにマウスの頭部を配置することによって、スキャン中に一定の麻酔を維持します。 </li></ol></li><li>黒い髪は、蛍光信号の減衰の原因となるよう、各マウスの胴体と腹部の毛を除去するために、脱毛クリームを使用してください。マウスは、脱毛クリームの適用後に温水で浸し、室温でペーパータオルで乾燥させます。 </li><li>麻酔をかけながら、小動物撮像光学系を用いて、各マウスの全身をスキャンします。各時点で、コホート内のすべてのマウスをスキャンします。次の2段階のプロトコル （ 図2A）を使用します。 <ol><li>ステップ1で、440nmで、460nmで、4の励起フィルタを用いて5画像の合計を収集するためにマルチスペクトル取得を実行し、蛍光標識（RFP）腫瘍細胞を観察し80 nmで、520 nmおよび540 nmであり、600nmでの発光フィルター。 15秒の標準的な露出、2×2ビニング、160ミリメートルのFOV、および1.1のF ストップ ：次の取得パラメータを使用します。 </li><li>全動物を観察するステップ2では、オープン励起フィルター（白色光）、オープン発光フィルター、2×2ビニングおよび16 cmとFOVと0.2秒の標準的な露出を使用して反射画像を取得します。注：実際の撮影時間は約1分です。 </li></ol></li></ol> 3.マウスの解剖と画像取得<ol><li>ライブイメージングは、腹水の広範な腹腔内疾患や動物展示蓄積（腹部膨満によって証明されるように）の存在を示し、体重の減少または増加20％以上、無気力や苦痛の他の徴候た場合、CO 2を用いて、各マウスを安楽死させます麻酔は、頸椎脱臼が続きます。 </li><li>尖ったdissectioを使用して、マウスの腹側正中線に沿って前方に皮膚をカットn個のはさみ、胸郭の下に太ももの上から。スキン層のみ（ 図2BI）を切断するために細心の注意を払ってください。静かに腹膜壁に穴を開けないようにしてくださいされ、腹膜組織から皮膚を分離します。 </li><li>尖った解剖ハサミを使用して、皮膚の2つのフラップを作成するには、両方の胸郭の底部と太も ​​もの上部に沿って横方向に切断した （ 図2B II、III）。 </li><li>皮膚弁が開いて引っ張られ、小動物の光学イメージングシステム（ 図3A、B）を使用して、 その場でその臓器で各マウスをスキャンして、その腹側（下向き腹膜腔）に各マウスを置きます。 <ol><li> 2.4.1.-2.4.2で説明したのと同様の画像取得パラメータを使用します。 </li></ol></li><li>肝臓、網/膵臓、胃、絞り、小腸、大腸、左右腹膜、卵巣、kidne含む個々の腹腔の器官を抽出することにより、マウスを解剖続けますYS、腸間膜脂肪パッド。 <ol><li>観察し、列挙し、各臓器に目に見える腫瘍を記録します。各腫瘍の直径を測定するためにキャリパーを使用します。 </li><li> 媒体として2と5ミリメートルと同じ大きさ5mm以上の間に、 小さなとして、直径2ミリメートルよりも腫瘍が少なく指定します。 </li></ol></li><li>各器官のための所定の位置を特定する臓器スキャンテンプレート （ 図4）に臓器を置きます。湿った臓器を維持するためにPBSを使用してください。 </li><li>小動物の光イメージングシステム（ 図3C、D）を用いて、臓器の各シートをスキャンします。 <ol><li>ステップ2.4​​で説明したのと同じ画像取得パラメータを使用します。 </li></ol></li><li>スキャンした後、10％ホルムアルデヒドで場所器官は、組織学のために、その後の処理を可能にします。 </li></ol>目における腫瘍量の4定量電子蛍光画像<ol><li>各マルチスペクトル走査において自家蛍光の量を低減するために、第一の小動物イメージングシステムで使用可能なソフトウェアを使用してファイルをunmix。 <ol><li> インビボでのスペクトルファイルで 、Autofluor続い：最初のRFPロード未撹拌画像ウィンドウにおけるインビボレッドファイルでをし、Unmixを選択します。 </li></ol></li><li> 16ビット.TIFF（スケーリングされていない）形式として.bipファイルをエクスポートします。 </li><li> （ その場での臓器とのex vivoでの器官、その後、完全なマウス本体）ImageJソフトウェアを使用してください。 <ol><li> ImageJので臓器スキャンテンプレートファイルの16ビットの.tiffファイルを開くために&gt;ファイルを開くを使用してください。 </li><li> 画像の下に&gt;、&gt;明るさ/コントラストを調整して 最小値を 0に表示され 、 最大値は 35353に値を表示した後で設定することを選択します画像&gt;ルックアップテーブルは 、 レッドホットを選択します。注：様々な動物モデルが異なる輝度レベルが必要になりますが、与えられた研究を通して一貫明るさを保つことが重要です。 </li><li> フリーハンド選択ツールを使用して、各臓器の周りの関心の選択（ROI）のフリーフォーム領域を描き、各臓器の表面積を計算するために、 測定ツール （CTRL + M）を使用します。スプレッドシートの各臓器の表面積を記録。 </li><li>各臓器の周りに描かれたROIと、右ROI内でクリックして、唯一の臓器が含まれるように重複を選択します。 </li><li> しきい値&gt;調整&gt;画像の下に、個々の臓器を見ながら、ONL選択するために、+ 1200の下位閾値レベルと+ 1700の上限閾値レベルに画像のしきい値を設定することを選択しますyの最も明るい蛍光を発する領域と暗い背景を選択するためにチェックしてください。 [OK]を選択します。注：上記のように、以前に最も明るい領域は、分析工程のために選択されるように画像がImageJの中のしきい値スライダーの手動操作が必要な場合があります。種々の疾患モデルは、異なる閾値の制約が必要となるが、与えられた試験を通して一貫性の閾値レベルを維持することが重要です。 </li><li> 分析の下で&gt; サイズを変更し 、 粒子の分析 （ピクセル^ 2）10 -インフィニティには、 表示に選択します 。 アウトライン 、唯一の「結果の表示」を選択し、地域とこれらの明るい領域の生の統合密度の両方を測定するために[OK]をクリックし確認してください、みなさ腫瘍。 </li><li> 表面積の値とに表示される各腫瘍選択の生統合密度を記録<strong&gt;臓器表面領域を含む同じスプレッドシート内の結果テーブル。 </li><li> 分析&gt;ツールの下に&gt;キャリブレーションバーは 、臓器の画像にキャリブレーションスケールバーを追加します。注：この例では、これは白に黒、 ラベルカラーに右上 、 塗りつぶしの色に場所を変更することで行われた、 ラベルの数 5に、0に小数点以下の桁数 、12にフォントサイズやズーム 4.0と太字テキストを有効にする要因 。 </li><li> ... 名前を付けて保存]&gt; [ファイルの下で、.TIFFと.JPEGとしてモンタージュを保存します。 </li><li>臓器の.JPEGファイルを開くことがファイルを開く&gt;を使用し 、[ 挿入]&gt; [テキストボックスの下に</stronグラム&gt;、臓器の3行のそれぞれの下のテキストボックスを作成することにより、臓器ラベルを追加します。 </li><li>マウス番号順にImageJの中の全身スキャンの16ビットの.tiffの各ファイルを開くことが[ファイル]&gt; [開く]を使用してください。 </li><li> イメージ&gt;調整&gt;明るさ/コントラストの下では、 最小値を 0に表示され 、 最大は + 35353に値を表示してからイメージ&gt;ルックアップテーブルの下に設定 レッドホットを選択すること。 </li><li> [ファイル]&gt; [名前を付けて保存 ]の下...、。 ティフや.JPEGなどのモンタージュを保存します。 </li></ol></li></ol> 5.データ解析<ol><li>各マウスの各臓器のために、それぞれ、腫瘍選択領域と生の統合密度を追加し、各マウスの総臓器腫瘍領域を記録します。 </li><li>記録領域と生integratを正規化対応する臓器の表面積（ 表1）により、総腫瘍面積と総生集積密度の値を分割して各臓器のサイズED濃度値。 </li><li>正規化された腫瘍の表面積及び正規化生の統合された濃度値（ 図5A、B）の両方の平均を計算し、プロットします。 </li><li>視覚的に転移性病変に対する各臓器の検査時に肉眼で見えた腫瘍をカウントしたものに、これらの平均値を比較します。 </li></ol>

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この記事では、ブルカー・バイオスピン主催のマルチモーダル前臨床イメージングに特別な問題の一部です。

免疫不全マウスで実施されなければならない、ヒト卵巣癌細胞を用いた研究とは対照的に、上述のプロトコルは、免疫C57 / BL6マウスおよび同系マウスの卵巣癌細胞を利用します。これは、腫瘍の進行および転移における免疫浸潤の潜在的な役割の評価を可能にしながら、腹部の表面に黒い髪の存在は、撮像感度が低いレンダリングします。撮像前に毛を除去する脱毛剤の使用は、画像取得を?...

上皮性卵巣癌（EOC）2015年に米国での推定21290新たな診断と推定14180人が死亡1で、婦人科悪性腫瘍による死亡の最も一般的な原因です。女性の大多数（&gt; 75パーセント）が拡散腹腔内転移および予後不良によって特徴づけ後期疾患（ステージIIIまたはIV）と診断されています。ファーストライン化学療法後の腹腔内疾患再発も一般的であり、死亡率2,3の主要な原因を表します。 EOCは、単一細胞または多細胞集合体のような直接の近隣腹膜臓器への原発腫瘍からの伸長だけでなく、原発腫瘍の表面からの細胞の解離または脱落によって両方を含むユニークな機構により、転移します。彼らは剥離誘導アポトーシスレジスト4を特徴とする細胞は、腹腔内に流されています。小屋腫瘍細胞が腹膜リンパドレナージとtをブロックとして腹膜腹水の蓄積は、一般的ですumorsは血管透過性を変化させ、増殖因子を産生します。彼らは固定し、複数の広く普及二次病変3,5を生成するために増殖し、そこで小屋腫瘍細胞の一部は、腸、肝臓、大網および腸間膜を含む腹膜臓器や構造の表面に付着します。血行性転移はまれです。したがって、臨床管理は、一般的に（どんなに小）すべての可視腫瘍の切除のように定義された「最適な減量」を含む腫瘍縮小手術、で構成されていません。完全な細胞減少は、全生存期間6,7の有意な増加と関連していると識別し、病変の除去&lt;0.5 cmという課題に関連しています。 小動物モデルは、疾患の進行の理解を改善するのにも同様に予後バイオマーカーおよび新規な化学療法又は併用療法アプローチのテストの同定卵巣癌研究における有用性​​が証明されています。プライマリとして卵巣癌の発生率および転移の部位が腹腔で、EOC転移の同所性モデルは、腹腔内疾患の分析および特徴づけを伴います。画像腫瘍細胞の能力における最近の改善がなされているが、単一細胞レベルで、まだEOCの転移性腫瘍量を定量化において著しい困難が存在します。これらの課題は数、サイズおよび転移性病変の解剖学的位置に起因し発生します。さらに、正常な宿主細胞と区別するために、癌細胞を標識する必要性が存在します。以前の研究では、抗体ベースの標識プロトコール又はルシフェラーゼ8,9による腫瘍細胞のトランスフェクションを利用しています。癌細胞の直接の蛍光標識は、最初に1997年10で千島および共同研究者によって報告された。蛍光標識は、外因性基質の添加を必要と絶妙な腫瘍細胞特異性を提供する、癌転移11,12を追跡するためのより効果的な手段を提供しません</suP&gt;。 本明細書において、我々は、マウスID8卵巣癌細胞13免疫コンピテントC57 / BL6マウスに赤色蛍光タンパク質（RFP）からなる同系同所性異種移植片モデルを使用して、転移性疾患の定量分析のための光学撮像方法-タグ説明します。私たちは、組織の自家蛍光を除去しながら撮影を生体内で組み合わせ、ex vivoでの相対的腫瘍量の定量化の新規な方法を示しています。この手法は、卵巣癌の臓器特異的な転移に特異的な遺伝子、エピジェネティックなまたは微小環境の改変および/または治療法の効果を評価するために設計された研究において潜在的な有用性を有します。

<table><tbody><tr><td>Dulbecco&#039;s Modified Eagle Medium</td><td>Corning</td><td>10-014-CM</td><td></td></tr><tr><td>Fetal bovine serum</td><td>Gibco</td><td>10437-028</td><td></td></tr><tr><td>penicillin/streptomycin</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Insulin-transferrin-sodium selenite media supplement</td><td>Sigma</td><td>I-1884</td><td></td></tr><tr><td>Bruker Xtreme small animal imaging system</td><td>Bruker Corp.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bruker Multispectral software</td><td>Bruker Corp</td><td></td><td></td></tr><tr><td>lentiviral particles with Red fluorescent protein</td><td>GenTarget, Inc.</td><td>LVP023</td><td></td></tr><tr><td>trypsin for cell culture</td><td>Corning</td><td>25-053-CI</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Corning</td><td>21-040-CM</td><td></td></tr><tr><td>depilatory cream (such as Nair Hair Remover Lotion)</td><td>purchases from drugstore&amp;nbsp;</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ software&amp;nbsp;</td><td>http://imagej.nih.gov/ij/&amp;nbsp;</td><td></td><td>free download</td></tr><tr><td>dissecting tools (forceps)</td><td>Roboz Surgical Instrument</td><td>&amp;nbsp;RS 5130</td><td></td></tr><tr><td>dissecting tools (Scissors)</td><td>Roboz Surgical Instrument</td><td>RS 5910</td><td></td></tr></tbody></table>

quantitation of intra-peritoneal ovarian cancer metastasis

Epithelial ovarian cancer (EOC) is the leading cause of death from gynecologic malignancy in the United States. Mortality is due to diagnosis of 75% of women with late stage disease, when metastasis is already present. EOC is characterized by diffuse and widely disseminated intra-peritoneal metastasis. Cells shed from the primary tumor anchor in the mesothelium that lines the peritoneal cavity as well as in the omentum, resulting in multi-focal metastasis, often in the presence of peritoneal ascites. Efforts in our laboratory are directed at a more detailed understanding of factors that regulate EOC metastatic success. However, quantifying metastatic tumor burden represents a significant technical challenge due to the large number, small size and broad distribution of lesions throughout the peritoneum. Herein we describe a method for analysis of EOC metastasis using cells labeled with red fluorescent protein (RFP) coupled with in vivo multispectral imaging. Following intra-peritoneal injection of RFP-labelled tumor cells, mice are imaged weekly until time of sacrifice. At this time, the peritoneal cavity is surgically exposed and organs are imaged in situ. Dissected organs are then placed on a labeled transparent template and imaged ex vivo. Removal of tissue auto-fluorescence during image processing using multispectral unmixing enables accurate quantitation of relative tumor burden. This method has utility in a variety of applications including therapeutic studies to evaluate compounds that may inhibit metastasis and thereby improve overall survival.

卵巣癌の転移機構は、複数の小さい（&lt;2ミリメートル）の病変を含め、種々のサイズの多数の病変からなる高度に拡散腹腔内転移によって特徴付けられます。したがって、RFP標識腫瘍細胞の使用（ 図1）と光学イメージングは、手動の計数および病変サイズの測定に代わる方法を提供します。経時的な腫瘍量の進展は、毎週の腹水の潜在的な存在を評価?...

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Quantitation of Intra-peritoneal Ovarian Cancer Metastasis

Ovarian cancer metastasis is characterized by numerous diffuse intra-peritoneal lesions, such that accurate visual quantitation of tumor burden is challenging. Herein we describe a method for in situ and ex vivo quantitation of metastatic tumor burden using red fluorescent protein (RFP)-labeled tumor cells and optical imaging.

腹腔内卵巣癌転移の定量

Epithelial ovarian cancer (EOC) is the leading cause of death from gynecologic malignancy in the United States.  Mortality is due to diagnosis of 75% of ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

10.8K ビュー.  University of Notre Dame. Ovarian cancer metastasis is characterized by numerous diffuse intra-peritoneal lesions, such that accurate visual quantitation of tumor burden is challenging. Herein we describe a method for in situ and ex vivo quantitation of metastatic tumor burden using red fluorescent protein (RFP)-labeled tumor cells and optical imaging.

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An Orthotopic Model of Serous Ovarian Cancer in Immunocompetent Mice for in vivo Tumor Imaging and Monitoring of Tumor Immune Responses

Background: Ovarian cancer is generally diagnosed at an advanced stage where the case/fatality ratio is high and thus remains the most lethal of all gynecologic malignancies among US women 1,2,3. Serous tumors are the most widespread forms of ovarian cancer and 4,5 the Tg-MISIIR-TAg transgenic represents the only mouse model that spontaneously develops this type of tumors. Tg-MISIIR-TAg mice express SV40 transforming region under control of the Mullerian Inhibitory Substance type II Receptor (MISIIR) gene promoter 6. Additional transgenic lines have been identified that express the SV40 TAg transgene, but do not develop ovarian tumors. Non-tumor prone mice exhibit typical lifespan for C57Bl/6 mice and are fertile. These mice can be used as syngeneic allograft recipients for tumor cells isolated from Tg-MISIIR-TAg-DR26 mice.
Objective: Although tumor imaging is possible 7, early detection of deep tumors is challenging in small living animals. To enable preclinical studies in an immunologically intact animal model for serous ovarian cancer, we describe a syngeneic mouse model for this type of ovarian cancer that permits in vivo imaging, studies of the tumor microenvironment and tumor immune responses.
Methods: We first derived a TAg+ mouse cancer cell line (MOV1) from a spontaneous ovarian tumor harvested in a 26 week-old DR26 Tg-MISIIR-TAg female. Then, we stably transduced MOV1 cells with TurboFP635 Lentivirus mammalian vector that encodes Katushka, a far-red mutant of the red fluorescent protein from sea anemone Entacmaea quadricolor with excitation/emission maxima at 588/635 nm 8,9,10. We orthotopically implanted MOV1Kat in the ovary 11,12,13,14 of non-tumor prone Tg-MISIIR-TAg female mice. Tumor progression was followed by in vivo optical imaging and tumor microenvironment was analyzed by immunohistochemistry.
Results: Orthotopically implanted MOV1Kat cells developed serous ovarian tumors. MOV1Kat tumors could be visualized by in vivo imaging up to three weeks after implantation (fig. 1) and were infiltrated with leukocytes, as observed in human ovarian cancers 15 (fig. 2).
Conclusions: We describe an orthotopic model of ovarian cancer suitable for in vivo imaging of early tumors due to the high pH-stability and photostability of Katushka in deep tissues. We propose the use of this novel syngeneic model of serous ovarian cancer for in vivo imaging studies and monitoring of tumor immune responses and immunotherapies.

An Orthotopic Model of Serous Ovarian Cancer in Immunocompetent Mice for in vivo Tumor Imaging and Monitoring of Tumor Immune Responses

To study in vivo tumor growth and tumor microenvironment, we used a syngeneic and orthotopic mouse model of ovarian cancer in immunocompetent animals. We transduced a mouse tumor cell line (MOV1) with Katushka fluorescent protein (MOV1KAT) and here we show its orthotopic implantation in ovary and in vivo imaging.

のための免疫担当マウスにおける漿液性卵巣癌の同所性モデル in vivoで</em腫瘍免疫応答の>腫瘍イメージングとモニタリング

Background: Ovarian cancer is generally diagnosed at an advanced stage where the case/fatality ratio is high and thus remains the most lethal of all ...

免疫・感染学

Surface-enhanced Resonance Raman Scattering Nanoprobe Ratiometry for Detecting Microscopic Ovarian Cancer via Folate Receptor Targeting

Ovarian cancer represents the deadliest gynecologic malignancy. Most patients present at an advanced stage (FIGO stage III or IV), when local metastatic spread has already occurred. However, ovarian cancer has a unique pattern of metastatic spread, in that tumor implants are initially contained within the peritoneal cavity. This feature could enable, in principle, the complete resection of tumor implants with curative intent. Many of these metastatic lesions are microscopic, making them hard to identify and treat. Neutralizing such micrometastases is believed to be a major goal towards eliminating tumor recurrence and achieving long-term survival. Raman imaging with surface enhanced resonance Raman scattering nanoprobes can be used to delineate microscopic tumors with high sensitivity, due to their bright and bioorthogonal spectral signatures. Here, we describe the synthesis of two &#39;flavors&#39; of such nanoprobes: an antibody-functionalized one that targets the folate receptor &#8212; overexpressed in many ovarian cancers &#8212; and a non-targeted control nanoprobe, with&#160;distinct spectra. The nanoprobes are co-administered intraperitoneally to mouse models of metastatic human ovarian adenocarcinoma. All animal studies were approved by the Institutional Animal Care and Use Committee of Memorial Sloan Kettering Cancer Center. The peritoneal cavity of the animals is surgically exposed, washed, and scanned with a Raman microphotospectrometer. Subsequently, the Raman signatures of the two nanoprobes are decoupled using a Classical Least Squares fitting algorithm, and their respective scores divided to provide a ratiometric signal of folate-targeted over untargeted probes. In this way, microscopic metastases are visualized with high specificity. The main benefit of this approach is that the local application into the peritoneal cavity &#8212; which can be done conveniently during the surgical procedure &#8212; can tag tumors without subjecting the patient to systemic nanoparticle exposure. False positive signals stemming from non-specific binding of the nanoprobes onto visceral surfaces can be eliminated by following a ratiometric approach where targeted and non-targeted nanoprobes with distinct Raman signatures are applied as a mixture. The procedure is currently still limited by the lack of a commercial wide-field Raman imaging camera system, which once available will allow for the application of this technique in the operating theater.

Ovarian cancer forms metastases throughout the peritoneal cavity. Here, we present a protocol to make and use folate-receptor targeted surface-enhanced resonance Raman scattering nanoprobes that reveal these lesions with high specificity via ratiometric imaging. The nanoprobes are administered intraperitoneally to living mice, and the derived images correlate well with histology.

表面増強共鳴ラマン葉酸受容体を介して顕微鏡による卵巣癌の検出のためのナノプローブ比を散乱によるターゲット設定

Ovarian cancer represents the deadliest gynecologic malignancy. Most patients present at an advanced stage (FIGO stage III or IV), when local metastatic ...

がん研究

In vitro Mesothelial Clearance Assay that Models the Early Steps of Ovarian Cancer Metastasis

Ovarian cancer is the fifth leading cause of cancer related deaths in the United States1. Despite a positive initial response to therapies, 70 to 90 percent of women with ovarian cancer develop new metastases, and the recurrence is often fatal2. It is, therefore, necessary to understand how secondary metastases arise in order to develop better treatments for intermediate and late stage ovarian cancer. Ovarian cancer metastasis occurs when malignant cells detach from the primary tumor site and disseminate throughout the peritoneal cavity. The disseminated cells can form multicellular clusters, or spheroids, that will either remain unattached, or implant onto organs within the peritoneal cavity3 (Figure 1, Movie 1). 
All of the organs within the peritoneal cavity are lined with a single, continuous, layer of mesothelial cells4-6 (Figure 2). However, mesothelial cells are absent from underneath peritoneal tumor masses, as revealed by electron micrograph studies of excised human tumor tissue sections3,5-7 (Figure 2). This suggests that mesothelial cells are excluded from underneath the tumor mass by an unknown process. 
Previous in vitro experiments demonstrated that primary ovarian cancer cells attach more efficiently to extracellular matrix than to mesothelial cells8, and more recent studies showed that primary peritoneal mesothelial cells actually provide a barrier to ovarian cancer cell adhesion and invasion (as compared to adhesion and invasion on substrates that were not covered with mesothelial cells)9,10. This would suggest that mesothelial cells act as a barrier against ovarian cancer metastasis. The cellular and molecular mechanisms by which ovarian cancer cells breach this barrier, and exclude the mesothelium have, until recently, remained unknown. 
Here we describe the methodology for an in vitro assay that models the interaction between ovarian cancer cell spheroids and mesothelial cells in vivo (Figure 3, Movie 2). Our protocol was adapted from previously described methods for analyzing ovarian tumor cell interactions with mesothelial monolayers8-16, and was first described in a report showing that ovarian tumor cells utilize an integrin &#x2013;dependent activation of myosin and traction force to promote the exclusion of the mesothelial cells from under a tumor spheroid17. This model takes advantage of time-lapse fluorescence microscopy to monitor the two cell populations in real time, providing spatial and temporal information on the interaction. The ovarian cancer cells express red fluorescent protein (RFP) while the mesothelial cells express green fluorescent protein (GFP). RFP-expressing ovarian cancer cell spheroids attach to the GFP-expressing mesothelial monolayer. The spheroids spread, invade, and force the mesothelial cells aside creating a hole in the monolayer. This hole is visualized as the negative space (black) in the GFP image. The area of the hole can then be measured to quantitatively analyze differences in clearance activity between control and experimental populations of ovarian cancer and/ or mesothelial cells. This assay requires only a small number of ovarian cancer cells (100 cells per spheroid X 20-30 spheroids per condition), so it is feasible to perform this assay using precious primary tumor cell samples. Furthermore, this assay can be easily adapted for high throughput screening.

In vitro Mesothelial Clearance Assay that Models the Early Steps of Ovarian Cancer Metastasis

The mesothelial clearance assay described here takes advantage of fluorescently labeled cells and time-lapse video microscopy to visualize and quantitatively measure the interactions of ovarian cancer multicellular spheroids and mesothelial cell monolayers. This assay models the early steps of ovarian cancer metastasis.

in vitroで中皮クリアランスアッセイでそのモデルの卵巣がんの転移の初期段階を

Ovarian cancer is the fifth leading cause of cancer related deaths in the United States1. Despite a positive initial response to therapies, 70 to 90 ...

医学

An Orthotopic Mouse Model of Ovarian Cancer using Human Stroma to Promote Metastasis

Ovarian cancer is characterized by early, diffuse metastasis with 70% of women having metastatic disease at the time of diagnosis. While elegant transgenic mouse models of ovarian cancer exist, these mice are expensive and take a long time to develop tumors. Intraperitoneal injection xenograft models lack human stroma and do not accurately model ovarian cancer metastasis. Even patient derived xenografts (PDX) do not fully recapitulate the human stromal microenvironment as serial PDX passages demonstrate significant loss of human stroma. The ability to easily model human ovarian cancer within a physiologically relevant stromal microenvironment is an unmet need. Here, the protocol presents an orthotopic ovarian cancer mouse model using human ovarian cancer cells combined with patient-derived carcinoma-associated mesenchymal stem cells (CA-MSCs). CA-MSCs are stromal progenitor cells, which drive the formation of the stromal microenvironment and support ovarian cancer growth and metastasis. This model develops early and diffuses metastasis mimicking clinical presentation. In this model, luciferase expressing ovarian cancer cells are mixed in a 1:1 ratio with CA-MSCs and injected into the ovarian bursa of NSG mice. Tumor growth and metastasis are followed serially over time using bioluminescence imaging. The resulting tumors grow aggressively and form abdominal metastases by 14 days post injection. Mice experienced significant decreases in body weight as a marker of systemic illness and increased disease burden. By day 30 post injection, mice met endpoint criteria of &gt;10% body weight loss and necropsy confirmed intra-abdominal metastasis in 100% of mice and 60%-80% lung and parenchymal liver metastasis. Collectively, orthotopic engraftment of ovarian cancer cells and stroma cells generates tumors that closely mimic the early and diffuse metastatic behavior of human ovarian cancer. Furthermore, this model provides a tool to study the role of ovarian cancer cell: stroma cell interactions in metastatic progression.

Orthotopic engraftment of ovarian cancer cells mixed with human stromal cells provides a mouse model that exhibits rapid, diffuse metastatic behavior that is characteristic of human ovarian cancer. This model also allows for the study of tumor cell and stromal cell interactions, as well as their role in tumor progression and metastasis.

Ovarian cancer is characterized by early, diffuse metastasis with 70% of women having metastatic disease at the time of diagnosis. While elegant ...

Assessment of Ovarian Cancer Spheroid Attachment and Invasion of Mesothelial Cells in Real Time

Ovarian cancers metastasize by shedding into the peritoneal fluid and dispersing to distal sites within the peritoneum. Monolayer cultures do not accurately model the behaviors of cancer cells within a nonadherent environment, as cancer cells inherently aggregate into multicellular structures which contribute to the metastatic process by attaching to and invading the peritoneal lining to form secondary tumors. To model this important stage of ovarian cancer metastasis, multicellular aggregates, or spheroids, can be generated from established ovarian cancer cell lines maintained under nonadherent conditions. To mimic the peritoneal microenvironment encountered by tumor cells in vivo, a spheroid-mesothelial co-culture model was established in which preformed spheroids are plated on top of a human mesothelial cell monolayer, formed over an extracellular matrix barrier. Methods were then developed using a real-time cell analyzer to conduct quantitative real time measurements of the invasive capacity of different ovarian cancer cell lines grown as spheroids. This approach allows for the continuous measurement of invasion over long periods of time, which has several advantages over traditional endpoint assays and more laborious real time microscopy image analyses. In short, this method enables a rapid, determination of factors which regulate the interactions between ovarian cancer spheroid cells invading through mesothelial and matrix barriers over time.

Ovarian cancer cell invasion into the mesothelial lining of the peritoneum is a dynamic process over time. Utilizing a real time analyzer, the invasive capacity of ovarian cancer cells in a spheroid-mesothelial cell co-culture model can be quantified over prolonged time periods, providing insights into factors regulating the metastatic process.

リアルタイムで中皮細胞の卵巣癌スフェロイドアタッチメントおよび浸潤の評価

Ovarian cancers metastasize by shedding into the peritoneal fluid and dispersing to distal sites within the peritoneum. Monolayer cultures do not ...

Murine Model for Non-invasive Imaging to Detect and Monitor Ovarian Cancer Recurrence

Epithelial ovarian cancer is the most lethal gynecologic malignancy in the United States. Although patients initially respond to the current standard of care consisting of surgical debulking and combination chemotherapy consisting of platinum and taxane compounds, almost 90% of patients recur within a few years. In these patients the development of chemoresistant disease limits the efficacy of currently available chemotherapy agents and therefore contributes to the high mortality. To discover novel therapy options that can target recurrent disease, appropriate animal models that closely mimic the clinical profile of patients with recurrent ovarian cancer are required. The challenge in monitoring intra-peritoneal (i.p.) disease limits the use of i.p. models and thus most xenografts are established subcutaneously. We have developed a sensitive optical imaging platform that allows the detection and anatomical location of i.p. tumor mass. The platform includes the use of optical reporters that extend from the visible light range to near infrared, which in combination with 2-dimensional X-ray co-registration can provide anatomical location of molecular signals. Detection is significantly improved by the use of a rotation system that drives the animal to multiple angular positions for 360 degree imaging, allowing the identification of tumors that are not visible in single orientation. This platform provides a unique model to non-invasively monitor tumor growth and evaluate the efficacy of new therapies for the prevention or treatment of recurrent ovarian cancer.

We describe a non-invasive animal imaging platform that allows the detection, quantification, and monitoring of ovarian cancer growth and recurrence. This intra-peritoneal xenograft model mimics the clinical profile of patients with ovarian cancer.

卵巣がん再発を検出し、モニターするための非侵襲的イメージングのためのマウスモデル

Epithelial ovarian cancer is the most lethal gynecologic malignancy in the United States. Although patients initially respond to the current standard of ...

卵巣がん-大網相互作用のための3D ex vivoモデルの確立

An Ex Vivo Model of Ovarian Cancer Peritoneal Metastasis Using Human Omentum

Ovarian cancer is the deadliest gynecologic malignancy. The omentum plays a key role in providing a supportive microenvironment to metastatic ovarian cancer cells as well as immune modulatory signals that allow tumor tolerance. However, we have limited models that closely mimic the interaction between ovarian cancer cells and adipose-rich tissues. To further understand the cellular and molecular mechanisms by which the omentum provides a pro-tumoral microenvironment, we developed a unique 3D ex vivo model of cancer cell-omentum interaction. Using human omentum, we are able to grow ovarian cancer cells within this adipose-rich microenvironment and monitor the factors responsible for tumor growth and immune regulation. In addition to providing a platform for the study of this adipose-rich tumor microenvironment, the model provides an excellent platform for the development and evaluation of novel therapeutic approaches to target metastatic cancer cells in this niche. The proposed model is easy to generate, inexpensive, and applicable to translational investigations.

著者スポットライト:がんと脂肪微小環境の相互作用を調査するための高度なex vivoモデル 

This protocol describes the establishment of a three-dimensional (3D) ex vivo model of cancer cell-omentum interaction. The model provides a platform for elucidating pro-tumor mechanisms within the adipose niche and for testing novel therapies.

ヒト大網を用いた卵巣癌腹膜転移の Ex vivo モデル

Ovarian cancer is the deadliest gynecologic malignancy. The omentum plays a key role in providing a supportive microenvironment to metastatic ovarian ...

In Vivo and Ex Vivo Approaches to Study Ovarian Cancer Metastatic Colonization of Milky Spot Structures in Peritoneal Adipose

High-grade serous ovarian cancer (HGSC), the cause of widespread peritoneal metastases, continues to have an extremely poor prognosis; fewer than 30% of women are alive 5 years after diagnosis. The omentum is a preferred site of HGSC metastasis formation. Despite the clinical importance of this microenvironment, the contribution of omental adipose tissue to ovarian cancer progression remains understudied. Omental adipose is unusual in that it contains structures known as milky spots, which are comprised of B, T, and NK cells, macrophages, and progenitor cells surrounding dense nests of vasculature. Milky spots play a key role in the physiologic functions of the omentum, which are required for peritoneal homeostasis. We have shown that milky spots also promote ovarian cancer metastatic colonization of peritoneal adipose, a key step in the development of peritoneal metastases. Here we describe the approaches we developed to evaluate and quantify milky spots in peritoneal adipose and study their functional contribution to ovarian cancer cell metastatic colonization of omental tissues both in vivo and ex vivo. These approaches are generalizable to additional mouse models and cell lines, thus enabling the study of ovarian cancer metastasis formation from initial localization of cells to milky spot structures to the development of widespread peritoneal metastases.

In Vivo and Ex Vivo Approaches to Study Ovarian Cancer Metastatic Colonization of Milky Spot Structures in Peritoneal Adipose

We outline a protocol that implements both in vivo and ex vivo approaches to study ovarian cancer colonization of peritoneal adipose tissues, particularly the omentum. Furthermore, we present a protocol to quantitate and analyze immune cell-structures in the omentum known as milky spots, which promote metastases of peritoneal adipose.

生体内および生体外では腹膜脂肪にミルキースポット構造の卵巣がん転移性コロニー形成を研究するためのアプローチで

High-grade serous ovarian cancer (HGSC), the cause of widespread peritoneal metastases, continues to have an extremely poor prognosis; fewer than 30% of ...

腹腔内卵巣癌転移の定量

要約

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のための免疫担当マウスにおける漿液性卵巣癌の同所性モデル in vivoで腫瘍イメージングとモニタリング

表面増強共鳴ラマン葉酸受容体を介して顕微鏡による卵巣癌の検出のためのナノプローブ比を散乱によるターゲット設定

in vitroで中皮クリアランスアッセイでそのモデルの卵巣がんの転移の初期段階を

An Orthotopic Mouse Model of Ovarian Cancer using Human Stroma to Promote Metastasis

リアルタイムで中皮細胞の卵巣癌スフェロイドアタッチメントおよび浸潤の評価

卵巣がん再発を検出し、モニターするための非侵襲的イメージングのためのマウスモデル

ヒト大網を用いた卵巣癌腹膜転移の Ex vivo モデル

ヒト大網を用いた卵巣癌腹膜転移の Ex vivo モデル

ヒト大網を用いた卵巣癌腹膜転移の Ex vivo モデル

生体内および生体外では腹膜脂肪にミルキースポット構造の卵巣がん転移性コロニー形成を研究するためのアプローチで