호미라 나와비, 프레드릭 모트, 이자벨 산야스의 도움에 감사드립니다. 이 작품은 CNRS에 의해 지원됩니다, 협회 프랑카이스 contre 레 Myopathies (AFM), ANR YADDLE, 라벡데베칸, 라벡스 피질, V.C.; C.D-B와 A.J는 라 리그 콘트레 르 암과 라벡스 DevWeCan 펠로우십에 의해 각각 지원됩니다.

1. pHluorin와 플렉스A1 수용체를 태그하는 복제 전략
<ol><li>백본으로서 적절한 발현 벡터를 선택한다(예를들어 마우스 수용체 plexinA1 발현 벡터, 안드레아스 푸스헬 박사의 종류 선물11). 참고: 이 플렉스A1 벡터는 플라즈마 멤브레인에서 효율적인 HA-또는 VSV 태그 수용체 삽입을 달성하기 위해 설계되었습니다.</li>
	<li>PCR에 의해 증폭되는 이클립성 pHluorin 코딩 서열은 적절한 플라스미드를 템플릿으로 사용한다(예를들어 pHluorin-태그 된 GABA 수용체, 닥터 제이콥2의종류 선물). 필요한 경우 백본의 복제 단계를 용이하게하기 위해 프라이머의 5'끝에 제한 사이트를 추가합니다.</li>
	<li>제한 부위(예를 들어, 도 1B에기재된 바와 같이 NruI/Kpn2I 제한부위)를 사용하여 신호 펩타이드와 수용체 코딩 서열 사이에 pHluorin 서열을 프레임에 삽입한다. 참고: 수용체의 올바른 표적을 보장하는 신호 펩티드가 갈라져 있기 때문에, pHluorin은 그 후에 배치되어야 합니다. 이것은 신호 펩티드의 인식을 보증하고 관심의 수용체에서 pHluorin의 분열을 방지할 수 있습니다.</li>
	<li>PCR에 의해 돌연변이가 도입되지 않았는지 확인하기 위해 얻은 구조서를 서열한다.</li>
</ol>2. COS7 세포에서 pHluorin 태그 수용체 체외의 특성화
pH가 낮아짐에 따라 혈장 막에 도달하는 융합 단백질의 능력과 형광의 가역적 손실은 다음 절차를 사용하여 확인할 수 있다.
<ol><li>1일차. 플레이트 1.5 x 105 COS7 세포는 Dulbecco의 수정 된 독수리 매체 2 ml에서 유리 바닥 35mm 접시 (DMEM - 10 % 태아 소 혈청 - 1 mM 나트륨 피루바테 - 25 U / ml 페니실린 / 스트라토마이신 - 2.5 μg / ml 앰프 BH).</li>
	<li>2일차. 트랜스펙트 세포: 참고: 셀은 70-80% 컨할 수 있어야 합니다.<ol>
<li>200 μl NaCl 150 mM을 준비하고 3 μg DNA 즉, pHluorin 태그 수용체를 코딩하는 벡터를 추가합니다. 부드럽게 소용돌이와 잠시 아래로 회전. 참고: 이러한 실험에 사용되는 pHluorin-plexinA1 벡터의 맵은 도 1B에도시된다.</li>
		<li>10 μl의 형질 전환 시약(또는 사용된 시약의 적당량)을 추가합니다. 즉시 소용돌이.</li>
		<li>RT에서 10분 동안 배양하십시오.</li>
		<li>세포에 트랜스펙트 시약/DNA 믹스의 200 μl을 추가합니다.</li>
		<li>접시를 부드럽게 이동하여 혼합물의 재분할을 달성하고 세포를 37°C 인큐베이터로 다시 배치합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>3일차. 트랜스펙트 매체를 제거하고 2 ml의 신선한 완전 DMEM으로 교체하십시오.</li>
	<li>4일차. COS7 pHluorin-plexinA1 전염된 세포의 살아있는 세포 화상 진찰을 수행하십시오:<ol>
<li>DMEM 의 두 개의 알리쿼트 완성 매체를 준비하고 pH를 각각 3.5 및 9.5로 조정합니다. 참고: 35mm 플레이트 1개의 경우 실험을 수행하기 위해 각 솔루션 1.5ml가 필요합니다.</li>
		<li>세포 매체를 제거하고 DMEM 완전 배지 pH 7.4 1 ml로 교체하십시오.</li>
		<li>현미경 챔버를 열지 않고 세포 배양 배지에 직접 다양한 성분을 주입하기 위해 적절한 유형의 튜브로 5ml 주사기를 준비합니다.</li>
		<li>37°C, 5%CO2 습한 작업 대기의 유지 보수를 허용하는 모듈을 사용합니다. 참고: CO2 챔버의 사용에 대한 대체 접근법은 HEPES 버퍼링 된 매체 (일반적으로 셀 유형에 따라 10-25 mMM범위)를 사용하는 것입니다.</li>
		<li>챔버에 세포를 배치하고 튜브와 주사기를 조정합니다. 참고: 현미경은 기록 하는 동안 기계적 드리프트를 피하기 시작 하기 전에 평형 해야.</li>
		<li>이미징 소프트웨어를 열고 다차원 획득 프로그램을 선택합니다.</li>
		<li>40X 목표와 함께 감염된 COS7 셀을 찾아 소프트웨어의 위치를 표시합니다.</li>
		<li>15 μm 깊이 획득을 위해 Z 스택을 구성합니다(플레이트에 미디어를 추가할 때 초점이 변경될 수 있음).</li>
		<li>GFP 필터 및 위상에 대한 노출설정입니다.</li>
		<li>획득 타이밍을 구성합니다. 참고: 5가지 관심 분야의 전체 실험의 경우 10분 동안 20초마다 획득하는 것으로 충분합니다.</li>
		<li>DMEM pH 7.4 배지에서 5개의 제어 이미지를 획득하고 수집합니다.</li>
		<li>일시 정지 획득, pH 3.5 완전 DMEM 1.25 ml를 주입하여 배양 배지에서 5.5의 pH를 달성하고, 소프트웨어에서 이벤트를 표시하고 5시간 더 획득을 재개한다. 참고: 녹색 형광은 점진적으로 사라져야 합니다.</li>
		<li>일시 정지 획득, pH 9.5 완전 DMEM 1.2 ml을 주입하여 배양 배지에서 pH 7.4를 달성하고, 소프트웨어에서 이벤트를 표시하고 5시간 더 획득을 재개한다. 참고: 플라즈마 멤브레인에 녹색 형광이 다시 나타납니다.</li>
		<li>이미지를 분석합니다. 도 2는 pHluorin-plexinA1 구조와 이러한 프로토콜을 얻은 대표적인 이미지를 나타낸다.
</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. pHluorin-plexinA1 구조의 오보 전기포이션
<ol><li>전기 화 전에 계란의 처리:<ol>
<li>잠복하기 1주일 전까지 14°C의 냉장고에 수정된 계란을 보관하십시오.</li>
		<li>배아가 단계 HH1412에도달할 때까지 50-52 시간 동안 포화 습도가 있는 인큐베이터에서 38.5°C(101.3°F)에서 계란을 배양한다. 참고: 배아가 노른자 위에 떠 있는 전기기공을 위해 제대로 배치되도록 계란은 잠복하는 동안 수평으로 배치되어야 합니다. HH14 단계는 척수및 적절한 생존율로 등쪽 뿌리 신경절에서 분화된 뉴런에서 플라스미드의 발현을 얻는 데 적합하다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>전극성 배아8-10:<ol>
<li>전기 기공 준비:<ol>
<li>2 μg/μl보다 우수한 농도로 내독소가 없는 DNA 플라스미드를 준비하여 원하는 농도로 희석할 수 있도록 한다.</li>
			<li>다른 DNA 솔루션을 주입하기에 충분한 유리 모세 혈관을 당깁니다.</li>
			<li>멸균 PBS (-Ca2 +; -Mg2 +)- 100 U / ml 페니실린 / 연쇄 절제술을 준비하고 38.5 ° C에서 평형.</li>
			<li>후드, 곡선 가위 및 미세 한 집게를 살균.</li>
			<li>전극 간격을 제어합니다. 참고: 전극 사이의 4mm 공간이 일반적으로 사용됩니다.</li>
		</ol>
</li>
		<li>창 계란13 (그림 3A):<ol>
<li>곡선 가위를 사용하여 달걀의 무딘 면에 껍질을 관통하십시오.</li>
			<li>0.9mm x 25mm 바늘과 5ml 주사기를 사용하여 알부민 2 ml를 제거하십시오. 노른자 주머니를 손상시키지 않도록 바늘을 수직으로 방향을 지정합니다.</li>
			<li>껍질의 무결성을 유지하기 위해 테이프로 달걀 의 상단을 덮습니다.</li>
			<li>곡선 가위를 사용하여 테이프 중앙에 껍질을 관통하여 달걀에서 알부민 2ml를 제거할 때 압력을 균등화합니다. 그런 다음 배아를 시각화하고 작업 할 수있을만큼 큰 창을 잘라냅니다.</li>
			<li>~2ml 멸균 따뜻한 PBS (-Ca2+; -Mg2+)- 100 U /ml 페니실린 / 연쇄 절제술을 추가하여 배아의 탈수를 피하고 조작기에 더 쉽게 접근 할 수 있습니다.</li>
		</ol>
</li>
		<li>DNA를 주입하고 배아를 전기화<ol>
<li>PBS(-Ca2+; -Mg2+)의플라스미드를 0.5-2 μg/μl 사이의 농도로 희석하고 빠른 녹색 염료를 추가하여 최종 0.025% 농도에 도달합니다. 모세관에 DNA 믹스를 적재합니다. 인젝터를 사용하는 것이 좋습니다. 참고: 모세관 저항이 너무 크지도 않는다는 것을 확인하십시오 (배아를 주입할 때 어려움이 있을 수 있다는 것을 의미함) 또는 너무 작습니다 (모세혈관이 너무 크고 배아를 손상시킬 수 있다는 것을 의미함). 또한, 2 μg/μl보다 높은 핵산의 농도는 특이하지 않은 효과를 유발할 수 있으며 조절될 필요가 있다.</li>
			<li>노른자-주머니와 코달 측의 신경관에 장전된 모세관을 뚫는다. 얕은 각도로 신경관을 입력하고 DNA믹스(도 3B)로꼬리에서 머리까지 루멘을 채웁니다. 참고: 빠른 녹색을 사용하면 주입의 정확도를 제어할 수 있습니다.</li>
			<li>신경관 양쪽에 4mm 백금 전극을 빠르게 배치하여 전극을 31V에서 500msec간격(그림 3C)으로500msec에 3펄스를 적용합니다. 참고: 발전 하는 배아를 손상 하지 않도록 심장 또는 큰 여분의 배아 혈관에 전극을 배치 하지 마십시오. 기포는 전극에 형성되어야 합니다.</li>
			<li>바늘로, 쉘의 수준을 감소시키기 위해 알부민 2 ml를 제거합니다.</li>
			<li>테이프로 창과 무딘 면을 밀폐적으로 밀봉합니다.</li>
			<li>계란을 원하는 단계에 도달할 때까지 인큐베이터에 38.5°C로 다시 넣습니다.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. 배아 배아 포함 및 냉동 절제
<ol><li>전기 포기 후 48 시간, 신중하게 전기 화 배아 (HH24 단계)를 수확한다. 테이프와 초리오알라토이드 멤브레인의 절반을 잘라냅니다. 배아가 노른자속으로 가라앉는 것을 방지하기 위해 배아 아래에 소쿠리를 배치하고 초리오알라토이드 막의 후반을 잘라냅니다.</li>
	<li>얼음 차가운 PBS로 채워진 해부 접시로 배아를 옮춥시다.</li>
	<li>형광 스테레오 현미경으로 신경관에서 형광을 찾아서 전기 기형 효율을 확인하십시오. 참고 : RFP를 인코딩하는 대조 플라스미드의 응전화는 전기화 된 영역을 시각화하는 데 도움이 될 수 있습니다.</li>
	<li>척수의 전극 부위를 선택하기 위해 미세 두피를 사용하여 배아를 해부합니다.</li>
	<li>해부된 배아를 24웰 플레이트로 옮기고 pH 7.4 4% 파라포름알데히드(PFA) - 포스페이트 버퍼 살린(PBS), O/N에서 4°C로 수정한다. 참고: 고정 단계는 "살아있는" 형성에서 pHluorin의 안정화를 허용하고 따라서 고정/투과화 된 조직에서 pHluorin을 사용할 수 있도록 하는 것이 중요합니다. 고정은 형광의 pH 의존적 변화를 크게 느리게 하지만, 고정 후에도 형태/프로토네이션 변경이 발생할 수 있다는 점을 고려해야 합니다. 따라서, 다음 프로토콜(포함, 극저전 및 관찰)은 고정 단계 후 3일 이내에 수행되어야 하며, 모든 버퍼는 pH 7에서 수행되어야 한다. 고정이 필요하지 않은 경우 라이브 조직 섹션에서 관찰을 수행하는 것이 좋습니다.</li>
	<li>PFA 4%를 제거하고 pH 7.4 PBS로 배아를 세척하십시오.</li>
	<li>PBS-15% 자당에서 배아를 배양하고 배아가 가라앉을 때까지 4°C에서 보관하십시오.</li>
	<li>pH 7.4 7.5% 젤라틴- 15% 자당에서 고정 배아를 37°C에서 45분 동안 배양하여 배아가 완전히 내장되어 있습니다.</li>
	<li>얼음에 내장 금형을 놓고 pH 7.4 7.5 % 젤라틴 - 15 % 자당 400 μl을 추가하여 단단한 2mm 베이스를 달성하십시오.</li>
	<li>임베디드 배아를 절단 팁으로 흡인시키고 고체 젤라틴 베이스에 배아를 놓습니다.</li>
	<li>pH 7.4 7.5% 젤라틴-15% 자당으로 커버하고 젤라틴이 고화되기 전에 배아를 집게로 배치한다.</li>
	<li>젤라틴이 고체되면 -40°C 이소프로판올 목욕(드라이 아이스 또는 액체 질소 사용)을 준비하고 젤라틴 블록을 5분 동안 동결시하십시오.</li>
	<li>동결 된 블록을 -80 °C로 유지하십시오.</li>
	<li>냉동 블록을 -20°C에 1시간 동안 놓습니다.</li>
	<li>금형을 제거하고 폴리에틸렌 글리콜 배지로 척의 블록을 고정합니다.</li>
	<li>블록이 단단히 고정되면 척을 극저온 시스템에 놓습니다. 참고: 코팅된 슬라이드를 사용하여 염색 중 조직 손실을 방지하십시오.</li>
	<li>직렬 저온 섹션을 수행 (20 μm 극저온 섹션은 일반적으로 수행됩니다).</li>
	<li>RT에서 15분 동안 냉동섹션을 건조시키십시오. 참고: 저온섹션은 GFP 형광의 표백을 피하기 위해 불필요한 광 노출로부터 보호되어야 합니다.</li>
</ol>5. 극저온 섹션의 현미경 분석
<ol><li>10 분 동안 RT에서 pH 7.4 PBS에서 냉동 고극을 재수화합니다. 참고: 필요한 경우, 핵은 Hoechst로 얼룩질 수 있습니다.</li>
	<li>PBS에서 0.5 μg/ml Hoechst 용액을 사용하고 냉동고섹션을 15분 동안 배양하십시오.</li>
	<li>5 분 동안 pH 7.4 PBS로 슬라이드 3x를 헹구십시오.</li>
	<li>슬라이드 마운팅으로 진행합니다. O/N을 경화시키는 pH 7.4(또는 더 기본적인) 폴리비닐 알코올 마운팅 솔루션은 슬라이드와 커버슬립 사이의 기포 형성을 피하기 위해 커버슬립을 조심스럽게 배치합니다.</li>
	<li>마운팅 배지가 어둠 속에서 4 °C에서 O / N을 경화시키십시오.</li>
	<li>반전된 공초점 현미경을 사용하여 pHluorin-plexinA1 융합 단백질을 정확하게 시각화합니다: 최적의 핀홀및 광학 해상도에서 z 스택을 수행하고 20X(NA 0.75) 또는 40X(NA 1.3) 렌즈를 사용합니다. 참고: pHluorin은GFP(즉, 509 nm에서 배출 피크)를 검출하는 데 사용되는 것과 동일한 매개 변수로 검출할 수 있습니다. 파장 흥분 및 감지 필터 설정은 이미징 소프트웨어에 의해 최적으로 정의됩니다. Hoechst는 425-460 nm (여기는 405 nm에서), GFP 또는 pHluorin 485-545 nm (여기는 473 nm에서) 사이에서 검출되고 RFP는 575-675 nm 사이에서 검출됩니다 (암송은 559 nm에서).</li>
</ol>병아리 배아 척수에서 pHluorin-plexinA1 및 eGFP 발현의 대표적인 이미지는 도 4에도시된다.

<ol>
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A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Real-time+measurements+of+vesicle-SNARE+recycling+in+synapses+of+the+central+nervous+system.">Real-time measurements of vesicle-SNARE recycling in synapses of the central nervous system.</a> Nat. Cell. Biol. 2, 197-204 (2000).</li><li>Stark, D. A., Kasemeier-Kulesa, J. C., Kulesa, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Photoactivation+cell+labeling+for+cell+tracing+in+avian+development.">Photoactivation cell labeling for cell tracing in avian development.</a> CSH Protoc.. 2008, (2008).</li><li>Hildick, K. L., Gonzalez-Gonzalez, I. M., Jaskolski, F., Henley, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lateral+diffusion+and+exocytosis+of+membrane+proteins+in+cultured+neurons+assessed+using+fluorescence+recovery+and+fluorescence-loss+photobleaching.">Lateral diffusion and exocytosis of membrane proteins in cultured neurons assessed using fluorescence recovery and fluorescence-loss photobleaching.</a> J. Vis. Exp. (60), (2012).</li><li>Hanson, G. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Green+fluorescent+protein+variants+as+ratiometric+dual+emission+pH+sensors.+1.+Structural+characterization+and+preliminary+application.">Green fluorescent protein variants as ratiometric dual emission pH sensors. 1. Structural characterization and preliminary application.</a> Biochemistry. 41, 15477-15488 (2002).</li><li>Rose, T., Schoenenberger, P., Jezek, K., Oertner, T. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Developmental+refinement+of+vesicle+cycling+at+schaffer+collateral+synapses.">Developmental refinement of vesicle cycling at schaffer collateral synapses.</a> Neuron. 77, 1109-1121 (2013).</li><li>Li, Y., Tsien, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=pHTomato,+a+red,+genetically+encoded+indicator+that+enables+multiplex+interrogation+of+synaptic+activity.">pHTomato, a red, genetically encoded indicator that enables multiplex interrogation of synaptic activity.</a> Nat. Neurosci. 15, 1047-1053 (2012).</li><li>de Wit, J., Toonen, R. F., Verhage, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Matrix-dependent+local+retention+of+secretory+vesicle+cargo+in+cortical+neurons.">Matrix-dependent local retention of secretory vesicle cargo in cortical neurons.</a> J. Neurosci. 29, 23-37 (2009).</li></ol>

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이 프로토콜은 세포 배양과 병아리 배아 척수의 발달 맥락에서 축축한 유도 수용체의 역학을 따르는 단계별 절차를 제공합니다.
드 노보 pHluorin 태그 단백질을 설계하려면 복제 전략에 관한 두 점을 고려해야합니다. 먼저, pHluorin 태그는 산성 내종의 루멘에 노출되어야하며, 결과적으로 혈장 막 수용체 풀을 시각화하기 위해 세포외 구획에 노출되어야 한다. 따라서, 수?...

탐색 하는 동안 축 하 그들의 대상을 향해 그들을 안내 하는 여러 환경 단서를 통합. 이러한 단서는 축축단 단자 표면의 안내 수용체를 활성화, 성장 콘, 차례로 적절한 신호 경로를 시작합니다. 따라서, 수용체의 세포 표면 분포의 시간적 및 공간 조절은 성장 원뿔1의감도를 설정하는 데 중요하다. 이러한 맥락에서, 상생축축에 의한 중간선 횡단은 수용체 세포 표면 수준의 조절을 조사하는 우수한 모델이다. 개발 척수에서, commissural 축축은 처음에 그들이 중간라인을 건너 복부 바닥 플레이트쪽으로 끌리고 있습니다. 횡단 후, 그들은 바닥 플레이트 매력에 대한 응답성을 잃고 바닥 판 기피제에 대한 반응을 얻어 서 바닥 판을 빠져 나와 신경계2,3의단점 면에서 최종 목적지로 이동할 수 있습니다. 성장 콘 표면에서 수용체 가용성의 조절은 미드 라인 큐4,5에응답의 전환의 기초 메커니즘 중 하나입니다. 따라서, 성장 콘의 혈장 막에 존재하는 수용체의 선택적 모니터링은 매우 중요하다. 당사는 개발 중인 병아리 척수에서 시험관 내 및 생체 내 혈장 막에 해결되는 축축 유도 수용체를 구체적으로 시각화하기 위해 녹색 형광 단백질(GFP) 변이체의 pH 의존형 형광 성질을기반으로 하는 방법을 설명한다.
로스만 과 동료는 일식 pHluorin6을포함하여 GFP의 포인트 돌연변이 pH 민감 변이체에 의해 설계되었다. 이클립성 pHluorin은 산성 pH (<6)에 노출될 때 불형성인 성질을 가지며, 중성 pH에서 형광이 되는 동안. 이를 통해 세포내 산성구획(즉, 내성, 인신매매 소포)에서 국소화된 비형성 수용체를 혈장 막에 통합하여 세포외 중립 pH7에노출된 형광 수용체로부터 구별할 수 있다. 이를 통해 미들라인 충충제 세마포린 3B5(도 1A)에 대한 성장 콘 반응을 중재하는 축삭 유도 수용체인 plexinA1의 플라즈마 막 국소화를 모니터링하였다. 우리는 여기에 pHluorin-plexinA1 구조의 체외 특성화를 설명, 개발 병아리 척수에서이 구조의 오보 전기화8-10에 다음 공간 및 측두해상도 모두 생체 내에서 축삭 유도 수용체 역학을 따를 수 있도록 극저온 섹션의 현미경 분석.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1007">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">COS7 cells</td>
			<td style="width:147px;">ATCC</td>
			<td style="width:219px;">CRL-1651</td>
			<td style="width:379px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">DMEM GlutaMAX</td>
			<td style="width:147px;">GIBCO</td>
			<td style="width:219px;">61965-026</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Sodium pyruvate</td>
			<td style="width:147px;">GIBCO</td>
			<td style="width:219px;">11360-039</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Amphotericin B</td>
			<td style="width:147px;">Sigma</td>
			<td style="width:219px;">A2942</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Fetal bovine serum</td>
			<td style="width:147px;">GIBCO</td>
			<td style="width:219px;">10270-106</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Penicillin/Streptomycin</td>
			<td style="width:147px;">GIBCO</td>
			<td style="width:219px;">15140-122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:264px;">Exgen500 reagent</td>
			<td style="width:147px;">Euromedex Fermentas</td>
			<td style="width:219px;">ET0250</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">PBS -Ca2+ -Mg2+</td>
			<td style="width:147px;">GIBCO</td>
			<td style="width:219px;">14190-094</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Fast green dye</td>
			<td style="width:147px;">Sigma</td>
			<td style="width:219px;">F7252</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:264px;">32% Paraformaldehyde aqueous solution</td>
			<td style="width:147px;">Electron Microscopy</td>
			<td style="width:219px;">15714-S</td>
			<td>Dilute extemporaneously in PBS to achieve a 4% solution</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Gelatin from cold water fish skin</td>
			<td style="width:147px;">Sigma</td>
			<td style="width:219px;">G7041</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Sucrose</td>
			<td style="width:147px;">Sigma</td>
			<td style="width:219px;">S0389</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Cryomount</td>
			<td style="width:147px;">Histolab</td>
			<td style="width:219px;">00890</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Hoechst 34580</td>
			<td style="width:147px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:219px;">H21486</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Mowiol 4-88</td>
			<td style="width:147px;">Fluka</td>
			<td style="width:219px;">81381</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td colspan="4" height="21" style="height:21px;width:1008px;">Consumables</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Bottom-glass 35 mm dish</td>
			<td style="width:147px;">MatTek</td>
			<td style="width:219px;">P35G-1.5-14-C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">5 ml Syringe</td>
			<td style="width:147px;">Terumo</td>
			<td style="width:219px;">SS-05S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Needles 0.9 mm x 25 mm</td>
			<td style="width:147px;">Terumo</td>
			<td style="width:219px;">NN-2025R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Capillaries</td>
			<td style="width:147px;">CML</td>
			<td style="width:219px;">PP230PO</td>
			<td>capillaries are stretched manually in the flame</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Superfrost Plus Slides</td>
			<td style="width:147px;">Thermo Scientific</td>
			<td>4951PLUS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td colspan="4" height="21" style="height:21px;width:1008px;">Material</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Curved scissors</td>
			<td style="width:147px;">FST</td>
			<td style="width:219px;">129-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Microscalpel</td>
			<td style="width:147px;">FST</td>
			<td style="width:219px;">10316-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Forceps</td>
			<td style="width:147px;">FST</td>
			<td style="width:219px;">Dumont #5 REF#11254</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td colspan="4" height="21" style="height:21px;width:1008px;">Equipment/software</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Time lapse microscope</td>
			<td style="width:147px;">Zeiss</td>
			<td style="width:219px;">Observer 1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:264px;">Temp module S</td>
			<td style="width:147px;">PECON for Zeiss</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">CO2 module S</td>
			<td style="width:147px;">PECON for Zeiss</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Metamorph software</td>
			<td style="width:147px;">Metamorph</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:264px;">Eggs incubator</td>
			<td style="width:147px;">Sanyo</td>
			<td style="width:219px;">MIR154</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Electroporator apparatus</td>
			<td style="width:147px;">Nepa Gene CO., LTD</td>
			<td style="width:219px;">CUY21</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Electrodes</td>
			<td style="width:147px;">Nepa Gene CO., LTD</td>
			<td style="width:219px;">CUY611P7-4</td>
			<td>4 mm platinum electrodes</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Fluorescence stereomicroscope</td>
			<td style="width:147px;">LEICA</td>
			<td style="width:219px;">MZ10F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Cryostat</td>
			<td style="width:147px;">MICROM</td>
			<td style="width:219px;">HM550</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Confocal microscope</td>
			<td style="width:147px;">Olympus</td>
			<td style="width:219px;">FV1000, X81</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Fluoview software</td>
			<td style="width:147px;">Olympus</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">CLC Main Workbench software</td>
			<td style="width:147px;">CLC Bio</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

use of phluorin to assess the dynamics of axon guidance receptors in cell culture and in the chick embryo

개발 하는 동안, 축 하 안내 수용 체 매력적이 고 반발 단서 모두에 축 슨 감도 조절에 중요 한 역할을. 실제로, 유도 수용체의 활성화는 축축기 팁, 성장 콘, 리간드에 반응하는 신호 메커니즘의 첫 번째 단계이다. 따라서 셀 표면에서의 가용성을 조절하는 것은 성장 원뿔 감도 설정에 참여하는 메커니즘 중 하나입니다. 우리는 여기에서 개발 중인 병아리 척수에서 체외 및 생체 내 모두에서 축소 유도 수용체의 현세세포 표면 역학을 정확하게 시각화하는 방법을 설명합니다. 우리는 플라즈마 막에 해결되는 축축물 유도 수용체의 분획을 구체적으로 검출하기 위해 녹색 형광 단백질 (GFP) 변이체의 pH 의존형 형광 특성을 이용했습니다. 우리는 먼저 이러한 pH 의존 구조의 체외 검증을 설명하고 우리는 더 관심축산축산구체의 스페티오 -측두동역학을 평가하기 위해, 병아리 척추 화음에서 생체 내에서의사용을 자세히 설명합니다.

<img alt="Figure 1" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/50883/50883fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50883/50883fig1.jpg"> 그림 1. A. 세포 컨텍스트에서 pHluorin-plexinA1 형광 특성의 계획. PHluorin은 pH가 인신 매매 vesicules 또는 내분모에서와 같은 산성 (<6)이며 pH가 중성인 세포 외 배지에 노출되면 형광인 세포 내 구획에서 비형성입니다. 이를 통해 pHluorin-plexinA...

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Use of pHluorin to Assess the Dynamics of Axon Guidance Receptors in Cell Culture and in the Chick Embryo

우리는 여기에서 pH 에 민감한 녹색 형광 단백질 변이체, pHluorin의 사용을 설명, 축 슨 유도 수용체의 스파티오-측두동역학을 연구 하는 세포 표면에 인신 매매. pHluorin 태그 수용체는 병아리 배아의 전기 기공을 사용하여 세포 배양 및 생체 내에서모두 표현된다.

세포 배양과 병아리 배아에서 축슨 유도 수용체의 역학을 평가하기 위해 pHluorin의 사용

During development, axon guidance receptors play a crucial role in regulating axons sensitivity to both attractive and repulsive cues. Indeed, activation ...

use-phluorin-to-assess-dynamics-axon-guidance-receptors-cell-culture

Research

JoVE Journal

Neuroscience

8.2K 조회수.  University of Lyon. 우리는 여기에서 pH 에 민감한 녹색 형광 단백질 변이체, pHluorin의 사용을 설명, 축 슨 유도 수용체의 스파티오-측두동역학을 연구 하는 세포 표면에 인신 매매. pHluorin 태그 수용체는 병아리 배아의 전기 기공을 사용하여 세포 배양 및 생체 내에서모두 표현된다.

비디오: Use of pHluorin to Assess the Dynamics of Axon Guidance Receptors in Cell Culture and in the Chick Embryo

Visualization of Proprioceptors in Drosophila Larvae and Pupae

Proprioception is the ability to sense the motion, or position, of body parts by responding to stimuli arising within the body. In fruitflies and other insects proprioception is provided by specialized sensory organs termed chordotonal organs (ChOs) 2. Like many other organs in Drosophila, ChOs develop twice during the life cycle of the fly. First, the larval ChOs develop during embryogenesis. Then, the adult ChOs start to develop in the larval imaginal discs and continue to differentiate during metamorphosis.
The development of larval ChOs during embryogenesis has been studied extensively 10,11,13,15,16. The centerpiece of each ChO is a sensory unit composed of a neuron and a scolopale cell. The sensory unit is stretched between two types of accessory cells that attach to the cuticle via specialized epidermal attachment cells 1,9,14. When a fly larva moves, the relative displacement of the epidermal attachment cells leads to stretching of the sensory unit and consequent opening of specific transient receptor potential vanilloid (TRPV) channels at the outer segment of the dendrite 8,12. The elicited signal is then transferred to the locomotor central pattern generator circuit in the central nervous system.
Multiple ChOs have been described in the adult fly 7. These are located near the joints of the adult fly appendages (legs, wings and halters) and in the thorax and abdomen. In addition, several hundreds of ChOs collectively form the Johnston's organ in the adult antenna that transduce acoustic to mechanical energy 3,5,17,4.
In contrast to the extensive knowledge about the development of ChOs in embryonic stages, very little is known about the morphology of these organs during larval stages. Moreover, with the exception of femoral ChOs 18 and Johnston's organ, our knowledge about the development and structure of ChOs in the adult fly is very fragmentary.
Here we describe a method for staining and visualizing ChOs in third instar larvae and pupae. This method can be applied together with genetic tools to better characterize the morphology and understand the development of the various ChOs in the fly.

Visualization of Proprioceptors in Drosophila Larvae and Pupae

A method to immunostain and visualize chordotonal organs in larvae and pupae of Drosophila melanogaster is described.

의 Proprioceptors의 시각화<em&gt; Drosophila</em&gt; 애벌레와 Pupae

Proprioception is the ability to sense the motion, or position, of body parts by responding to stimuli arising within the body. In fruitflies and other ...

연구

신경과학

Imaging pHluorin-tagged Receptor Insertion to the Plasma Membrane in Primary Cultured Mouse Neurons

A better understanding of the mechanisms governing receptor trafficking between the plasma membrane (PM) and intracellular compartments requires an experimental approach with excellent spatial and temporal resolutions. Moreover, such an approach must also have the ability to distinguish receptors localized on the PM from those in intracellular compartments. Most importantly, detecting receptors in a single vesicle requires outstanding detection sensitivity, since each vesicle carries only a small number of receptors. Standard approaches for examining receptor trafficking include surface biotinylation followed by biochemical detection, which lacks both the necessary spatial and temporal resolutions; and fluorescence microscopy examination of immunolabeled surface receptors, which requires chemical fixation of cells and therefore lacks sufficient temporal resolution1-6 . To overcome these limitations, we and others have developed and employed a new strategy that enables visualization of the dynamic insertion of receptors into the PM with excellent spatial and temporal resolutions 7-17 . The approach includes tagging of a pH-sensitive GFP, the superecliptic pHluorin 18, to the N-terminal extracellular domain of the receptors. Superecliptic pHluorin has the unique property of being fluorescent at neutral pH and non-fluorescent at acidic pH (pH &lt; 6.0). Therefore, the tagged receptors are non-fluorescent when within the acidic lumen of intracellular trafficking vesicles or endosomal compartments, and they become readily visualized only when exposed to the extracellular neutral pH environment, on the outer surface of the PM. Our strategy consequently allows us to distinguish PM surface receptors from those within intracellular trafficking vesicles. To attain sufficient spatial and temporal resolutions, as well as the sensitivity required to study dynamic trafficking of receptors, we employed total internal reflection fluorescent microscopy (TIRFM), which enabled us to achieve the optimal spatial resolution of optical imaging (~170 nm), the temporal resolution of video-rate microscopy (30 frames/sec), and the sensitivity to detect fluorescence of a single GFP molecule. By imaging pHluorin-tagged receptors under TIRFM, we were able to directly visualize individual receptor insertion events into the PM in cultured neurons. This imaging approach can potentially be applied to any membrane protein with an extracellular domain that could be labeled with superecliptic pHluorin, and will allow dissection of the key detailed mechanisms governing insertion of different membrane proteins (receptors, ion channels, transporters, etc.) to the PM.

By tagging the extracellular domains of membrane receptors with superecliptic pHluorin, and by imaging these fusion receptors in cultured mouse neurons, we can directly visualize individual vesicular insertion events of the receptors to the plasma membrane. This technique will be instrumental in elucidating the molecular mechanisms governing receptor insertion to the plasma membrane.

이미징은 기본 양식 마우스 뉴런의 플라즈마 막에 수용체 삽입을 pHluorin 태그

A better understanding of the mechanisms governing receptor trafficking between the plasma membrane (PM) and intracellular compartments requires an ...

Electroporation of the Hindbrain to Trace Axonal Trajectories and Synaptic Targets in the Chick Embryo

Electroporation of the chick embryonic neural tube has many advantages such as being quick and efficient for the expression of foreign genes into neuronal cells. In this manuscript we provide a method that demonstrates uniquely how to electroporate DNA into the avian hindbrain at E2.75 in order to specifically label a subset of neuronal progenitors, and how to follow their axonal projections and synaptic targets at much advanced stages of development, up to E14.5. We have utilized novel genetic tools including specific enhancer elements, Cre/Lox - based plasmids and the PiggyBac-mediated DNA transposition system to drive GFP expression in a subtype of hindbrain cells (the dorsal most subgroup of interneurons, dA1). Axonal trajectories and targets of dA1 axons are followed at early and late embryonic stages at various brainstem regions. This strategy contributes advanced techniques for targeting cells of interest in the embryonic hindbrain and for tracing circuit formation at multiple stages of development.

How neuronal networks are established in the embryonic brain is a fundamental question in developmental neurobiology. Here we combined an electroporation technique with novel genetic tools, such as Cre/Lox&#x2013;plasmids and PiggyBac-mediated DNA transposition system in the avian hindbrain to label dorsal interneurons and track their axonal projections and synaptic targets at various developmental stages.

병아리 배아에서 축삭 궤적과 시냅스 대상을 추적하는 후뇌의 일렉트로

Electroporation of  the chick embryonic neural tube has many advantages such as being quick and efficient  for the expression of foreign genes into ...

Inducing Plasticity of Astrocytic Receptors by Manipulation of Neuronal Firing Rates

Close to two decades of research has established that astrocytes in situ and in vivo express numerous G protein-coupled receptors (GPCRs) that can be stimulated by neuronally-released transmitter. However, the ability of astrocytic receptors to exhibit plasticity in response to changes in neuronal activity has received little attention. Here we describe a model system that can be used to globally scale up or down astrocytic group I metabotropic glutamate receptors (mGluRs) in acute brain slices. Included are methods on how to prepare parasagittal hippocampal slices, construct chambers suitable for long-term slice incubation, bidirectionally manipulate neuronal action potential frequency, load astrocytes and astrocyte processes with fluorescent Ca2+ indicator, and measure changes in astrocytic Gq GPCR activity by recording spontaneous and evoked astrocyte Ca2+ events using confocal microscopy. In essence, a &#8220;calcium roadmap&#8221; is provided for how to measure plasticity of astrocytic Gq GPCRs. Applications of the technique for study of astrocytes are discussed. Having an understanding of how astrocytic receptor signaling is affected by changes in neuronal activity has important implications for both normal synaptic function as well as processes underlying neurological disorders and neurodegenerative disease.

Here we describe an adaptation of protocols used to induce homeostatic plasticity in neurons for the study of plasticity of astrocytic G protein-coupled receptors. Recently used to examine changes in astrocytic group I mGluRs in juvenile mice, the method can be applied to measure scaling of various astrocytic GPCRs, in tissue from adult mice in situ and in vivo, and to gain a better appreciation of the sensitivity of astrocytic receptors to changes in neuronal activity.

신경 발사 환율의 조작에 의해 성상 세포 수용체의 가소성을 유도

Close to two decades of research has established that astrocytes in situ and in vivo express numerous G protein-coupled receptors (GPCRs) that can be ...

Whole-mount Imaging of Mouse Embryo Sensory Axon Projections

The visualization of full-length neuronal projections in embryos is essential to gain an understanding of how mammalian neuronal networks develop. Here we describe a method to label in situ a subset of dorsal root ganglion (DRG) axon projections to assess their phenotypic characteristics using several genetically manipulated mouse lines. The TrkA-positive neurons are nociceptor neurons, dedicated to the transmission of pain signals. We utilize a TrkAtaulacZ mouse line to label the trajectories of all TrkA-positive peripheral axons in the intact mouse embryo. We further breed the TrkAtaulacZ line onto a Bax null background, which essentially abolishes neuronal apoptosis, in order to assess growth-related questions independently of possible effects of genetic manipulations on neuronal survival. Subsequently, genetically modified mice of interest are bred with the TrkAtaulacZ/Bax null line and are then ready for study using the techniques described herein. This presentation includes detailed information on mouse breeding plans, genotyping at the time of dissection, tissue preparation, staining and clearing to allow for visualization of full-length axonal trajectories in whole-mount preparation.

We present here an optimized protocol to genotype, stain and prepare fetal mice for the imaging of peripheral nociceptor axon projections in the whole animal, as an effective method to assess sensory axon growth phenotypes in developing genetically engineered mice.

마우스 배아 감각 축삭 돌기 전체 마운트 이미지

The visualization of full-length neuronal projections in embryos is essential to gain an understanding of how mammalian neuronal networks develop. Here we ...

Imaging Ca2+ Dynamics in Cone Photoreceptor Axon Terminals of the Mouse Retina

Retinal cone photoreceptors (cones) serve daylight vision and are the basis of color discrimination. They are subject to degeneration, often leading to blindness in many retinal diseases. Calcium (Ca2+), a key second messenger in photoreceptor signaling and metabolism, has been proposed to be indirectly linked with photoreceptor degeneration in various animal models. Systematically studying these aspects of cone physiology and pathophysiology has been hampered by the difficulties of electrically recording from these small cells, in particular in the mouse where the retina is dominated by rod photoreceptors. To circumvent this issue, we established a two-photon Ca2+ imaging protocol using a transgenic mouse line that expresses the genetically encoded Ca2+ biosensor TN-XL exclusively in cones and can be crossbred with mouse models for photoreceptor degeneration. The protocol described here involves preparing vertical sections (&#8220;slices&#8221;) of retinas from mice and optical imaging of light stimulus-evoked changes in cone Ca2+ level. The protocol also allows &#8220;in-slice measurement&#8221; of absolute Ca2+ concentrations; as the recordings can be followed by calibration. This protocol enables studies into functional cone properties and is expected to contribute to the understanding of cone Ca2+ signaling as well as the potential involvement of Ca2+ in photoreceptor death and retinal degeneration.

Imaging Ca2+ Dynamics in Cone Photoreceptor Axon Terminals of the Mouse Retina

We describe a protocol to monitor Ca2+ dynamics in the axon terminals of cone photoreceptors using an ex-vivo&#160;slice preparation of the mouse retina. This protocol allows comprehensive studies of cone Ca2+ signaling in an important mammalian model system, the mouse.

이미징 CA<sup&gt; 2 +</sup마우스 망막의 광 수용체 콘 축삭 터미널에서&gt; 역학

Retinal cone photoreceptors (cones) serve daylight vision and are the basis of color discrimination. They are subject to degeneration, often leading to ...

Utilizing Combined Methodologies to Define the Role of Plasma Membrane Delivery During Axon Branching and Neuronal Morphogenesis

During neural development, growing axons extend to multiple synaptic partners by elaborating axonal branches. Axon branching is promoted by extracellular guidance cues like netrin-1 and results in dramatic increases to the surface area of the axonal plasma membrane. Netrin-1-dependent axon branching likely involves temporal and spatial control of plasma membrane expansion, the components of which are supplied through exocytic vesicle fusion. These fusion events are preceded by formation of SNARE complexes, comprising a v-SNARE, such as VAMP2 (vesicle-associated membrane protein 2), and plasma membrane t-SNAREs, syntaxin-1 and SNAP25 (synaptosomal-associated protein 25). Detailed herein isa multi-pronged approach used to examine the role of SNARE mediated exocytosis in axon branching. The strength of the combined approach is data acquisition at a range of spatial and temporal resolutions, spanning from the dynamics of single vesicle fusion events in individual neurons to SNARE complex formation and axon branching in populations of cultured neurons. This protocol takes advantage of established biochemical approaches to assay levels of endogenous SNARE complexes and Total Internal Reflection Fluorescence (TIRF) microscopy of cortical neurons expressing VAMP2 tagged with a pH-sensitive GFP (VAMP2-pHlourin) to identify netrin-1 dependent changes in exocytic activity in individual neurons. To elucidate the timing of netrin-1-dependent branching, time-lapse differential interference contrast (DIC) microscopy of single neurons over the order of hours is utilized. Fixed cell immunofluorescence paired with botulinum neurotoxins that cleave SNARE machinery and block exocytosis demonstrates that netrin-1 dependent axon branching requires SNARE-mediated exocytic activity.

Light microscopy techniques coupled with biochemical assays elucidate the involvement of SNARE-mediated exocytosis in netrin-dependent axon branching. This combination of techniques permits identification of molecular mechanisms controlling axon branching and cell shape change.

결합 된 방법론을 활용하여 축삭 분기 및 신경 세포 형태 형성 동안 플라즈마 멤브레인 배달의 역할을 정의합니다

During neural development, growing axons extend to multiple synaptic partners by elaborating axonal branches. Axon branching is promoted by extracellular ...

The Use of Trace Eyeblink Classical Conditioning to Assess Hippocampal Dysfunction in a Rat Model of Fetal Alcohol Spectrum Disorders

Neonatal rats were administered a relatively high concentration of ethyl alcohol (11.9% v/v) during postnatal days 4-9, a time when the fetal brain undergoes rapid organizational change and is similar to accelerated brain changes that occur during the third trimester in humans. This model of fetal alcohol spectrum disorders (FASDs) produces severe brain damage, mimicking the amount and pattern of binge-drinking that occurs in some pregnant alcoholic mothers. We describe the use of trace eyeblink classical conditioning (ECC), a higher-order variant of associative learning, to assess long-term hippocampal dysfunction that is typically seen in alcohol-exposed adult offspring. At 90 days of age, rodents were surgically prepared with recording and stimulating electrodes, which measured electromyographic (EMG) blink activity from the left eyelid muscle and delivered mild shock posterior to the left eye, respectively. After a 5 day recovery period, they underwent 6 sessions of trace ECC to determine associative learning differences between alcohol-exposed and control rats. Trace ECC is one of many possible ECC procedures that can be easily modified using the same equipment and software, so that different neural systems can be assessed. ECC procedures in general, can be used as diagnostic tools for detecting neural pathology in different brain systems and different conditions that insult the brain.

Trace eyeblink classical conditioning (ECC) was used to assess hippocampal-dependent associative learning in adult rats that were administered a high concentration (11.9% v/v) of alcohol during early neonatal brain development. In general, ECC procedures are sound diagnostic tools for detecting brain dysfunction across many psychological and biomedical settings.

태아 알코올 스펙트럼 장애의 쥐 모델에서 Hippocampal 기능 장애를 평가 하기 위해 추적 Eyeblink 클래식 컨디셔닝의 사용

Neonatal rats were administered a relatively high concentration of ethyl alcohol (11.9% v/v) during postnatal days 4-9, a time when the fetal brain ...

Use of Primary Cultured Hippocampal Neurons to Study the Assembly of Axon Initial Segments

Neuronal axon initial segments (AIS) are sites of initiation of action potentials and have been extensively studied for their molecular structure, assembly and activity-dependent plasticity. Giant ankyrin-G, the master organizer of AIS, directly associates with membrane-spanning voltage gated sodium (VSVG) and potassium channels (KCNQ2/3), as well as 186 kDa neurofascin, a L1CAM cell adhesion molecule. Giant ankyrin-G also binds to and recruits cytoplasmic AIS molecules including beta-4-spectrin, and the microtubule-binding proteins, EB1/EB3 and Ndel1. Giant ankyrin-G is sufficient to rescue AIS formation in ankyrin-G deficient neurons. Ankyrin-G also includes a smaller 190 kDa isoform located at dendritic spines instead of the AIS, which is incapable of targeting to the AIS or rescuing the AIS in ankyrin-G-deficient neurons. Here, we described a protocol using cultured hippocampal neurons from ANK3-E22/23-flox mice, which, when transfected with Cre-BFP exhibit loss of all isoform of ankyrin-G and impair the formation of AIS. Combined a modified Banker glia/neuron co-culture system, we developed a method to transfect ankyrin-G null neurons with a 480 kDa ankyrin-G-GFP plasmid, which is sufficient to rescue the formation of AIS. We further employ a quantification method, developed by Salzer and colleagues to deal with variation in AIS distance from the neuronal cell bodies that occurs in hippocampal neuron cultures. This protocol allows quantitative studies of the de novo assembly and dynamic behavior of AIS.

Here, we described a protocol to quantitatively study the assembly and structure of the axon initial segments (AIS) of hippocampal neurons that lack pre-assembled AIS due to the absence of a giant ankyrin-G.

축 사 초기 세그먼트의 조립을 공부 하는 기본 배양 된 해마 뉴런의 사용

Neuronal axon initial segments (AIS) are sites of initiation of action potentials and have been extensively studied for their molecular structure, ...

Isolation and Culture of Chick Ciliary Ganglion Neurons

Chick ciliary ganglia (CG) are part of the parasympathetic nervous system and are responsible for the innervation of the muscle tissues present in the eye. This ganglion is constituted by a homogenous population of ciliary and choroidal neurons that innervate striated and smooth muscle fibers, respectively. Each of these neuronal types regulate specific eye structures and functions. Over the years, neuronal cultures of the chick ciliary ganglia were shown to be effective cell models in the study of muscle-nervous system interactions, which communicate through cholinergic synapses. Ciliary ganglion neurons are, in its majority, cholinergic. This cell model has been shown to be useful comparatively to previously used heterogeneous cell models that comprise several neuronal types, besides cholinergic. Anatomically, the ciliary ganglion is localized between the optic nerve (ON) and the choroid fissure (CF). Here, we describe a detailed procedure for the dissection, dissociation and in vitro culture of ciliary ganglia neurons from chick embryos. We provide a step-by-step protocol in order to obtain highly pure and stable cellular cultures of CG neurons, highlighting key steps of the process. These cultures can be maintained in vitro for 15 days and, hereby, we show the normal development of CG cultures. The results also show that these neurons can interact with muscle fibers through neuro-muscular cholinergic synapses.

Chick ciliary ganglia (CG) are part of the parasympathetic nervous system. Neuronal cultures of chick CG neurons were shown to be effective cell models in the study of nerve muscle interactions. We describe a detailed protocol for the dissection, dissociation and in vitro culture of CG neurons from chick embryos.

독실성 신경절 뉴런의 고립과 문화

Chick ciliary ganglia (CG) are part of the parasympathetic nervous system and are responsible for the innervation of the muscle tissues present in the ...