애벌레 Zebrafish의 생식소 조직의 해부

요약

여기서 우리는 제브라 피쉬 섹스의 분화 및 유지 보수의 조사를 용이하게 애벌레 제브라 피쉬의 성선 조직을 분리하기위한 프로토콜을 제시한다.

초록

야생 제브라 피쉬는 ZZ / ZW 성 결정 시스템을 가지고 있지만, 길 들여진 제브라 피쉬는 성 염색체를 잃었다. 그들은 게놈가 공동으로 개별 물고기의 성 정체성을 결정 전반에 걸쳐 여러 유전자가 분산 polygenic 성 결정 시스템을 활용합니다. 현재 유전자는 생식소의 발달을 조절에 관여하고 작동 방법이 어려운 남아있다. 일반적으로, 성선 조직을 분리하는 것은 성 발달 과정을 조사하기위한 첫 번째 단계입니다. 여기서 우리는 zebrafish의 유충 DPF (17) DPF (일 포스트 수정) 25에서 성선 조직을 분리하는 방법을 제시한다. 분리 된 성선 조직은 연속적 형태 및 유전자 발현 프로파일 링에 의해 조사 할 수있다.

서문

야생 제브라 피쉬 염색체 4의 주요 여성 성 결정은 ¹ (즉, 일반적인 실험실 균주)를 분실하거나 들여진 제브라 피쉬에서 수정됩니다. 대신, 그들은 온도, 저산소증, 식품 가용성 및 인구 밀도 등 환경 요인에 의해 동행 polygenic 성 결정 시스템을 가지고있다. 제브라 피쉬 성 개발의 상세한 메커니즘은 완전히 이해되지 않습니다. 일차 성 판정 신호 (들) / 무엇 이러한 제브라 성 결정이 발생한 경우 등의 근본적인 문제가 있으며, 유전자 생식선 변환의 제 1 ^{단계는, (3) 2} 답변 남아 조절한다.

제브라 피쉬 성 개발의 과정에서 몇 가지 중요한 단계로 인식되고있다. 개발의 초기 단계에서, 4 HPF (시간 포스트 수정) 원시 생식 세포 (PGC와) 사양을 받아야에서 시작 생식기 능선 마이그레이션 및분아 증식. PGC 번호와 생식 세포와 체세포 사이의 상호 작용은 생식선 차별화 ⁴ 중요하다. 13 DPF (일 포스트 수정)에서, 생식선은 미분화 단계에 있습니다. 17 DPF으로 생식선 미래의 여성과 남성 모두에서 양방향 가능성이 난소로 발전. 난소에서 세포 사멸에 의존 전환은 고환에 21 ~ 25 DPF에서 시작하고 몇 주 동안 계속 사용할 수 있습니다. DPF (35)에 의해 상기 생식선의 성별 결정된 성별 별 생식 생산 ⁷ 양쪽 난소에서 진행되고, ^{6, 5} 고환.

지금까지 다양한 후보 유전자 및 성 결정 메커니즘이 제안되었다. 단백질 체학 및 transcriptomic ^분석은 성적으로 동종 이형 표현으로 많은 유전자를 격리하고 이들 유전자는 제브라 피쉬 ^(8)에서 성 차별을 연구하기 위해 사용되어왔다 ^9,10. 예를 들면, 애벌레 제브라에서 cyp19a1a 유전자 특이 아니라 고환 ^{(11), (12)} 난소 표현된다. 또한 AMH 유전자 약하게 난소 난포 과립 막 세포에서 발현되지만 강하게 정소 세르 톨리 세포 ^(13)이다. 반대로, 바사 유전자가 지속적으로 적합한 생식선 마커 ^{(14), (15)} 제조, 남녀 모두 지브라 피쉬의 생식 세포에서 발현된다.

생식선 유전자 발현 량을 조사하는 것은, 특히 양방향 전위 난소 단계 ^{3, 9에} 결정 성 및 분화의 분자 메커니즘을 이해하는 것이 중요하다. 그러나 애벌레 제브라 피쉬와 상응 작은 생식선의 작은 크기 gonada의 분리를 복잡하게추가로 분자 분석을위한 조직 L. 사용 이전의 연구는 opercula 항문 구멍 ⁽¹⁶⁾ 사이에 전체 트렁크 영역을 해부. 이 준비는 포함 생식선 있지만, 여러 조직과 기관으로 구성되어 있습니다. 대안 적으로, 바사 같은 성선 GFP 특이 식 트랜스 제닉 동물 : EGFP는 형광 활성화 세포 분류 (FACS)과 레이저 캡처 마이크로 해부 ^{(17), (18)를} 통하여 생식선 조직의 분리를 위해 사용 하였다. 그러나 그들의 광범위한 응용이 제한됩니다. 여기, 우리는 17 DPF 25 DPF에서 애벌레 제브라 피쉬에서 성선 조직을 분리하는 간단한 절차를 설명합니다. 우리는 다른 기관에 대한 생식선의 위치를 ​​보여 주변 조직에서 형태 학적 손상 생식선을 격리 할 것. 우리는 더 높은 정량 PCR을 통해 트렁크 조직 (과 비교 고립 된 생식선로 표현 등 바사와 cyp19a1a과 생식선 특정 유전자를 보여qPCR에) 분석. 본 프로토콜은 이에 생식기 조직 ^(19)의 연속적인 분자 분석을 가능하게 식별, 분리, 정제 및 RNA 유생 지브라 피쉬의 생식선 특정 유전자의 증폭을 허용한다.

프로토콜

Zebrafish의 실험은 복단 대학 기관 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인되었습니다. Zebrafish의 표준 절차 ^(20)에 따라 상승과 사육되었다.

1. 준비

1. 애벌레 zebrafish의 DPF (17) DPF 25 육성
   1. 교차 전날 늦은 오후에 건너 탱크로 전송이 남성과 두 여성 성인 제브라 피쉬 (건강, 기존 3 개월에서 6 개월, 실험실 앱 스트레인). 장벽으로 남성과 여성을 분리합니다. 다음 날 아침, 탱크의 물을 새로하고 그들이 짝짓기를 할 수 있도록 장벽을 제거합니다. 100mm 배양 접시 수정 후 1 ~ 2 시간에서 계란을 수집합니다.
   2. 초기 개발 시간 (4 일) 동안 285 ° C에서 40 mL의 배아 매체 (EM)가 100mm의 접시에 약 40 배아를 유지하고 하루 두번 EM을 새로. 1 L 탱크 (300 mL의 시스템 물 (40) 유충)에 유충을 전송하고 5 DPF 후 라이브 로티퍼 (전체 공급, 하루에 두 번)로 공급.10 DPF 후 대신 로티퍼 다이어트의 라이브 소금물 새우 피드. ²¹ DPF (14)에 다시 물 순환 시스템에 물고기를 전송합니다.
   3. DPF (17) 또는 DPF (25)까지 다시 순환 시스템 유충 제브라 올리기. 광 / 암 사이클을 보장하는 시스템 물 10분의 14 H하여 pH 값은 약 7.2이다. DPF (17) (5.5 ~ 6.8 mm) 및 DPF (25) 유충 ²² (8 mm 내지 11)의 본체의 길이를 측정한다.
2. 해부 2 % 한천 플레이트를 준비합니다.
   1. 200 ㎖의 멸균 수에 4g 한천 추가. 이 투명 될 때까지 전자 레인지에 가열하여 혼합합니다.
   2. 다음, 직경 60mm 페트리 접시 (플레이트의 약 1/3 부피)에 부어 약 15 분 동안 한천 용액을 냉각. 4 ℃에서 응고 한천 플레이트를 저장합니다.

2. 프로토콜 : 1 애벌레 DPF 성선의 (17)의 조직과 25 해부

1. 17 DPF의 애벌레를 마취 탱크에 얼음 조각을 추가합니다. 전송할30 mL의 차가운 링어의 솔루션 페트리 접시 차게 100 mm의 마취 유충. 완전히 유충을 마취 적어도 15 분 동안 냉각 링거액 배양 물고기를 유지합니다.
2. 작은 플라스틱 스푼으로 미리 냉각 된 한천 플레이트에 유충을 전송합니다. 링거액을 차게 10 mL에 전체 물고기의 몸을 담그고 부드럽게 옆으로 누워.
3. 25X 스테레오 현미경의 비전 필드에서 다음 작업을 수행합니다. 안정화를위한 핀셋 물고기 몸통을 클램프. 핀셋의 또 다른 쌍의 심장으로 항문에서 길이 방향으로 복부를 추출. 부드럽게 내부 장기를 노출 신체의 한쪽에 피부와 근육을 제거합니다.
4. 주의 부레에 복부 장기의 질량을 제거합니다. 부레에 부착 된 생식선의 손상을 방지.
5. 수영 방광과 전방 몸 사이의 연결을 잘라. 전체 부레 부드럽게 성선 조직을 잡아 당깁니다.
   참고 : 대부분의 경우S는, DPF (17)의 생식선 조직은 상피 조직과 주변 protonephridium 포함한다. 그들은 쉽게 서로 분리되지 않지만, 25 그것은 쉽게 분리 할 수 ​​DPF. 생식소는 항문에 연결되어 있습니다. 항문에서 서로 접속 좌우 생식선과 접합 명확히 표시 될 것이다.
6. 주의 부레에서 성선 조직을 분리하고 주변의 지방 조직을 정리 핀셋을 사용합니다.
7. 즉시 200 μL 링거액을 함유하는 예냉 1.5 mL의 원심 분리 튜브로 절연 생식선 조직 옮긴다. 모든 성선 조직이 유충에서 분리 될 때까지 얼음에 튜브를 유지합니다.
8. 2.7 - 단계 2.1에 설명 된대로 유충 DPF (25)의 생식선을 해부하다.

3. 프로토콜 2 : 절연 성선 조직의 유전자 발현 분석

1. 애벌레 성선 조직에서 총 RNA를 추출합니다.
   1. 새의 RNase없는 일에 고립 된 성선 조직을 전송합니다.5 ㎖의 튜브는 링거액을 제거합니다. 100 μL 용해 솔루션을 추가합니다. 조직까지 소용돌이가 완전히 용해된다.
   2. 제조업체의 지침에 따라 총 RNA 추출 절차를 수행합니다.
   3. 내가 버퍼 10 배의 DNase의 1/10 볼륨과 RNA 솔루션의 DNase I의 1 μL를 추가하고 부드럽게 섞는다. 37 ° C에서 20 분 동안 인큐베이션.
   4. RNA의 솔루션에 1/10 볼륨 DNase의 불 활성화 시약을 추가합니다. 70 ° C에서 10 분 동안 인큐베이션. 분광 광도계를 사용하여 전체 RNA의 농도를 측정한다. -20 ° C에서 보관하십시오.
2. 첫 번째 가닥 cDNA 합성을 수행
   1. 제조의 프로토콜 다음 첫 번째 가닥 cDNA 합성을 수행 할 올리고 (DT) -linker 프라이머를 사용합니다. 20 μL에 총 반응 볼륨 1 RNA의 μg의 2를 추가합니다.
   2. 45 ° C에서 90 분 동안 반응 액을 인큐베이션. 5 분 동안 70 ℃에서 가열하여 반응을 정지.
   3. cDNA를 1 μL의 RNase H를 추가하기 때문에기술인 것 잔류 RNA를 제거합니다. ~ 13,000 X g에서 10 초 동안 부드럽게 원심 분리기 섞는다. 37 ° C에서 20 분 동안 인큐베이션. 20 μL 뉴 클레아없는 물을 추가합니다. -70 ° C에서 보관하십시오.
3. 형광 정량 PCR을 수행
   1. 형광 염료와 자전거 타는 시스템에 qPCR을 수행합니다. 15 초, 30 초 동안 68 ° C를 들어, 15 초 동안 95 ° C에서 Tm은 -5 ℃로 35주기 다음 PCR 사이클링 조건을 사용한다. (: GTCCTGTTGTCTCCTACTGTCG, REV : FWD CATTTGAGTTGAATATGATGCCCTG), cyp19a1a :; : AMH (GCGGAGAGGTGGAAGAGAGAATG FWD : 회전 GTGGATGGCAGCAGTACGAC)를 다음과 같이 프라이머 시퀀스를 사용 nanos3 (FWD : GCTCGGTGTACGCCAAATCAACAT, REV : CCAAGTGAAAACACAACACCAGTGC), 바사 (FWD : ATCGCATAGGAAGAACTGGACGCT, REV : CCAAGTGAAAACACAACACCAGTGC) 및 β 액틴 (FWD : AGTGCGACGTGGACATCCGTA; REV : GCACTTCCTGTGGACGATGGA) ^19.

결과

생식기의 해부는 앱 스트레인 애벌레 제브라 피쉬에서 수행되었다. 도 1은 DPF (17)와 DPF (25)에서 유충 지브라 피쉬의 전형적인 생식선의 조직을 보여준다. 첫째, 피부와 복부의 한 쪽의 근육은 내부 장기를 노출 절단한다. 내부 장기의 질량을 제거한 후, 함께 생식소와 부레 트렁크에 남아 있습니다. 생식선은 ( '도 1b에

토론

제브라 피쉬는 강력한 모델이되었다 광범위하게 개발 및 질병 관련 연구에 사용됩니다. 뇌, 심장, 생식선, 신장 등의 성인 제브라 피쉬에서 기관의 분리를위한 방법은,도 ^{23, 24, 25를} 기록하고있다. 때문에 작은 크기와 애벌레 제브라 피쉬의 성선 조직의 역동적 인 리모델링에, 성선 조직의 분리가 어려운 작업입니다. 애벌레 생...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
Cell culture dish 100 mm	Corning	430167	For embryo incubation
20x EM			For a 1 L needed: add 17.5 g NaCl, 0.75 g KCl and 2.9 g CaCl·2H2O; then add 0.41 g KH2PO4, 0.412 g Na2HPO4 anhydrous and 4.9 g MgSO4·7H2O.
1x EM			Dilute 20x EM in distilled water
AGAROSE G-10	Gene	121985	For preparing the 2% agar plates
Trizol Reagent	Invitrogen	15596-026	For RNA isolation
Meter glass	Shen Bo	250 ml	For preparing the 2% agar plates
Microwave Oven	Midea	M1-211A	For heating the AGAR
Tweezer DUMONT#5INOX	World Precision Instrument	500341	For dissection
Stereomicroscope	Motic	SMZ168	For dissection
Pure water equipment	Millipore
Ringer’s solution			For a 1 L needed: Add 6.78 g NaCl, 0.22 g KCl, 0.26 g CaCl2 and 1.19 g Hepes; then fill to 1 L; Adjust pH to 7.2. Sterilize by filtration and keep in an autoclaved clear polycarbonate container.
Transfer pipette	Samco	202, 204
Metal bath	QiLinbeier		Model GL-150
Microscope	Leica	M205 FA	For photomicrograph
Centrifuge	Eppendorf	5417R
Micro Scale RNA Isolation Kit	Ambion	AM1931	For RNA isolation from gonad tissues
Dnase I	Sigma	AMPD1-1KT	For DNA digestion in the RNA solution
RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit	Thermo Scientific	#K1631	For first-strand cDNA synthesis
Rnase H	Thermo Scientific	#EN0202	For digesting the residual RNA in the cDNA solution.
SYBR Green Realtime PCR Master Mix	TOYOBO	QPK-201	This product is a Taq DNA polymerase-based 2x master mix for real-time PCR and  applicable for intercalation assay with SYBR Green I.
Spectrophotometer	Ne Drop	OD-2000+	Measuring the concentration of the total RNA
Mastercycler	Eppendorf	AG 22331 Hamburg	gene expression profiling