여러 개의 작은 유기체에서 자동화된 다중 모드 자극 및 동시 신경 기록

요약

우리는 많은 Caenorhabditis elegans 벌레의 유연한 화학적 및 다중 모드 자극과 동시 신경 활동의 기록 방법을 제시합니다. 이 방법은 미세 유체 공학, 오픈 소스 하드웨어 및 소프트웨어, 감독 자동화 데이터 분석을 사용하여 적응, 시간적 억제 및 자극 누화와 같은 신경 현상을 측정할 수 있습니다.

초록

형광 유전적으로 인코딩된 칼슘 지표는 개별 뉴런 수준에서 전체 뇌 회로에 이르기까지 신경 역학에 대한 우리의 이해에 크게 기여했습니다. 그러나 신경 반응은 이전 경험, 내부 상태 또는 확률적 요인으로 인해 달라질 수 있으므로 한 번에 많은 개인의 신경 기능을 평가할 수 있는 방법이 필요합니다. 대부분의 기록 기술은 한 번에 한 마리의 동물을 검사하는 반면, 우리는 광시야 현미경을 사용하여 한 번에 수십 개의 예쁜꼬마선충 또는 기타 서브밀리미터 규모의 유기체로 신경 기록을 확장하는 방법을 설명합니다. 오픈 소스 하드웨어 및 소프트웨어는 화학적, 광학적, 기계적, 열적 및 전자기 자극을 포함한 다양한 자극 유형의 강도와 타이밍을 제어하는 완전 자동화된 실험을 프로그래밍하는 데 뛰어난 유연성을 제공합니다. 특히, 미세유체 유동 장치는 초 미만의 시간 분해능으로 화학감각 자극의 정밀하고 반복 가능하며 정량적인 제어를 제공합니다. 그런 다음 NeuroTracker 반자동 데이터 분석 파이프라인은 개별 및 인구 전체의 신경 반응을 추출하여 신경 흥분성 및 역학의 기능적 변화를 발견합니다. 이 논문은 뉴런 적응, 시간적 억제 및 자극 누화를 측정하는 예를 제시합니다. 이러한 기술은 자극의 정밀도와 반복성을 높이고, 개체군 변동성을 탐색할 수 있으며, 세포 및 오가노이드에서 전체 유기체 및 식물에 이르기까지 소규모 생물 시스템의 다른 동적 형광 신호로 일반화할 수 있습니다.

서문

칼슘 이미징 기술은 형광 현미경 및 표적 세포에서 발현된 유전적으로 인코딩된 칼슘 지표를 사용하여 실시간으로 생체 내 신경 역학을 비침습적으로 기록할 수 있게 해주었다 ^1,2,3. 이러한 센서는 일반적으로 GFP-칼모듈린-M13 펩타이드(GCaMP) 패밀리와 같은 녹색 형광 단백질(GFP)을 사용하여 신경 활성화 및 세포 내 칼슘 수치 상승 시 형광 강도를 증가시킵니다. 칼슘 이미징은 선충 C. elegans에서 뉴런과 신경 회로가 살아 있고 행동하는 동물 4,5,6,7,8,9,10에서 어떻게 기능하는지 조사하는 데 특히 강력했습니다. 이러한 기술은 종종 작은 물리적 규모에서 생물학적, 화학적, 물리적 현상을 연구하기 위해 정밀하게 제어된 환경을 제공하는 미세유체 장치를 사용한다^11,12. 신경 활동을 측정하기 위한 미세 유체 장치는 풍부하며 새로운 디자인이 지속적으로 개발 중이며 연구실에서 쉽게 제작할 수 있습니다. 그러나 많은 설계가 한 번에 한 마리의 동물을 가두어 실험 처리량을 ^7,9,13으로 제한합니다. 신경 반응은 종종 이전 경험의 차이, 스트레스 또는 배고픔과 같은 내부 상태 또는 유전자 발현 수준과 같은 확률적 요인으로 인해 동물마다 크게 다릅니다. 이러한 차이로 인해 많은 동물을 자극하고 관찰하는 동시에 개체로부터 정보를 추출할 수 있는 방법이 필요합니다⁴.

또한, 특정 신경조절 현상은 자극이 빠르게 연속적으로 발생할 때 반응의 짧은 억제를 의미하는 시간적 억제(temporal inhibition⁾¹⁴와 같은 특정 자극 조건에서만 명백해진다. 전기생리학적 시스템은 이러한 목적을 위해 광범위한 자극 공간에서 신경 활동을 유도할 수 있으며, 예를 들어 주기적 자극 트레인의 전기 펄스 전류, 전압, 주파수, 파형, 듀티 사이클 및 타이밍을 변조할 수 있습니다. 자연적으로 감지된 자극 또는 광유전학적 시스템에 의한 간접 자극은 유사한 범위의 제어 메커니즘으로부터 이익을 얻을 것입니다. 현재, 많은 자연적 자극은 유연성을 추가하는 데 느린 상용 시스템을 사용하여 냄새 표현 및 제거와 같은 간단한 "온-오프" 방식으로 제공됩니다. 그러나 저렴한 마이크로 컨트롤러는 이제 연구원의 요구에 맞게 사용자 정의 할 수있는 방식으로 여러 유형의 자극 전달을 자동화 할 수 있습니다. 미세 유체 공학과 결합 된이 시스템은 실험 처리량과 유연성을 증가시켜 많은 동물에서 다양한 정밀 자극에 대한 신경 반응을 동시에 측정 할 수 있도록하는 목표를 달성했습니다 ^4,6. 멀티모달 자극(multimodal stimulation)은 약물 노출과 같은 직교 섭동 전, 도중, 후에 지속적으로 자극할 때 신경 흥분성의 변화를 모니터링하는 것과 같이 신경 회로를 추가로 조사하는 데 사용할 수 있다⁴. 저렴한 개방형 현미경 시스템의 이점은 과학 연구를 발전시키는 데 분명하지만 실제로는 부품 소싱, 구성 및 성능 검증의 필요성이 이러한 기술의 채택을 방해할 수 있습니다.

이 프로토콜은 이러한 기술적 문제 중 일부를 완화하는 것을 목표로 합니다. 이전 프로토콜은 미세유체 장치 사용 및 기본 자극에 초점을 맞추었지만 9,15,17, 여기서는 이전에 설명한 미세유체 장치 4를 사용하는 예쁜꼬마선충 또는 기타 작은 유기체의 신경 이미징을 위한 유연하고 자동화된 다중 모드 자극 전달 시스템의 구성 및 사용을 설명합니다. 오픈 소스 시스템은 실험을 정의하기 위해 간단한 텍스트 파일을 통해 프로그래밍되며 NeuroTracker 데이터 분석 프로그램은 현미경 비디오에서 신경 활동 데이터를 반자동으로 추출합니다. 우리는 광유전학적 빛에 민감한 이온 채널을 발현할 때 다양한 음식 냄새에 반응하거나 빛에 반응하여 탈분극하는 화학감각 뉴런 AWA를 사용하여 시간적 억제, 탈억제 및 자극 누화를 평가하는 예를 통해 이 시스템을 보여줍니다 ^5,6.

프로토콜

1. 신경 영상 장비

참고: 현미경 조명 타이밍, 이미지 획득 및 자극 전달을 제어하는 이미징 및 자극 시스템 구축에 대한 자세한 지침은 Lawler 및 Albrecht¹⁵를 참조하십시오(그림 1). 저렴한 Arduino Nano 자극 컨트롤러는 디지털 신호를 통해 밸브 컨트롤러에 대한 유체 밸브를 작동시키고 LED 컨트롤러에 대한 아날로그 전압 신호를 통해 광유전학적 조명을 제어합니다. 진동 모터 및 열 히터와 같은 다른 자극은 디지털 또는 아날로그 신호를 사용하여 제어할 수 있습니다. 자극 컨트롤러는 오픈 소스 Micro-Manager 현미경 제어 소프트웨어(μManager)¹⁶에 의해 지정된 대로 카메라 신호를 통해 자극 및 이미지 기록을 동기화합니다. 이 프로토콜에 사용된 모든 재료, 시약, 장비 및 유기체와 관련된 자세한 내용은 재료 표를 참조하십시오.

1. GFP 광학을 갖는 epifluorescence 현미경, 디지털 노출 출력 신호를 갖는 sCMOS 카메라, 및 자극 제어^기(15)를 포함하는 신경 이미징 장비를 설정한다.
2. 디지털 또는 아날로그 신호를 통해 자극 컨트롤러를 원하는 시스템에 연결합니다. 아래 제시된 예에는 다음 시스템이 사용됩니다.
   1. 화학적 자극을 위해 밸브 컨트롤러를 사용하십시오. 밸브 컨트롤러를 유체 솔레노이드 또는 핀치 밸브에 연결합니다(그림 1⁾¹⁵.
   2. 현미경 단계 위에 장착된 광유전학적 자극을 위해 615nm 적색 LED와 컨트롤러를 사용합니다.
3. 현미경 제어 소프트웨어로 컴퓨터를 설정하고, 장비 설정으로 구성 사전 설정을 만들고, 자극 제어¹⁵의 적절한 작동을 확인하십시오.

2. 미세 유체 장치 제작

참고: 마스터 몰드를 얻거나 제작하고 미세 유체 장치의 생산, 사용 및 청소에 대한 자세한 정보는 Lagoy et ^al.17 을 참조하십시오. 이러한 단계는 아래에 요약되어 있습니다.

1. 제공된 미세유체 설계 파일(albrechtlab.github.io/microfluidics)¹⁷을 사용하여 마스터 몰드를 얻거나 제작합니다. 젊은 성인 예쁜꼬마선충의 경우 채널 높이가 55-70μm인지 확인하십시오.
2. PDMS 베이스와 경화제를 중량 기준으로 10:1 비율로 혼합하고 이송 피펫으로 완전히 혼합합니다.
3. 기포가 사라질 때까지 진공 데시케이터에서 30-60분 동안 가스를 제거합니다.
4. 마스터 몰드를 대형(직경 150mm) 페트리 접시에 놓고 탈기된 PDMS를 4-5mm(~100g) 깊이까지 붓습니다. 이송 파이펫으로 먼지나 기포를 검사하고 제거합니다.
5. 평평한 오븐 선반에서 65°C에서 3시간에서 밤새 굽습니다.
6. 경화되면 메스를 사용하여 PDMS를 금형에서 절단하고 직선 면도날을 사용하여 장치를 분리합니다.
7. 1mm 진피 펀치를 사용하여 입구 및 출구 구멍을 펀칭하고 dH 2 O, 에탄올 및 dH₂O로 다시 청소하고 공기 흐름에서 장치를건조시킵니다(그림 2A 참조).
8. 접착 테이프로 PDMS 장치의 양면을 청소하고 먼지나 부스러기를 제거합니다.
9. 유리 슬라이드를 준비하여 설명된 바와 같이 미세유체 장치를 완성한다¹⁷. 다이아몬드 비트를 사용하여 상단 슬라이드에 입구 구멍을 뚫고 TFOCS 증기에 노출되거나 발수성 유리 처리를 적용하여 하단 슬라이드를 소수성으로 만듭니다(그림 2B).
10. 유리-PDMS 장치 샌드위치를 클램프에 조립합니다(그림 2C).

3. 동물 준비

1. 관심 뉴런에서 발현되는 유전적으로 암호화된 칼슘 지표를 가진 동물을 얻거나 만듭니다.
   참고: 예를 들어, 라인 NZ1091(kyIs587 [gpa-6p::GCaMP2.2b; unc-122p::d sRed]; kyIs5662 [odr-7p::Chrimson:SL2:mCherry; elt-2p::mCherry]) AWA 감각 뉴런 쌍⁶에서 GCaMP 및 적색광에 민감한 양이온 채널 Chrimson을 표현합니다. 두 이식유전자 모두 모든 동물에서 안정적인 발현을 위해 게놈에 통합됩니다.
2. 실험 하루 전에 OP50 E. coli 잔디밭으로 파종된 선충 성장 배지(NGM) 한천 플레이트에 실험당 최소 20개의 L4 유충 단계 C. elegans를 놓습니다. 20°C로 유지될 때, 이것은 다음날 젊은 성충 단계에서 야생형 동물을 동기화할 것이다.
   참고: 어레이 이식유전자의 경우 형광 입체경을 사용하여 동물을 선택하여 선택한 동물에서 이식유전자 발현을 보장합니다.

4. 용액 준비

1. 1x 원액으로부터 1x S 기초 완충액(100 mM NaCl 및 0.05 M KPO₄, pH 6.0)을 준비한다.
2. 1x S Basal에 1M 스톡을 희석하여 1mM 테트라미솔 완충액을 준비합니다. 이 마비 완충액을 사용하여 모든 자극을 준비하십시오. 실험에는 일반적으로 약 150mL가 사용됩니다.
3. 0.1-1 μg/mL 플루오레세인을 "대조군" 버퍼 저장소에 추가하여 유량을 시각화합니다.
4. 원하는 최종 농도로 연속 희석하여 자극 용액을 만듭니다. 예를 들어, 먼저 10-3 스톡을 생성하여 디아세틸 유인제의 ^10-7 희석을 생성합니다.
   참고: 자극 타이밍을 확인하기 위해 자극 또는 완충액에 소량의 플루오레세인(0.1–1μg/mL)을 첨가할 수 있지만 신경 형광의 인공물을 피하기 위해 농도를 최소화해야 합니다.

5. 미세 유체 장치 준비

참고: Reilly et ^al.9 에서 저수지 생성, 장치 설정 및 동물 로딩을 보여주는 비디오 프로토콜을 참조하십시오. Lagoy et ^al.17 참조: 많은 유용한 팁이 포함된 서면 프로토콜에 대해.

1. 3 개 이상의 유체 저장소를 준비하십시오. 각각에 대해 30mL 또는 60mL 주사기 저장소, 3mL 프라이밍 주사기 및 바늘 스텁을 3방향 루어 밸브에 연결합니다(그림 2D). 끝에 금속 튜브가 장착된 마이크로보어 튜브에 바늘을 연결합니다. 저장소에 라벨을 붙이고 링 스탠드에 부착된 랙에 장착한 다음 해당 버퍼 또는 자극 유체로 채웁니다(그림 2E).
2. 조립된 미세유체 장치를 진공 데시케이터에서 ~1시간 동안 탈기합니다.
3. 프라이밍 주사기를 사용하여 저장소 튜브에서 기포를 채우고 제거합니다. 유출 튜브에 버퍼를 채웁니다.
4. 진공에서 미세 유체 장치를 제거하고 출구 튜브를 빠르게 삽입하고 하나의 입구에서 물방울이 나올 때까지 장치를 통해 유체를 주입합니다.
5. 이 입구에서 "drop-to-drop" 연결부(¹⁷ )를 사용하여 해당 유체 주입구 튜브를 삽입합니다(그림 2F). 기포가 유입되지 않도록 흡입 튜브와 장치 포트 구멍 모두에 액체 방울이 있는지 확인하십시오.
6. 배출구에서 더 많은 유체를 주입하고 다음 흡입구를 연결한 다음 모든 흡입구가 채워질 때까지 반복합니다. 사용하지 않는 입구와 웜 로딩 포트에 단단한 차단 핀을 삽입합니다.
7. 입구 및 출구 Luer 밸브를 열어 흐름을 시작합니다. 입구와 유리 바닥에서 누출이 있는지 장치를 검사하십시오. 라이브 모드에서 현미경 이미지 캡처 소프트웨어를 사용하여 유동 채널 또는 입구 내에 기포가 있는지 장치를 검사합니다.
   알림: 기포가 있는 경우 기포가 PDMS 재료에 흡수될 때까지 기다리십시오.

6. 동물 적재

참고: Lagoy et ^al.17 참조.

1. 어린 성인 동물을 와이어 팁 "픽"을 사용하여 씨를 뿌리지 않은 NGM 한천 플레이트에 옮깁니다.
2. 동물이 헤엄칠 수 있도록 약 5mL의 1x S 기초 완충액으로 플레이트를 채웁니다.
3. 웜을 로딩 주사기(1x S Basal로 미리 채워진 튜브가 부착된 1mL 또는 3mL 주사기)에 넣습니다.
   1. 입체경을 사용하여 한 손으로 튜브 끝을 액체 표면 아래로 원하는 각 동물에게 이동하고 다른 손에 든 주사기를 사용하여 튜브로 그립니다.
   2. 웜을 주사기가 아닌 튜브에만 끌어들입니다.
      참고: 튜브는 일반적으로 약 100μL만 수용합니다. 동물들은 지역으로 추방 된 다음 작은 부피로 튜브로 다시 끌어 들일 수 있습니다.
4. 출구 라인을 닫고 웜 로딩 핀을 제거한 다음 드롭 투 드롭 연결을 사용하여 웜 로딩 주사기를 장치에 연결합니다.
5. 동물을 경기장으로 부드럽게 흐르게 하고, 완충 흐름을 설정하고, 테트라미솔에 의한 고정을 위해 최대 1시간을 허용합니다.
   알림: 고정 기간 동안 완충액만 경기장에 들어가도록 하십시오. 이 기간 동안 자극 및 제어 저장소를 끌 수 있지만 자극 시험을 실행하기 전에 열고 올바른 흐름을 확인하십시오.

7. 자동 자극 및 신경 기록

1. 자동 이미지 획득을 위한 자극 설정이 포함된 텍스트 편집기(예: 메모장)를 사용하여 "User Defined Acquisition Settings.txt"라는 자극 정의 텍스트 파일을 만듭니다( 그림 3의 예 참조). 설정은 두 섹션으로 나뉩니다.
   1. 현미경 획득 설정: 실험 유형(단일 자극 또는 다중 패턴), 노출 및 여기 타이밍, 시험 기간 및 간격을 정의하고 디렉토리를 저장합니다.
   2. 자극 설정: 자극 제어 파라미터를 정의합니다. "자극 명령"은 구문<문자 코드><프레임 번호>을 사용하여 특정 비디오 프레임에서 발생하는 동작을 지정하며, 여기서 문자 코드는 A = 밸브1, B = 밸브2, C = 밸브3, L = LED 조명입니다. 또한 대문자 = 켜기 및 소문자 = 끄기입니다. LED 강도는 문자 코드 "i"와 0(꺼짐)에서 255(최대 밝기)까지의 값으로 설정됩니다.
      알림: 0에서 255까지의 LED 강도 값은 출력 아날로그 전압을 0V에서 5V로 설정합니다. 여기에 사용된 전류 컨트롤러에는 선형 강도 스케일링이 있으며 다른 컨트롤러는 라이트 파워 미터로 보정해야 합니다.
      1. 반복되는 자극 명령이 하나만 있는 단일 자극 실험의 경우 그림 3A의 형식을 사용합니다.
      2. 다중 자극 명령을 사용한 다중 패턴 실험의 경우 그림 3B의 형식을 사용합니다. 자극 패턴의 순서를 나타내는 숫자의 "패턴 시퀀스"를 포함합니다. 각 패턴에 대해 별도의 줄에 자극 명령을 입력합니다.
         참고: 의사 난수 시퀀스 또는 m-시퀀스는 자극 이력 의존성을 조사하는 데 유용할 수 있습니다.
2. 현미경 제어 소프트웨어를 실행합니다. 모든 유체 유입구가 열려 있는지, 경기장 내에서 흐름이 원하는 대로( 그림 2H 참조), 관심 있는 뉴런이 라이브 창 내에서 초점이 맞춰져 있는지 확인합니다.
3. 라이브 창을 닫고 소프트웨어 내에서 스크립트 "MultiPattern_RunScript.bsh"를 실행합니다.
   참고: 적절한 흐름과 자극을 확인하기 위해 동물 없이 테스트 실험을 실행하는 것이 유용합니다. 각 자극액에 대해 다른 플루오레세인 농도를 대체하면 새로운 자극 패턴을 시각화하고 문서화하는 데 도움이 될 수 있습니다.
4. 실험 후 미세 유체 장치를 분해하고 모든 표면, 튜브 및 저장소를 물로 헹굽니다.
   알림: 모든 구성 요소는 깨끗하게 유지하면 수십 번 재사용할 수 있습니다. 저장소, 튜브 및 미세 유체 장치가 막힐 수 있고 제거하기 어려운 염 결정화를 방지하기 위해 공기 흐름에서 젖거나 완전히 건조된 상태로 유지되도록 하십시오. 장치는 살균을 위해 에탄올에 보관할 수 있지만 재사용하기 전에 완전히 건조시켜야 합니다(65°C에서 >1^시간)17.

8. NeuroTracker를 이용한 데이터 분석

참고: NeuroTracker ^4,18,19는 시험 중에 움직이는 여러 뉴런과 동물의 형광 강도를 추적하기 위한 ImageJ/FIJI 20 소프트웨어 플러그인입니다. 이 플러그인은 각 뉴런의 위치와 배경 보정 형광 강도(F)가 포함된 텍스트 파일로 데이터를 저장합니다. 형광 데이터는 기준선 형광(_F0), 예를 들어 자극 전 몇 초의 평균으로ΔF/F 0 = (F -F 0)/F ₀으로 정규화되며, 이는 모집단에 걸쳐 평균화될 수 있습니다.

1. 지시에 따라 NeuroTracker 스크립트를 설치합니다(github.com/albrechtLab/Neurotracker).
2. Plugins | 추적 | 뉴로트래커.
3. 가 포함된 폴더를 선택합니다. 추적할 TIF 비디오 파일을 선택하고 원하는 설정을 선택합니다.
   참고: 비디오 파일의 하위 집합만 추적해야 하는 경우 프롬프트에서 분석할 파일의 숫자 범위를 선택합니다. 기본 추적 설정은 250pix/mm 해상도에서 운동성이 없는 동물에 적합합니다. 다른 해상도에 대해 매개변수를 비례적으로 조정합니다. 자세한 설정 정보는 사용 설명서¹⁹ 를 참조하십시오.
4. 선택을 위해 뉴런을 볼 수 있도록 강도 임계값을 설정합니다(그림 4).
5. Image를 사용하여 Brightness/Contrast (B/C) 및 Threshold 컨트롤 창을 엽니다 . 메뉴를 조정합니다 .
6. B/C 창에서 뉴런을 명확하게 구분할 수 있을 때까지 최소값 및 최대값 슬라이더를 조정합니다(그림 4A).
7. 임계값(Threshold) 창에서 어두운 배경(Dark background) 및 범위를 재설정하지 않음(Don't Reset Range)을 선택합니다.
8. 프레임 슬라이더를 밀어 뉴런의 움직임과 강도 변화를 관찰하고, 다른 동물과의 겹침 등 추적에서 제외해야 할 동물을 확인합니다.
9. 추적할 뉴런을 식별합니다.
10. 각 동물에 대해 자극 전, 자극 중 및 자극 후의 모든 프레임에서 뉴런 위의 빨간색 임계값 영역이 보이도록 임계값 수준을 조정합니다.
11. 뉴런을 클릭하여 위치와 임계값 수준을 기록합니다.
12. 추적할 각 동물과 뉴런에 대해 임계값 조정 및 선택을 반복합니다. 좋은 임계값 수준 예는 그림 4C를 참조하고, 임계값 초과 및 임계값 미만 예는 그림 4D,E를 참조하십시오. 이전에 선택된 뉴런은 작은 상자로 표시됩니다.
13. 모든 뉴런이 선택되면 스페이스바 를 눌러 추적을 시작합니다.
    참고: 추가 NeuroTracker 예제는 이전 참고 문헌 ^4,19를 참조하십시오.
14. 각 동물에 대한 추적 프로세스를 모니터링하고 필요한 수정을 수행합니다.
15. NeuroTracker가 일시 중지되면 뉴런이 손실된 것입니다. 뉴런을 다시 클릭하고 필요에 따라 임계값 수준을 조정합니다.
16. 통합 상자가 근처의 다른 동물 또는 비뉴런 구조로 이동하면 스페이스바 를 눌러 일시 중지하고 슬라이더 를 첫 번째 잘못된 프레임으로 다시 이동한 다음 올바른 뉴런 위치를 다시 클릭합니다.

9. 데이터 탐색 및 시각화

참고: MATLAB 분석 스크립트는 데이터 처리 및 시각화에 사용되며 각 분석에 대한 요약 PDF를 생성하는 데 사용됩니다.

1. MATLAB에서 "NeuroTrackerSummary_pdf.m" 파일을 실행하고, NeuroTracker 데이터 텍스트 파일이 들어 있는 폴더를 선택합니다.
2. 요약 PDF가 생성될 때까지 기다렸다가 추적 프로세스를 확인할 수 있습니다(그림 5). 동물은 숫자로 식별되며(그림 5A), 개체군 변동성을 평가하기 위해 각 동물 및 시험의 신경 반응을 볼 수 있습니다(그림 5B).
3. "databrowse.m" 함수를 사용하여 시험 번호(그림 5C), 동물 수(그림 5D), 자극 패턴 또는 다른 범주별로 그룹화하는 등 신경망 데이터를 탐색할 수 있습니다.

결과

우리는 시간적 억제, 적응 및 탈억제를 포함하여 다양한 신경 현상을 평가하는 자극 패턴의 몇 가지 예를 제시합니다. 시간적 억제는 초기 발현 직후에 발생하는 두 번째 자극 제시에 대한 신경 반응의 일시적인 억제이다¹⁴. 이 현상을 테스트하기 위해 쌍 펄스 실험에서 0초에서 20초 범위의 간격으로 분리된 두 개의 1초 냄새 펄스로 구성된 8개의 패턴이 제시되었습니...

토론

이 프로토콜에서 우리는 다양한 자극 패턴의 시간적으로 정확한 전달을 사용하여 신경 활동 현상을 평가하기 위한 개방형 현미경 시스템을 설명합니다. 미세 유체 플랫폼은 수십 마리의 동물을 현미경 시야에 유지하면서 반복 가능한 자극을 전달합니다. 다양한 자극 타이밍 패턴을 쉽게 프로그래밍할 수 있는 상용 현미경 소프트웨어 패키지는 거의 없으며, 각 패턴 또는 독점 파일 형식을 수동으...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
Bacterial strains
E. coli (OP50)	Caenorhabditis Genetics Center (CGC)	Cat# OP50
Experimental models: Organisms/strains
C. elegans strains expressing GCaMP (and optionally, Chrimson) in desired neurons	Caenorhabditis Genetics Center (CGC) or corresponding authors of published work	NZ1091, for example
Chemicals, Treatments, and Worm Preparation Supplies
2,3-Butanedione	Sigma-Aldrich	Cat# B85307	diacetyl, example chemical stimulus
Calcium chloride, CaCl2	Sigma-Aldrich	Cat# C3881
Fluorescein, Sodium salt	Sigma-Aldrich	Cat# F6377
Glass water repellant	Rain-X	Cat #800002250	glass hydrophobic treatment (single-use)
Magnesium chloride, MgCl2	Sigma-Aldrich	Cat# M2393
Nematode Growth Medium (NGM) agar	Genesee	Cat #: 20-273NGM
Petri dishes (60 mm)	Tritech	Cat #T3305
Poly(dimethyl siloxane) (PDMS): Sylgard 184	Dow Chemical	Cat# 1673921
Potassium phosphate monobasic	Sigma-Aldrich	Cat# P5655
Potassium phosphate dibasic	Sigma-Aldrich	Cat# P8281
Sodium chloride, NaCl	Sigma-Aldrich	Cat# S7653
(tridecafluoro-1,1,2,2-tetrahydrooctyl)trichlorosilane (TFOCS)	Gelest	CAS# 78560-45-9	glass hydrophobic treatment (durable)
Software and algorithms
Arduino IDE	Arduino	https://www.arduino.cc/en/software
ImageJ	NIH	https://imagej.nih.gov/ij/
MATLAB	MathWorks	https://www.mathworks.com/products/matlab.html
Micro-manager	Micro-manager	https://micro-manager.org/
Microscope control software	Albrecht Lab	https://github.com/albrechtLab/MicroscopeControl
Neurotracker data analysis software	Albrecht Lab	https://github.com/albrechtLab/Neurotracker
Automated Microscope and Stimulation System
Axio Observer.A1 inverted microscope set up for epifluorescence (GFP filter cubes, 5× objective or similar)	Zeiss	Cat #491237-0012-000
Excelitas X-cite XYLIS LED illuminator	Excelitas	Cat #XYLIS
Orca Flash 4.0 Digital sCMOS camera	Hamamatsu	Cat #C11440-22CU
Arduino nano	Arduino	Cat #A000005
3-way Miniature Diapragm Isolation Valve (LQX12)	Parker	Cat #LQX12-3W24FF48-000	Valve 1: Control
2-way normally-closed (NC) Pinch Valve	Bio-Chem Valve Inc	Cat #075P2-S432	Valve 2: Outflow
3-way Pinch Valve	NResearch	Cat #161P091	Valve 3: Stimulus selection
Optogenetic stimulation LED and controller (615 nm)	Mightex	Cat #PLS-0625-030-S and #SLA-1200-2
ValveLink 8.2 digital/manual valve controller	AutoMate Scientific	Cat #01-18
Wires and connectors	various	See Fig. 2 of Cell STARS Protocol (Lawler, 2021)
Microfluidic Device Preparation
Dremel variable speed rotary cutter 4000	Dremel	Cat #F0134000AB	Set speed to 5k RPM for cutting glass
Dremel drill press rotary tool workstation	Dremel	Cat #220-01
Diamond drill bit	Dremel	Cat #7134
Glass slide, 1 mm thick	VWR	Cat #75799-268
Glass scribe (Diamond scriber)	Ted Pella	Cat #54468
Luer 3-way stopcock	Cole-Parmer	Cat #EW-30600-07
Luer 23 G blunt needle	VWR	Cat #89134-100
Microfluidic device	Corresponing author or fabricate from CAD files associated with this article	N/A
Microfluidic device clamp	Warner Instruments (or machine shop)	P-2
Microfluidic tubing, 0.02″ ID	Cole-Parmer	Cat #EW-06419-01
Tube 19 G, 0.5″	New England Small Tube	Cat #NE-1027-12