이 프로젝트는 중국 국립 자연 과학 재단 (32201235 to Zhifei Fu), 중국 푸젠 성 자연 과학 재단 (2022J01287 to Zhifei Fu), 중국 푸젠 의과 대학 고급 인재 연구 재단 (XRCZX2021013 Zhifei Fu), 중국 푸젠 성 금융 특수 과학 재단 (22SCZZX002 to Zhifei Fu), 비인간 영장류에 대한 생식력 조절 기술 평가의 NHC 핵심 연구소 및 푸젠 산부인과 및 아동 건강 병원 설립(2022-NHP-04 to Zhifei Fu). EM 샘플 준비 및 EM 이미징을 지원해 주신 Fujian Medical University 공공 기술 서비스 센터의 Linying Zhou, Minxia Wu, Xi Lin, Yan Hu에게 감사드립니다.

축산 및 실험은 Fujian Medical University Medical Center의 Institutional Animal Care and Use Committee의 승인을 받았습니다. 현재 프로토콜의 단계별 워크플로는 그림 1에 나와 있습니다.
1. 샘플 준비
<ol><li>쥐의 뇌<ol><li>형질전환 마우스( 재료 표 참조) 및 올리고뉴클레오티드 프라이머( 재료 표 참조)를 구입하여 이러한 마우스의 유전자형을 분석합니다.</li>
		<li>이전에 발표된 프로토콜12,13에 따라 두개골 금고에서 온전한 뇌를 관류하고 제거합니다.</li>
		<li>4°C에서 밤새 10mL의 고정 용액( 재료 표 참조)을 사용하여 마우스 뇌를 고정합니다.</li>
		<li>0.1M 인산염 완충액(PB)으로 3 x 10분 동안 고정 용액을 헹굽니다.</li>
		<li>진동 마이크로톰을 사용하여 마우스 뇌를 500μm 두께의 섹션으로 자릅니다( 재료 표 참조).</li>
		<li>형광 영역을 실체현미경을 사용하여 메스로 작은 블록으로 자릅니다( 재료 표 참조). 알림: 작은 블록의 부피는 1mm3보다 크지 않아야 합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>배양된 세포<ol><li>HeLa 세포를 6cm 세포 배양 접시에 파종하고 성장 배지(Dulbecco's modified Eagle medium [DMEM] 저포도당, 10% 소 태아 혈청 [FBS] 보충)에서 유지합니다.</li>
		<li>다음 날, transfection kit의 지침서에 따라 DNA transfection 시약( 재료 표 참조)을 사용하여 mScarlet을 포함하는 plasmid를 세포에 transfection합니다.</li>
		<li>형질주입 후 48시간 후에 형질주입된 세포를 트립시스화하고 원심분리하여 1,000× g의 세포 펠릿을 얻습니다. 세포 펠릿을 샘플 블록이라고 합니다.</li>
	</ol></li>
</ol>2. EM 시료 전처리
<ol><li>고정<ol><li>밤새 4°C에서 정착 용액( 재료 표 참조)을 사용하여 샘플 블록을 고정합니다.</li>
		<li>정착액을 제거하고 샘플 블록에서 0.1M PB로 3 x 10분 동안 정착액을 헹굽니다.</li>
	</ol></li>
	<li>오스뮴 테트라옥사이드(OsO4) 염색<ol><li>OsO4 용액( 재료 표 참조)으로 샘플 블록을 4°C에서 1시간 동안 고정합니다.</li>
		<li>OsO4 용액을 제거하고 샘플 블록에서 ddH4O로 OsO4 용액을 3 x 10분 동안 헹굽니다.</li>
	</ol></li>
	<li>우라닐 아세테이트(UA) 염색<ol><li>4°C에서 1시간 동안 2% UA 용액( 재료 표 참조)을 사용하여 샘플 블록을 염색합니다.</li>
		<li>UA 용액을 제거하고 샘플 블록을 ddH2O로 3 x 10분 동안 헹굽니다.</li>
	</ol></li>
	<li>그라디언트 탈수<ol><li>10 분 동안 50 %, 10 분 동안 70 %, 10 분 동안 80 %, 10 분 동안 90 %, 10 % 에탄올에서 2 x 10 분과 같이 그래디언트 에탄올로 샘플 블록을 탈수합니다.</li>
		<li>샘플 블록을 무수 아세톤으로 3 x 10분 동안 탈수합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>수지 침투<ol><li>그래디언트 수지로 샘플 블록에 침투( 재료 표 참조): 아세톤-수지 3:1 1시간 동안 1시간, 아세톤 대 수지 1:1 2시간, 아세톤 대 수지 1:3 3시간 동안 3.</li>
		<li>3 x 12시간 동안 순수한 수지로 교체합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>수지 임베딩<ol><li>이쑤시개를 사용하여 샘플 블록을 캡슐에 옮깁니다( 재료 표 참조).</li>
		<li>샘플 블록이 들어있는 캡슐에 순수 수지를 넣고 60 ° C의 오븐에서 14-16 시간 동안 수지를 중합시킵니다.</li>
	</ol></li>
</ol>3. 금 나노 입자로 커버 글라스 코팅
<ol><li>커버글라스 청소<ol><li>커버글라스를 세척용 버퍼( 재료 표 참조)로 142°C에서 2시간 동안 세척합니다.</li>
		<li>세척 버퍼를 ddH 3 O로 10 x2분 동안 헹굽니다.</li>
		<li>커버글라스를 무수 에틸 알코올이 들어 있는 비커에 조심스럽게 옮기고 밤새 배양합니다.</li>
		<li>커버글라스를 깨끗한 벤치에서 몇 분 동안 자연 건조시킵니다.</li>
	</ol></li>
	<li>커버글라스를 금 나노입자로 코팅합니다.<ol><li>유리 시멘트를 사용하여 데스크탑 원심분리기( 재료 표 참조)의 회전 중앙에 유리 슬라이드를 고정합니다.</li>
		<li>스티커 메모를 사용하여 유리 슬라이드 중앙에 커버글라스를 장착합니다.</li>
		<li>커버글라스에 75μL의 1% 피올로포름( 재료 표 참조)을 추가합니다. 참고 : Formvar ( 재료 표 참조)도 테스트했으며 잘 작동합니다.</li>
		<li>1,360× g (그림 2A)에서 3분 동안 회전하여 커버글라스 표면에 얇은 피올로포름 층을 생성합니다.</li>
		<li>커버글라스 표면을 250μL의 0.1% 폴리-L-라이신( 재료 표 참조)으로 실온에서 1시간 동안 배양합니다(그림 2B).</li>
		<li>ddH2O로 헹구고 커버글라스를 몇 분 동안 자연 건조시킵니다.</li>
		<li>80nm 금 나노 입자 ( 재료 표 참조)를 ddH2O로 25 % (v / v, OD600 = 0.07) ( 재료 표 참조)로 희석하고 15 분 동안 초음파 처리합니다.</li>
		<li>뚜껑유리 표면을 희석된 금 나노입자로 실온에서 1시간 동안 배양합니다(그림 2C).</li>
		<li>ddH2O로 헹구고 커버글라스를 몇 분 동안 자연 건조시킵니다. 참고 : pioloform과 금 나노 입자로 코팅 된 후 2 주 후에 잘 작동합니다. 그러나 코팅 후 즉시 사용하는 것이 좋습니다.</li>
	</ol></li>
</ol>4. 초박형 절편
<ol><li>샘플 블록의 표면을 직각 사다리꼴로 자릅니다. 초박편절기(재료 표 참조)가 있는 다이아몬드 나이프(재료 표 참조)를 사용하여 100nm 두께로 단면을 절단합니다. 섹션 밴드에서 단일 섹션을 분리하고 단일 섹션을 수조에 띄웁니다.</li>
	<li>ddH2O 한 방울을 금 나노 입자로 코팅된 커버글라스의 중앙에 떨어뜨립니다. 샘플 루프를 사용하여 섹션을 선택하고 샘플 루프를 물방울 표면에 뒤집습니다. 샘플 루프를 제거하고 물방울 표면의 섹션을 남겨 둡니다.</li>
	<li>커버글라스를 몇 분 동안 자연 건조시킵니다. 마커 펜을 사용하여 커버글라스의 반대쪽 섹션 주위에 고리를 그립니다.</li>
</ol>5. 광학 현미경 이미징
<ol><li>형광 회복 참고: 워크플로는 그림 3A에 나와 있습니다.<ol><li>10μL의 장착 버퍼( 재료 표 참조)를 커버 유리의 초박형 섹션에 추가합니다. 깨끗한 새 커버글라스를 장착 버퍼에 놓습니다. 알림: 장착 버퍼의 핵심 구성 요소는 형광 단백질의 형광을 복구하는 데 사용되는 DABCO입니다. 이것은 형광 회수에 매우 중요합니다.</li>
		<li>이 두 개의 커버글라스를 초박형 섹션과 함께 이미징 챔버에 넣습니다( 재료 표 참조). 그려진 고리가 있는 덮개 유리가 상단에 있는지 확인하십시오.</li>
	</ol></li>
	<li>내비게이션 맵을 수집합니다.<ol><li>도립 형광 현미경의 명시야 이미징 모드에서 그려진 고리를 마커로 사용하여 단면을 찾습니다( 재료 표 참조). 섹션의 한쪽 모서리로 이동합니다. 백색광을 켜고 명시야 이미지를 촬영합니다.</li>
		<li>백색광을 끕니다. 레이저(561nm)를 켜고 동일한 시야(FOV)의 형광 이미지를 촬영합니다.</li>
		<li>레이저를 끕니다. 인접한 FOV로 이동하여 이 두 FOV가 10% 겹치도록 합니다. 두 번째 FOV의 명시야 이미지와 형광 이미지를 촬영합니다.</li>
		<li>전체 섹션이 덮일 때까지 이 작업을 반복합니다. FOV를 스티칭하는 데 사용할 수 있는 이미징 경로를 기록합니다. 알림: 이미지 품질을 높이려면 컨포칼 현미경을 사용하는 것이 좋습니다.</li>
	</ol></li>
	<li>관심 있는 이미지 셀.<ol><li>탐색 맵을 사용하여 관심 있는 셀을 쉽게 타겟팅할 수 있습니다. 레이저(561nm)를 켜고 관심 세포의 형광 이미지를 300프레임으로 촬영합니다. 레이저를 끕니다.</li>
		<li>백색광을 켜고 순차적인 명시야 이미지(~100프레임)를 촬영합니다.</li>
		<li>관심 있는 다른 셀로 이동합니다.</li>
	</ol></li>
</ol>6. EM 이미징 준비
참고: 워크플로는 그림 3B에 나와 있습니다.
<ol><li>초박형 섹션을 슬롯 그리드로 옮깁니다.<ol><li>유리병에 ddH2O를 채웁니다.</li>
		<li>챔버에서 커버글라스를 제거하고 핀셋으로 두 개의 커버글라스를 분리합니다. Clamp 섹션이 있는 커버글라스를 세척하고 장착 버퍼를 씻어내고 자연 건조합니다.</li>
		<li>단면 블레이드를 사용하여 초박형 섹션 주위에 #을 기록하고 #의 각 모서리에 10μL의 12% 불산(재료 표 참조)을 떨어뜨립니다. 커버글라스를 물에 천천히 넣으십시오. 알림: 불산은 유리와 반응하여 커버 유리에서 피올로포름 필름을 더 쉽게 제거할 수 있습니다. 불화수소산은 독성이 있습니다. 장갑과 함께 화학 후드에 사용하십시오. 피부와의 접촉은 즉각적인 치료가 필요합니다.</li>
		<li>피올로폼 필름과 초박형 부분을 함께 수면에 띄웁니다. 단면에 코팅되지 않은 슬롯 격자를 배치하여 격자 중앙의 단면을 캡처합니다.</li>
		<li>유리 슬라이드를 파라필름으로 덮고( 재료 표 참조) 피올로폼 필름으로 그리드를 집습니다. 그리드를 실온에서 자연 건조합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>단면 염색<ol><li>2% UA와 Sato의 트리플 리드로 섹션을 더럽힙니다. 자세한 내용은 이전에 게시된 프로토콜2를 참조하십시오.</li>
	</ol></li>
</ol>7. 이미지 분석
<ol><li>내비게이션 맵을 연결합니다.<ol><li>원시 데이터의 위치를 찾습니다. ImageJ 소프트웨어( 재료 표 참조)를 열어 내비게이션 맵을 연결합니다.</li>
		<li>Plugins(플러그인) | 스티칭 | 그리드/컬렉션 스티칭 | (유형) 그리드: 열별 뱀 | (주문) Up & Left (촬영 순서에 따라) | 슬라이스 크기 설정 | 데이터 경로 선택 | 파일 이름 설정 | 퓨전 표시를 선택합니다. 서로 다른 FOV의 여러 명시야 이미지로 구성된 내비게이션 맵인 결과를 관찰합니다.</li>
		<li>동일한 방법을 사용하여 형광 내비게이션 맵을 연결합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>명시야 이미지를 형광 이미지와 병합합니다.<ol><li>ImageJ 소프트웨어에서 File(파일) | 가져오기 | Image Sequence : 관심 세포의 순차적 명시야 이미지를 가져옵니다.</li>
		<li>이미지 | 스택 | Z 투영 | Sum Slices(슬라이스 합계)는 순차적 명시야 이미지의 SIP(Sum Intensity Projection) 이미지를 가져옵니다.</li>
		<li>Edit( 편집) | 금 나노 입자의 신호가 밝은 흰색 점이 되도록 명시야의 SIP 이미지를 반전시키려면 반전합니다.</li>
		<li>ImageJ에서 File(파일) | 가져오기 | 이미지 시퀀스 - 순차적인 FM 이미지를 가져옵니다.</li>
		<li>이미지 | 스택 | Z 투영 | Sum Slices를 사용하여 순차 FM 이미지의 SIP 이미지를 가져옵니다.</li>
		<li>이미지 | 색상 | 채널 병합 - SIP 명시야 이미지를 SIP FM 이미지와 합성 이미지로 병합합니다.</li>
		<li>금 나노 입자는 녹색이고 형광 단백질은 빨간색입니다. 이미지 | 유형 | RGB 색상 합성 이미지의 형식을 RGB로 변환합니다.</li>
	</ol></li>
</ol>8. EM 이미징
<ol><li>그리드를 s에 놓습니다.amp그리드의 단면을 위로 유지하면서 홀드.</li>
	<li>내비게이션 맵을 사용하여 초박형 섹션의 오른쪽 사다리꼴의 서로 다른 4개 모서리까지 4개의 상대 거리를 통해 전자 현미경 아래에서 해당 셀의 위치를 대략적으로 식별합니다.</li>
	<li>금 나노 입자를 사용하여 세포를 확인합니다.</li>
	<li>투과 전자 현미경(TEM)을 사용하여 다양한 배율(4,200x, 6,000x 또는 8,200x)로 EM 이미지를 촬영합니다( 재료 표 참조).</li>
</ol>9. EM 이미지에 FM 이미지 등록
<ol><li>정합 소프트웨어를 엽니다( 자료 표 참조). 검색 창에 easyCLEMv014를 입력합니다. easyCLEMv0을 클릭하여 easyCLEMv0을 엽니다. Image/Sequence(이미지/시퀀스) | EM 이미지와 합성 이미지를 소프트웨어 패널로 가져오려면 엽니다.</li>
	<li>EasyCLEMv0 창에서 2D(x,y,[T])를 클릭하여 정렬 모드로 비강성(2D 또는 3D)을 선택합니다.</li>
	<li>EasyCLEMv0 창에서 변환 및 크기 조정(FM 가능)할 이미지 선택 오른쪽에 있는 드롭다운 상자를 클릭하여 합성(RGB)color.tif을 선택합니다. 그런 다음 수정되지 않을 이미지 선택(EM일 수 있음) 오른쪽에 있는 드롭다운 상자를 클릭하여 EMimage. tif 선택합니다.</li>
	<li>시작을 클릭하여 등록을 시작합니다.</li>
	<li>EMimage. tif라는 EM 이미지 창에서 하나의 금 나노 입자를 클릭하여 금 나노 입자에 포인트 1을 놓습니다. Composite (RGB)color.tif라는 FM 이미지 창에서 해당 금 나노 입자를 클릭하여 금 나노 입자에 포인트 1을 놓습니다.</li>
	<li>Update Transformation을 클릭하여 금 나노 입자의 EM 신호로 LM 신호를 확인합니다.</li>
	<li>EMimage. tif라는 EM 이미지 창에서 위의 작업을 반복하고 LM 신호를 동일한 금 나노 입자의 EM 신호와 하나씩 일치시킵니다.</li>
	<li>중지를 클릭하여 등록을 마칩니다.</li>
	<li>이미지 정렬 후 오버레이된 이미지(Overlayed image)를 클릭하고 이미지/시퀀스(Image/Sequence) | 다른 이름으로 저장 을 클릭하여 4개의 채널 이미지(빨강, 녹색, 파랑, 회색)가 포함된 이미지 스택을 내보냅니다.</li>
	<li>ImageJ를 열고 File(파일) | 오버레이된 이미지를 가져오려면 엽니다. 이미지 | 스택 | 이미지에 스택을 쌓아 오버레이된 이미지를 4개의 채널 이미지로 분리합니다.</li>
	<li>이미지 | 색상 | 채널 병합 - 세 채널(빨강, 녹색 및 회색)의 이미지를 합성 이미지로 병합합니다.</li>
	<li>이미지 | 유형 | RGB 색상 합성 이미지를 CLEM 이미지로 변환합니다.</li>
</ol>

동시 형광 및 초미구조 보존을 위한 새로운 프로토콜

<ol>
	<li>de Boer, P., Hoogenboom, J. P., Giepmans, B. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Correlated+light+and+electron+microscopy:+ultrastructure+lights+up.">Correlated light and electron microscopy: ultrastructure lights up.</a> Nat Methods. 12 (6), 503-513 (2015).</li><li>Kopek, B. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diverse+protocols+for+correlative+super-resolution+fluorescence+imaging+and+electron+microscopy+of+chemically+fixed+samples.">Diverse protocols for correlative super-resolution fluorescence imaging and electron microscopy of chemically fixed samples.</a> Nat Protoc. 12 (5), 916-946 (2017).</li><li>Watanabe, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protein+localization+in+electron+micrographs+using+fluorescence+nanoscopy.">Protein localization in electron micrographs using fluorescence nanoscopy.</a> Nat Methods. 8 (1), 80-84 (2011).</li><li>Johnson, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Correlative+in-resin+super-resolution+and+electron+microscopy+using+standard+fluorescent+proteins.">Correlative in-resin super-resolution and electron microscopy using standard fluorescent proteins.</a> Sci Rep. 5 (1), 9583 (2015).</li><li>Paez-Segala, M. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fixation-resistant+photoactivatable+fluorescent+proteins+for+CLEM.">Fixation-resistant photoactivatable fluorescent proteins for CLEM.</a> Nat Methods. 12 (3), 215-218 (2015).</li><li>Fu, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=mEosEM+withstands+osmium+staining+and+Epon+embedding+for+super-resolution+CLEM.">mEosEM withstands osmium staining and Epon embedding for super-resolution CLEM.</a> Nat Methods. 17 (1), 55-58 (2020).</li><li>Kukulski, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Correlated+fluorescence+and+3D+electron+microscopy+with+high+sensitivity+and+spatial+precision.">Correlated fluorescence and 3D electron microscopy with high sensitivity and spatial precision.</a> J Cell Biol. 192 (1), 111-119 (2011).</li><li>Peng, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+fluorescent+proteins+for+dual-colour+post-embedding+CLEM.">Improved fluorescent proteins for dual-colour post-embedding CLEM.</a> Cells. 11 (7), 1077 (2022).</li><li>Campbell, B. C., Paez-Segala, M. G., Looger, L. L., Petsko, G. A., Liu, C. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemically+stable+fluorescent+proteins+for+advanced+microscopy.">Chemically stable fluorescent proteins for advanced microscopy.</a> Nat Methods. 19 (12), 1612-1621 (2022).</li><li>Tanida, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two-color+in-resin+CLEM+of+Epon-embedded+cells+using+osmium+resistant+green+and+red+fluorescent+proteins.">Two-color in-resin CLEM of Epon-embedded cells using osmium resistant green and red fluorescent proteins.</a> Sci Rep. 10 (1), 21871 (2020).</li><li>Tanida, I., Kakuta, S., Oliva Trejo, J. A., Uchiyama, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visualization+of+cytoplasmic+organelles+via+in-resin+CLEM+using+an+osmium-resistant+far-red+protein.">Visualization of cytoplasmic organelles via in-resin CLEM using an osmium-resistant far-red protein.</a> Sci Rep. 10 (1), 11314 (2020).</li><li>MacManus, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Excision+of+whole+intact+mouse+brain.">Excision of whole intact mouse brain.</a> MethodsX. 10, 102246 (2023).</li><li>Lu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preserving+extracellular+space+for+high-quality+optical+and+ultrastructural+studies+of+whole+mammalian+brains.">Preserving extracellular space for high-quality optical and ultrastructural studies of whole mammalian brains.</a> Cell Rep Methods. 3 (7), 24 (2023).</li><li>Paul-Gilloteaux, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=eC-CLEM:+flexible+multidimensional+registration+software+for+correlative+microscopies.">eC-CLEM: flexible multidimensional registration software for correlative microscopies.</a> Nat Methods. 14 (2), 102-103 (2017).</li><li>Fenno, L. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comprehensive+dual-+and+triple-feature+intersectional+single-vector+delivery+of+diverse+functional+payloads+to+cells+of+behaving+mammals.">Comprehensive dual- and triple-feature intersectional single-vector delivery of diverse functional payloads to cells of behaving mammals.</a> Neuron. 107 (5), 836-853 (2020).</li><li>Shcherbo, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Far-red+fluorescent+tags+for+protein+imaging+in+living+tissues.">Far-red fluorescent tags for protein imaging in living tissues.</a> Biochem J. 418 (3), 567-574 (2009).</li><li>Shen, Y., Chen, Y., Wu, J., Shaner, N. C., Campbell, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Engineering+of+mCherry+variants+with+long+Stokes+shift,+red-shifted+fluorescence,+and+low+cytotoxicity.">Engineering of mCherry variants with long Stokes shift, red-shifted fluorescence, and low cytotoxicity.</a> PLoS One. 12 (2), e0171257 (2017).</li><li>Ai, H. W., Olenych, S. G., Wong, P., Davidson, M. W., Campbell, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hue-shifted+monomeric+variants+of+Clavularia+cyan+fluorescent+protein:+identification+of+the+molecular+determinants+of+color+and+applications+in+fluorescence+imaging.">Hue-shifted monomeric variants of Clavularia cyan fluorescent protein: identification of the molecular determinants of color and applications in fluorescence imaging.</a> BMC Biol. 6 (13), 1741 (2008).</li><li>Ogoh, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dual-color-emitting+green+fluorescent+protein+from+the+sea+cactus+Cavernularia+obesa+and+its+use+as+a+pH+indicator+for+fluorescence+microscopy.">Dual-color-emitting green fluorescent protein from the sea cactus Cavernularia obesa and its use as a pH indicator for fluorescence microscopy.</a> Luminescence. 28 (4), 582-591 (2013).</li><li>Bindels, D. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=mScarlet:+a+bright+monomeric+red+fluorescent+protein+for+cellular+imaging.">mScarlet: a bright monomeric red fluorescent protein for cellular imaging.</a> Nat Methods. 14 (1), 53-56 (2017).</li><li>Xu, P., Xu, T., Zhang, M., Fu, Z., He, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+protocol+for+Epon-embedding-based+correlative+super-resolution+light+and+electron+microscopy.">A protocol for Epon-embedding-based correlative super-resolution light and electron microscopy.</a> Research Square. , (2019).</li><li>Johnson, E., Kaufmann, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preserving+the+photoswitching+ability+of+standard+fluorescent+proteins+for+correlative+in-resin+super-resolution+and+electron+microscopy.">Preserving the photoswitching ability of standard fluorescent proteins for correlative in-resin super-resolution and electron microscopy.</a> Methods Cell Biol. 140, 49-67 (2017).</li><li>Zhou, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Liquid-liquid+phase+separation+mediates+the+formation+of+herpesvirus+assembly+compartments.">Liquid-liquid phase separation mediates the formation of herpesvirus assembly compartments.</a> J Cell Biol. 222 (1), 17 (2023).</li><li>Tao, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differentiation+and+characterization+of+excitatory+and+inhibitory+synapses+by+cryo-electron+tomography+and+correlative+microscopy.">Differentiation and characterization of excitatory and inhibitory synapses by cryo-electron tomography and correlative microscopy.</a> J Neurosci. 38 (6), 1493-1510 (2018).</li></ol>

저자는 선언할 이해 상충이 없습니다.

여기에 제시된 프로토콜은 광학 현미경(LM)에서 얻은 표적 단백질의 국소화 정보와 전자 현미경(EM)에서 표적 단백질을 둘러싼 컨텍스트를 결합할 수 있는 다목적 이미징 방법입니다6. 현재 형광 단백질의 한계로 인해 널리 사용되는 방법은 상관 광 및 전자 현미경(CLEM)을 사전 임베딩하는 것인데, 이는 EM 시료 전처리 전에 LM 이미징이 수행됨을 의미합니다. 거의 모든 기존 형광 단...

형광 현미경(FM)을 사용하여 표적 단백질의 국소화 및 분포를 얻을 수 있습니다. 그러나 표적 단백질을 둘러싼 컨텍스트가 손실되며, 이는 표적 단백질을 철저히 조사하는 데 매우 중요합니다. 전자 현미경(EM)은 이미징 해상도가 가장 높아 여러 세포 내 세부 정보를 제공합니다. 그럼에도 불구하고 EM에는 표적 라벨링이 없습니다. FM으로 촬영한 형광 이미지를 EM으로 획득한 회색 이미지와 정확하게 병합함으로써 상관광 및 전자 현미경(CLEM)은 이 두 가지 이미징 모드 1,2,3,4에서 얻은 정보를 결합할 수 있습니다.
CLEM은 형광과 초미세구조1 사이의 절충안이다. 현재 형광 단백질과 기존 EM 시료 전처리 절차의 한계, 특히 오스믹산(OsO4) 및 Epon과 같은 소수성 수지의 사용으로 인해 미세구조는 항상 형광5를 손상시킵니다. OsO4 는 EM 시료 전처리에 없어서는 안 될 시약으로, EM 이미지의 대비를 개선하는 데 사용됩니다. 다른 끼워넣는 수지와 비교해, EPON는 ultrastructure 보전과 단면도 재산에서 우량합니다5. 그러나 형광 단백질은 OsO4 및 Epon embedding6 처리 후 형광 신호를 유지할 수 없습니다. 형광 단백질의 한계를 극복하기 위해 EM 시료 전처리 전에 FM 이미징을 수행하는 사전 임베딩 CLEM이 개발되었습니다6. 그러나 CLEM을 사전 임베딩하는 것의 단점은 FM과 EM 이미지 간의 부정확한 등록이다5.
반대로, 포스트 임베딩 CLEM 방법은 EM 샘플 준비 후 FM 이미징을 수행하며, 그 등록 정확도는 6-7nm 5,6에 도달 할 수 있습니다. 형광 단백질의 형광을 유지하기 위해 매우 낮은 농도의 OsO4 (0.001 %)3 또는 고압 동결 (HPF) 및 동결 치환 (FS) EM 제조 방법 4,7이 사용되어 미세 구조 손상 또는 EM 이미지의 대비를 희생했습니다. mEos4b의 개발은 임베딩 수지5로 글리시딜 메타크릴레이트가 사용되지만, 포스트 임베딩 CLEM의 진행을 크게 촉진한다. OsO4 염색 및 Epon 임베딩에서 살아남을 수 있는 mEosEM의 개발로 Epon 포스트 임베딩 초고해상도 CLEM이 처음으로 달성되어 형광과 미세구조를 동시에 유지했습니다6. mEosEM 후, OsO4 염색 및 Epon 임베딩에서 살아남을 수 있는 여러 형광 단백질이 개발되었습니다 8,9,10,11. 이것은 CLEM의 개발을 크게 촉진합니다.
Epon 포스트 임베딩 CLEM에는 세 가지 주요 측면이 있습니다. 첫 번째는 형광 단백질로, EM 시료 전처리 후 형광 신호를 유지해야 합니다. 우리의 경험에 따르면, mScarlet은 보고된 다른 형광 단백질보다 우수합니다. 두 번째는 EM 이미징에서 FM 이미징으로 이미징된 동일한 세포를 찾는 방법입니다. 이 문제를 해결하기 위해 표적 세포를 쉽게 찾을 수 있도록 이 단계의 절차를 개선합니다. 마지막은 FM 이미지를 EM 이미지와 정렬하는 방법입니다. 여기에서는 FM과 EM 이미지 간의 정합에 대해 자세히 설명합니다. 이 프로토콜에서는 VGLUT2 뉴런에서 mScarlet을 발현하고 mScarlet이 Epon post-embedding CLEM을 사용하여 2차 리소좀을 표적으로 삼을 수 있음을 보여줍니다. 형광 및 미세 구조를 손상시키지 않고 Epon 포스트 임베딩 CLEM에 대한 단계별 세부 정보를 제공합니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.2 M Phosphate Buffer (PB)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>NaH2PO4 &#183; 2H2O+Na2HPO4 &#183; 12H2O</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.2 M Tris-Cl (pH 8.5)</td>
			<td>Shanghai yuanye Bio-Technology</td>
			<td>R26284</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>25% Glutaraldehyde (GA)</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>A17876</td>
			<td>Hazardous chemical</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Abbelight 3D</td>
			<td>Nanolnsights</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetone</td>
			<td>SCR</td>
			<td>10000418</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ammonium hydroxide</td>
			<td>J&#38;K Scientific</td>
			<td>335213</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BioPhotometer D30</td>
			<td>eppendorf</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cleaning buffer of cover glasses</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>50 mL Ammonium hydroxide, 50 mL Hydrogen peroxide, 250 mL H2O</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverglass</td>
			<td>Warner</td>
			<td>64-0715</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DABCO&#160;</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>290734</td>
			<td>Hazardous chemical</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DDSA</td>
			<td>SPI company</td>
			<td>GS02827</td>
			<td>Hazardous chemical</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Desktop centrifuge</td>
			<td>WIGGENS</td>
			<td>MINICEN 10E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Diamond knife</td>
			<td>DiATOME</td>
			<td>MX6353</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMP-30</td>
			<td>SPI company</td>
			<td>GS02823</td>
			<td>Hazardous chemical</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNA transfection reagent</td>
			<td>Thermo Fisher&#160;</td>
			<td>2696953</td>
			<td>Lipofectamine 3000 Transfection Kit</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Epon 812&#160;</td>
			<td>SPI company</td>
			<td>GS02659</td>
			<td>Hazardous chemical</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>SCR</td>
			<td>10009218</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fiji image J</td>
			<td>National Institutes of Health</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fixative solution&#160;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>4% PFA+0.25% GA+0.02 M PB</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Formvar</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>9823</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycerol</td>
			<td>SCR</td>
			<td>10010618</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gold nanoparticles</td>
			<td>Corpuscular</td>
			<td>790120-010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gradient resin</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Acetone to resin 3:1, 1:1, 1:3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrofluoric acid</td>
			<td>SCR</td>
			<td>10011118</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrogen peroxide</td>
			<td>SCR</td>
			<td>10011218</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ICY (https://icy.bioimageanalysis.org/about/)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Easy CLEMv0 Plugin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Imaging chamber</td>
			<td>Thermo Fisher&#160;</td>
			<td>A7816</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Large gelatin capsules</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>70117</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mounting buffer</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Mowiol 4-88, Glycerol, 0.2 M Tris-Cl (pH 8.5), DABCO</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mowiol 4-88</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>9002-89-5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Na2HPO4&#160;&#382;12H2O</td>
			<td>SCR</td>
			<td>10020318</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaH2PO4&#160;&#382;2H2O</td>
			<td>SCR</td>
			<td>20040718</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NMA</td>
			<td>SPI company</td>
			<td>GS02828</td>
			<td>Hazardous chemical</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oligonucleotide primers</td>
			<td>Takara Biomedical Technology (Beijing)</td>
			<td></td>
			<td>Three oligonucleotides primers were used to detect Vglut2-ires-Cre and wild-type simultaneously. The primers 5,-ATCGACCGGTAATGCAGGCAA-3, and 5,-CGGTACCACCAAATCTTACGG-3, aimed to detect Vglut2-ires-Cre. The primers&#160; 5,-CGGTACCACCAAATCTTACGG-3, and 5,-CATGGTCTGTTTTGAATTCAG-3, aimed to detect wild-type.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oscillating microtome</td>
			<td>Leica</td>
			<td>VT1000S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Osmium tetroxide</td>
			<td>SCR</td>
			<td>L01210302</td>
			<td>Hazardous chemical</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OsO4 solution</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>1% Osmium tetroxide+1.5% K4Fe (CN)6&#183;3H2O</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td>Amcor</td>
			<td>PM-996</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraformaldehyde (PFA)</td>
			<td>SCR</td>
			<td>80096618</td>
			<td>Hazardous chemical</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Perfusion buffer</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>4% PFA+0.1 M PB</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pioloform</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>63148-65-2</td>
			<td>Hazardous chemical</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Poly-L-lysine&#160;</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>25986-63-0</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium ferrocyanide (K4Fe (CN)6&#183;3H2O)&#160;</td>
			<td>SCR</td>
			<td>10016818</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel blades</td>
			<td>Merck</td>
			<td>S2771</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel handles</td>
			<td>Merck</td>
			<td>S2896-1EA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereomicroscope</td>
			<td>OLYMPUS</td>
			<td>MVX10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transgenic mice</td>
			<td>The Jackson Laboratory</td>
			<td></td>
			<td>Vglut2-ires-Cre mice (strain: 129S6/SvEvTac) were housed in standard conditions (25 &#176;C, a 12 h light/dark cycle, with water and food given ad libitum. Male and Female mice were used at 2&#8211;3 months old, weight range 20-30 g.&#160;&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transmission electron microscope (TEM)</td>
			<td>FEI</td>
			<td></td>
			<td>TECNAL G2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>UA solution (2% UA)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Aqueous solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultramicrotome</td>
			<td>Leica</td>
			<td>LEICA EM UC6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Uranyl acetate (UA)</td>
			<td>TED PELLA</td>
			<td>19481</td>
			<td>Hazardous chemical</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

epon post embedding correlative light and electron microscopy

상관 광 및 전자 현미경(CLEM)은 형광 현미경(FM)이 제공하는 국소화 정보와 전자 현미경(EM)으로 획득한 세포 초미세 구조의 맥락을 결합한 포괄적인 현미경입니다. CLEM은 형광과 미세구조 사이의 절충안이며, 일반적으로 초미세구조는 형광을 손상시킵니다. 글리시딜 메타크릴레이트, HM20 또는 K4M과 같은 다른 친수성 임베딩 수지와 비교할 때 Epon은 미세구조 보존 및 절편 특성이 우수합니다. 이전에 우리는 mEosEM이 오스뮴 사산화물 고정 및 에폰 임베딩에서 살아남을 수 있음을 입증했습니다. mEosEM을 사용하여 형광과 초미세 구조를 동시에 유지하는 Epon 포스트 임베딩 CLEM을 처음으로 달성했습니다. 여기에서는 EM 샘플 준비, FM 이미징, EM 이미징 및 이미지 정렬에 대한 단계별 세부 정보를 제공합니다. 또한 EM 이미징 중에 FM 이미징으로 이미징된 동일한 세포를 식별하는 절차를 개선하고 FM과 EM 이미지 간의 정합을 자세히 설명합니다. 우리는 전통적인 EM 시설에서 이 새로운 프로토콜에 따라 상관 광 및 전자 현미경을 포함하는 Epon 포스트 임베딩을 쉽게 달성할 수 있다고 믿습니다.

Fluorescence microscopy (FM) can be used to obtain the localization and distribution of the target protein. However, the context that surrounds the target protein is lost, which is crucial for investigating the target protein thoroughly. Electron microscopy (EM) has the highest imaging resolution, providing several subcellular details. Nevertheless, EM lacks target labeling. By accurately merging the fluorescence image taken by FM with the gray image acquired by EM, correlative light and electron microscopy (CLEM) can combine the information obtained by these two imaging modes1,2,3,4.
CLEM is a trade-off between fluorescence and the ultrastructure1. Because of the limitations of current fluorescent proteins and the traditional EM sample preparation procedures, especially the use of osmic acid (OsO4) and hydrophobic resins such as Epon, the ultrastructure always compromises fluorescence5. OsO4 is an indispensable reagent in EM sample preparation, which is used to improve the contrast of EM images. Compared with other embedding resins, Epon is superior in ultrastructure preservation and sectioning properties5. However, no fluorescent proteins can retain the fluorescence signal after the treatment of OsO4 and Epon embedding6. To overcome the limitations of fluorescent proteins, pre embedding CLEM was developed, in which FM imaging is done before EM sample preparation6. However, the drawback of pre embedding CLEM is the imprecise registration between the FM and the EM images5.
On the contrary, post embedding CLEM method performs the FM imaging after the EM sample preparation, the registration accuracy of which can reach 6-7 nm5,6. To retain the fluorescence of fluorescent proteins, very low concentrations of OsO4 (0.001%)3 or the high-pressure frozen (HPF) and freeze substitution (FS) EM preparation methods4,7 have been used at the expense of compromised ultrastructure or the contrast of the EM image. The development of mEos4b greatly promotes the progress of post embedding CLEM, although glycidyl methacrylate is used as the embedding resin5. With the development of mEosEM, which can survive the OsO4 staining and Epon embedding, Epon post embedding super-resolution CLEM was achieved for the first time, maintaining the fluorescence and ultrastructure simultaneously6. After mEosEM, several fluorescent proteins that can survive the OsO4 staining and the Epon embedding were developed8,9,10,11. This greatly promotes the development of CLEM.
There are three key aspects to Epon post-embedding CLEM. The first is the fluorescent protein, which should maintain the fluorescent signal after EM sample preparation. According to our experience, mScarlet is superior to other reported fluorescent proteins. The second is how to find the same cell imaged by FM imaging in EM imaging. To solve this problem, we improve the procedure for this step so that one can readily find the targeted cell. The last is the method to align the FM image with the EM image. Here, we detail the registration between the FM and the EM images. In this protocol, we express mScarlet in VGLUT2 neurons and demonstrate that mScarlet can target secondary lysosomes using Epon post-embedding CLEM. We provide step-by-step details for Epon post-embedding CLEM, without compromising the fluorescence and the ultrastructure.

저자 스포트라이트: Advancements in Correlative Light and Electron Microscopy with Fluorescent Protein Preservation(형광 단백질 보존을 통한 상관 광 및 전자 현미경의 발전)

Epon Post Embedding Correlative Light and Electron Microscopy

Correlative light and electron microscopy is a completely stable microscopy technique, which can combine the localization information provided by fluorescent microscopy and is the ultra structure by electron microscopy. However, the mentality of this technique is to preserve the fluorescence of after you have a simple preparation. Using this fluorescent protein, we can achieve correlative light and the electron microscope which can maintain fluorescence and ultra structure simultaneously.

이전 보고서에서는 mScarlet이 리소좀15를 표적으로 삼을 수 있음을 보여주었습니다. 이 프로토콜에서 mScarlet(rAAV-hSyn-DIO-mScarlet-WPRE-pA)을 발현하는 AAV를 입체적 계기를 사용하여 Vglut2-ires-cre 마우스 뇌의 M1(ML: ±1.2 AP: +1.3 DV: -1.5)에 주입했습니다. 위에서 설명한 프로토콜에 따라 최종 상관 이미지가 그림 4A에 나와 있습니다. FM 이미지는 금 나노 입자...

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우리는 mScarlet이라는 형광 단백질을 사용하여 Epon post-embedding correlative light and electron microscopy에 대한 자세한 프로토콜을 제시합니다. 이 방법은 형광과 미세구조를 동시에 유지할 수 있습니다. 이 기술은 다양한 생물학적 응용 분야에 적용할 수 있습니다.

Correlative light and electron microscopy (CLEM) is a comprehensive microscopy that combines the localization information provided by fluorescence ...

상관 광 및 전자 현미경은 형광 현미경이 제공하는 국소화 정보를 결합할 수 있고 전자 현미경에 의한 초구조인 완전히 안정적인 현미경 기술입니다. 그러나 이 기술의 정신은 간단한 준비를 한 후의 형광을 보존하는 것입니다. 이 형광 단백질을 이용하여 형광과 초미세 구조를 동시에 유지할 수 있는 상관광과 전자현미경을 얻을 수 있습니다.

epon-post-embedding-correlative-light-and-electron-microscopy

Research

JoVE Journal

Biology

840 조회수.  Fujian Medical University. 상관 광 및 전자 현미경은 형광 현미경이 제공하는 국소화 정보를 결합할 수 있고 전자 현미경에 의한 초구조인 완전히 안정적인 현미경 기술입니다. 그러나 이 기술의 정신은 간단한 준비를 한 후의 형광을 보존하는 것입니다. 이 형광 단백질을 이용하여 형광과 초미세 구조를 동시에 유지할 수 있는 상관광과 전자현미경을 얻을 수 있습니다.

비디오: 저자 스포트라이트: Advancements in Correlative Light and Electron Microscopy with Fluorescent Protein Preservation(형광 단백질 보존을 통한 상관 광 및 전자 현미경의 발전)

Correlative light and electron microscopy (CLEM) is a comprehensive microscopy that combines the localization information provided by fluorescence microscopy (FM) and the context of cellular ultrastructure acquired by electron microscopy (EM). CLEM is a trade-off between fluorescence and ultrastructure, and usually, ultrastructure compromises fluorescence. Compared with other hydrophilic embedding resins, such as glycidyl methacrylate, HM20, or K4M, Epon is superior in ultrastructure preservation and sectioning properties. Previously, we had demonstrated that mEosEM can survive osmium tetroxide fixation and Epon embedding. Using mEosEM, we achieved, for the first time, Epon post embedding CLEM, which maintains the fluorescence and the ultrastructure simultaneously. Here, we provide step-by-step details about the EM sample preparation, the FM imaging, the EM imaging, and the image alignment. We also improve the procedures for identifying the same cell imaged by FM imaging during the EM imaging and detail the registration between the FM and EM images. We believe one can easily achieve Epon post embedding correlative light and electron microscopy following this new protocol in traditional EM facilities.

We present a detailed protocol for Epon post-embedding correlative light and electron microscopy using a fluorescent protein called mScarlet. This method can maintain the fluorescence and the ultrastructure simultaneously. This technique is amenable to a wide variety of biological applications.