JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

В этой статье описывается метод для маркировки эмбрионального тимуса кожи и кровеносных сосудов.

Аннотация

Создание функциональной сети кровеносных сосудов является неотъемлемой частью органогенеза, и необходим для оптимального функционирования органа. Например, в тимусе правильного формирования сосудистой и структурирование имеет важное значение для тимоцитов вступления в органе и зрелых Т-клеток с выходом на периферию. Пространственное расположение кровеносных сосудов в вилочковой железе зависит от сигналов от местных микросреды, а именно эпителиальных клеток тимуса (TEC). Некоторые недавние сообщения предполагают, что нарушение этих сигналов приводит к тимус 1,2 кровеносного сосуда дефектов. Предыдущие исследования описаны методы, используемые для обозначения новорожденных и взрослых тимуса сосудистой 1,2. Мы демонстрируем здесь технику для маркировки кровеносных сосудов в эмбриональный тимус. Этот метод сочетает в себе использование FITC-декстран или Griffonia (Bandeiraea) Simplicifolia Лектин I (GSL 1 - isolectin B 4) лица инъекции вену и CD31 антител окрашивания для выявления сосудистых структур тимуса и PDGFR-β для обозначения тимуса периваскулярных мезенхимы 3-5. Возможность использования cryosections или vibratome разделы также предоставляется. Этот протокол может быть использован для идентификации тимуса сосудистых дефектов, которое имеет решающее значение для определения роли TEC полученных молекул в тимусе образование кровеносных сосудов. Как метод этикетках всей сосудистой сети, он также может быть использована для анализа сосудистой сети в различных органах и тканях по всему эмбриона в том числе кожи и сердца 6-10.

протокол

1. Fluorescein помечены декстрана и GSL I-isolectin B 4 лица инъекции вену для обозначения эмбрионального сосудистую

  1. Подготовка FITC-декстрана (50ug/mL) в фосфатно-солевым буфером (PBS) или GSL 1 - isolectin B 4 (20ug/200uL) в PBS в 1,5 мл пробирку Эппендорфа и теплой до 37 ° C. Добавить 100 мкл акций 1,25 мм Быстрый зеленый / PBS для FITC-декстран решение (общий объем 1 мл) и 180uL акций 1,25 мм Быстрый зеленый / PBS, чтобы GSL 1 - isolectin B 4 (всего 200uL объем), так что решение заметно синий.
  2. Рассеките E14.5-E18.5 эмбриона и желточного мешка вместе, оставив аллантоисных стебля (пупочной артерии и вены) без изменений.
  3. Трансфер эмбрионов на блюде новый Петри (60 X 15 мм) и погрузить их в PBS при комнатной температуре.
  4. Позиция эмбриона обеспечить сагиттальной зрения головы / лица. Использование микро рассекает пинцетом аккуратно понять эмбриона на голову.
  5. Использование 30G иглу, вводят 50uL FITC-декстрана (50ug/mL) или GSL 1 - isolectin B 4 (20ug в 200uL PBS) в лице вену иглу указывая в направлении задней части головы.
  6. Когда краска видна в пупочной вены, удалить иглу и отдельных эмбриона от аллантоисных стебля (пупочной артерии и вены).
  7. После инъекции, позволяющие эмбриона остаться в PBS при комнатной температуре в течение 2-3 минут, так что краситель циркулирует по всему эмбриону.

2. Всего монтажа анализ кожи сосудистую

  1. После учета красителя циркулируют по всему эмбриона, удалять образцы кожи из регионов конечностей, спины и живота, и т.д. 8,9.
  2. Промыть образец кожи в холодное PBS, и зафиксировать в 4% PFA / PBS в течение 2 часов 8,9. Промыть 3 раза по 10 минут каждый в 4 мл ясно флакон с 2 мл холодного PBS.
  3. Место образец кожи на предметное стекло и добавляют 100 мкл монтаж средств массовой информации к каждому слайду и покровного стекла.
  4. Разрешить слайды сушить в темном месте хранения.
  5. Перейдите к шагу разделе "Image Acquisition '2.

3. Многоцветный маркировки тимуса и сердца сосуды и периваскулярные клетки для cryosections (Continue из раздела 1, шаг 7)

  1. Весь 'Flash заморозить »эмбриона в жидком азоте. Эмбрионы могут быть и хранили при температуре -80 ° С до анализа.
  2. Кроме того, рассекать из тимуса, промыть в 4 ° C PBS, и исправить в 2 мл 4% Параформальдегид (PFA) / PBS в течение 2 часов. Промыть 3 раза в течение 10 минут в холодной PBS, место thymi в октябре, и заморозить и хранить до использования при -80 ° C.
  3. Для cryosectioning, распространение октября на "блок" раздел и смонтировать эмбриона или расчлененные органов / тканей для секционирования.
  4. Вырезать замороженной ткани в 10 мкм разделы и собирать на слайдах.
  5. Fix разделы в ацетоне в течение 5-10 минут. Промыть 3 раза в холодной TBS.
  6. Блок в 10% сыворотки осла / TBS в камере влажности при комнатной температуре.
  7. Инкубируйте разделы в течение 1 часа, в течение ночи с 100 мкл первичных антител в камере влажности при температуре 4 ° C: в этом примере мы используем крысе анти-CD31 мыши (1:100) для обозначения эндотелия и антимышиного PDGFR-β (1:100) для обозначения периваскулярных клеток. Это полезно для покрытия слайдов с индивидуально нарезанные длинные парафильмом для того, чтобы антитела, равномерно распределены по разделу.
  8. После инкубации с первичными антителами, мыть разделах 3 раза в холодной TBS. Инкубируйте 100 мкл соответствующих вторичными антителами в течение 30 минут минимум.
  9. Промыть 3 раза в холодной TBS. Добавить 100 мкл монтаж средств массовой информации к каждому слайду и покровного стекла.
  10. Разрешить слайды сушить в темном месте хранения.
  11. Переходите к разделу 'Image Acquisition.

4. Многоцветный маркировки тимуса сосуды и периваскулярные клетки для vibratome разделах (Continue из раздела 1, шаг 7)

  1. Рассеките из тимуса долях от эмбриона и промыть в холодной PBS.
  2. Fix вилочковой железы в 4% PFA / PBS при комнатной температуре в течение 2 часов.
  3. Стирать в PBS-Triton X (0,15%) 3 раза, 10 минут и место thymi в небольшой пластиковый картридж и погрузить в 4% агарозном низкой расплава / PBS (~ 4 ° С). Вилочковой железы должно быть в контакте с нижней части картриджа.
  4. Разрешить агарозном закрепить на льду (3-5 минут). Используйте лезвие, чтобы отрезать избыточного агарозы. Добавить клей vibratome блоков и придерживаться образца блока.
  5. Добавить холодным ФСБ в водяной бане, пока vibratome образца и лезвия погружаются.
  6. Установить скорость и амплитуду (большой амплитудой и низкой средней скоростью идеально подходит для мягкой тимуса разделы). Амплитуда должна быть уменьшена, если разделы разбить из-за лишнего волнения.
  7. Вырезать 50 мкм разделов.
  8. Использование кисти, собирать секции в 24-ю лунками в холодном PBS.
  9. Блок секций в 500 мкл 10% осла сыворотки в PBS-Triton X (0,15%) в течение 30 минут.
  10. Инкубируйте разделы в течение 8 часов в ночь с первичным антителом, таких как анти-CD31 и анти-PDGFR-β, В закрытой 24-ю лунками.
  11. Промыть 3 раза PBS-Triton X (0,15%) по сравнению с всего 8 часов при температуре 4 ° C.
  12. Блок секций в 10% осла сыворотки в PBS-Triton X (0,15%) в течение 30 минут.
  13. Инкубируйте разделы в течение 8 часов в течение ночи при 4 ° С с соответствующими вторичными антителами.
  14. Промыть 3 раза PBS-Triton X (0,15%) по сравнению с всего 8 часов при температуре 4 ° C.
  15. Повторное исправление образцов в 4% PFA / PBS в течение 30 минут на льду.
  16. Промыть 3 раза PBS-Triton X (0,15%) в течение 30 минут на льду.
  17. Дегидрировать образцы через градуированные MeOH / ПБС-Тритон Х серии: 25% метанола, 50% метанола, 75% метанола и 100% метанола на 10 минут для каждого шага. Замените 100% метанола со свежим метанолом через 10 минут и выдержать в течение 1 часа при комнатной температуре.
  18. В стеклянном контейнере, смешайте Babb (бензиловый спирт: бензил бензоат) в соотношении 1:2. Комбинат Babb с метанолом для конечной концентрации 50% Babb и 50% метанола. Инкубируйте образца в Babb: MeOH в течение 10-15 минут.
  19. Передача образца стеклянный контейнер с 100% Babb и инкубировать в течение 10-15 минут или пока не рассеялся, при комнатной температуре.
  20. Заполните депрессии слайд (0,7 мм глубины) со свежим 100% Babb и передачи образцов в сторону. Добавить покровного стекла (№ 1,5) и печать с 2-3 слоя лака для ногтей. Разрешить лак для ногтей, чтобы укрепиться в темноте при комнатной температуре, затем хранить образцы при температуре 4 ° C.
    Примечание: Слайды должны быть полностью запечатаны до конфокальной захвата изображений. Изображения должны быть приобретены в течение 12-24 часов, а флуоресцентные красители могут исчезать в Babb.
  21. Переходите к разделу 'Image Acquisition.

5. Image Acquisition

  1. Изображение 10 мкм замороженных срезов с использованием конфокальной микроскопии План-Apochromat 20X/0.8 цель (512 х 512 пикселей) с 488 - (FITC-dextran/GSL 1 - isolectin B 4), 543 - и 633-нм линий лазера.
  2. Приобретать конфокальной г-сечения всей кожей монтировать и 50 мкм агарозном-срезы использования План-Apochromat 10X/0.4 цель (512 х 512 пикселей) с 488 - (FITC-dextran/GSL 1 - isolectin B 4), 543 -, и 633-нм линий. Последовательный Z-разделы должны быть собраны последовательно на 1-микронных для каждого соответствующего канала.
  3. Реконструкция серийный Z-разделы, используя Zeiss AxioVision 4.6 или другого программного обеспечения для анализа изображений.

6. Представитель Результаты:

Эффективная маркировка эмбриональных сосудистой имеет решающее значение для оценки дефектов кровеносных сосудов в эмбриональный мышей. На рисунке 1 показаны конкретные маркировки E16.5 тимуса кровеносных сосудов (1А-Б) и со-маркировки с CD31 (1B), в дополнение к окрашивание правого и левого желудочков (1E-F), соответственно. GSL I-isolectin B 4 протокола для cryosections, как описано в разделах 1, 3 и 5 был использован в этих экспериментах. Всего монтажа маркировка судна кожи кровью сети на E16.5 мышей, с использованием протоколов, описанных в разделах 1, 2 и 5 показан на рисунке 1С-D.

figure-protocol-8599
Рисунок 1 Legend. FITC GSL Я - isolectin B 4 лица инъекции вены в E16.5 эмбрионов мыши. a. Cryosection эмбрионального тимуса после инъекции. b. Слияние CD31 совместно маркировки с isolectin В 4. c. и d. Всего монтажа эмбриональной кожи сосудистую после инъекции. e. и f. Cryosection эмбрионального сердца e. (справа желудочка) f. (левый желудочек) после инъекции.

Обсуждение

Всего монтажа и PECAM-1 (CD31) пятен на разделы обычных методов маркировки сосудистую в эмбриональных мышей. Эти методы требуют использования прямых и / или непрямой иммунофлюоресценции, а также моющие средства permeabilize мыши ткани. Это оказывается весьма своевременным процесса. Здесь мы испол...

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Работа выполнена при поддержке гранта по номерам R01AI055001 и R01AI082127 из NIAID на NRM и SREB диссертации стипендий награду JLB.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Название реагента Компания Номер по каталогу
FITC-декстрана Сигма FD150S-1G
Fluorescein помечены GSL 1 - isolectin B 4 Vector Laboratories FL-1201
Быстрый зеленый MP Biomedicals 195178
PFA Fluka 76240
Эмбриональной бычьей сыворотки Атланты биологические препараты S11550
Оптимальная температура резки соединения (ОКТ VWR 25608-930
Ацетон JT Baker 9006-33
Осел сыворотки Джексон 017-000-121
Крыса анти-CD31 мыши, BD Pharmingen 558736
антимышиного PDGFR-β R & D Systems AF1042
осле анти-CD31 крысы Alexa 647 (Invitrogen) Biolegend 102516
осле анти-козел Alexa 594 (Invitrogen) Invitrogen A11058
Тритон Х -100 Sigma-Aldrich X-100
Низкий расплава агарозы / PBS Sigma-Aldrich A9414-25G
Метанол Fisher Scientific A413-4
Бензиловый спирт Acros Научные 148390010
Бензил бензоат Acros Научные 105860010
Депрессия слайды Fisher Scientific S175201
Fluorogel Электронная микроскопия наук 17985-10
Крышка стекла (22x22) -1,5 Thermo Scientific 152222
Zeiss LSM 510 Мета конфокальной микроскопии Zeiss
Micro рассекает щипцы Roboz RS-5135
Парафильмом Количество OM992 Fisher Scientific 13-374-16
12 и 24 и планшеты Evergreen Научные 222-8044-01F
SuperFrost / Plus Слайды микроскоп Fisher Scientific 12-550-15
4 мл ясно флаконах Национальный научный B7800-2

Ссылки

  1. Cuddihy, A. R. VEGF-mediated cross-talk within the neonatal murine thymus. Blood. 113, 2723-2731 (2009).
  2. Muller, S. M. Gene targeting of VEGF-A in thymus epithelium disrupts thymus blood vessel architecture. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 102, 10587-10592 (2005).
  3. Muller, S. M. Neural crest origin of perivascular mesenchyme in the adult thymus. J. Immunol. 180, 5344-5351 (2008).
  4. Foster, K. Contribution of neural crest-derived cells in the embryonic and adult thymus. J. Immunol. 180, 3183-3189 (2008).
  5. Liu, C. Coordination between CCR7- and CCR9-mediated chemokine signals in prevascular fetal thymus colonization. Blood. 108, 2531-2539 (2006).
  6. Lavine, K. J. Fibroblast growth factor signals regulate a wave of Hedgehog activation that is essential for coronary vascular development. Genes Dev. 20, 1651-1666 (2006).
  7. Lavine, K. J., Kovacs, A., Ornitz, D. M. Hedgehog signaling is critical for maintenance of the adult coronary vasculature in mice. J. Clin Invest. 118, 2404-2414 (2008).
  8. Mukouyama, Y. S., Gerber, H. P., Ferrara, N., Gu, C., Anderson, D. J. Peripheral nerve-derived VEGF promotes arterial differentiation via neuropilin 1-mediated positive feedback. Development. 132, 941-952 (2005).
  9. Mukouyama, Y. S., Shin, D., Britsch, S., Taniguchi, M., Anderson, D. J. Sensory nerves determine the pattern of arterial differentiation and blood vessel branching in the skin. Cell. 109, 693-705 (2002).
  10. Murphy, P. A. Endothelial Notch4 signaling induces hallmarks of brain arteriovenous malformations in mice. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 105, 10901-10906 (2008).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

56CD31FITCisolectin B4

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены