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Method Article
O presente protocolo descreve um modelo de roedores de lesão hipóxico-isquêmica de recém-nascidos para identificação precoce de alterações no tecido cerebral por morfologia macroscópica e ressonância magnética. Isso tem benefícios em relação aos modelos existentes, que podem ser usados para estudar lesões tardias, mas não permitem a avaliação de alterações precoces reprodutíveis.
A encefalopatia hipóxico-isquêmica (EHI) perinatal é uma doença aguda que pode acometer recém-nascidos, resultando em desfechos variáveis de neurodesenvolvimento a longo e curto prazo. O diagnóstico precoce é fundamental para identificar bebês que podem se beneficiar da intervenção; no entanto, o diagnóstico precoce depende muito de critérios clínicos. Nenhum teste molecular ou radiológico se mostrou promissor na detecção precoce de lesão cerebral. Estudos mostraram que a ressonância magnética (RM) pode mostrar alterações no fluxo sanguíneo/isquemia e distúrbios metabólicos. No entanto, todos eles têm sido usados para avaliar a fase secundária da doença (>12 h) após o início da lesão. O diagnóstico precoce é fundamental para iniciar rapidamente a hipotermia terapêutica em bebês elegíveis, que atualmente é recomendada para ser iniciada dentro de 6 horas após o nascimento. O modelo de lesão hipóxico-isquêmica em ratos foi desenvolvido em 1981 e foi validado e usado extensivamente para estudar mudanças na perfusão cerebral, marcadores de lesão cerebral e morfologia. No entanto, tem sido usado principalmente como um "modelo tardio", avaliando a lesão vários dias após o insulto isquêmico inicial. Sabe-se que o modelo tem baixa sensibilidade na avaliação de alterações cerebrais precoces confiáveis e reprodutíveis. O objetivo deste estudo foi desenvolver um modelo confiável para estudar marcadores morfológicos e radiológicos macroscópicos precoces de EHI usando coloração patológica e espectroscopia de ressonância magnética cerebral/ressonância magnética.
A encefalopatia hipóxico-isquêmica (EHI) é uma condição devastadora resultante de vários fatores em recém-nascidos1. A asfixia perinatal e/ou a interrupção do fluxo sanguíneo cerebral podem resultar em alterações isquêmicas focais ou globais no cérebro2. A taxa de ocorrência é de aproximadamente 1,6 em 1.000 nascidos vivos, mas pode chegar a 12,1 em 1.000 nascidos vivos em países em desenvolvimento3. Essa condição resulta em alta mortalidade (20% -50%), enquanto 25% dos que sobrevivem provavelmente sofrem de uma deficiência neural de longo prazo, como retardo mental, epilepsia ou paralisia cerebral4. A única intervenção terapêutica comprovadamente eficaz na lesão leve a moderada é a hipotermia terapêutica, que deve ser iniciada em até 6 h após o nascimento 5,6,7,8,9. Embora isso possa ajudar a prevenir as alterações metabólicas que levam à lesão secundária, também pode haver potencial para efeitos colaterais como hipotensão, trombocitopenia, tempo de coagulação prolongado, hemorragia intracraniana, disritmias, necrose gordurosa e desequilíbrio eletrolítico sérico 4,5. O diagnóstico precoce de EHI em bebês costuma ser difícil, pois os critérios são subjetivos e dependem muito dos achados do exame físico, que evoluem com o tempo. A ressonância magnética pode mostrar alterações reflexivas da lesão vários dias a semanas após a lesão. No entanto, alterações morfológicas na RM T1/T2 podem ser normais em até dois terços das encefalopatias moderadas, a categoria de bebês com maior probabilidade de se beneficiar da hipotermia terapêutica10. De acordo com relatos recentes, a espectroscopia de ressonância magnética (ERM) pode mostrar alterações precoces correlacionadas com a EHI neonatal11. No entanto, nenhuma padronização ou validação foi realizada até o momento.
Muitos investigadores confiam em modelos animais para avaliar possíveis intervenções diagnósticas ou terapêuticas para lesão cerebrovascular. O método mais utilizado para criar um infarto é a ligação da artéria cerebral média de roedores 12,13. Embora frequentemente usado para estudar o AVC isquêmico em adultos, isso é tecnicamente desafiador em roedores neonatais devido ao tamanho pequeno e à fragilidade dos filhotes na idade equivalente à doença do recém-nascido humano. Além disso, não representa as alterações isquêmicas cerebrais globais que provavelmente serão observadas na EHI. O Modelo14 de Rice-Vanucci de ligadura unilateral da artéria carótida em ratos tem sido usado desde a década de 1980 como um modelo de roedor de baixo custo para estudar lesão cerebral hipóxico-isquêmica. No entanto, há grande variabilidade nas alterações cerebrovasculares precoces e alta mortalidade em experimentos anteriores. A maioria dos estudos relata a lesão cerebral em alterações de longo prazo (ou seja, após 24 h da lesão), que são mais consistentes. Este estudo teve como objetivo desenvolver uma abordagem para avaliar precocemente (dentro de 6 h) alterações moleculares e radiológicas em um modelo de eIH em ratos. O protocolo foi elaborado para garantir a isquemia em idade precoce (equivalente a recém-nascido a termo) e aumentar a sobrevida dos filhotes, especialmente durante a exposição à hipóxia. A ressonância magnética/ressonância magnética foi usada para avaliar evidências radiológicas de fluxo alterado, alterações no tecido cerebral e alterações metabólicas dentro de 6 h após a lesão. Também foi realizada avaliação morfológica macroscópica das áreas de infarto. A validação adicional da reprodutibilidade foi realizada repetindo os experimentos em várias ninhadas.
Todos os procedimentos experimentais foram aprovados pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da Oklahoma Medical Research Foundation (OMRF) (protocolo IACUC # 17-17). Filhotes de ratos Sprague-Dawley fêmeas prenhes em E14 foram usados para o presente estudo. Os animais foram obtidos de uma fonte comercial (ver Tabela de Materiais).
1. Preparação animal
2. Ligadura da artéria carótida (NIC) para o grupo experimental HIE
3. Procedimento cirúrgico simulado para o grupo controle
4. Exposição à hipóxia para os grupos CAL e simulado
5. Ressonância magnética e espectroscopia
6. Análise do soro e do tecido cerebral
O presente protocolo para produzir e avaliar alterações cerebrais precoces após EHI foi de fácil implementação e permitiu a visualização patológica e radiológica macroscópica da lesão cerebral dentro de 6 h de insulto em filhotes de ratos em P10. O plano experimental é representado na Figura 1. Ambos os sexos foram analisados em conjunto, e 24 animais de cinco leitegadas foram examinados em cada grupo. A mortalidade animal foi muito baixa, com 9...
Um protocolo de pesquisa em filhotes de ratos recém-nascidos foi projetado com sucesso para visualizar e analisar marcadores precoces de lesão cerebral em EHI. Até o momento, faltam ferramentas de avaliação objetivas para detectar lesões cerebrais precoces na população de recém-nascidos. Após a lesão da HI, há uma fase (1-6 h) em que o comprometimento do metabolismo oxidativo cerebral tem o potencial de se recuperar parcialmente antes da falha da função mitocondrial
Não há conflitos de interesse para nenhum dos autores.
Agradecemos à equipe veterinária da Fundação de Pesquisa Médica de Oklahoma por sua experiência e assistência na modificação dos protocolos de cuidados com os animais.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.9% Normal saline | Fisher Scientific | Z1376 | |
2,3,5-triphenyltetrazolium chloride (TTC) | Millipore Sigma | T8877 | |
Abdominal pneumatic pillow | SA Instruments, Inc., Stony Brook, NY | ||
Absorbent Underpads with Waterproof Moisture Barrier, 58.4 x 91.4 cm, 680 mL | Fisher Scientific | 501060566 | |
BD 30 G Needle and syringe | Fisher Scientific | Catalog No.14-826-10 | |
Biospec 7.0 Tesla/30 cm horizontal-bore magnet small animal imaging system | Bruker Biospin, Ettlingen, Germany | ||
Buprenorphine | Provided by veterenary medicine | ||
Compact Thermometer with Probe | Fisher Scientific | S01549 | |
Gas mixture 92% nitrogen 8% oxygen | Airgas | ||
Head surface coil | Bruker BioSpin MRI Gmbh, Ettlingen, Germany | ||
Isoflurane gas | Provided by veterenary medicine | ||
Isotemp Immersion Circulator 2100 | Fisher Scientific | Discontinued | Immersed in water bath chamber with continous flowing water via tubing |
Lead Ring Flask Weights | VWR | 29700-060 | Water bath weights to ensure rodent chamber stays submerged in water bath |
Mathematica Software | Wolfram Research, Champaign, IL, USA | version 6.0 | |
Pedialyte Electrolyte Solution, Hydration Drink, 1 Liter, Unflavored | Pedialyte | Obtained from CVS | |
Phosphate-buffered saline (DPBS, 1X), Dulbecco's formula | Millipore Sigma | J67670.AP | |
Plastic clear bucket | We used an old rodent housing cage- this is a good alternative: Cambro 182615CW135 Camwear Food Storage Box, 18" X 26" X 15", Model #:182615CW135 | ||
Plexiglass Rodent Restraint Chamber | Pedialyte/CVS | Vetinary medicine provided a small chamber used to restrain rodents. Approximately 6x4x4 inches | |
Pregnant Sprague Dawley rats at E14 | Charles River | Strain Code 400 | |
Purdue Products Betadine Swabsticks | Fisher Scientific | 19-061617 | |
Quadrature volume coil (72-mm inner diameter) | Bruker BioSpin MRI Gmbh, Ettlingen, Germany | ||
Stoelting Silk Suture | Fisher Scientific | Catalog No.10-000-656 | |
Vicryl 5-0 suture | Fisher Scientific | NC1985424 |
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