Name: handling of the cotton rat in studies for the pre-clinical evaluation of oncolytic viruses
Uploaded: 2014-11-24T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 13 s
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Breanne Cuddington holds a fellowship from the Canadian Breast Cancer Foundation. This work was sponsored by operating grants from the Cancer Research Society and the Canadian Cancer Society Research Institute (formerly the Canadian Breast Cancer Research Alliance). We thank Ann Tollefson (Saint Louis University School of Medicine) for LCRT cells and Dr. Kathleen Delaney and Marion Corrick for technical assistance with cotton rat housing and sedation.

참고 : 사용되는 프로토콜은 동물 관리 지침에 캐나다 협의회에 따르면 맥 매스터 대학에서 우리의 기관 동물 연구 윤리위원회에 의해 승인되었습니다. 실험은 맥 매스터 대학 중앙 동물 시설에서 수행 하였다. 1. 배양 LCRT 세포 <ol><li> 둘 베코 변성 이글 배지 (DMEM)에서 배양 LCRT 세포는 10 % 소 태아 혈청 (FBS), 2 mM L- 글루타민, 100 U / ㎖ 페니실린 및 100 ㎍ / ml의 스트렙토 마이신이 보충. 37 ° C에서 T-150 조직 배양 플라스크에서 세포를 유지하고, 5 % CO 2. 패시지 세포들은 90 % 컨 플루 언트 단층 (2-3 일마다,도 1)을 형성 할 때. </li><li> 사전 따뜻한 1X 인산 완충 생리 식염수 (PBS), 셀을 분할하기 전에 10 분 동안 37 ° C의 물 욕에서 1X 트립신 매체. </li><li> 대기음 플라스크에서 중간 및 1X PBS의 5 ㎖로 세포를 씻어. </li><li> 세척 후, PBS를 대기음 및 배양세포까지 1X 트립신 2 ㎖와 세포를 플라스크 (~ 2 분)에서 해리. </li><li> 부드럽게 (10 ml의 세포 현탁액의 총) 8 ml의 배지에 재현 탁 세포는 세포의 덩어리를 깨고 아래로 피펫. </li><li> 좌우로 부드럽게 측면에서 바위 플라스크 (T-150 당 25 ml의 총) 24 ml의 배지에 1 ml의 세포 현탁액을 파종하여 T-150 플라스크에 세포를 유지한다. 다음 분할 될 때까지 37 ° C와 5 % CO 2에서 세포를 유지한다. </li></ol> 2. LCRT 세포에서 바이러스 복제 및 세포 독성 평가 <ol><li> 바이러스 복제 참고 : 내인성 바이러스 프로모터의 통제하에 녹색 형광 단백질 (GFP)로 형광 태그를 발현하는 바이러스의 구조는, 바이러스 감염의 시각화를 촉진하고 형광 플레이트 리더를 사용하여 확산. <ol><li> 계수하는 웰을 떠나는 배양 플레이트에 시드 LCRT 세포. 종자 세포 등 그들이 언젠가 나중에 80~90% 합류 할 것이다. 10 5 CEL의 농도를 사용하여LS / ㎖ (웰 당 100 μL)를 96 웰 편평 바닥 플레이트에 하루 이상 포화 상태 소망 생성한다. </li><li> 다음 날, 미리 따뜻한 1X PBS, 1X 트립신, 10 분 전에 실험을 시작하기 37 ° C의 물을 욕조에 완전하고 무 혈청 배지. </li><li> 우물의 표면에 그것을 흔들어 1X PBS 5 ㎖와 잘 계산 린스 세포에서 대기음 매체. </li><li> 세척 후, 세포까지 1X 트립신 2 ㎖와 대기음 PBS 및 배양 세포를 플라스크 (~ 2 분)에서 해리. </li><li> 혈구를 사용하여 가산 범위 내에서 세포 밀도를 수득 완전 배지의 적당한 부피로 세포를 재현 탁. 정확한 세포 수를 확인하기 위해 철저하게 사전 피펫 팅 아래로하여 혈구 접종에 세포 현탁액을 섞는다. </li><li> 감염의 원하는 다양성 (MOI)에서 감염에 필요한 바이러스 주식의 볼륨을 결정합니다. 단위를 형성하는 필수 페이크 (PFU) = 도금 세포의 수 * MOI(PFU / 셀) 바이러스 주식의 볼륨 = 필수 요구 PFU / 바이러스 재고 역가 (PFU / ㎖) </li><li> 튜브에서 무 혈청 배지에서 바이러스 접종을 준비합니다. 세포에 접종을 추가하기 전에 와동 또는 피펫 팅에 의해 철저하게 섞는다. </li><li> 그 후 DMEM + 1 % FBS의 유지 오버레이를 적용한 37 ° C에서 1 시간 동안 세포를 감염. </li><li> 스캔 판 하나, 둘, 일 포스트 감염 (PI)는 GFP의 형광을 시각화합니다. </li></ol></li><li> 바이러스의 세포 독성 참고 : 화합물이 감광성으로 낮은 조명 조건에서 레사 주린 세포 독성 분석을 수행합니다. 잘 함유 배지는 배경 형광을 보정하기 위해 포함되어야한다. <ol><li> 1X PBS에 레사 주린의 5 % (v / v) 용액을 준비합니다. 피펫으로 솔루션을 섞는다. </li><li> 세포에서 대기음 매체와는 5 % 레사 주린 솔루션을 적용 할 수 있습니다. 잘 들어있는 매체는 배경 형광을 보정하기 위해 포함됩니다. </li><li> 37에서 30 분 동안 세포를 품어 ° C, 후이는 형광 플레이트 리더 (여기 530 nm의, 방출 595 nm의)를 사용하여 형광을 읽어보십시오. </li><li> 배경 형광을 보정 감염되지 않은 컨트롤에 관련된 데이터를 분석 할 수 있습니다. </li></ol></li></ol> 3. 주택 및 취급 <ol><li> 주택과 다이어트 <ol><li> 하우스면 쥐 개별적으로 설치류 침구 (1/8 &quot;옥수수 속대 침구), 더 이상 농축 등 8인치 및 nestlets보다 PVC 튜브 (그림 2)의 일부를 포함하는 폴리 카보네이트 쥐 케이지에서의 대처 감소시킵니다. </li><li> 솟다 새장 앉아 설치류 음식과 물 한 병을 포함하는 보안 개체 스틸 바구니를 사용합니다. 참고 :이 케이지 설치가 가장 중요 케이지 존재의 끝 부분에 대해 농축 관의 배치로, 동물의 안전하고 쉽게 캡쳐 할 수 있습니다. </li></ol></li><li> 취급 <ol><li> 동물 시설 기술자가 발사하기 전에 전 흥미로운에게이를 피하기 위해, 아침 코튼 래트 핸들절차. </li><li> 모든 절차 동안 보호를 위해 두꺼운 가죽 장갑을 착용하십시오. </li><li> 동물이 주로 농축 관에 남아으로, 일상적인 청소하는 동안 새 케이지에 쥐를 전송하는 데 사용할. 또한, 핸들러가 자신의 손에 도달 할 수 있도록 약간의 새장을 열고, 동물은 단지 어깨 위의 피부를 scruffing 아래로 밀어 억제 할 수있다. 동물이 자신의 혀를 물지 수 있으므로 연습주의 과도한 힘을 사용하지. </li><li> 인내심과 동물이 강한 비행 또는 싸움 반응을 실행 케이지 밖으로 뛰어 캡처를 방지하기 위해 노력할 것 같이 지속적으로 손을 사용합니다. degloving가 발생으로 중요한 것은, 꼬리 동물을 처리하지 않습니다. </li><li> 트랩 직접 처리를 통해 자신의 부화 튜브의 동물. 이것은 크게 부상과 탈출을 감소시킨다. </li></ol></li></ol> 4. 캡처 및 마취 <ol><li> 포착 <ol><li> 보호를위한 두꺼운 가죽 장갑을 착용모든 과정에서 이온. </li><li> 공기와 뚜껑, 용기와 가스 출력 호스 (그림 3)에 장착 코 콘 맞게 충분히 큰 마취 유도 챔버 구멍이있는 대형 투명 플라스틱 용기를 사용합니다. </li><li> 절차를보다 효율적으로하기 위해 이소 플루 란, 흡입 마취제에 동물의 노출 시간을 감소 쌍​​으로 작동. 확인 한 연구원을 만드십시오 (핸들러 # 열고 케이지 스틸 커버를 교체하고 유도 챔버의 뚜껑 (1 핸들러 #)에 대한 책임과 그 동료는 유도 챔버로 튜브와 운송 동물의 캡처에 대한 책임 2). </li><li> 평평한 표면에 케이지를 놓고 외부 덮개를 제거합니다. 약간 철강 공급 트레이를 들어 올리고는 케이지의 양쪽과 뒷면에 대하여 평행 천천히 농축 관으로 이동합니다. 필요한 경우, 교반 동물 피하기 케이지를 열지 않고 농축 튜브를 기동 객체를 사용하여 (처리R # 1). </li><li> 동물이 동요되고 튜브를 벗어나면, 동물이 휴식과 다시 한번 튜브 (핸들러 # 1)에 정착 할 충분한 시간이 필요합니다. </li><li> 천천히 그리고 신중하게 케이지와 접촉하는 다른 쪽 끝을 유지, 농축 관에서 스틸 커버 먼의 가장자리를 들어 올립니다. 플라스틱 용기 (2 핸들러 #)를위한 충분한 공간이 큰합니다. </li><li> 하나 부드럽고 빠른 움직임에서 농축 관의 솟다 플라스틱 컨테이너를 밀어 넣습니다. 튜브에 동물을 포획, 케이지의 측면과 용기의 접촉을 유지한다. 가능 (핸들러 # 2) 빨리 단계 4.1.6과 4.1.7를 수행합니다. </li><li> 철강 공급 트레이를 제거하고 # 2 (핸들러 # 1) 핸들러에 플라스틱 용기 뚜껑을 제공합니다. 그 과정에서 포획 된 동물의 부속도 중시하여, 케이지 용기의 측면 사이에 플라스틱 뚜껑을 밀어 넣습니다. 이것은 다음 단계를 더욱 어렵게하는 바와 같이 용기를 밀봉하지 않음 (처리기 # 2). </li></ol></li><li> Anesthes아이오와 <ol><li> 확인 컨테이너가 닫혀 확인하고 유도 챔버에 동물을 운반 할 것. 신속 챔버 내의 동물을 배치하고 하나의 유체 운동 (처리기 # 2)에 용기 뚜껑을 제거한다. 열고 즉시 유도 실 덮개를 교체 (핸들러 # 1). </li><li> 유도 챔버 (/ 분 5 L)에 이소 플루 란의 흐름을 켜고 신속하게 가스 순환을 촉진 유도 실에서 모두 제거 튜브와 컨테이너에서 동물을 밀어 점하는 혼수의 징후에 대한 동물을 모니터링 할 수 있습니다. </li><li> 쥐가 완전히 마취 할 때, 작업 표면으로 이동하고 코 콘 (그림 3)로 코와 입을 놓습니다. 쥐가 완전히는 강력한 발가락 핀치에 응답하지 않는 경우 마취. </li><li> 건조 및 찰과상을 방지하기 위해 동물의 눈에 수의사 바셀린 안과 연고를 놓습니다. 이면 쥐가 부상이 발생하면 감염에 발생하기 쉬운 큰 눈을 가지고 필수적인 단계이다. </li> &lt;리&gt;주의 깊게 모니터하고 일정한 호흡 속도를 유지하고 동물의 코 절차 내내 피팅 노즈콘 유지되도록. 적절 이소 플루 란의 유량을 조정한다. 이소 플루 란의 양은 각각의 동물이 달라집니다 마취해야합니다. </li><li> 이후 절차는 새장에 동물을 반환하고 완전한 이동성과 흉골 드러 누움을 회복 확인합니다. </li></ol></li></ol> 피하 종양 형성을위한 LCRT 세포의 5. 준비 참고 : LCRT의 한 T-150 플라스크 (90 % 컨 플루)는 약 2 × 10 7 세포를 얻을 수 있습니다. 필요한 세포의 총 수에 필요한 T-150 플라스크 참조하시오. 수득 필요한 세포의 총 수를 보장하기 위해 별도의 플라스크 시드 및 제조 및 추가 주입에 필요한 그 세포 중에 손실을 수용하도록. 세포 생존을 연장 가능하면 얼음에 세포를 보관하십시오. <ol><li> 플라스크에서 세포를 흡인 매체를 수확1X PBS 5ml를 가진 D 린스 세포. </li><li> 대기음 PBS와 세포가 플라스크 (~ 2 분)에서 해리 될 때까지 1X 트립신 2 ㎖에 세포를 배양한다. </li><li> 부드럽게 (10 ml의 세포 현탁액의 총) 8 ml의 배지에 재현 탁 세포는 세포의 덩어리를 깨고 아래로 피펫. 추가 플라스크에서 세포를 수확하기 위해 계속합니다. </li><li> 한 원뿔 튜브 50 ML 원뿔 튜브 당 약 4 T-150S에 모든 세포 현탁액을 풀. </li><li> 원심 분리기 4 ° C에서 10 분 동안 160 × g에서 튜브. </li><li> 대기음 매체를 이용하여 혈구 계산 가능 범위 내에서 세포 밀도를 수득 PBS의 적절한 음량 (T-150 당 10 ml의 PBS)에서 세포 펠렛을 재현 탁. 정확한 세포 수를 확인하기 위해 철저하게 사전 피펫 팅 아래로하여 혈구를로드에 세포 현탁액을 섞는다. </li><li> 세포의 총 수를 계산한다 : 세포의 총 수 = 세포 수 (세포 / ㎖)에 재현 탁 수확 X 부피 (mL) 중 </li><li> 결정모든 주사에 필요한 세포 현탁액의 부피. 실험 2-3 여분의 용량을 확인합니다. 피하 주사 5 × 5 LCRT 세포의 총 3-4 일 이내에 종양 만져서을 형성 할 것이다. 필요한 세포의 총 수 = 5 × 10 5 세포의 X 용량의 총 수를 볼륨 세포 현탁액 요구 (ML) = (* 합계 주입량에 요구되는 전체 셀) / (수확 된 세포의 총 수) </li><li> 피펫 필요한 PBS를 함유하는 원뿔형 튜브에 세포 현탁액 부피 철저히 혼합한다. 에펜 도르프 튜브로 나누어 각각의 주사 (100 μL). 주입 과정에서 얼음에 튜브를 유지한다. </li></ol> 6. 주사 참고 : 한 동안 다른 모니터 동물의 호흡 속도와 일반 조건 동안 마취 주사를 수행하기 위해, 두 연구자들과 절차를 수행합니다. 모든 주사하고 새로운 바늘에 대한 인슐린 주사기 (29 G가 0.3 ml의 &#39;1/2 X)를 사용하여각 동물. <ol><li> 피하 주사 <ol><li> 캡처 동물 (섹션 4) 마취. </li><li> 가위를 사용하여 주사 부위를 면도. 코튼 쥐 모피는 두께와 주사의 매끄러운 표면을 얻기 위해 날카로운 트리머가 필요합니다. 면봉을 사용하여 70 % 에탄올로 주사 부위를 청소하고 진행하기 전에 완전히 증발 할 수 있습니다. </li><li> 천천히 그리고 꾸준히 그림으로써 세포와로드 주사기 (29 G의 X 1/2 &#39;, 0.3 mL)를 첨가 하였다. 거품은 약간의 힘으로 주사기 분명 영화 경우. 기포가 상부로 푸시 일단 액체까지 플런저 바늘의 상부에있다. </li><li> (피부 텐팅 (tenting)라고 함) 주사 부위 피부를 올리고 바늘 베벨면을 위로 삽입한다. 확인 바늘이 근육 주입 방지하기 위해 피부 아래에 자유롭게 이동합니다. </li><li> 균등 천천히 주사기의 내용물 추방. 아래 바늘 베벨 측면을 철회. </li></ol></li><li> 종양 내 주사 <ol><li> 캡처동물 (섹션 4) 마취 거라고. </li><li> 면봉을 사용하여 70 % 에탄올로 주사 부위를 청소하고 진행하기 전에 완전히 증발 할 수 있습니다. </li><li> 수직으로 바늘을 잡고 천천히, 그리고 꾸준히 그려서 바이러스 접종과로드 주사기 (29 G가 0.3 ml의 &#39;1/2 X). 거품은 약간의 힘으로 주사기 분명 영화 경우. 기포가 상부로 푸시 일단 액체가 바늘의 상단이 아닐 때까지, 플런저. </li><li> 종양 내로 바늘 경사 측면을 삽입하고 부분적 종양 열상을 방지하기 위해 각각 이동 전에 바늘을 인출, 부채꼴 패턴으로 바늘을 이동시키면서 고르게 천천히 주사기의 내용물을 배출. 아래 바늘 베벨 측면을 철회. 참고 : 피하 LCRT 종양이 빠르게 성장 5~7일 약 100mm 3 도달입니다. 또한, 괴사 성 출혈성 센터들은 종종 며칠 이내에 종양의 표면에 형성하고, 위성을 필요reful 모니터링 (그림 4). </li></ol></li><li> 복강 내 주사 <ol><li> 캡처 동물 (섹션 4) 마취. </li><li> 면봉을 사용하여 70 % 에탄올로 주사 부위를 청소하고 진행하기 전에 완전히 증발 할 수 있습니다. </li><li> 천천히 그리고 꾸준히 그리기에 의해 약물과로드 주사기 (29 G가 0.3 ml의 &#39;1/2 X). 거품은 약간의 힘으로 주사기 분명 영화 경우. 기포가 상부로 푸시 일단 액체가 바늘의 상단이 아닐 때까지, 플런저. </li><li> 복부의 오른쪽 하복부에 바늘을 삽입합니다. 혈액이나 대변이 흡입되지 않도록 다시 플런저에 당겨,이 바늘의 잘못된 위치를 나타냅니다. 이 경우, 바늘을 인출하고 새로운 주사기를 준비한다. 바늘이 정확하게 배치 될 때, 균등하게 천천히 주사기의 내용물을 배출. </li></ol></li></ol> 7. 종양 절제술 및 부검 <ol><li> 수집과 알을 청소70 % 에탄올 이전에 동물의 안락사에와 리터 도구. </li><li> 원하는 방법으로 동물을 안락사, CO 2 흡입 (5 ~ 10 분 동안 2 리터 / 분)을 권장합니다. 몸 상태가 비정상 동물을 검사합니다. </li><li> 해부 보드에 지느러미 드러 누움의 동물을 배치하고 70 % 에탄올로 동물을 청소합니다. </li><li> 하복부의 피부를 들어 올려 핀셋을 사용합니다. 가위를 사용하여 피부와 근육을 잘라 동물의 길이 (턱 항문)를 실행하는 중간 절개를합니다. </li><li> 두 컷, 측면 흉곽의 측면을 하나는 심장과 폐를 노출하는 흉골에 걸쳐 하나를하여 갈비뼈를 잘라. 어떤 전이 27, 29에 대한 폐의 로브를 검사합니다. </li><li> 이상에 대한 모든 장기를 검사하고 색상, 크기 및 일관성의 모든 변경 사항을 기록합니다. 필요한 경우, 내부 조직을 조사 메스 기관 절개. 구체적으로는, 간, 신장, 비장 및 위장관 검사. </li><li> 전이의 림프절을 검사하고 27, 29 증축. </li><li> 종양을 수집하기 위해, 측면 절개 위와 피부 핀셋 본체로부터 멀리 당겨질 수 있도록 아래 종양 만든다. 단단히 핀셋으로 피부를 누른 상태에서 조심스럽게 종양과 진피 (그림 5) 사이를 절단하여 종양을 제거하기 위해 메스를 사용합니다. </li><li> 즉시 10 % 중성 포르말린의 레이블이 용기에 종양을 배치합니다. </li><li> 종양의 크기에 따라 수 1~2일 (≤ 2mm, 작은) 또는 5~6일 조직 학적 분석 (그림 6)에 대한 섹션을 준비하기 전에 고정 (&gt; 2mm, 대형). </li></ol>

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A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Cotton+Rat+in+Biomedical+Research.">The Cotton Rat in Biomedical Research.</a> Animal Welfare Information Center Newsletter. 5 (2), 3-5 (1994).</li><li>Tsai, J. C., Garlinghouse, G., McDonnell, P. J., Trousdale, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+experimental+animal+model+of+adenovirus-induced+ocular+disease.+The+cotton+rat.">An experimental animal model of adenovirus-induced ocular disease. The cotton rat.</a> Arch Ophthalmol. 110 (8), 1167-1170 (1992).</li><li>Ginsberg, H. 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E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+pre-existing+adenovirus-specific+immunity+on+immune+responses+induced+by+recombinant+adenovirus+expressing+glycoprotein+D+of+bovine+herpesvirus+type+1.">The effect of pre-existing adenovirus-specific immunity on immune responses induced by recombinant adenovirus expressing glycoprotein D of bovine herpesvirus type 1.</a> Vaccine. 17 (7-8), 933-943 (1999).</li><li>Mittal, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+systemic+and+mucosal+immune+responses+in+cotton+rats+immunized+with+human+adenovirus+type+5+recombinants+expressing+the+full+and+truncated+forms+of+bovine+herpesvirus+type+1+glycoprotein+gD.">Induction of systemic and mucosal immune responses in cotton rats immunized with human adenovirus type 5 recombinants expressing the full and truncated forms of bovine herpesvirus type 1 glycoprotein gD.</a> Virology. 222 (2), 299-309 (1996).</li><li>Steel, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Syngeneic+Cotton+Rat+Cancer+Model+for+Replicating+Adenoviral+Vectors.">Syngeneic Cotton Rat Cancer Model for Replicating Adenoviral Vectors.</a> Molecular Therapy. 13 (1), 123 (2006).</li><li>Toth, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cotton+rat+tumor+model+for+the+evaluation+of+oncolytic+adenoviruses.">Cotton rat tumor model for the evaluation of oncolytic adenoviruses.</a> Hum Gene Ther. 16 (1), 139-146 (2005).</li><li>Toth, K., Spencer, J. F., Wold, W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunocompetent,+semi-permissive+cotton+rat+tumor+model+for+the+evaluation+of+oncolytic+adenoviruses.">Immunocompetent, semi-permissive cotton rat tumor model for the evaluation of oncolytic adenoviruses.</a> Methods Mol Med. 130, 157-168 (2007).</li><li>Steel, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunocompetent+syngeneic+cotton+rat+tumor+models+for+the+assessment+of+replication-competent+oncolytic+adenovirus.">Immunocompetent syngeneic cotton rat tumor models for the assessment of replication-competent oncolytic adenovirus.</a> Virology. 369 (1), 131-142 (2007).</li><li>Workenhe, S. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunogenic+HSV-mediated+oncolysis+shapes+the+antitumor+immune+response+and+contributes+to+therapeutic+efficacy.">Immunogenic HSV-mediated oncolysis shapes the antitumor immune response and contributes to therapeutic efficacy.</a> Mol Ther. 22 (1), 123-131 (2014).</li><li>Sobol, P. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adaptive+antiviral+immunity+is+a+determinant+of+the+therapeutic+success+of+oncolytic+virotherapy.">Adaptive antiviral immunity is a determinant of the therapeutic success of oncolytic virotherapy.</a> Mol Ther. 19 (2), 335-344 (2011).</li><li>Prince, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Cotton+Rat+in+Biomedical+Research.">The Cotton Rat in Biomedical Research.</a> Animal Welfare Information Center Newsletter. 5 (2), (1994).</li></ol>

The authors acknowledge there are no financial conflicts of interest related to this research.

Cotton rats are highly excitable and have a strong flight response. Therefore, special care should be taken to minimize any undue stress on the animal. The cage setup described will allow for safe and easy capture of the animals, with the placement of the enrichment tube being of the utmost importance. When setting up cages, ensure that the enrichment tubes meet the size and shape requirements, and are placed in proper orientation in the cage. It is also important to ensure that any technicians who might be aiding in ani...

온 콜리 틱 바이러스 (OV)는 선택적으로 정상 및 종양 세포 생화학 1,2- 간의 차이를 이용함으로써 종양 세포에서 복제. 자연적으로 발생하는 야생형 바이러스 지칭 선택적 oncolysis을 달성하기 돌연변이를 요구하지 않는 것들, 및 선택적 oncolysis을 달성하도록 설계되어야하는 것들 : OVS 두 가지 유형이있다. 특정 종양 유형 내 돌연변이의 수집은 OV이 정상 세포 위에 선택 성장의 이점의 특성을 결정한다. 사용 OVS의 안전성과 효과 임상 시험 3-7에서 증명되었다. 온 콜리 틱 바이러스 치료법의 분야에서의 진보에도 불구하고 더 나은 모델 OVS의 항 종양 효능을 평가하는 데 필요하다는 것을 시사 전임상 및 임상 결과 사이의 갭이 존재한다. 소 헤르페스 바이러스 타입 1 (BHV-1) 헤르페스 가족의 구성원, 그리고 Alphaherpesviridae 아과이다. BHV-1 initi오버라이드가 심한 감기 증상 -8,9- 닮은 다양한 낸, 소 호흡기 질환 착체를 소. BHV-1은 헤파 란 황산 nectin-1 10 HSV-1에 의해 사용되는 첨부 파일 및 항목 수용체를 결합한다. 그러나 nectin-2 (10)의 위치에 결합 CD155. BHV-1은 효과적으로 선택하고 정상 세포와 형질 전환 생쥐에서 3,4,10 복제를 개시 할 수없는되도록 매우 좁은 숙주 범위를 갖는다. 이것은 종래의 뮤린 모델의 사용이 문제가 만든다. BHV-1의 종양 살상 능력은 시험 관내 (11, 12)에서 입증되었다. BHV-1은 유방암 세포 및 유방암 세포 (11, 12)를 포함하여 개시 학적 기원의 다양한 인간 종양 세포에서 복제를 개시하고 죽이는 것으로 밝혀졌다. 그러나, BHV-1의 용량은 항 종양 면역 적격 숙주의 컨텍스트 내에서 생체 내에서 평가되어야한다. 인간의 아데노 바이러스 (AD)하는 용식별 된 혈청 (57)은 가장 일반적으로 인간의 호흡기 질환을 유발있다. 콜리 틱 광고 벡터는 여러 임상 시험 13-15 진출 자신의 항 종양 효과에 대해 평가되고있다. 유망한 전임상 데이터에도 불구하고, 임상 결과는 기대에 못 떨어졌다. 그들이 16,17 바이러스에 대한 면역 반응을 감쇠 나타나지만 인간 종양 이종 이식 모델은 통상적으로, 광고 벡터의 항 종양 효능을 연구하는 데 사용된다. 게다가, 동계 뮤린 모델은, 광고 감염 비 허용하는 경우에는 비현실적 17,18 이러한 모델을 사용하여 숙주 면역 반응을 평가. 숙주 면역계 OVS 종양 세포 사멸을 유도한다 (19)에 의해 가장 유력한 메커니즘으로 확인되었다. tolerized 비 tolerized 종양 - 관련 항원과 항 종양 반응 (TAA) 모델과 상당히 다를 OV 치료의 성공에 영향을 미칠 수있다. HSV-1 OV KM100 (ICP0 n21220) (20, 21)은 1814에서 VP16 뮤린 폴리오 중간 T 항원 유방암 모델 (22)에 담암 마우스의 80 %에서 종양의 퇴행을 유도. 그러나, HER-2 / neu의 모델에서, KM100의 항 종양 효능이 형질 전환에 동계 마우스 20 % 완료 회귀 종양 정체 사이에서 변화, 마우스를 HER2는-tolerized. 이들 데이터는 함께 완전히 가장 완전히 치료 성공을 결정하는 기능을 이해하는 인간 면역 프리 요점을 되풀이 동물 모델을 사용하여 평가를 OVS의 중요성을 강조. (5 검토 등)는 북미 및 남미 지역에 토착면 쥐 (Sigmodon의 hispidus)는, 가장 일반적으로 호흡기 세포 융합 바이러스 감염의 모델로 사용됩니다. 그들은 6,23 복잡한 소 호흡기 질환과 관련된 병리학 요점을 되풀이으로면 쥐도 방지 BHV-1 백신 연구에 사용됩니다. 코튼 랫 또한, BHV-1 감염, 면역원 지속 점막 및 전신성 면역 반응을 유도 6,23-25. 셀 라인은 자연 섬유 육종 및 유선 (LCRT)과 뼈 (CCRT와 VCRT), 각각 26 골육종에서 유래되었다. 코튼 래트들은 광고 감염에 취약으로 콜리 틱 광고 벡터의 생체 내 효능을 평가하고 인간 27-29 유사한 병리 현상을 나타내도록 사용되었다. OVS의 전임상 평가 면역 모델의 사용뿐만 아니라, 치료에 대한 임상 적 반응을 덜 나타낸다 있지만 콜리 틱 바이러스 치료법 (30, 31)에서 고려 면역 시스템의 역할을하지 못한다. 따라서, 동계 및 유방 암과 골육종의 종양 tolerized면 쥐 모델은 기존의 생쥐 모델을 이용하여 연구 할 수없는 등 BHV-1과 OVS, 및 광고의 전임상 효능을 평가하기에 적절한 모델이다.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco&amp;rsquo;s modified Eagle&amp;rsquo;s medium&amp;nbsp;</td><td>Gibco</td><td>11965-092</td><td>May use any brand&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>1X Phosphate Buffered Saline&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td>Can prepare in lab, filter to sterilize</td></tr><tr><td>200 mM L-glutamine</td><td>Gibco</td><td>25030164</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>100x Antibiotic-Antimycotic&amp;nbsp;</td><td>Gibco</td><td>15240-062</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>Fetal bovine serum</td><td>Quality Biological Inc.</td><td>110-001-101HI</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>T-150cm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt; tissue culture flask</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-826-80</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>1X TypLE Express</td><td>Life Technologies</td><td>12604-013</td><td></td></tr><tr><td>12-well cell culture plate, flat bottom</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-772-29</td><td>May use any brand, must be tissue culture treated</td></tr><tr><td>alamarBlue</td><td>Life Technologies</td><td>DAL1025</td><td>May use an alternative reagent for determination of cell viability</td></tr><tr><td>8640 Teklad 22/5 Rodent diet</td><td>Harlan&amp;nbsp;</td><td>8640</td><td></td></tr><tr><td>1/8&amp;rdquo; corncob rodent bedding</td><td>Harlan</td><td>7092</td><td></td></tr><tr><td>Nestlets</td><td>Ancare</td><td>-</td><td>Made of pulped virgin cotton fiber, dust-free and autoclavable</td></tr><tr><td>50 mL Conical tubes</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-432-22</td><td>May use any brand, must be sterile</td></tr><tr><td>Isoflurane USP, 99.9 %, inhalation anesthetic</td><td>Pharmaceutical Partners of Canada Inc.</td><td>M60302</td><td></td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td></td><td></td><td>Can prepare in lab</td></tr><tr><td>10 % Neutral Buffered Formalin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT501128</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>NAPCO NapFlow 1200 Class II A/B3 Biosafety Microbiological Safety Cabinet (cell culture hood)</td><td>NAPCO</td><td>Model used not currently available</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>Thermo Fisher Scientific Precision Heated Water Bath</td><td>Fisher Scientific</td><td>Model used not currently available&amp;nbsp;</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td>Reichert Bright-line Hemacytometer</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z359629</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>Typhoon Trio BioAnalyzer&amp;nbsp;</td><td>GE Healthcare Life Sciences</td><td>Model used not currently available&amp;nbsp;</td><td>May use any fluorescence plate reader</td></tr><tr><td>Tecan Safire&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt; Multi-detection Microplate Reader</td><td>Tecan</td><td>Model used not currently available&amp;nbsp;</td><td>May use any fluorescence plate reader</td></tr><tr><td>Allegra 6R benchtop centrifuge</td><td>Beckman Coulter</td><td>366816</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>Table Top Anaesthesia machine</td><td>VetEquip</td><td>Model used not currently available&amp;nbsp;</td><td>May use any brand, must be portable</td></tr><tr><td>Wahl Peanut Mini Clippers</td><td>Wahl</td><td></td><td>May use any brand of small clippers</td></tr><tr><td>Insulin syringes 29 G x 1/2&#039;, 0.3 mL</td><td>BD</td><td>329464</td><td>May use any brand. Insulin syringes are recommended as they make injections easier through the rat&amp;rsquo;s tough skin.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Cotton swabs</td><td>MedPro</td><td>018-425</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>Sharp-Pointed Dissecting Scissors</td><td>Fisher Scientific</td><td>8940</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>Dissecting Tissue Forceps</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-812-41</td><td>May use any brand</td></tr></tbody></table>

handling of the cotton rat in studies for the pre-clinical evaluation of oncolytic viruses

Oncolytic viruses are a novel anticancer therapy with the ability to target tumor cells, while leaving healthy cells intact. For this strategy to be successful, recent studies have shown that involvement of the host immune system is essential. Therefore, oncolytic virotherapy should be evaluated within the context of an immunocompetent model. Furthermore, the study of antitumor therapies in tolerized animal models may better recapitulate results seen in clinical trials. Cotton rats, commonly used to study respiratory viruses, are an attractive model to study oncolytic virotherapy as syngeneic models of mammary carcinoma and osteosarcoma are well established. However, there is a lack of published information on the proper handling procedure for these highly excitable rodents. The handling and capture approach outlined minimizes animal stress to facilitate experimentation. This technique hinges upon the ability of the researcher to keep calm during handling and perform procedures in a timely fashion. Finally, we describe how to prepare cotton rat mammary tumor cells for consistent subcutaneous tumor formation, and how to perform intratumoral and intraperitoneal injections. These methods can be applied to a wide range of studies furthering the development of the cotton rat as a relevant pre-clinical model to study antitumor therapy.

인해 코튼 래트 극히 자연 흥분성, 숙지해야 및 전임상 동물 모델로서의 용도에 완화 될 동물의 스트레스를 완화하는 최적화 절차를 이용하는 것이다. 적절한 처리 기술의 사용은 또한 연구원에 위험을 최소화합니다. 면 쥐를 사용하는 경우는 침착 필수적이다. 쥐 매우 흥분하고 자신의 새장을 탈출을 시도합니다. 농축 관과 탈출 시도를 최소화 할 수 nestlets의 사용. 그...

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Handling of the Cotton Rat in Studies for the Pre-clinical Evaluation of Oncolytic Viruses

Cotton rats are extremely excitable and have a strong flight-or-fight response. A handling method optimized to reduce the stress of the animals is described which will make cotton rats more accessible as a preclinical model.

종양 살상 바이러스의 전 임상 평가에 대한 연구에면 쥐의 취급

Oncolytic viruses are a novel anticancer therapy with the ability to target tumor cells, while leaving healthy cells intact.  For this strategy to be ...

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Research

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Genome-wide RNAi Screening to Identify Host Factors That Modulate Oncolytic Virus Therapy

High-throughput genome-wide RNAi (RNA interference) screening technology has been widely used for discovering host factors that impact&#160;virus replication. Here we present the application of this technology to uncovering host targets that specifically modulate the replication of Maraba virus, an oncolytic rhabdovirus, and vaccinia virus with the goal of enhancing therapy. While the protocol has been tested for use with oncolytic Maraba virus and oncolytic vaccinia virus, this approach is applicable to other oncolytic viruses and can also be utilized for identifying host targets that modulate virus replication in mammalian cells in general. This protocol describes the development and validation of an assay for high-throughput RNAi screening in mammalian cells, the key considerations and preparation steps important for conducting a primary high-throughput RNAi screen, and a step-by-step guide for conducting a primary high-throughput RNAi screen; in addition, it broadly outlines the methods for conducting secondary screen validation and tertiary validation studies. The benefit of high-throughput RNAi screening is that it allows one to catalogue, in an extensive and unbiased fashion, host factors that modulate any aspect of virus replication for which one can develop an in vitro assay such as infectivity, burst size, and cytotoxicity. It has the power to uncover biotherapeutic targets unforeseen based on current knowledge.

Here we describe a protocol for employing high-throughput RNAi screening to uncover host targets that can be manipulated to enhance oncolytic virus therapy, specifically rhabodvirus and vaccinia virus therapy, but it can be readily adapted to other oncolytic virus platforms or for discovering host genes that modulate virus replication generally.

RNAi 게놈 넓은 검사 Oncolytic 바이러스 치료 변조 호스트 요소를 식별 하

High-throughput genome-wide RNAi (RNA interference) screening technology has been widely used for discovering host factors that impact&#160;virus ...

연구

암 연구학

A Method for Remotely Silencing Neural Activity in Rodents During Discrete Phases of Learning

This protocol describes how to temporarily and remotely silence neuronal activity in discrete brain regions while animals are engaged in learning and memory tasks. The approach combines pharmacogenetics (Designer-Receptors-Exclusively-Activated-by-Designer-Drugs) with a behavioral paradigm (sensory preconditioning) that is designed to distinguish between different forms of learning. Specifically, viral-mediated delivery is used to express a genetically modified inhibitory G-protein coupled receptor (the Designer Receptor) into a discrete brain region in the rodent. Three weeks later, when designer receptor expression levels are high, a pharmacological agent (the Designer Drug) is administered systemically 30 min prior to a specific behavioral session. The drug has affinity for the designer receptor and thus results in inhibition of neurons that express the designer receptor, but is otherwise biologically inert. The brain region remains silenced for 2-5 hr (depending on the dose and route of administration). Upon completion of the behavioral paradigm, brain tissue is assessed for correct placement and receptor expression. This approach is particularly useful for determining the contribution of individual brain regions to specific components of behavior and can be used across any number of behavioral paradigms.

This protocol describes how to temporarily and remotely silence neuronal activity in discrete brain regions while rats are engaged in learning and memory tasks. The approach combines pharmacogenetics (Designer-Receptors-Exclusively-Activated-by-Designer-Drugs) with a behavioral paradigm (sensory preconditioning) that is designed to distinguish between different components of learning.

학습의 개별 단계에서 설치류에서 원격 음소거 신경 활동하는 방법

This protocol describes how to temporarily and remotely silence neuronal activity in discrete brain regions while animals are engaged in learning and ...

행동분석학

Transarterial Administration of Oncolytic Viruses for Locoregional Therapy of Orthotopic HCC in Rats

Hepatocellular carcinoma (HCC) is a disease with limited treatment options and poor prognosis. In recent years, oncolytic virotherapies have proven themselves to be potentially powerful tools to fight malignancy. Due to the unique dual blood supply in the liver, it is possible to apply therapies locally to orthotopic liver tumors, which are predominantly fed by arterial blood flow. We have previously demonstrated that hepatic arterial delivery of oncolytic viruses results in safe and efficient transduction efficiency of multifocal HCC lesions, resulting in significant prolongation of survival in immune competent rats. This procedure closely mimics the application of transarterial embolization in patients, which is the standard palliative care provided to many HCC patients. The ability to administer tumor therapies through the hepatic artery in rats allows for a highly sophisticated preclinical model for evaluating novel viral vectors under development. Here we describe the detailed protocol for microdissection of the hepatic artery for infusion of oncolytic virus vectors to treat orthotopic HCC.

Oncolytic virotherapies are under development as novel therapeutics for the treatment of hepatocellular carcinoma (HCC). Here we describe a method for locoregional therapy of HCC via hepatic arterial administration of oncolytic virus.

쥐에서 동소 이식 간세포 암의 국소 치료에 대한 종양 살상 바이러스의 간동맥 관리

Hepatocellular carcinoma (HCC) is a disease with limited treatment options and poor prognosis.  In recent years, oncolytic virotherapies have proven ...

의학

Generation of Transgenic Rats using a Lentiviral Vector Approach

Transgenic animal models are fundamentally important for modern biomedical research. The incorporation of foreign genes into early mouse or rat embryos is an invaluable tool for gene function analysis in living organisms. The standard transgenesis method is based on microinjecting foreign DNA fragments into a pronucleus of a fertilized oocyte. This technique is widely used in mice but remains relatively inefficient and technically demanding in other animal species. The transgene can also be introduced into one-cell-stage embryos via lentiviral infection, providing an effective alternative to standard pronuclear injections, especially in species or strains with a more challenging embryo structure. In this approach, a suspension that contains lentiviral vectors is injected into the perivitelline space of a fertilized rat embryo, which is technically less demanding and has a higher success rate. Lentiviral vectors were shown to efficiently incorporate the transgene into the genome to determine the generation of stable transgenic lines. Despite some limitations (e.g., Biosafety Level 2 requirements, DNA fragment size limits), lentiviral transgenesis is a rapid and efficient transgenesis method. Additionally, using female rats that are mated with a fertile male strain with a different dominant fur color is presented as an alternative to generate pseudopregnant foster mothers.

This article aims to provide the methodology for lentiviral transgenesis in rat embryos using multiple injections of a virus suspension into the zygote perivitelline space. Female rats that are mated with a fertile male strain with a different dominant fur color is used to generate pseudopregnant foster mothers.

렌티바이러스 벡터 접근법을 이용한 형질전환 쥐 생성

Transgenic animal models are fundamentally important for modern biomedical research. The incorporation of foreign genes into early mouse or rat embryos is ...

생체공학

Methods and Tips for Intravenous Administration of Adeno-associated Virus to Rats and Evaluation of Central Nervous System Transduction

Adeno-associated virus (AAV) vectors are a key reagent in the neurosciences for clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR), optogenetics, cre-lox targeting, etc. The purpose of this manuscript is to aid the investigator attempting expansive central nervous system (CNS) gene transfer in the rat via tail vein injection of AAV. Wide-scale expression is relevant for conditions with widespread pathology, and a rat model is significant due to its greater size and physiologic similarities to humans compared to mice. In this example application, a wide-scale neuronal transduction is used to mimic a neurodegenerative disease that affects the entire spinal cord, amyotrophic lateral sclerosis (ALS). The efficient wide-scale CNS transduction can also be used to deliver therapeutic protein factors in pre-clinical studies. After a post-injection expression interval of several weeks, the effects of the transduction are evaluated. For a green fluorescent protein (GFP) control vector, the amount of GFP in the cerebellum is estimated quickly and reliably by a basic imaging program. For motor disease phenotypes that are induced by the ALS related protein transactive response DNA-binding protein of 43 kDa (TDP-43), the deficits are scored by escape reflex and rotarod. Beyond disease modeling and gene therapy, there are diverse potential applications for the wide-scale gene targeting described here. The expanded use of this method will aid in expediting hypothesis testing in the neurosciences and neurogenetics.

Methods for a wide-scale central nervous system gene delivery in the rat are covered. In this example, the purpose is to mimic a disease that affects the entire spinal cord. The widespread transduction can be used to deliver a therapeutic protein to the CNS from a one-time, peripheral administration.

메서드 및 Adeno 관련 바이러스를 쥐의 정 맥 관리 및 중앙 신경 전달의 평가 대 한 팁

Adeno-associated virus (AAV) vectors are a key reagent in the neurosciences for clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR), ...

신경과학

A Rat Model of EcoHIV Brain Infection

It has been well studied that the EcoHIV infected mouse model is of significant utility in investigating HIV associated neurological complications. Establishment of the EcoHIV infected rat model for studies of drug abuse and neurocognitive disorders, would be beneficial in the study of neuroHIV and HIV-1 associated neurocognitive disorders (HAND). In the present study, we demonstrate the successful creation of a rat model of active HIV infection using chimeric HIV (EcoHIV). First, the lentiviral construct of EcoHIV was packaged in cultured 293 FT cells for 48 hours. Then, the conditional medium was concentrated and titered. Next, we performed bilateral stereotaxic injections of the EcoHIV-EGFP into F344/N rat brain tissue. One week after infection, EGFP fluorescence signals were detected in the infected brain tissue, indicating that EcoHIV successfully induces an active HIV infection in rats. In addition, immunostaining for the microglial cell marker, Iba1, was performed. The results indicated that microglia were the predominant cell type harboring EcoHIV. Furthermore, EcoHIV rats exhibited alterations in temporal processing, a potential underlying neurobehavioral mechanism of HAND as well as synaptic dysfunction eight weeks after infection. Collectively, the present study extends the EcoHIV model of HIV-1 infection to the rat offering a valuable biological system to study HIV-1 viral reservoirs in the brain as well as HAND and associated comorbidities such as drug abuse.

Here, we present a protocol to establish a new rat model of active HIV infection using chimeric HIV (EcoHIV), which is critical for enhancing our understanding of HIV-1 viral reservoirs in the brain and offering a system to study HIV-associated neurocognitive disorders and associated comorbidities (i.e., drug abuse).

에코HIV 뇌 감염의 쥐 모델

It has been well studied that the EcoHIV infected mouse model is of significant utility in investigating HIV associated neurological complications. ...

Monitoring Endoplasmic Reticulum Calcium Homeostasis Using a Gaussia Luciferase SERCaMP

The endoplasmic reticulum (ER) contains the highest level of intracellular calcium, with concentrations approximately 5,000-fold greater than cytoplasmic levels. Tight control over ER calcium is imperative for protein folding, modification and trafficking. Perturbations to ER calcium can result in the activation of the unfolded protein response, a three-prong ER stress response mechanism, and contribute to pathogenesis in a variety of diseases. The ability to monitor ER calcium alterations during disease onset and progression is important in principle, yet challenging in practice. Currently available methods for monitoring ER calcium, such as calcium-dependent fluorescent dyes and proteins, have provided insight into ER calcium dynamics in cells, however these tools are not well suited for in vivo studies. Our lab has demonstrated that a modification to the carboxy-terminus of Gaussia luciferase confers secretion of the reporter in response to ER calcium depletion. The methods for using a luciferase based, secreted ER calcium monitoring protein (SERCaMP) for in vitro and in vivo applications are described herein. This video highlights hepatic injections, pharmacological manipulation of GLuc-SERCaMP, blood collection and processing, and assay parameters for longitudinal monitoring of ER calcium.

Monitoring Endoplasmic Reticulum Calcium Homeostasis Using a Gaussia Luciferase SERCaMP

Endoplasmic reticulum calcium homeostasis is disrupted in diverse pathologies. A secreted ER calcium monitoring protein (SERCaMP) reporter can be used to detect disruptions in the ER calcium store. This protocol describes the use of a Gaussia luciferase SERCaMP to examine ER calcium homeostasis in vitro and in vivo.

사용 소포체 칼슘 항상성 모니터링<em&gt; Gaussia</em&gt; 루시 페라 제 SERCaMP

The endoplasmic reticulum (ER) contains the highest level of intracellular calcium, with concentrations approximately 5,000-fold greater than cytoplasmic ...

생물학

Viral Transgene Expression in Rodent Hearts and the Assessment of Cardiac Arrhythmia Risk

Heart disease is the leading cause of morbidity and mortality worldwide. Due to the ease of handling&#160;and abundance of transgenic strains, rodents have become essential models for cardiovascular research. However, spontaneous lethal cardiac arrhythmias that often cause mortality in heart disease patients are rare in rodent models of heart disease. This is primarily due to the species differences in cardiac electrical properties between human&#160;and rodents and poses a challenge to the study of cardiac arrhythmias using rodents. This protocol describes an approach to enable efficient transgene expression in mouse and rat ventricular myocardium using echocardiography-guided intramuscular injections of recombinant virus (adenovirus and adeno-associated virus). This work also outlines a method to enable reliable assessment of cardiac susceptibility to arrhythmias using isolated, Langendorff-perfused mouse and rat hearts with both adrenergic and programmed electrical stimulations. These techniques are critical for studying heart rhythm disorders associated with adverse cardiac remodeling after injuries, such as myocardial infarction.

The present protocol describes methods for transgene expression in rat and mouse hearts by direct intramyocardial injection of the virus under echocardiography guidance. Methods for the assessment of the susceptibility of hearts to ventricular arrhythmias by the programmed electrical stimulation of isolated, Langendorff-perfused hearts are also explained here.

설치류 심장에서의 바이러스 전이 유전자 발현 및 심장 부정맥 위험 평가

Heart disease is the leading cause of morbidity and mortality worldwide. Due to the ease of handling&#160;and abundance of transgenic strains, rodents ...

Establishing an Active HIV Infection in a Rat Model

Source: Li, H., McLaurin, et al. <a href="https://app.jove.com/v/62137">A Rat Model of EcoHIV Brain Infection.</a> J. Vis. Exp. (2021).
This video demonstrates the procedure of injecting chimeric HIV viruses into the cortex of a rat&#39;s brain, where the virus RNA integrates into the host genome, replicates, and spreads to establish an active HIV infection in the experimental model.

쥐 모델에서 활동성 HIV 감염 확립

All procedures involving animal models have been reviewed by the local institutional animal care committee and the JoVE veterinary review board.
1. ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

Neuroscience

Neuropathology

Infectious Diseases

Targeting Liver Tumors with Oncolytic Viruses via the Hepatic Artery

Source: Altomonte, J. et al., <a href="https://app.jove.com/v/53757">Transarterial Administration of Oncolytic Viruses for Locoregional Therapy of Orthotopic HCC in Rats.</a>&#160;J. Vis. Exp. (2016)
The video demonstrates locoregional delivery of oncolytic viruses through hepatic arterial injection as a therapeutic approach for hepatocellular carcinoma. These viruses selectively replicate in tumor cells, inducing cell lysis and releasing tumor cell-associated antigens. This process triggers immunogenic cell death, inducing an anti-tumor response.

종양 살상 바이러스의 전 임상 평가에 대한 연구에면 쥐의 취급

요약

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