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요약

Updegraff 방법은 셀룰로오스 추정에 가장 널리 사용되는 방법입니다. 이 데모의 주요 목적은 식물 바이오매스 샘플에서 셀룰로오스 함량을 추정하기 위한 상세한 Updegraff 프로토콜을 제공하는 것입니다.

초록

셀룰로오스는 광합성및 세포벽의 주요 하중 베어링 성분에 의해 생성되는 지구상에서 가장 풍부한 폴리머이다. 세포벽은 세포 성장의 강도, 강성, 속도 및 방향, 세포 모양 유지 보수 및 생체 및 무생물 스트레스요인으로부터의 보호를 제공함으로써 식물 성장 및 개발에 중요한 역할을 합니다. 세포벽은 주로 셀룰로오스, 리그닌, 헤미셀룰로오스 및 펙틴으로 구성됩니다. 최근 식물 세포벽은 2세대 바이오 연료 및 바이오 에너지 생산을 목표로 하고 있습니다. 구체적으로, 식물 세포벽의 셀룰로오스 성분은 셀룰로오스 에탄올의 생산에 사용된다. 바이오매스의 셀룰로오스 함량의 추정은 기본 및 적용 된 세포 벽 연구에 매우 중요합니다. Updegraff 방법은 간단하고 견고하며 식물 바이오매스의 결정성 셀룰로오스 함량을 추정하기 위한 가장 널리 사용되는 방법입니다. Updegraff 시약으로 치료시 알코올 불용성 조세포 벽 분획은 헤미셀룰로오스와 리그닌 분획을 제거합니다. 나중에, Updegraff 시약 저항하는 셀룰로오스 분획은 단황 포도당 단위로 셀룰로오스 균합고를 가수분해하기 위하여 황산 처리를 실시한다. 회귀 라인은 포도당의 다양한 농도를 사용하여 개발되고 실험 샘플에서 셀룰로오스 가수 분해시 방출되는 포도당의 양을 추정하는 데 사용된다. 마지막으로, 셀룰로오스 함량은 색칠성 앙위 분석에 의한 포도당 단량의 양을 기준으로 추정된다.

서문

셀룰로오스는 1차 세포벽과 이차 세포벽 모두에 존재하는 세포벽의 1차 하중 베어링 성분입니다. 세포벽은 식물 세포를 포위하는 세포외 매트릭스이며 주로 셀룰로오스, 리그닌, 헤미셀룰로오스, 펙틴 및 매트릭스 단백질로 구성됩니다. 식물 바이오매스의 약 1/3은 셀룰로오스1이며, 세포 성장의 강도, 강성, 속도 및 방향, 세포 모양 유지 보수 및 바이오틱 및 무생물 스트레스요인으로부터의 보호를 제공함으로써 식물 성장과 개발에 중요한 역할을 합니다. 면 섬유는 95% 셀룰로오스2 함량을 포함하고 있으며, 나무는 식물 종 및 장기 유형에 따라 셀룰로오스의 40 %에서 50 %를 함유하고있습니다3. 셀룰로오스는 β-1,4 글리코시딕 본드4에의해 연결된 포도당 잔류물의 불협화기인 셀로바이오제의 반복 단위로 구성된다. 셀룰로오스 에탄올은 식물 세포벽5에존재하는 셀룰로오스로부터 유래된 포도당으로부터 생산된다. 셀룰로오스 섬유는 각 마이크로 피브릴이 500-15000 포도당 단량제1,6을가진 코어 단위로 작용하는 몇몇 마이크로 피브릴로 구성됩니다. 셀룰로오스 모합합체는 플라즈마 멤브레인 임베디드 셀룰로오스 신타스 복합체(CSC)1,7에의해 합성된다. 개별 셀룰로오스 신타제 A(CESA) 단백질은 글루칸 사슬을 합성하고 인접한 글루칸 사슬은 수소 결합에 의해 연결되어 결정성 셀룰로오스1,8을형성한다. 셀룰로오스는 2개의 우세한 형태, 셀룰로오스 Iα 및 셀룰로오스 Iβ를 네이티브 형태9로여러 결정 형태로 존재한다. 더 높은 식물에서 셀룰로오스는 셀룰로오스 Iβ 형태로 존재하며, 낮은 식물 셀룰로오스는 Iα 형태10,11에존재한다. 전반적으로, 셀룰로오스는 식물 세포벽에 강도와 강성을 부여하는 데 중요한 역할을한다.

1세대 바이오 연료는 주로 옥수수 전분, 지팡이 설탕 및 사탕무 설탕에서 생산되며, 2세대 바이오 연료는 비식품 식물바이오매스 세포벽재료(12)의바이오 연료 생산에 주력하고 있다. 결정성 셀룰로오스 함량의 정확한 추정은 셀룰로오스 생합성 및 세포벽 역학에 대한 근본적인 연구뿐만 아니라 적용 된 바이오 연료 및 바이오 제품 연구에도 중요합니다. 식물 바이오매스의 셀룰로오스 추정에 최적화된 다양한 방법이 개발되고 최적화되어 있으며, Updegraff 방법은 셀룰로오스 추정에 가장 널리 사용되는 방법입니다. 셀룰로오스 추정을 위한 첫번째 보고된 방법은 1908년13년에십자가와 베반에 의해 이었습니다. 이 방법은 황산나트륨에 의한 대체 염소화 및 추출 원리에 기초하였다. 그러나, 원래의 변형된 프로토콜뿐만 아니라 크로스 및 베반 방법의 변형된 프로토콜에 의해 얻어진 셀룰로오스는 상당한 양의 자일란과만난(14)에더하여 리그닌의 작은 분수의 오염을 보였다. 셀룰로오스 분획에서 리그닌과 헤미셀룰로스를 제거하기 위한 몇 가지 수정에도 불구하고, 크로스 베반 방법은 셀룰로오스와 함께 상당한 양의 만란을 유지했습니다. 나중에, 쿠르슈너의 방법은 셀룰로오스(15)를추출하기 위해 질산과 에탄올을 사용하여 개발되었다. 이 방법은 총 리그닌과 펜토산의 75%가 제거되었지만 진정한 셀룰로오스 결과는 크로스와 베반의 염소화 방법에 의해 추정된 것과 동일하다고 명시하였다. 또 다른 방법(Norman 및 Jenkins)은셀룰로오스(16)를추출하기 위해 메탄올 벤젠, 황산나트륨 및 하이포염소산나트륨을 사용하여 개발되었다. 이 방법은 또한 리그닌의 일부 일부를 유지 (3%) 그리고 셀룰로오스의 정확한 추정으로 이어지는 펜토산의 상당한 금액. 나중에, 키젤과 Semiganowsky는 80% 농축 황산을 사용하여 셀룰로오스에 다른 접근 법을 사용했으며, 가수 분해 감소 된 설탕은 버트 랜드의 방법에 의해 추정되었다17. 두 가지 방법, 왁스맨스와 스티븐스18 과 살로14,19 키셀과 세미 가노우스키의 방법에 따라 개발 된, 또한 이전 방법에 비해 4-5 % 적은 셀룰로오스 함량을 산출20.

Updegraff 방법은 결정성 셀룰로오스 함량의 추정을 위해 가장 널리 사용되는 방법입니다. 이 방법은 1969년21년셀룰로오스의 측정을 위해 Updegraff에 의해 처음 기술되었다. Updegraff 방법은 쿠르슈너 방법 (질산 사용), 키셀 및 세미노프스키 방법 (황산을 사용하여 포도당 모노머로 셀룰로오스의 가수 분해)를 통합하고, 포도당 및 결정 셀룰로오스 함량22의간단한 색소 추정을위한 빌스와 실버맨의 반위 분석법을 통합합니다. 이 방법의 원리는 아세트산과 질산(Updegraff 시약)을 사용하여 균질화된 식물 조직에서 헤미셀룰로오스와 리그닌을 제거하는 것으로, 아세트/질산 내성 셀룰로오스를 더 처리 및 추정을 위한 세포산내성 셀룰로오스를잎입니다(15) 아세트/질산 내성 셀룰로오스는 셀룰로오스를 포도당 단량체로 분해하기 위해 67%의 황산으로 처리되며, 방출된 포도당 단량제는 안계학적 분석21,23에의해 추정된다. 원래 Updegraff 방법의 몇 가지 수정은 anthrone분석서 (24)에의해 절차 및 셀룰로오스 추정을 단순화하는 데 사용되었다. 광범위하게 이 메서드는 5단계로 나눌 수 있습니다. 1단계에서는 식물 재료가 제조됩니다. 제2상에서, 조세포벽은 식물 세포벽의 핵심 성분이기 때문에 총 바이오매스로부터 분리된다. 나중에, 제 3 단계에서, 셀룰로오스는 Updegraff 시약으로 처리하여 비 셀룰로오스 세포벽 성분으로부터 분리된다. 네 번째 단계에서, 아세트/질산 내성 셀룰로오스는 황산 치료에 의해 포도당 단량체로 분해된다. 셀룰로오스의 황산 치료는 황산을 가진 포도당 단량제의 반응에서 5-하이드록시메틸푸르랄 화합물의 형성을 초래한다. 마지막으로, 마지막 단계에서, 왕좌는 이전 단계25에서생성된 모피 화합물로 끓여 서 녹색 의 푸른 복합체를 생성한다. 이 왕좌 기반 색법 방법은 드레이우드에 의해 1942 년에 처음 사용되었습니다. Anthrone는 산성 조건하에서 5-하이드록시메틸푸르랄과 같은 펜토스 및 헥소스 탈수 제품의 furfural 화합물을 식별하는 염료입니다. 헥소스를 가진 반응은 펜토스25에비해 강렬한 색상과 더 나은 반응을 생성합니다. 결합된 포도당의 양은 620nm에서 분광계 흡광도에 의해 측정되고 녹색 파란색 복합체의 강도는 시료의 설탕 양에 직접적으로 비례한다. 측정된 흡광도 값은 샘플의 포도당 농도를 계산하기 위해 포도당 표준 곡선 회귀 라인과 비교하였다. 측정된 포도당 함량은 식물 바이오매스의 셀룰로오스 함량을 추정하기 위해 사용되었다.

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프로토콜

1. 실험 준비

  1. 말린 식물 재료를 미세 한 분말로 갈아 넣습니다.
  2. 단백질 용해화 버퍼 (PSB): 1 M 트리 (pH 8.8), 0.5 M 에틸렌디아민테트라아세트산 (EDTA) (pH 8.0)의 스톡 솔루션을 준비하고 오토클레이브. 멸균 물에 50mM Tris, 0.5mM EDTA 및 10% 나트륨 도데실 황산염(SDS)의 최종 농도로 이러한 스톡 솔루션에서 신선한 PSB 버퍼를 만듭니다.
  3. 70% 에탄올(v/v)의 100mL준비: 100% 에탄올 70mL, 멸균수 30mL를 준비한다.
  4. 메탄올 100mL 준비: 클로로폼은 1:1 비율(50mL 메탄올 및 50mL 클로로폼)으로 준비한다.
  5. Updegraff 시약의 82.5 mL을 준비합니다. 75mL의 아세트산을 7.5mL의 질산에 추가하여 물의 궁극적인 비율인 아세트산: 질산은 2:8:1(v/v)에 있습니다. 80% 아세트산을 제조하려면 멸균수(v/v)의 20mL에 빙하 아세트산 80mL를 용해하십시오.
  6. 1 mg/mL 포도당 용액의 신선한 육수를 준비하십시오. 10mL의 물 (w /v)에 포도당 10 mg을 녹입니다.
  7. 67% 황산(v/v)의 100mL를 준비하려면 67mL의 농축 황산을 33mL의 물에 추가하십시오. 항상 유리 병을 사용하고 물에 천천히 산을 추가합니다. 이 단계는 외재 (열을 방출)입니다. 따라서, 얼음에이 솔루션을 준비하고 사용하기 전에 적어도 2 시간 동안 냉장고에서 냉각.
  8. 실험 샘플의 각 배치에 대해 신선한 0.2 %의 왕좌 (w /v)를 준비하십시오. 무게 0.2 g의 왕좌와 알루미늄 호일로 싸여 유리 병에 미리 냉장 농축 황산의 100 mL에 용해. 사용하기 전에 1-2 시간 동안 냉장고에 보관하십시오.
    참고: 실험 당일 냉장고에 농축된 황산이 미리 들어있으며, 포도당 함량을 정확하게 추정하기 위해 새로운 안장 제제를 권장합니다.

2. 식물 바이오매스 재료의 준비

  1. 동일한 성장 조건, 동일한 발달 단계, 식물의 동일한 위치 및 조직의 동일한 유형 (잎 / 줄기 / 뿌리)와 온실에서 성장 2 개월 된 면 실험 라인에서 식물 바이오 매스 샘플을 수집합니다.
    참고: 각 샘플에 대해 최소 3개의 생물학적 복제를 수집합니다. 뿌리 조직에서 모든 먼지를 제거하기 위해 물로 철저히 씻으십시오.
  2. 실온에서 종이 타월에 2일 동안 공기 건조 루트 조직을 사용하여 수분 함량을 제거합니다(도1).
    참고: 곰팡이 오염을 방지하기 위해 셀룰로오스 추정을 위한 공기 건조 원하는 조직.
  3. 루트 샘플을 개별 컨테이너에 넣습니다. 그런 다음 라벨을 부착하고 10일 동안 49°C에서인큐베이터로 건조시다(재료표).
    참고: 또는, 동결 건조기는 식물 바이오매스 물질에 화학적 변화를 일으키지 않고 공장 조직을 1~2일 이내에 건조시키는 데 사용할 수 있다.
  4. 말린 샘플을 작은 조각으로 자르고 액체 질소로 동결하고 박격포와 유봉, 냉동고 공장 또는 바이오 매스 분쇄기(그림 1)를사용하여 균일 한 미세 분말로 갈아냅니다.
    참고: 냉동고 공장은 3사이클동안 10cps의 속도로 사용되었습니다.
  5. 접지조직(도 2)을수집하고 세포벽 추출을 진행한다.
    참고: 샘플을 실온의 밀폐 용기에 저장하여 이 시점에서 프로세스를 일시 중지할 수 있습니다.

3. 식물 바이오매스에서 조세포벽 추출

참고: 식물 세포벽에는 셀룰로오스, 리그닌, 비셀룰로오스 성분, 펙틴, 매트릭스 단백질, 페놀 화합물 및물(26)이함유되어 있다. 셀룰로오스가 세포벽에 존재하기 때문에, 첫 번째 단계는 식물바이오매스(26)의비세포벽 성분으로부터 세포벽 성분을 분리하는 것입니다.

  1. 세포벽 추출 공정을 시작하기 전에 개별 빈 2mL 튜브를 라벨및 계량합니다.
  2. 더 진행하기 전에 실험실 노트북에 빈 튜브 가중치를 기록하십시오.
  3. 무게 20 단계에서 분말 조직의 mg 2.5 미리 무게 2 mL 튜브에 전송 하 고 그들을 레이블.
  4. 단백질 용해화 완충제(PSB) (50mM Tris 염산염(HCl) 완충 pH 8.8, 0.5mM EDTA, 10% 나트륨 도데실 황산염(SDS)을 첨가하여 단백질을 용해시켰다. 소용돌이와 원심분리기는 실온(RT)에서 5분 동안 25,200 x g의 소용돌이. 원심 분리 후, 상체를 버리고 펠릿을 저장합니다.
    참고: 단백질 성분을 분석해야 하는 경우 상체를 저장할 수 있습니다.
  5. 3.4 단계를 두 번 더 반복합니다.
  6. 유지 된 펠릿에 증류수와 소용돌이 1 mL을 추가하십시오. 실온(RT)에서 5분 동안 25,200 x g의 원심분리기와 상류체를 제거합니다.
  7. 3.6 단계를 두 번 더 반복합니다.
  8. 저장된 펠릿, 소용돌이에 70% 에탄올 1mL을 넣고 수조/열 블록에 70°C에서 1시간 동안 가열하여 샘플에서 수용성 성분과 전분을 제거합니다. RT에서 5 분 동안 25,200 x g의 소용돌이와 원심 분리기.
  9. 3.8 단계를 한 번 더 반복합니다.
  10. 펠릿에 1mL의 100% 메탄올과 소용돌이를 추가합니다. 실온(RT)에서 5분 동안 25,200 x g의 원심분리기와 상류체를 제거합니다.
  11. 펠릿과 소용돌이에 클로로폼/메탄올 1mL(클로로폼 및 메탄올 1:1 비율)를 넣습니다. RT에서 5 분 동안 25,200 x g의 원심 분리기와 상체를 제거하십시오. 메탄올 및 클로로폼 용매를 첨가하여바이오매스(27)로부터지질 분획을 용해시키고 제거한다.
  12. 펠릿에 1mL의 100% 아세톤과 소용돌이를 넣습니다. 실온에서 5분 동안 배양하십시오. RT에서 5 분 동안 25,200 x g의 원심 분리기와 상체를 제거하십시오. 아세톤은 바이오매스28,29에서엽록소 및 자유 지방산과 같은 안료를 제거한다.
  13. 하룻밤 사이에 37°C에서 펠릿을 말리거나 진공 건조에 의해 더 진행하십시오.
    참고: 말린 펠릿은 결정성 셀룰로오스 추정에 사용되는 조세포벽입니다. 이 시점에서 공정을 일시 중지하거나 건조 시료를 위한 진공 건조기사용으로 더 진행할 수 있습니다.

4. Updegraff 시약 (아세트 및 질산)으로 치료하여 비 셀룰로오스 성분을 제거합니다.

참고: 이 프로토콜에는 산 및 기타 화학 물질의 사용이 포함됩니다. 프로세스 전반에 걸쳐 개인 보호 장비(PPE)를 착용하십시오.

  1. 말린 조세포 벽 펠릿 5 mg을 신선한 2mL 나사 캡튜브에 넣습니다. 정확한중량(그림 3)30을참고하십시오.
  2. 이 시점에서 양수 컨트롤을 포함합니다. 80% 셀룰로오스 함량을 산출하는 양수 제어로 필터 용지 2mg(재료 표)을사용하십시오.
  3. 무게가 있는 5 mg의 세포벽 추출물과 양수 조절에 Updegraff 시약의 1.5mL를 추가합니다. 소용돌이에 의해 혼합.
    참고: 양수 제어는 이 단계의 실험 샘플과 동일한 방식으로 처리되어야 합니다. 이 단계는 적절한 개인 보호 장비 (PPE)와 연기 후드에서 수행해야합니다.
    주의: 이 단계는 샘플의 튀기고 튜브의 터지는 것을 방지하기 위해 나사 캡 튜브에서 수행되어야합니다. 양수 제어를 위한 3개의 복제와 더불어 각 견본의 3개의 생물학 복제는 포함되어야 합니다.
  4. 현탁액을 끓는 수조에서 30분 동안 100°C로 가열하고 벤치에서 10분 동안 식힙니다. RT에서 10 분 동안 25,200 x g의 원심 분리기. 원심 분리에 의해 상체를 제거하고 펠릿을 저장합니다.
    참고: 생성된 폐기물은 유기 용매, 황산 및 Updegraff 시약(아세트산 및 질산)을 위해 별도로 수거해야 합니다. 아세트산과 질산을 가진 폐기물은 통풍이 잘 되는 캡으로 시원한 온도에서 보관되어야 하며 폭발을 방지하기 위해 다른 유기 용매 및 기타 산과 혼합해서는 안 됩니다.
  5. 펠릿에 1mL의 물을 넣습니다. RT에서 10분 동안 25,200 x g의 원심분리기는 수퍼나티의 500 μL을 제거하고 튜브에 아세톤 1mL을 추가합니다.
  6. RT에서 5 분 동안 25,200 x g의 원심 분리기는 1 mL의 상퍼를 제거하고 RT에서 5 분 동안 25,200 x g에서 튜브및 원심 분리기에 1 mL의 아세톤을 추가합니다.
  7. 원심 분리 후, 모든 상체를 제거하고 아세톤의 1 mL에서 펠릿을 중단합니다. 실온에서 5분 동안 튜브를 배양하고 RT에서 5분 동안 25,200 x g에서 회전합니다.
  8. 상체를 버리고 펠릿을 저장합니다. 펠릿을 하룻밤 사이에 37°C에서 건조시키십시오(그림3).
    참고: 이 시점에서 공정을 일시 중지하거나 건조를 위해 진공 건조기를 사용하여 계속 하고 다음 단계로 진행할 수 있습니다.

5. 포도당 단량체 단위를 생성하는 산에 의한 셀룰로오스의 가수 분해

  1. 말린 펠릿에 67% 황산 1mL를 넣습니다. 소용돌이는 산에 완전히 펠릿을 혼합합니다.
  2. 실온에서 튜브를 1시간 동안 흔들어 셀룰로오스 펠릿을 67% 황산으로 녹입니다.
    참고: 대안으로, 67% 황산에서 셀룰로오스 펠릿의 용용화는 셰이커에서 잠복식 30분 후 10분 동안 각 시료의 초음파 처리에 의해 개선될 수 있다. 초음파 처리 후, 샘플은 RT에서 셰이커에서 다시 배양 할 수 있습니다. 그러나, 우리는 우리가 원유 세포벽 추출물의 5 mg으로 시작할 때 초음파 처리없이 셀룰로오스 펠릿의 완전한 용해도를 관찰(도 3). 이 절차는 다양한 식물 바이오 매스 샘플3에적합했다.

6. 셀룰로오스 함량의 반위 분석 및 추정에 의한 포도당 함량 측정

  1. 이 단계에서 셀룰로오스는 무료 포도당 단조량의 형태입니다. 분광측법에 의해 시료에 존재하는 포도당의 양을 측정하여 셀룰로오스의 양을 결정한다.
  2. 5단계에서 시료의 10μL을 복용하여 멸균 증류수 490μL에 추가하여 각 시료를 500 μL로 희석시켰다.
  3. 0.2%의 1mL을 각 튜브에 새로 준비한 앙위원 시약을 넣고 소용돌이에 섞어서 즉시 섞습니다.
  4. 샘플을 100°C에서 10분간 끓이고 얼음에서 튜브를 5분간 식힙니다. 각 샘플의 200 μL을 96 웰 플레이트의 3개의 우물에 옮기. 96 웰 플레이트를 분광광계에 적재하여 620 nm에서 흡광도를 측정합니다.
    참고: 고온에서 끓는 경우 나사로 덮인 튜브를 사용하여 유해한 화학 물질의 튀는 것을 방지하고 시료 손실을 방지하십시오.

7. 포도당 표준 곡선의 준비

  1. 포도당 표준을 준비하려면 10 mg의 포도당을 10 mL의 멸균 증류수에 용해하여 1 mg / mL 포도당의 신선한 육수를 만듭니다. 이 스톡 용액은 20 μL 증분(0, 20, 40, 60, 80,100,120,140, 160, 180 μL)에 1 mg/mL의 이 스톡 용액을 첨가하여 0μg에서 180 μg/mL농도까지의 포도당 기준을 준비합니다(총 부피 1mL). 멸균 수를 첨가한 후 각 포도당 기준을 소용돌이시다.
  2. 이 10개의 다른 농도에서, 신선한 2 mL 나사 덮인 튜브로 각 포도당 농도의 알리쿼트 500 μL.
  3. 각 튜브에 갓 준비된 0.2%의 1mL을 넣고 소용돌이에 섞어 바로 섞습니다. 얼음에 배양하고 100 °C에서 10 분 동안 끓인 다음 5 분23동안 얼음에 인큐베이션이 있습니다.
  4. 각 표준의 200 μL을 96개의 마이크로 티터 플레이트에 3개의 기술 복제를 위해 3개의 우물로 옮기고 620 nm(그림3)에서흡광도를 측정한다.
  5. 620 nm(도7)에서정규화된 흡광도 값에 대해 상이한 포도당 농도(0~180 μg/mL)를 플로팅하여 표준 포도당 곡선을 개발한다. 흡광도 값에서 생성된 회귀 라인 Y= mx+c를 사용하여 준비된 샘플의 셀룰로오스 함량을 계산합니다.
    참고: 포도당 표준은 실험의 각 세트에 대해 갓 준비해야합니다. 이러한 값이 표준 곡선 흡수도 값의 범위 내에 속할 수 있도록 OD 값이 너무 높으면 포도당의 농도가 증가되어야 한다. 회귀 라인은 샘플의 각 배치에 사용되는 포도당 표준에 따라 다른 m 및 c 값을 생성합니다. 왕좌 를 추가 한 직후 튜브를 혼합(23). 이 반응의 외신적 특성 때문에 왕좌 분석이 수행 될 때까지 왕좌, 희석 된 샘플 및 준비 된 표준은 항상 차갑게 유지되었습니다.

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결과

녹색 집에서 자란 면화 식물은이 연구를 위해 선택되었다. 두 개의 상이한 실험 용 회선은 셀룰로오스 함량의 비교 분석을 위해 선택되었다. 각 실험 라인에 대해, 루트 조직은 세 가지 생물학적 복제로부터 수집되었다. 총 500 mg의 조직이 균질화되었고 20 mg의 조세포 벽 추출에 사용되었습니다. 나중에, 5 mg의 조세포벽 추출물은 셀룰로오스로부터 헤미셀룰로오스와 리그닌을 제거하기 위해 Updegraff...

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토론

면 섬유는 면씨에서 생산 된 천연 섬유입니다. 면섬유는 섬유 산업에서 광범위한 응용 분야와 높은 결정 셀룰로오스 함량을 가진 ~ 95 % 셀룰로오스 함량2를 가진 단일 셀입니다31. 면 섬유에는 ~95% 셀룰로오스가 함유되어 있으므로, 결정성 셀룰로오스 함량의 추정을 시연하기 위해 면 뿌리 조직을 사용했습니다. 면 뿌리 조직은 결정성 셀룰로오스 함량이 적당히 ...

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공개

저자는 이해 상충이 없다고 선언합니다.

감사의 말

이 연구의 부분적인 지원에 대해 식물및 토양 과학 및 면학과에 감사드립니다.

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자료

NameCompanyCatalog NumberComments
AcetoneFisher ChemicalA18-500Used in the protocol
AnthroneSigma Aldrich90-44-8For colorimetric assay
CentrifugeEppendorf5424For centrifugation
ChloroformMallinckrodt67-66-3Used in the protocol
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)Sigma Aldrich6381-92-6Used in the protocol
EthanolMillipore SigmaEM-EX0276-4SUsed in the protocol
Filter paperWhatman1004-090Positive control
Glacial acetic acidSigmaSKU A6283Used in the protocol
Heat block/ ThermoMixer F1.5Eppendorf13527550For controlled temperatures
IncubatorFisherbrand150152633Used for drying plant sample
Measuring ScaleMettler Toledo30243386For specific quantities
Methanol 100 %Fisher ChemicalA412-500Used in the protocol
Microplate (96 well)Evergreen Scientific222-8030-01FFor anthrone assay
Nitric acidSigma Aldrich695041Used in the protocol
Polypropylene Microvials (2 mL) / screw capped tubesBioSpec Products10831For high temperatures
Spectrophotometer(Multimode Detector)Beckmancoulter DTX8801000814For measuring absorbances
Spex SamplePrep 6870 Freezer / MillSpex Sample Prep68-701-15For grinding plant tissues into fine powder
Sulphuric acidJ.T.Baker02-004-382Used in the protocol
Sodium dodecyl sulfate (SDS)Sigma Aldrich151-21-3Used in the PSB buffer
Tubes (2 mL)Fisher Scientific05-408-138Used in the protocol
Tris HydrochlorideSigma Aldrich 1185-53-1Used in the PSB buffer
Ultrapure distilled waterInvitrogen10977Used in the protocol
Vacuum dryer (vacufuge plus)Eppendorf22820001For drying samples
Vortex mixerFisherbrand14-955-151For mixing
WaterbathThermoscientificTSGP02PM05For temperature controlled conditions at specific steps
Weighing PaperFisher Scientific09-898-12AUsed in the protocol

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