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요약

여기서, 나노바 담지 지질 이중층 시스템은 시험관 내에서 곡률 감지 능력을 가진 단백질의 특성 분석을 가능하게 하는 정의된 곡률을 갖는 합성 막을 제공하기 위해 개발된다.

초록

막 곡률은 세포 이동, 세포 분열 및 소포 트래피킹과 같은 세포의 다양한 필수 과정에서 중요한 역할을 합니다. 그것은 세포 활동에 의해 수동적으로 생성 될뿐만 아니라 단백질 상호 작용을 적극적으로 조절하고 많은 세포 내 신호 전달에 관여합니다. 따라서 단백질과 지질의 분포와 역학을 조절하는 막 곡률의 역할을 조사하는 것은 큰 가치가 있습니다. 최근에는 시험 관 내에서 곡선 막과 단백질 사이의 관계를 연구하기 위해 많은 기술이 개발되었습니다. 기존 기술과 비교하여 새로 개발된 나노바 지지 지질 이중층(SLB)은 사전 정의된 막 곡률 및 국소 평면 제어를 통해 패턴화된 나노바 어레이에 연속 지질 이중층을 형성하여 막 곡률 생성에서 높은 처리량과 더 나은 정확도를 모두 제공합니다. 곡면막에 대한 지질 유동성과 단백질 민감도는 형광 현미경 이미징을 사용하여 정량적으로 특성화할 수 있습니다. 여기에서는 나노바 어레이를 포함하는 제작된 유리 표면에 SLB를 형성하는 방법과 이러한 SLB 상의 곡률 민감성 단백질의 특성 분석에 대한 자세한 절차를 소개합니다. 또한 나노 칩 재사용 및 이미지 처리를위한 프로토콜을 다룹니다. nanobar-SLB 외에도 이 프로토콜은 곡률 감지 연구를 위한 모든 유형의 나노 구조 유리 칩에 쉽게 적용할 수 있습니다.

서문

막 곡률은 형태 형성, 세포 분열 및 세포 이동과 같은 다양한 세포 과정에서 발생하는 세포의 중요한 물리적 매개 변수입니다1. 막 곡률이 세포 사건의 단순한 결과를 넘어선다는 것이 이제 널리 인식되고 있습니다. 대신, 단백질 상호 작용 및 세포 내 신호 전달의 효과적인 조절자로 부상했습니다. 예를 들어, 클라 트린 매개 세포 내 이입에 관여하는 여러 단백질이 곡선 막에 우선적으로 결합하여 세포 내 이입2에 대한 핫스팟을 형성하는 것으로 나타났습니다. 세포골격력에 의한 막 당김, 크기가 다른 머리 그룹을 가진 지질 비대칭의 존재, 원뿔 모양의 막 횡단 단백질의 존재, BAR 도메인 단백질(Bin, amphiphysin 및 Rvs 단백질의 이름을 따서 명명됨)과 같은 막 형성 단백질의 축적, 양친매성 나선 도메인을 막1에 삽입하는 것과 같은 막 변형의 다양한 원인이 있습니다. . 흥미롭게도 이러한 단백질과 지질은 막을 변형시킬 뿐만 아니라 막 곡률을 감지하고 우선적인 축적을 나타낼 수있습니다1. 따라서 곡률이 다른 막이 단백질과 지질의 분포와 역학을 변화시키고 관련 세포 내 과정에 대한 잠재적 영향을 변화시키는지 여부와 방법을 연구하는 것이 중요합니다.

살아있는 세포와 시험관 내 시스템 모두에서 곡선 막과 단백질 간의 상호 작용을 분석하기 위해 많은 기술이 개발되었습니다. 살아있는 세포 시스템은 풍부한 지질 다양성과 동적 단백질 신호 조절 2,3,4,5,6,7을 갖춘 실제 세포 환경을 제공합니다. 그러나, 이러한 정교한 시스템은 세포 내 환경의 불확실성 및 변동으로 인해 연구하기가 어렵다. 따라서 알려진 지질 종과 정제된 단백질로 구성된 인공 막을 사용하는 시험관 내 분석은 단백질과 곡선 막 사이의 관계를 특성화하는 강력한 재구성 시스템이 되었습니다. 전통적으로, 다양한 직경의 리포좀은 원심력을 이용한 공동 침강 분석 또는 단백질 응집을 피하기 위한 밀도 구배를 갖는 공동 부유 분석 8,9를 통해 곡률에 민감한 단백질을 검출하기 위해 압출에 의해 생성됩니다. 그러나, 압출된 리포좀의 곡률은 압출기(10)에 사용되는 멤브레인 필터의 사용 가능한 기공 크기에 의해 제한된다. 단일 리포좀 곡률(SLiC) 분석은 이러한 한계를 극복하는 것으로 입증되었으며, 여기서 직경이 다른 리포좀은 형광 표지되고 표면에 고정화되어 곡률이 형광 강도(11)로 표시될 수 있습니다. 그러나, 지질 조성에서의 강한 가변성이 작은 소포에서 관찰되었고, 이는 곡률 측정의 정확도에 영향을 미친다(12). 테더-풀링 실험은 광학 핀셋을 사용하여 거대한 단층 소포(GUV)로부터 당겨진 과도 테더 상의 곡률의 보다 정확한 측정을 제공하며, 여기서 곡률은 생성된 막 장력에 의해 잘 제어될 수 있다(13,14). 이 방법은 포지티브 또는 네거티브 곡률 감지 단백질을 연구하는 데 적합하지만 튜브 생성10의 처리량에 의해 제한됩니다. 지원되는 멤브레인 튜브(SMrT) 분석은 미세유체 흐름에 의해 동일한 지질 저장소에서 압출되는 여러 멤브레인 튜브를 동시에 생성할 수 있습니다. 그럼에도 불구하고, 막 곡률은 나노튜브를 따라 본질적으로 변하며, 이는 형광-강도-기반 곡률 측정(15,16)의 정확도를 손상시킨다. 이에 비해, 작은 단층 소포 (SUVs, 직경 <100 nm17)를 사용하여 설계된 지형을 포함하는 표면 상에 지지된 지질 이중층 (SLB)을 형성하여 나노 제조 또는 나노 물질에 의해 미리 결정된 곡률을 갖는 단일 이중층 막을 높은 정확도로 생성하였다18,19,20.

여기에서는 나노바 어레이가 있는 제작된 나노칩 표면에 SLB를 형성하기 위한 프로토콜과 이를 사용하여 시험관 내 단백질의 곡률 감도를 조사하는 방법을 제시합니다. 도 1에 도시된 바와 같이, 분석의 6가지 필수 성분이 있다: A) 칩을 마이크로유체 챔버로 세척 및 조립하는 단계; B) 정의된 지질 조성을 갖는 SUV의 제조; c) 나노칩 상에 SLB를 형성하고 곡률 민감성 단백질과 결합하는 단계; D) 형광 현미경 하에서 SLB 및 곡률 민감성 단백질의 이미징 및 특성화; E) 재사용을 위해 칩을 청소하는 단계; F) 단백질 곡률 센싱 능력의 정량 분석을 위한 영상 처리. 자세한 프로토콜은 아래에 단계별로 설명되어 있습니다.

프로토콜

1. 나노 칩 청소

  1. 나노칩을 패턴화된 면이 위를 향하도록 10mL 비커에 넣습니다.
    참고 :이 석영 나노 칩은 앞서 설명한 바와 같이 전자빔 리소그래피를 통해 제조되었습니다21. 칩상의 나노 구조의 기하학적 구조와 배열은 맞춤 설계 될 수있다. 여기에 사용 된 그래디언트 나노 바의 크기는 길이 2000nm, 높이 600nm, 너비 100-1000nm (100nm 스텝 세트)입니다.
  2. 비커에 98% 황산 1mL를 조심스럽게 넣고 산이 칩의 앞면과 뒷면을 완전히 덮는지 확인합니다.
    알림: 98% 황산은 부식성이 매우 높으며 피부나 눈에 닿으면 빠른 조직 파괴와 심각한 화학적 화상을 유발할 수 있습니다. 적절한 보호 기능을 갖춘 흄 후드에서 사용하십시오.
  3. 비커를 천천히 돌리고 전체 비커가 뜨거워질 때까지 200μL의 30% 과산화수소를 한 방울씩 추가합니다. 황산과 과산화수소가 잘 혼합되어 나노칩(17)으로부터 유기 분자를 제거하기 위한 피라냐 용액을 형성하는지 확인한다. 앞서 설명된 바와 같이 UV 광 및 오존 노출과 같은 깨끗한 친수성 표면 상에 SLB를 생성하기 위한 대안적인 기술이 있다(23).
    알림: 반응은 극도로 발열성이며 용액이 끓을 수 있으므로 황산에 과산화수소를 한 방울씩 넣고 계속 회전하십시오.
  4. 비커를 보조 유리 용기에 넣고 나노 칩을 피라냐 용액에 밤새 담그면 불순물이 완전히 청소됩니다.
    알림: 반응으로 인해 가스가 발생할 수 있는 경우를 대비하여 덮개 없이 비커를 흄 후드에 넣으십시오.
  5. 비커를 꺼내 피라냐 용액을 산성 폐기물 용기에 조심스럽게 피펫팅합니다.
  6. 5mL의 탈이온수를 비커에 넣어 잔류 산을 희석하고 산성 폐기물로 버립니다. 이 단계를 5 번 반복하고 5M NaOH를 사용하여 산성 폐기물을 중화하십시오.
  7. 핀셋으로 칩을 잡고 탈이온수의 연속 흐름으로 세척하여 잔류 산을 완전히 제거합니다. SLB 형성을 위해 칩을 99.9% 질소 가스로 블로우 드라이합니다(22).

2. 작은 단층 소포 (SUV)의 생성

  1. 호박색 바이알에 클로로포름 100μL를 넣습니다.
    알림: 클로로포름은 휘발성이 높고 무색의 액체이며 흡입하거나 삼키면 유독 할 수 있습니다. 마스크와 장갑을 낀 상태에서 흄 후드에 사용하십시오.
  2. 지질 혼합물 500μg을 클로로포름에 녹인다. 여기에 사용 된 지질 혼합물의 조성은 계란 포스파티딜콜린 (PC) 89.5 몰%, 뇌 포스파티딜 세린 (PS) 10 몰%, 텍사스 레드 1,2- 디 헥사 데카 노일 -sn- 글리세로 -3- 포스 포 에탄올 아민, 트리 에틸 암모늄염 (텍사스 레드 DHPE).
  3. 클로로포름이 휘발되고 지질 혼합물이 건조될 때까지 바이알의 지질 혼합물을 99.9% 질소 가스로 블로우 건조합니다.
    알림: 이 단계는 흄 후드에서 수행해야 합니다. 블로우 드라이 시 액체 튀김을 피하십시오.
  4. 뚜껑 없이 호박색 바이알에 있는 지질 혼합물을 알루미늄 호일로 덮인 진공 데시케이터에 놓습니다. 그런 다음 클로로포름을 완전히 휘발시키기 위해 펌프로 샘플을 3시간 동안 진공 건조시킵니다.
  5. 250μL의 인산염 완충 식염수(PBS) 버퍼를 바이알에 추가합니다. 균질해질 때까지 용액을 소용돌이치십시오.
    알림: PBS 버퍼는 칼슘, 마그네슘 및 페놀 레드가없는 150mM NaCl로 구성됩니다. pH는 PC 및 PS 지질 이중층을 만들기 위해 7.2로 조정된다.
  6. 목욕 초음파 처리기에서 50kHz의 주파수로 30분 동안 지질 혼합물을 초음파 처리합니다. 그런 다음 지질 혼합물을 1.5mL 원심분리 튜브에 옮기고 파라필름으로 밀봉합니다.
  7. 지질 혼합물을 액체 질소에서 20초 동안 동결시킨 다음, 수조에서 42°C에서 2분 동안 해동시킨다. 동결-해동 주기를 30회 반복합니다. 그 후, 지질 혼합물은 투명한 액체처럼 보입니다.
    주의 : 액체 질소의 끓는점은 약 -195.8 ° C입니다. 동상이나 극저온 화상을 일으킬 수 있습니다. 단열장갑을 끼고 밀폐되지 않은 공간에서 사용하십시오.
  8. 두 개의 유리 기밀 주사기와 미니 압출기의 커넥터를 각각 에탄올, 클로로포름 및 메탄올로 헹굽니다. 헹굼 순서를 5 회 반복하여 장치를 사전 청소하십시오. 유기 용매가 완전히 휘발 될 때까지 흄 후드에 두십시오.
  9. 미니 압출기 장치를 조립하고 500μL의 PBS 버퍼를 커넥터를 통과시켜 장치를 미리 습윤시킨 다음 다른 주사기에서 버퍼를 버립니다. 이 단계는 불순물을 제거하고 압출을 용이하게합니다.
  10. 미니 압출기 장치를 100nm 기공 크기의 폴리카보네이트 필터 멤브레인으로 조립합니다.
    참고: 필터 멤브레인의 기공 크기는 리포좀의 직경을 결정합니다.
  11. 주사기 중 하나로 500μL의 PBS 버퍼를 가져다가 필터를 통해 부드럽게 밀어 다른 쪽 끝에 있는 두 번째 빈 주사기를 채웁니다. 압출을 앞뒤로 세 번 반복하여 장치 누출을 확인하고 두 번째 주사기에서 버퍼를 버립니다.
  12. 지질 혼합물을 미니 압출기를 통과시켜 PBS 완충액을 대체한다. 그런 다음 앞뒤로 20 번 돌출하여 SUV를 만듭니다. 소포의 다층 특성은 불충분한 압출 횟수로 유지될 수 있으며, 이는 SLB 형성(23)에 영향을 미칠 것이다.
  13. 두 번째 주사기에서 SUV를 수집하여 더 큰 입자로 인한 오염을 줄이고 1.5mL 원심분리 튜브로 옮깁니다.
    알림: 주사기가 파손될 경우 커넥터에서 주사기를 똑바로 제거하십시오.
  14. 형광 표지 지질의 표백을 방지하기 위해 튜브를 알루미늄 호일로 감싸고 4 ° C에서 보관하십시오. 일반적으로 SUV는 최대 7일 동안 보관할 수 있습니다.

3. 나노칩 상에 SLB의 형성

  1. 탈이온수에서 세척된 나노칩을 핀셋으로 조심스럽게 꺼내고 99.9% 질소 가스로 블로우 드라이합니다.
  2. 1 시간 동안 공기 플라즈마 처리로 나노 칩의 표면 세정을 수행하십시오.
  3. 나노칩을 폴리디메틸실록산(PDMS) 챔버에 조립하고, 이 챔버는 중간 PDMS 및 상부 PDMS의 두 조각으로 구성된다(도 1A). 중간 PDMS는 얇고 (~ 0.5mm) 중앙에 큰 타원형 개구부가있어 나노 바 패턴에 충분한 노출을 보장합니다. 상단 PDMS는 두껍고(~4.0mm) 액체 처리를 위한 입구와 출구로 큰 타원형 개구부 내에 두 개의 작은 구멍이 있습니다.
    1. 패턴이 위를 향하도록 깨끗한 표면에 칩을 놓습니다.
    2. 중간 PDMS를 칩으로 부드럽게 덮고 전체 패턴이 중간 PDMS의 큰 타원형 개구부의 중앙 영역에 노출되는지 확인합니다.
    3. 상단 PDMS를 중간 PDMS로 덮고 중간 PDMS의 큰 타원형 구멍 영역 내에 두 개의 작은 구멍을 유지하십시오. 그런 다음 PDMS 챔버가 조립됩니다.
      참고: PDMS는 가장 널리 사용되는 실리콘 기반 유기 폴리머입니다. 생체 적합성이 있고 투명하며 변형이 가능하여 현미경으로 칩 조립 및 이미징을 위한 맞춤형 모양으로 설계됩니다. 더 중요한 것은 플라즈마 처리 후 다른 PDMS 층이나 유리에 공유 결합되어 단단히 접착 될 수있어 SLB를 준비하는 챔버로 적합하다는 것입니다. 이 단계를 통해 PDMS의 각 레이어가 단단히 고정되어 틈과 누출이 방지됩니다.
  4. 피펫으로 상단 PDMS의 두 개의 작은 구멍 중 하나에서 SUV를 PDMS 챔버에 넣고 실온에서 15분 동안 배양하여 SLB를 형성합니다.
  5. 작은 구멍의 한쪽에서 PBS 버퍼를 PDMS 챔버로 부드럽게 피펫팅하고 다른 구멍에서 면봉으로 폐기물을 제거하여 바인딩되지 않은 SUV를 씻어냅니다. 이어서 나노칩 상에 형성된 SLB를 획득한다(SLB의 품질은 단계 4.4에 도시된 바와 같이 광퇴색 후 형광 회복(FRAP)에 의해 시험되고 대표적인 결과 섹션에서 논의됨).
    알림: PBS 버퍼를 챔버에 피펫팅할 때 피펫 팁은 버퍼로 가득 차 있어야 하며 기포가 주입되지 않도록 액체 표면과 접촉해야 합니다.

4. SLB와 나노칩 상의 곡률 감지 단백질 결합 이미징

참고: 이 섹션은 실험에 사용할 수 있는 현미경 시스템에 따라 다릅니다. 여기서, 이미징을 수행하는 방법에 대한 전반적인 가이드라인이 설명될 것이다. 세부 설정은 서로 다른 현미경 설정 간에 변경할 수 있습니다.

  1. 100x(N.A.1.4) 오일 대물렌즈를 사용하여 레이저 스캐닝 컨포칼 현미경을 설정합니다. ZEN 소프트웨어를 열어 지질과 단백질의 형광을 자극할 수 있는 여기 레이저 출력을 선택합니다. 획득 모드 > 스마트 설정 > 텍사스 레드 DHPE / EGFP를 선택합니다.
  2. 초점 손잡이로 초점을 조정하여 나노바 가장자리가 지질 채널 아래에서 날카로워질 때까지 칩의 나노바를 찾습니다.
  3. 단백질을 추가하기 전에 지질 채널의 대조 이미지를 얻기 위해 스캔 파라미터를 아래와 같이 설정하십시오: 프레임 크기 = 512픽셀 x 512픽셀(512픽셀 x 512 픽셀, 픽셀 크기 124nm), 픽셀당 비트 = 16( 16비트 심도), 스캔 속도 = 5, 평균 = 4(평균 모드/라인).
  4. 형광 표지된 지질 이중층을 임의의 단일 나노바 영역 상에서 표백함으로써 FRAP 분석을 수행한다.
    1. 실험 영역 및 표백 확인란을 선택합니다. 중앙에 전체 나노 바를 포함 할 수있는 직경 5μm의 원형 영역 (나노 바 크기는 2μm)을 그리고 실험 영역에 추가합니다. 다음 예와 같이 타임랩스 이미징 파라미터를 입력합니다: 스캔 속도 = 9 및 평균 = 1을 선택합니다. 시계열 > 기간 = 100주기 및 간격 = 2초를 선택합니다. 다음 예와 같이 표백 매개 변수 입력: # 이미지 후 시작 확인란을 선택하고 세 개의 이미지를 선택합니다.
    2. FRAP를 수행하는 레이저 확인란을 선택하고 전원을 100.0%로 변경합니다. FRAP 실험에 대해 실험 시작을 클릭합니다.
      참고: FRAP는 세포 분자의 이동성을 특성화하는 일반적인 방법입니다. SLB의 유동성이 좋으면 표백된 형광단이 확산되고 다른 영역의 표백되지 않은 형광단이 확산됨에 따라 표백된 영역의 형광이 점차 회복됩니다.
  5. 단백질 용액을 PDMS 챔버에 로딩하고 SLB에서 단백질의 결합을 허용하기 위해 실온에서 5분 동안 인큐베이션합니다.
    참고: 나노바 곡선 SLB에서 단백질 결합을 촉진하는 지질 조성을 입증하기 위해 그림 2G, H에서 사용된 단백질은 74μM GFP 및 79μM GFP-His입니다. 이 두 단백질은 His-태그가 없거나 있는 녹색 형광 단백질입니다. 그림 4 및 그림 5에서 곡률 감지 연구에 사용되는 단백질은 16μM F-BAR, 16μM IDR FBP17 및 16μM FBAR+IDRFBP17입니다. 이 세 가지 단백질은 FBP17의 도메인으로, 직관적으로 곡률 발생기와 센서로 가정되는 전형적인 BAR 단백질입니다. 각 단백질 부피는 20 μL입니다.
  6. 나노바의 초점을 다시 맞추고 4.3단계를 반복하여 단백질 곡률 감지 감지를 위해 지질과 단백질 채널의 이미지를 모두 촬영합니다.
  7. 단계 4.4를 반복하여 지질 및 단백질 채널 모두에서 FRAP 분석을 수행하고 타임 랩스 이미징을 수행하여 곡률 감지 단백질의 이동성을 특성화합니다.

5. 나노 칩의 재사용

  1. 핀셋으로 나노 칩을 잡고 탈 이온수로 채워진 50mL 비커에서 PDMS 챔버에서 조심스럽게 분리합니다.
    참고: 이것은 중요한 단계입니다. 핀셋이 나노 구조에 닿지 않도록하고 균열을 피하기 위해 칩을 강제로 분리하지 마십시오.
  2. 나노 칩을 무수 에탄올로 철저히 씻어 표면에 부착 된 유기 잔류 물을 제거하십시오.
    알림: 무수 에탄올로 세척하기 전에 깨끗한 티슈 페이퍼를 사용하여 표면의 물을 제거하십시오.
    주의 : 무수 에탄올은 휘발성이 높고 약간 위험한 화학 물질입니다. 피부와 눈과의 접촉을 피하십시오. 마스크와 장갑을 낀 상태에서 흄 후드에 사용하십시오.
  3. 잔류 에탄올을 제거하기 위해 많은 양의 탈 이온수로 칩을 철저히 씻으십시오. 그런 다음 99.9% 질소 가스로 칩을 블로우 드라이합니다.
    알림: 피라냐 산은 유기 용매와 격렬하게 반응하여 폭발을 일으킬 수 있으므로 다음 단계로 진행하기 전에 칩에 있는 모든 미량의 에탄올을 제거하는 것이 중요합니다.
  4. 패턴면이 위를 향하도록 깨끗한 10mL 비커에 칩을 넣고 '나노칩 세척'과 동일한 단계에 따라 재사용을 위해 피라냐 용액으로 칩을 청소합니다.

6. 이미지 정량화

  1. 현미경으로 획득한 이미지를 회전하여 나노바 어레이가 피지 소프트웨어에서 후속 분석을 위해 수직 위치에 있도록 합니다.
  2. 사용자 지정 MATLAB 코드 'c_pillarmask_averaging'를 사용하여 지질 채널과 단백질 채널 모두에서 정사각형 마스크(51픽셀 x 51픽셀)로 개별 나노바를 찾습니다.
    참고: 이 MATLAB 코드는 나노칩용으로 특별히 설계되었습니다. GitHub에서 링크를 통해 얻을 수 있습니다 : https://github.com/wtzhaolab/GNB_SLB_MX.
  3. MATLAB 코드 'BarGra_avg'의 meshgrid 함수를 사용하여 영상 모서리에 ROI 3개(5픽셀 x 5픽셀)가 있는 각 영상의 배경 신호를 뺍니다. 이 작업은 현미경 설정 또는 현미경 스테이지의 칩 레벨링으로 인해 발생할 수 있는 고르지 않은 배경 소음을 수정하는 것을 목표로 합니다.
  4. MATLAB 코드 'BarGra_avg'를 사용하여 동일한 크기의 나노바의 평균 영상을 생성하며, 여기서 각 점은 모든 개별 나노바 사각형 마스크에서 해당 점에 있는 값의 평균입니다. 피지 소프트웨어에서 평균 이미지의 3D 표면도를 생성하여 나노바 주변의 평균 신호 분포를 직관적으로 보여줍니다. > 표면도 분석을 선택하고 다각형 승수에 대해 입력 100> 선택하고 음영, 축 그리기 및 부드럽게 확인란을 선택합니다.
  5. 각 나노바를 두 개의 나노바 말단 영역과 하나의 나노바 중심 영역을 포함하는 세 개의 영역으로 분할하여 MATLAB 코드 'avg_nanobar_quantification'로 각각 형광 강도를 추출합니다. 나노바 ROI의 크기는 '위치' 파일을 사용하여 나노바의 치수에 따라 조정됩니다.
  6. 단백질 강도를 막대 끝 영역의 MATLAB 코드 'avg_nanobar_quantification'에서 추출한 지질 강도로 나누어 표면적 효과를 제외한 나노바 말단 밀도를 얻습니다.
  7. 다양한 농도의 나노바 말단 밀도를 GraphPad Prism에 플로팅하여 결합 곡선을 얻습니다. 분석 메뉴를 엽니다. 비선형 회귀(곡선 맞춤) > 결합 - 채도 > 힐 기울기 함수를 사용한 특정 결합 을 선택하여 곡선을 힐 방정식에 맞춘 다음 KD 및 힐 계수 값을 계산합니다.
  8. 지질과 단백질 강도는 MATLAB 코드 'avg_nanobar_quantification'를 사용하여 동일한 이미지에서 획득한 600nm 나노바 중심에서 해당 강도로 정규화됩니다.
  9. 동일한 크기의 나노바로 단백질 곡률 감지를 정량화하기 위해 바 중심 영역으로 나눈 나노바 말단 영역에서 정규화된 단백질 강도의 가장 밝은 9픽셀을 사용하여 값을 "종단 대 중심 비율"이라고 합니다. 표준화 된 단백질 강도의 비율을 사용하여 지질 강도를 정규화하여 다양한 크기의 나노 막대로 단백질 곡률 감지 범위를 정량화하면 값을 "정규화 된 나노 바 말단 밀도"라고합니다. 이 값은 MATLAB 코드 'avg_nanobar_quantification'로 계산됩니다.
  10. 피지 소프트웨어에서 FRAP 스택 이미지를 로드합니다. FRAP 영역을 선택하고 ROI를 생성합니다. 추가 > 다중 측정 기능을 선택하여 각 시간에 대한 FRAP 영역의 강도를 측정합니다. 그래프패드 프리즘에 강도를 플로팅하여 FRAP 회복 곡선을 생성합니다.

결과

나노바 설계는 포지티브 곡률 감지 단백질을 프로빙하는 데 권장되며, 각 끝에는 나노바 너비로 정의된 곡률이 있는 반원이 있고 중앙에 국부적으로 하나의 평면/제로 곡률 제어가 포함됩니다(그림 2A,B). 나노바에 SLB를 성공적으로 형성하면 그림 2C와 같이 전체 나노바 표면에 걸쳐 지질 마커 신호가 고르게 분포됩니다. 개별 나노바 이미지...

토론

여기에 설명된 나노바-SLB 시스템은 기존의 여러 시험관 분석에서 장점의 고유한 조합을 제공합니다. 리포솜 부유 또는 침강 분석과 같이 고도로 구부러진 막에 대한 단백질의 우선적 결합을 효율적으로 나타내지만 훨씬 적은 수의 샘플이 필요하며 개별 나노바 8,29에서 보다 정확하게 정의된 곡률을 제공합니다. 또한 SLiC 분석법과 동시 비교를 위...

공개

저자는이 작업에 대해 경쟁하는 재정적 이익을 선언하지 않습니다.

감사의 말

나노 구조 제조 및 SEM 이미징을 지원하는 난양 기술 대학교 (NTU)의 난양 나노 제조 센터 (N2FC)와 파괴 광자 기술 센터 (CDPT), 단백질 정제를위한 생명 과학 학교 NTU의 단백질 생산 플랫폼 (PPP), 컨포칼 현미경을위한 화학 및 생물 의학 공학 학교 NTU에 감사드립니다. 이 연구는 싱가포르 교육부(MOE)(W. Zhao, RG112/20, RG95/21 및 MOE-T2EP30220-0009), 디지털 분자 분석 및 과학 연구소(IDMxS)가 자금을 지원합니다. 우수 연구 센터 제도(W. Zhao), 휴먼 프론티어 과학 프로그램 재단(W. Zhao, RGY0088/2021), NTU 스타트업 보조금(W. Zhao), 연구 장학금을위한 화학 및 생물 의학 공학 학교 NTU (X. Miao), 연구 장학금을위한 중국 장학금위원회 (J. Wu).

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
Anhydrous EthanolSigma-Aldrich100983
Aluminum foilDiamondRN0879999FU
Amber VialSigma-Aldrich27115-U
Brain PS: L-α-phosphatidylserine (Brain, Porcine) (sodium salt)Avanti Polar Lipids, Inc.840032
10 mL BeakerSchott-DuranSCOT211060804
50 mL BeakerSchott-DuranSCOT211061706
1000 mL BeakerSchott-DuranSCOT211065408The second container 
ChloroformSigma-AldrichV800117
Cotton budsWatsons
18:1 DGS-NTA(Ni): 1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-[(N-(5-amino-1-carboxypentyl)iminodiacetic acid)succinyl] (nickel salt)Avanti Polar Lipids, Inc.790404
Egg PC: L-α-phosphatidylcholine (Egg, Chicken)Avanti Polar Lipids, Inc.840051
F-BARProtein Production Plaftorm, School of Biological Sciences, Nanyang Technological University, SingaporeProteins and peptide
F-BAR+IDRProtein Production Plaftorm, School of Biological Sciences, Nanyang Technological University, SingaporeProteins and peptide
GFPProtein Production Plaftorm, School of Biological Sciences, Nanyang Technological University, SingaporeProteins and peptide
GFP-HisProtein Production Plaftorm, School of Biological Sciences, Nanyang Technological University, SingaporeProteins and peptide
GraphPad PrismGraphPadV9.0.0
Hydrogen Peroxide, 30% (Certified ACS)Thermo ScientificH325-500
IDR from human FBP17Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.
ImageJNational Institutes of Health1.50d
Laser Scanning Confocal MicroscopyZeiss LSM 800 with Airyscan100x (N.A.1.4) oil objective.
MethanolFisher scientific10010240
Mini-extuder Avanti Polar Lipids, Inc.610000-1EA
1.5 mL MicrotubesGreiner616201
MATLABMathworksR2018b
Nuclepore Hydrophilic Membrane,0.1 μmWhatman800309
Phosphate Bufferen Saline (PBS)Life Technologies Holdings Pte Ltd.70013
Polydimethylsiloxane (PDMS) BaseDow Corning CorporationSYLGARD 184
Polydimethylsiloxane (PDMS) CrosslinkerDow Corning CorporationSYLGARD 184
Plasma CleanerHARRICK PLASMAPDC-002-HP
Quartz NanochipDonghai County Alfa Quartz Products CO., LTD
Sodium Hydroxide Sigma-Aldrich795429
Sulfuric acidSigma-Aldrich258105
Texas Red DHPE: Texas Red 1,2-Dihexadecanoyl-sn-Glycero-3-Phosphoethanolamine, Triethylammonium SaltLife Technologies Holdings Pte Ltd.T1395MP
TweezerGooiPDC-002-HP
Ultrasonic CleanersElmaD-78224
VoterxScientific IndustriesG560E
Vacuum DesiccatorNUCERITE5312
Water BathJulaboTW8

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