Formulação e caracterização de agentes bioativos contendo nanodiscos

Resumo

Aqui, descrevemos a produção e caracterização de agentes bioativos contendo nanodiscos. Os nanodiscos de anfotericina B são tomados como exemplo para descrever o protocolo de forma escalonada.

Resumo

O termo nanodisco refere-se a um tipo discreto de nanopartícula composto por uma bicamada formando lipídio, uma proteína de andaime e um agente bioativo integrado. Os nanodiscos são organizados como uma bicamada lipídica em forma de disco cujo perímetro é circunscrito pela proteína do andaime, geralmente um membro da família das apolipoproteínas trocáveis. Numerosos agentes bioativos hidrofóbicos têm sido eficientemente solubilizados em nanodiscos por sua integração no meio hidrofóbico da bicamada lipídica da partícula, produzindo uma população amplamente homogênea de partículas na faixa de 10-20 nm de diâmetro. A formulação de nanodiscos requer uma proporção precisa de componentes individuais, uma adição sequencial apropriada de cada componente, seguida de sonicação em banho da mistura de formulação. A proteína do arcabouço anfipático entra em contato espontaneamente e reorganiza a bicamada dispersa formando mistura lipídico/agente bioativo para formar uma população discreta e homogênea de partículas de nanodisco. Durante esse processo, a mistura de reação faz a transição de uma aparência opaca e turva para uma amostra clarificada que, quando totalmente otimizada, não produz precipitado após a centrifugação. Estudos de caracterização envolvem a determinação da eficiência de solubilização de agentes bioativos, microscopia eletrônica, cromatografia de filtração em gel, espectroscopia de absorbância no ultravioleta visível (UV/Vis) e/ou espectroscopia de fluorescência. Isto é normalmente seguido por uma investigação da actividade biológica utilizando células cultivadas ou ratinhos. No caso de nanodiscos que abrigam um antibiótico (isto é, o antibiótico polieno macrolídeo anfotericina B), sua capacidade de inibir o crescimento de leveduras ou fungos em função da concentração ou do tempo pode ser medida. A relativa facilidade de formulação, versatilidade em relação às partes componentes, tamanho de partícula em nanoescala, estabilidade inerente e solubilidade aquosa permitem inúmeras aplicações in vitro e in vivo da tecnologia de nanodiscos. No presente artigo, descrevemos uma metodologia geral para formulação e caracterização de nanodiscos contendo anfotericina B como agente bioativo hidrofóbico.

Introdução

As lipoproteínas discoidais nascentes de alta densidade (HDLs) são progenitores naturais da HDL esférica muito mais abundante presente no sistema circulatório humano. Essas partículas nascentes, também chamadas de HDL pré-ß, possuem propriedades estruturais únicas e distintas¹. De fato, em vez de existir como uma partícula esferoidal, as HDLs nascentes são em forma de disco. Extensos estudos de caracterização estrutural das HDLs discoidais naturais e reconstituídas têm revelado que elas são compostas por uma bicamada fosfolipídica cujo perímetro é circunscrito por uma apolipoproteína anfipática trocável (apo), como a apoA-I. No metabolismo das lipoproteínas humanas, as HDLs nascentes circulantes acumulam lipídios das células periféricas e amadurecem em HDLs esféricas em um processo que é dependente de mediadores proteicos chave, incluindo o transportador de de ligação de ATP A1 e lecitina:colesterol aciltransferse². Esse processo representa um componente crítico da via de transporte reverso do colesterol, considerada protetora contra doenças cardíacas. Munidos desse conhecimento e da capacidade de reconstituir HDLs discoidais, pesquisadores têm empregado essas partículas como intervenção terapêutica no tratamento da aterosclerose3. Em essência, a infusão de HDL reconstituído (rHDL) em pacientes promove o efluxo de colesterol dos depósitos de placa e o devolve ao fígado para conversão em ácidos biliares e excreção do corpo. Várias empresas biotecnológicas/farmacêuticas estão adotando essa estratégia de tratamento⁴.

Ao mesmo tempo, a capacidade de gerar essas partículas em laboratório desencadeou uma enxurrada de atividades de pesquisa que levaram a novas aplicações e novas tecnologias. Uma aplicação proeminente envolve o uso de partículas de rHDL como membrana em miniatura para abrigar proteínas transmembrana em um ambiente nativo⁵. Até o momento, centenas de proteínas foram incorporadas com sucesso no rHDL discoidal, e a pesquisa demonstrou que essas proteínas retêm tanto a conformação nativa quanto a atividade biológica como receptores, enzimas, transportadores, etc. Essas partículas, denominadas "nanodiscos", também têm se mostrado passíveis de caracterização estrutural, muitas vezes em alta resolução⁶. Essa abordagem para investigações de proteínas transmembrana é reconhecida como superior aos estudos com micelas ou lipossomas em detergente e, como resultado, está avançando rapidamente. É importante reconhecer que dois métodos distintos têm sido relatados que são capazes de formar uma rHDL. O método de "diálise por colato"¹³ é popular para aplicações relacionadas à incorporação de proteínas transmembrana na bicamada rHDL⁵. Essencialmente, este método de formulação envolve a mistura de uma bicamada formando fosfolipídio, uma proteína de andaime e a proteína transmembrana de interesse em um tampão contendo o detergente colato de sódio (ou desoxicolato de sódio; peso molecular da micela [PM] de 4.200 Da). O detergente solubiliza eficazmente os diferentes componentes da reação, permitindo que a amostra seja dialisada contra tampão sem detergente. Durante a etapa de diálise, à medida que o detergente é retirado da amostra, forma-se espontaneamente um HDLr. Quando essa abordagem é usada para aprisionar uma proteína transmembrana de interesse, as partículas do produto têm sido denominadas nanodiscos⁵. Tentativas de usar esse método para incorporar agentes bioativos hidrofóbicos de pequenas moléculas (MW <1.000 Da), no entanto, têm sido em grande parte malsucedidas. Ao contrário das proteínas transmembrana, os agentes bioativos de pequenas moléculas são capazes de escapar da bolsa de diálise junto com o detergente, diminuindo consideravelmente sua eficiência de incorporação nas rHDLs. Esse problema foi resolvido com a omissão de detergentes da mistura da formulação¹⁴. Em vez disso, os componentes são adicionados a um tampão aquoso sequencialmente, começando com a bicamada formando lipídio, formando um agente bioativo estável contendo rHDL, referido como um nanodisco. Outros utilizaram a rHDL para incorporação e transporte de imagiologia in vivo ⁷. Mais recentemente, a rHDL especializada composta por um arcabouço apolipoprotéico e o glicerofosfolipídeo aniônico, cardiolipina, tem sido empregada em estudos de ligação de ligantes. Essas partículas fornecem uma plataforma para estudos da interação da cardiolipina com vários ligantes solúveis em água, incluindo cálcio, citocromo c e o agente anticâncer doxorrubicina⁸.

O foco do presente estudo está na formulação de rHDL que possuam um agente bioativo hidrofóbico incorporado de forma estável (i.e. nanodisco). A capacidade desses agentes de se integrarem ao meio lipídico das partículas de rHDL discoidal lhes confere solubilidade aquosa. Como tal, os nanodiscos têm potencial para aplicações terapêuticas in vivo . Ao formular nanodiscos, condições específicas de incubação/reação são necessárias para incorporar com sucesso agentes bioativos hidrofóbicos discretos na partícula do produto, e o objetivo deste relatório é fornecer informações práticas detalhadas que podem ser usadas como um modelo fundamental para a criação de novas partículas de nanodiscos para aplicações específicas. Assim, no contexto deste manuscrito os termos nanodisco e nanodisco não são intercambiáveis. Enquanto nanodisco refere-se a um rHDL formulado para conter uma proteína transmembrana embutida em sua bicamada lipídica⁵, o termo nanodisco refere-se a um rHDL formulado para incorporar agentes bioativos hidrofóbicos de baixo peso molecular (< 1.000 Da), como a anfotericina B¹⁴.

Uma variedade de métodos está disponível para a aquisição de proteínas adequadas do arcabouço. É possível comprar proteínas de andaimes de fabricantes [por exemplo, apoA-I (SRP4693) ou apoE4 (A3234)], no entanto, o custo pode ser um fator limitante. Uma abordagem preferida é expressar proteínas recombinantes do arcabouço em Escherichia coli. São publicados protocolos para apoA-I⁹, apoE4¹⁰ e apolipoforina-III humana e para a proteína de hemolinfa de insetos apolipoforina-III11. Para os experimentos aqui descritos, foi utilizado o domínio N-terminal (NT) humano recombinante da apoE4 (aminoácidos 1-183). A sequência de nucleotídeos que codifica apoE4-NT humana foi sintetizada e inserida em um vetor de expressão pET-22b (+) diretamente adjacente à sequência líder pelB codificada vetorialmente. Este construto leva à expressão de uma proteína de fusão da sequência líder da pelB-apoE4-NT. Após a síntese proteica, a sequência líder da pelB bacteriana direciona a proteína recém-sintetizada para o espaço periplasmático, onde a peptidase líder cliva a sequência da pelB. A proteína apoE4-NT resultante, sem tags de sequência ou caudas, posteriormente escapa da bactéria e se acumula no meio de cultura^11,12, simplificando o processamento a jusante.

Protocolo

1. Transformação, expressão e purificação do componente proteico do andaime

1. Transformação bacteriana BL21 com apoE4-NT contendo plasmídeo
   1. Descongelar um tubo de células competentes BL21 (DE3) no gelo por 10 min.
   2. Depois que todo o gelo derreter, misture suave e cuidadosamente pipetar 50 μL das células em um tubo de transformação sobre gelo.
   3. Adicionar 5 μL contendo 50 ng de ADN plasmidial (para sequência, ver quadro suplementar 1) à mistura celular. Agite cuidadosamente o tubo quatro ou cinco vezes para misturar. Não vórtice.
   4. Coloque a mistura no gelo por 30 min.
   5. Choque térmico da mistura exatamente a 42 °C por 10 s.
   6. Coloque no gelo por 5 min.
   7. Pipetar 950 μL de meio S.O.C. para o tubo à temperatura ambiente.
   8. Coloque o tubo em uma incubadora de agitação de 37 °C por 60 min com oscilação regulada para 250 rpm.
   9. Misture bem as células agitando e invertendo, depois espalhe 100 μL de solução celular em uma placa de seleção de 20 mL de Caldo Luria + Agar tratada com ampicilina na concentração de 0,1 mg/mL.
   10. Incubar durante a noite a 37 °C, ou até que as colónias visíveis tenham crescido.
2. Usando um pipetador eletrônico, transferir 25 mL de meio NZCYM estéril para um balão cônico estéril de 250 mL à temperatura ambiente e adicionar ampicilina a uma concentração final de trabalho de 0,1 mg/mL.
3. Usando uma alça de inoculação estéril, transferir uma colônia individual da placa de seleção contendo a cepa bacteriana adequadamente transformada e adicionar diretamente ao frasco contendo 25 mL de meio NZCYM + ampicilina.
4. Colocar os 25 mL do frasco de cultura de sementes NZCYM em uma incubadora de agitação de 37 °C com oscilação orbital regulada para 250 rpm.
   NOTA: Recomenda-se que esta cultura de sementes seja cultivada durante a noite para atingir uma concentração bacteriana adequada (~1,5-2,0 unidades de densidade óptica), medida usando um espectrofotômetro ajustado para comprimento de onda = 600 nm.
5. Transferir 250 mL de meio NZCYM estéril para quatro frascos defletores de 1 L e adicionar antibiótico ampicilina a uma concentração de trabalho de 0,1 mg/mL.
6. Em condições estéreis, transferir 5 mL de cultura de sementes saturadas para cada um dos quatro frascos contendo 250 mL de cultura e colocar em uma incubadora de agitação de 37 °C com oscilação orbital regulada para 250 rpm.
   NOTA: Neste ponto, a cultura será referida como uma cultura de expansão e o crescimento exponencial será monitorado usando um espectrofotômetro UV1800. O crescimento é permitido até que a densidade óptica de cultura a 600 nm (OD₆₀₀) atinja um valor entre 0,6-0,8.
7. Uma vez que a cultura de expansão tenha atingido o valor desejado de OD₆₀₀ de 0,6-0,8, adicionar 59,6 mg de isopropil β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) a cada 250 ml de cultura contendo frasco para uma concentração final de 1 mM para induzir a expressão proteica. Nesse ponto, a cultura de expansão é referida como a expressão cultura. Iniciar expressão por um período de 5 h.
8. Ao final do período de expressão de 5 h, retirar os quatro frascos da incubadora de agitação e pipetar 125 mL em seis frascos de centrífuga de 250 ml (total de 750 mL).
9. Equilibre cada frasco de centrífuga para garantir que a massa total esteja dentro de ±0,5 mg um do outro.
   NOTA: Esta etapa é essencial para garantir a operação segura do dispositivo centrífugo.
10. Prepare o dispositivo centrífugo primeiro virando o interruptor de alimentação para a posição ligada. Clique no botão "Set/Actual" e ajuste os parâmetros para "JA-14", "9,400 x g", 20,00 min e 4 °C usando os mostradores correspondentes.
11. Coloque as seis garrafas de centrífuga balanceadas em um rotor centrífugo de tamanho adequado e coloque na centrífuga, garantindo que todos os parâmetros de segurança específicos sejam seguidos.
    NOTA: Continue esta etapa até que toda a cultura de células bacterianas tenha sido centrifugada e sobrenadantes coletados.
12. Filtrar o sobrenadante bacteriano isolado através de um filtração a vácuo ou de um aparelho equivalente equipado com um filtro de 0,45 mícrons para remover quaisquer detritos residuais.
13. Purificação da heparina da proteína do arcabouço apoE4-NT recombinante
    NOTA: O procedimento de purificação da coluna é realizado à temperatura ambiente.
    1. Equilibrar a coluna de heparina Hi-trap aplicando 10 volumes de coluna (50 mL) de tampão fosfato de sódio 10 mM, pH 7,2, e eluír a uma taxa de 5 mL/min.
    2. Aplicar o meio enriquecido com apoE4-NT na coluna a uma taxa de 2,5 mL/min até que todo o volume de 1 L de meio tenha sido aplicado e descartar o fluxo.
    3. Lavar a coluna com 10 volumes de coluna (50 mL) de tampão fosfato de sódio 10 mM, pH 7,2, e descartar o fluxo.
    4. Eluir a proteína apoE4-NT desejada aplicando três volumes de coluna (15 mL) de tampão de eluição (tampão fosfato de sódio 10 mM + NaCl 1,5 M, pH 7,2) na coluna e coletar o eluato.
14. Diálise do eluato de apoE4-NT
    1. Preparar uma seção de tubulação de diálise (as dimensões da tubulação de diálise usadas foram 22 cm de comprimento, 12 mm de diâmetro interno e 10.000 MWCO) de molho em água destilada deionizada (ddi) por 10 min.
    2. Preparar 1 L de solução salina tamponada com fosfato (PBS) (fosfato de sódio 10 mM + NaCl 150 mM, pH 7,2) num copo de plástico de 1 L ou equivalente.
    3. Usando uma braçadeira de tubo de diálise, prenda uma extremidade da tubulação de diálise encharcada, garantindo que a pinça esteja presa e nenhum líquido possa escapar.
    4. Insira um funil de pescoço estreito na extremidade aberta do tubo de diálise e despeje os 15 mL de eluato de apoE4-NT no tubo de diálise.
       NOTA: É imprescindível verificar se há vazamentos nesta etapa.
    5. Retire o funil e prenda a extremidade do tubo de diálise com outra pinça do tubo de diálise.
    6. Coloque um flutuador de diálise de espuma em uma das extremidades seladas do tubo de diálise e coloque o tubo de diálise montado no copo contendo 1 L de tampão PBS.
    7. Coloque uma barra de agitação magnética no fundo do copo e ajuste o controle de agitação para "baixo", garantindo que um vórtice não seja formado.
    8. Após a conclusão da diálise, decantar o retentado em um tubo cônico de 50 mL e armazenar a -20 °C.
       NOTA: Recomenda-se que esta diálise seja realizada a 4 °C durante a noite.

2. Formulação de agente bioativo contendo nanodiscos

1. Preparação de alíquota fosfolipídica
   1. Pesar 5 mg de um fosfolipídeo apropriado (por exemplo, dimiristoilfosfatidilcolina [DMPC]) e transferir para um tubo de ensaio de vidro.
   2. Dissolver os 5 mg de fosfolipídeo adicionando 300 μL de CHCl 3 e 100 μL de CH 3 OH para umaproporção total de₃:1 v/v.
   3. Evaporar o solvente orgânico colocando o tubo de ensaio de vidro sob uma corrente suave de gás N₂ por 10-15 min, de modo que uma fina película de fosfolipídio seco se forme ao longo das paredes da porção inferior do tubo.
2. Liofilização de alíquotas fosfolipídicas
   1. Preparar alíquotas fosfolipídicas para liofilização cobrindo a abertura do tubo de ensaio de vidro com parafilme.
   2. Perfurar o parafilme usando uma agulha 24G aproximadamente 10-15 vezes.
   3. Coloque as alíquotas perfuradas em um recipiente de liofilização apropriado e verifique se a tampa de borracha está selada corretamente.
   4. Conecte o recipiente de liofilização ao coletor de vácuo localizado na parte superior da máquina de liofilização e certifique-se de que todas as outras válvulas estejam bem fechadas.
   5. Ligue a máquina de liofilização acionando o botão liga/desliga e pressionando o botão de inicialização a vácuo.
   6. Depois que o sistema atingir o vácuo total, clique no botão de inicialização da refrigeração para iniciar o processo de liofilização.
      NOTA: Recomenda-se que as amostras sejam deixadas liofilizar durante a noite.
3. Formulação de nanodiscos de anfotericina B (amp-B)
   1. Pipetar 0,45 mL de PBS para a alíquota fosfolipídica liofilizada e vórtice por ~30 s para dispersar o lipídio.
      NOTA: A amostra resultante aparecerá opaca e turva.
   2. Pipetar 50 μL de uma solução-mãe ampB de 20 mg/mL (20 mg de ampB dissolvido em 1 mL de dimetilsulfóxido [DMSO], armazenado a -20 °C em um recipiente âmbar fechado) para a amostra de fosfolipídios dispersa e vórtice.
      NOTA: Ao selecionar um solvente a ser usado na preparação de uma solução-estoque do agente bioativo hidrofóbico, as duas considerações gerais são 1) a solubilidade do agente bioativo e 2) a miscibilidade do solvente com o tampão aquoso usado na formulação. Enquanto o DMSO é frequentemente utilizado 15,16,17,18,19, a dimetilformamida ^20,21 ou o tetraidrofurano 22 também têm sido empregados com sucesso ²³.
   3. Pipetar 0,5 mL de proteína do arcabouço apoE4-NT (concentração de ~4 mg/mL) para o tubo de ensaio de vidro contendo o fosfolipídeo disperso e ampB. O volume final da amostra deve ser de aproximadamente 1 mL.
   4. Banho sonicar a amostra a 24 °C até que a solução se esclareça (geralmente 10-15 min).
4. Centrifugação em nanodiscos
   1. Transfira a solução clarificada de nanodisco de ampB para um tubo de microcentrífuga estéril de 1,7 mL.
   2. Coloque o tubo em um rotor de microcentrífuga de mesa com a adição de um tubo de equilíbrio colocado diretamente em frente.
   3. Aperte a tampa do rotor e feche a tampa da centrífuga.
   4. Programe a centrífuga para girar por 10 min a ~11.000 x g usando os mostradores correspondentes localizados na parte frontal da unidade de microcentrífuga.
      NOTA: Neste ponto, uma pastilha pode estar visível. Este pellet consiste em fosfolipídio não incorporado e/ou ampB.
   5. Retire o sobrenadante e transfira-o para outro tubo microcentrífugo limpo de 1,7 mL.
5. Diálise de amostra de nanodisco ampB
   1. Preparar uma seção de tubo de diálise (as dimensões da tubulação de diálise usadas foram 3 cm de comprimento, 16 mm de diâmetro interno e 10.000 MWCO) imersão completa em água ddi por 10 min.
   2. Preparar uma solução tampão PBS de 1 L (fosfato de sódio 10 mM + NaCl 150 mM, pH 7,2) num copo de plástico de 1 L ou equivalente.
   3. Usando uma braçadeira de tubo de diálise, prenda uma extremidade da tubulação de diálise encharcada, garantindo que a pinça esteja presa e nenhum líquido possa escapar.
   4. Insira um funil de pescoço estreito na extremidade aberta do tubo de diálise e transfira a amostra de nanodisco de ampB para o tubo de diálise.
   5. Retire o funil e prenda a extremidade do tubo de diálise com outra pinça do tubo de diálise.
   6. Coloque um flutuador de diálise de espuma em uma das extremidades seladas do tubo de diálise e coloque o tubo de diálise montado no copo contendo o 1 L de tampão PBS.
   7. Coloque uma barra de agitação magnética no fundo do copo e ajuste o controle de agitação para "baixo", garantindo que um vórtice não seja formado. Permitir que a diálise continue durante a noite a 4 °C.

3. Análise espectral de amostras de nanodiscos ampB

1. Inicialização do espectrofotômetro seguida de auto blank
   1. Ligue o espectrofotômetro acionando o botão liga/desliga e conecte-se a um computador de suporte correspondente pressionando o botão "PC Control".
   2. No computador de suporte, abra o software rotulado "UVProbe 2.61" e conecte-se ao espectrofotômetro clicando no botão "Conectar" no canto inferior esquerdo.
   3. Clique no botão Spectrum na barra de ferramentas superior dentro do software UVProbe.
   4. Clique no botão denominado Método na barra de ferramentas superior.
   5. Clique na guia Medição e insira "500" na caixa de texto Iniciar localizada em "Faixa de comprimento de onda (nm)" e "300" na caixa de texto "Fim".
   6. Clique no menu suspenso ao lado da guia chamada Velocidade de varredura e defina-a como Média.
   7. Preparar uma amostra em branco transferindo 1 ml de DMSO para duas cubetas de quartzo (QS 1.000).
   8. Carregue ambas as cubetas nas respectivas portas de amostra do espectrofotômetro, clique em Autoblank e registre um espectro de 300 a 500 nm clicando em Iniciar no canto inferior esquerdo.
2. Preparação e análise espectral do padrão ampB
   1. Preparar 20 μg/ml ampB padrão retirando a cubeta da porta frontal da amostra e adicionando 20 μL de uma solução-mãe de 1 mg/ml ampB (20 μg de ampB total).
   2. Coloque a cubeta de volta na porta de amostra do espectrofotômetro e clique em Iniciar para registrar a absorbância da amostra.
   3. Retire a cubeta da porta de amostra e decante o conteúdo líquido para um recipiente de resíduos devidamente rotulado.
   4. Enxaguar bem a cubeta com três lavagens de água deionizada seguidas de três lavagens com etanol 70%.
3. Preparação e análise espectral de amostra de nanodisco ampB-rompida
   1. Preparar uma amostra de nanodisco ampB-rompido (contendo 20 μg/mL como ampB) pipetando 20 μL de um estoque de nanodisco ampB-nanodisco de 1 mg/mL em 1 mL de DMSO. Incubar por pelo menos 1 min antes de registrar o espectro.
   2. Coloque a cubeta na porta frontal da amostra do espectrofotômetro e clique em Iniciar para registrar a absorvância da amostra.
4. Preparação e análise espectral de um tampão PBS em branco
   1. Prepare um tampão PBS em branco transferindo 1 mL de tampão PBS para duas cubetas de quartzo (QS 1.000).
   2. Carregue as cubetas nas respectivas portas de amostra do espectrofotômetro, clique em Autoblank e registre o espectro de 300-500 nm.
5. Preparação e análise espectral de uma amostra de nanodisco ampB, não perturbada
   1. Preparar uma amostra de nanodisco de ampB, sem interrupções (contendo 20 μg/mL como ampB), removendo a cubeta da porta frontal da amostra e introduzindo 20 μL de uma amostra de nanodisco ampB-1 mg/mL no tampão PBS.
   2. Coloque a cubeta de volta na porta de amostra do espectrofotômetro, clique em Iniciar e registre o espectro da amostra.
      NOTA: Todos os resíduos químicos devem ser descartados em um recipiente de resíduos devidamente rotulado seguindo as diretrizes aceitas.

4. Análise do ensaio de viabilidade de leveduras

NOTA: Ensaios de viabilidade de leveduras foram realizados com o objetivo de avaliar a atividade biológica de ampB e determinar se o processo de formulação ou incorporação em nanodiscos, afetou sua atividade de inibição do crescimento de leveduras.

1. Formular duas amostras de ampB-nanodisco (volume final = 1 mL) para conter 1 mg de ampB por 5 mg de DMPC e 0,1 mg de ampB por 5 mg de DMPC seguindo o método descrito anteriormente (2.3-2.4.1).
   NOTA: Para fazer um ampB de 1 mg/mL e 0,1 mg/mL por 5 mg de DMPC, pipetar 50 μL e 5 μL, respectivamente, de um estoque de 20 mg/mL ampB em DMSO em cada frasco para injetáveis de amostra.
2. Preparo de uma cultura de levedura saturada
   1. Transfira 25 mL de extrato de levedura-peptona-dextrose estéril (YPD) em um tubo cônico estéril de 50 mL.
   2. Use uma alça de inoculação estéril para transferir uma única colônia de Saccharomyces cerevisiae (BY4741) para os 25 mL de meio YPD.
   3. Cultivar a levedura em estufa de agitação regulada a 30 °C, com oscilação regulada para 200 rpm por 18 h.
3. Preparação de amostras individuais de ensaio de inibição do crescimento
   1. Transferir 5 mL de meio YPD estéril para 30 tubos de cultura estéreis de 13 mL.
   2. Tratar três conjuntos de tubos de cultura adicionando 20, 10 e 5 μL da amostra de 1 mg/mL de ampB-nanodisco, representando 20, 10 e 5 μg de ampB, respectivamente.
   3. Tratar três conjuntos de tubos de cultura adicionando 20, 10 e 5 μl da amostra de nanodisco ampB-0,1 mg/mL, representando 2, 1 e 0,5 μg de ampB, respectivamente.
   4. Tratar quatro conjuntos de tubos de cultura adicionando 20 μL de PBS, DMSO, rHDL de controle (sem ampB), ou 20 μg de ampB em DMSO.
      Observação : cada conjunto de tubos de cultura representa uma réplica independente. Portanto, seguir esse método resulta em um valor n global de n = 3.
4. Inicialização do ensaio de viabilidade de levedura
   1. Iniciar o experimento inoculando cada amostra com 100 μL (2% vol/vol) da cultura de levedura saturada
   2. Cultivar a levedura em estufa de agitação regulada para 30 °C, com oscilação regulada para 200 rpm por no máximo 18 h.
5. Medidas de viabilidade de leveduras
   1. Ligue o espectrofotômetro girando o botão liga/desliga e, em seguida, clique no botão rotulado Ir para WL e defina o valor como 600 nm.
   2. Transfira 1 mL de meio YPD estéril para duas cubetas plásticas, carregue nas respectivas portas de amostra no espectrofotômetro e clique em Autoblank.
   3. Transfira 1 mL de cada amostra para uma cubeta de plástico, certificando-se de trocar as cubetas de cada vez e carregue a cubeta na porta frontal da amostra do espectrofotômetro.
   4. Meça e registre a densidade óptica de cada amostra a 600 nm e descarte cada cubeta gasta em um recipiente de resíduos de risco biológico devidamente rotulado.

Resultados

Processo de formulação de nanodiscos de agentes bioativos
No procedimento de formulação de ampB-nanodisco descrito, a reação é considerada completa quando a aparência da amostra transita de turva para clara (Figura 1). Essa alteração indica que nanodiscos se formaram e que o agente bioativo foi solubilizado. Muitas vezes, os agentes bioativos absorvem luz na região do comprimento de onda visível (por exemplo, ampB, curcumina, luteína, coenzima Q₁₀)...

Discussão

A formulação de um agente bioativo contendo nanodiscos fornece um método conveniente para solubilizar compostos hidrofóbicos insolúveis. Como os nanodiscos do agente bioativo do produto são totalmente solúveis em meio aquoso, eles fornecem um método de liberação útil para uma ampla gama de moléculas hidrofóbicas (Tabela 1). Estes incluem pequenas moléculas, drogas naturais e sintéticas, fitonutrientes, hormônios, etc. A estratégia de formulação geralmente segue um protocolo padrão que...

Materiais

Name	Company	Catalog Number	Comments
Amphotericin B	Cayman Chemical Company	11636	ND Formulation & Standard Preparation
Ampicillin	Fisher Scientific	BP17925	Transformation & Expansion
ApoE4-NT Plasmid	GenScript	N/A	Transformation
Baffled Flask	New Brunswick Scientific	N/A	Expansion & Expression
BL21 competent E coli	New England Biolabs	C2527I	Transformation
Centrifuge bottles	Nalgene	3140-0250	Expression
Chloroform	Fisher Scientific	G607-4	ND Formulation
DMSO	Sigma Aldrich	472301	Standard Prepartation
Dymyristoylphosphatidylcholine	Avanti Lipids	850345P	ND Formulation
Erlenmeyer flask	Bellco Biotechnology	N/A	Expansion & Expression
Falcon Tubes	Sarstedt Ag & Co	D51588	Yeast Viability Assay
Glass borosilicate tubes	VWR	47729-570	ND Formulation
GraphPad (Software)	Dotmatics	N/A	Yeast Viability Assay
Heated Sonication Bath	VWR	N/A	ND Formulaton
Heating and Nitrogen module	Thermo Scientific	TS-18822	ND Formulation
HiTrap Heparin HP (5 mL)	GE Healthcare	17-0407-03	Purification
Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside	Fisher Scientific	BP1755	Expression
J-25 Centrifuge	Beckman Coulter	J325-IM-2	Expression
JA-14 Rotor	Beckman Coulter	339247	Expression
Lyophilizer	Labconco	7755030	ND Formulation
Methanol	Fisher Scientific	A452-4	ND Formulation
Nitrogen gas	Praxair	UN1066	ND Formulation
NZCYM media	RPI Research Products	N7200-1000.0	Expansion & Expression
Pet-22B vector	GenScript	N/A	Transformation
Petri dish	Fisher Scientific	FB0875718	Transformation & Expansion
Quartz Cuvettes	Fisher Brand	14385 928A	Spectral Analysis
Shaking Incubator	New Brunswick Scientific	M1344-0004	Transformation, Expansion, & Expression
Slide-A-Lyzer Buoys	Thermo Scientific	66430	Purification
SnakeSkin Dialysis Tubing	Thermo Scientific	68100	Purification
SnakeSkin Dialysis Tubing	Thermo Scientific	88243	Purification
Sodium Chloride	Fisher Scientific	S271	Purification
Sodium Phosphate dibasic	Fisher Scientific	S374-500	Purification
Sodium Phosphate monobasic	Fisher Scientific	BP329-500	Purification
Spectra/POR Weighted Closures	Spectrum Medical Industries	132736	Purification
Spectrophotometer	Shimadzu UV-1800	220-92961-01	spectral analysis
Tabletop Centrifuge	Beckman Coulter	366816	ND Formulation
UVProbe 2.61 (Software)	Shimadzu	N/A	Spectral Analysis
Vacuum filter	Millipore	9004-70-0	Expression & Purification
Vacuum pump	GAST Manufacturing Inc	DOA-P704-AA	Expression & Purification
Vortex	Fisher Scientific	12-812	ND Formulation
Yeast	N/A	BY4741	Yeast Viability Assay
Yeast Extract-Peptone-Dextrose	BD	242820	Yeast Viability Assay