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Method Article
* Estes autores contribuíram igualmente
Este artigo tem como objetivo apresentar um protocolo para preparar endossóis de reciclagem de células mamíferas usando ultracentrifugação gradiente de densidade de sacarose.
O tráfico endossomal é um processo celular essencial que regula uma ampla gama de eventos biológicos. As proteínas são internalizadas da membrana plasmática e depois transportadas para os endossómos iniciais. As proteínas internalizadas podem ser transitadas para o lysosome para degradação ou recicladas de volta à membrana plasmática. Uma via robusta de reciclagem endócítica é necessária para equilibrar a remoção de materiais de membrana da endocitose. Várias proteínas são relatadas para regular a via, incluindo o fator de ribossiation ADP 6 (ARF6). A ultracentrifugação gradiente de densidade é um método clássico para fracionamento celular. Após a centrifugação, organelas são sedimentadas em sua superfície isopécnica. As frações são coletadas e usadas para outras aplicações a jusante. Descrito aqui é um protocolo para obter uma fração contendo endosome de células de mamíferos transfectadas usando ultracentrifugação de gradiente de densidade. As frações isoladas foram submetidas à mancha ocidental padrão para analisar seu conteúdo proteico. Ao utilizar este método, identificamos que o direcionamento da membrana plasmática do engolfamento e da motilidade celular 1 (ELMO1), um substrato de toxina botulínica C3 relacionado a Ras 1 (Rac1) fator de troca de nucleotídeos de guanina, é através da reciclagem endocítica mediada por ARF6.
O tráfico endossomal é um processo fisiológico essencial que implica vários eventos biológicos1, por exemplo, o transporte de receptores de sinalização, canais de íons e moléculas de adesão. Proteínas localizadas na membrana plasmática são internalizadas por endocitose2. As proteínas internalizadas são então classificadas pelo endosommaprecoce 3. Algumas das proteínas são direcionadas para lisesomos para degradação4. No entanto, uma quantidade significativa de proteínas são recicladas de volta à superfície celular por processos de reciclagem rápidos e lentas. Na reciclagem ....
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1. Cultura e transfecção de células mamíferas
2. Colheita celular
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Após fracionar as células HEK293 não traduzidas por ultracentrifugação gradiente de densidade, 12 frações foram coletadas a partir do topo do gradiente. As frações colhidas foram diluídas com o tampão de diluição em uma razão de 1:1 e submetidas a uma segunda rodada de centrifugação. As amostras foram então submetidas a manchas ocidentais para análise de seu conteúdo proteico. Como mostrado na Figura 1,o marcador de reciclagem endosome Rab11 é detectado na fração 7
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O protocolo acima descreve os procedimentos para isolar a reciclagem de endossóis de células cultivadas por ultracentrifugação. A confiabilidade desse método foi demonstrada pela últimapublicação 22, comprovando que os endosários de reciclagem são isolados com sucesso de outras organelas (Figura 1),como o aparelho golgi e mitocôndrias. Alguns passos críticos precisam ser atentos para obter um bom resultado de separação. Ao preparar as soluções de sacar.......
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Os autores declaram que não têm conflitos de interesse com o conteúdo deste artigo.
Este trabalho foi apoiado por fundos do Research Grants Council Hong Kong, cuhk direct grant scheme, United College endowment fund, e tuyf Charitable Trust. Os números deste trabalho foram adaptados de nossa publicação anterior, "ARF6-Rac1- a propagação de neurite mediada por sinalização é potencializado pelo adaptador neuronal FE65 através da orquestração ARF6 e ELMO1" publicada no FASEB Journal em outubro de 2020.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
1 mL, Open-Top Thickwall Polypropylene Tube, 11 x 34 mm | Beckman Coulter | 347287 | |
100 mm tissue culture dish | SPL | 20100 | |
13.2 mL, Certified Free Open-Top Thinwall Ultra-Clear Tube, 14 x 89 mm | Beckman Coulter | C14277 | |
5x Sample Buffer | GenScript | MB01015 | |
cOmplete, EDTA-free Protease Inhibitor Cocktail | Roche | 11873580001 | |
COX IV (3E11) Rabbit mAb | Cell Signaling Technology | 4850S | Rabbit monoclonal antibody for detecting COX IV. |
Cycloheximide | Sigma-Aldrich | C1988 | |
Dounce Tissue Grinder, 7 mL | DWK Life Sciences | 357542 | |
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) with low glucose | HyClone | SH30021.01 | |
ELMO1 antibody (B-7) | Santa Cruz Biotechnology | SC-271519 | Mouse monoclonal antibody for detecting ELMO1. |
EndoFree Plasmid Maxi Kit | QIAGEN | 12362 | |
FE65 antibody (E-20) | Santa Cruz Biotechnology | SC-19751 | Goat polyclonal antibody for detecting FE65. |
Fetal Bovine Serum, Research Grade | HyClone | SV30160.03 | |
GAPDH Monoclonal Antibody (6C5) | Ambion | AM4300 | Mouse monoclonal antibody for detecting GAPDH. |
ImageLab Software | Bio-Rad | Measurement of band intensity | |
Imidazole | Sigma-Aldrich | I2399 | |
Lipofectamine 2000 Transfection Reagent | Invitrogen | 11668019 | |
Monoclonal Anti-β-COP antibody | Sigma | G6160 | Mouse monoclonal antibody for detecting β-COP. |
Myc-tag (9B11) mouse mAb | Cell Signaling Technology | 2276S | Mouse monoclonal antibody for detecting myc tagged proteins. |
OmniPur EDTA, Disodium Salt, Dihydrate | Calbiochem | 4010-OP | |
Optima L-100 XP | Beckman Coulter | 392050 | |
Optima MAX-TL | Beckman Coulter | A95761 | |
Opti-MEM I Reduced Serum Media | Gibco | 31985070 | |
PBS Tablets | Gibco | 18912014 | |
PhosSTOP | Roche | 4906845001 | |
RAB11A-Specific Polyclonal antibody | Proteintech | 20229-1-AP | Rabbit polyclonal antibody for detecting Rab11. |
Sucrose | Affymetrix | AAJ21931A4 | |
SW 41 Ti Swinging-Bucket Rotor | Beckman Coulter | 331362 | |
TLA-120.2 Fixed-Angle Rotor | Beckman Coulter | 362046 | |
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red | Gibco | 25300062 |
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