JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Макрофаги играют центральную роль в поддержании гомеостаза и патологии во многих тканях. Протокол, представленные здесь описываются методы истощения макрофагов В естественных условиях, Получения поляризованных макрофаги из костного мозга аспирационной и восприимчиво передачи макрофагов мышам. Эти методы позволяют определить ту роль, которую поляризованных макрофаги играют в здоровье и болезни.

Аннотация

Макрофаги являются важнейшими игроками на врожденный иммунный ответ на инфекционные проблемы или травмы, начала врожденного иммунного ответа и направления приобретенного иммунного ответа. Макрофагов дисфункция может привести к невозможности установить соответствующий иммунный ответ и, таким образом, был замешан во многих болезненных процессов, в том числе воспалительных заболеваний кишечника. Макрофаги отображение поляризованных фенотипов, которые разделены на две категории. Классически активированными макрофагами, активируются стимуляции IFNγ или ЛПС, играют важную роль в ответ на бактериальные задачей в то время как альтернативы активированные макрофаги, активированные ИЛ-4 и IL-13, участвовать в мусор очистки и тканей реконструкции и были вовлечены в разрешение фазы воспаления. В ходе воспалительной реакции в живом организме, макрофаги находятся на фоне сложной смеси проникают иммунные клетки и могут принимать участие, обостряя или resolvinг воспаления. Для определения роли макрофагов в месте, в целом модель животного, необходимо изучить влияние истощения макрофаги из сложных условиях. Чтобы задавать вопросы о роли макрофагов фенотип на месте, фенотипически определенный поляризованных макрофаги могут быть выведены бывшие естественных условиях, от аспирационной костного мозга и добавил к мышам, с или без предварительного истощения макрофагов. В протоколе, представленные здесь клодронат содержащих липосомы, против PBS вводится контроль, были использованы для разрушающих толстой макрофагов в декстран сульфата натрия (DSS), индуцированного колита у мышей. Кроме того, поляризованный макрофаги были получены бывшим естественных и переданы мышей путем внутривенной инъекции. Предостережение такого подхода является то, что клодронат содержащих липосомы, разрушающих все профессиональные фагоциты, в том числе и дендритных клеток и макрофагов, с тем чтобы обеспечить наблюдаемый эффект от истощения макрофагов конкретных, о восстановлениие фенотип приемными передачи макрофаги необходимо. Системный истощение макрофагов у мышей также может быть достигнуто путем обратного скрещивания мышей на CD11b-DTR фон, который является отличным взаимодополняющий подход. Преимущество клодронат содержащих липосомы опосредованного истощение является то, что он не требует времени и средств, участвующих в беккросс мышей и он может быть использован в мыши независимо от того, на фоне мышей (C57BL / 6, BALB / с, или смешанного происхождения ).

протокол

1. Разрушающих Макрофаги Использование клодронат содержащих липосомы

  1. Липосомы хранятся при температуре 4 ° C. За два часа до инъекции, удалять клодронат содержащих липосомы, содержащие PBS липосомы, или стерильной PBS (введение контроля) из холодильника, чтобы они могли привыкнуть к комнатной температуре (18 ° C).
  2. Переверните пробирки, содержащие липосомы, в 8-10 раз, чтобы обеспечить равномерное распределение загрузки до 200 мкл в 1 мл шприц. Приложите на 26 иглы в верхней части шприца.
  3. Используя левую руку, загривок мыши чуть ниже ушей проведение достаточно кожи, чтобы обездвижить его головы и конечностей.
  4. Наклоните мыши так что его голова немного на землю, чтобы внутренние органы отойти от места инъекции, которая находится в правом нижнем квадранте живота.
  5. Раскатайте шприц между ладонями и инвертировать его 6 раз, чтобы распределить равномерно липосомы решение перед инъекцией.
  6. Вставьте иглу в нижней правой части живота мыши на 30-40 градусов. Вводите 200 мкл липосом решение или PBS.
  7. Во время индуцированного воспаления модель, как и DSS-индуцированной колит, вводят мышам за 4 дня до начала экспериментального воспаления обеспечить истощение житель макрофагов и каждые 2 дня в протокол, чтобы исчерпать новое проникновение макрофагов.
  8. В конце эксперимента, наряду с запланированными экспериментальные исследования, удаление тканей с сайта интерес и закрепить параформальдегид подтвердить макрофагов истощение иммуногистохимического окрашивания.

2. Вывод поляризованный макрофаги из костного мозга всасывает

  1. Костный мозг мышей от 8 до 12 недель обеспечивает самую высокую доходность костномозгового происхождения макрофагов. Усыпить мышь, положите его на спину и придавить ее лапами, растяжения конечностей, насколько это возможно.
  2. Работа в стерильных ухг, удалить бедра и голени, срезая столько мышц, насколько возможно.
  3. Флеш мозг из костей с использованием IMDM 10% FCS загружается в 5 мл шприц оснащен 26 иглы.
  4. Развести костный мозг всасывает до 40 мл в IMDM с 10% FCS, место клеток в 75 см 2 колбы культуре ткани и инкубировать при температуре 37 ° C, 5% СО 2 в течение 4 часов. Этот шаг снимает сторонник мезенхимальных клеток или зрелые макрофаги из гемопоэтических предшественников.
  5. Передача культуры супернатант, содержащий не соблюдают предшественники в 50 мл коническую трубку Сокол и центрифуги в течение 5 мин при 1200 оборотах в минуту.
  6. Ресуспендируют осадок клеток в 5 мл IMDM, 10% FCS и рассчитывать ядерных клеток путем разбавления клеточной суспензии 1 к 20 в уксусную кислоту. Эта процедура лизирует всех клеток, включая эритроциты и остальных ядер, можно пересчитать по гемоцитометра.
  7. Ресуспендирования клеток в концентрации 0,5 · 10 6 кл / мл в полной среде; IMDM, 10% FCS, 150 мкМ монотиоглицерин (MTG), и 10 нг / мл или MCSF, GM-CSF или IL-3. MCSF производные макрофаги классически активированными макрофагами, тогда как GM-CSF или IL-3-производные макрофаги альтернативы активирован.
  8. Замените среды на 4-й день, летел вниз, не прилипшие клетки и возвращения их в колбу, и на 7 день, отбрасывая не соблюдают клеток.
  9. Кроме того, IFNγ (10 нг / мл) или ИЛ-4 (10 нг / мл) могут быть добавлены в колбы, содержащие MCSF клеток, полученных в 7-й день, чтобы исказить макрофагов в классическом активировать или альтернативно активированный фенотип, соответственно. Инкубируйте клетки в течение 3 дней.
  10. На 10-й день, удалить СМИ и поднимать клетки от сосуда тканевой культуре использованием клеточной диссоциации буфера (Gibco-BRL). Место 5 мл буфера на клетки в течение 5 мин при комнатной температуре (18 ° C), а затем ударить по части колбы с пяткой ладони крепко несколько раз. Убедитесь, что клетки стартовал в колбе, изучив колбемикроскопом. Внесите ресуспендировали клеток в 15 мл коническую трубку Сокол и мыть колбы на 10 мл IMDM, 10% FBS. Бассейн и спином вниз клетки в течение 5 мин при 300 × г.
  11. Граф жизнеспособные клетки, используя гемоцитометра и ресуспендируют в концентрации 10 7 клеток / мл в стерильном PBS pH7.4. Макрофаги готовы к инъекции в мышей.
  12. Резервный 1,0 × 10 6 макрофагов для оценки фенотипа макрофагов. Классически активированные макрофаги стимулировали липополисахарида выделяют высокий уровень оксида азота и ИЛ-12p70 и низкий уровень IL-10 в сравнении с альтернативно активированными макрофагами. Кроме того активированными макрофагами конститутивно выразить YM1 и аргиназы I (Арги), которые могут быть обнаружены западными иммуноблоттинга.

3. Tranferring макрофаги мышей в

  1. Ресуспендируйте макрофагов в стерильном PBS в концентрации 10 7 клеток / мл. Это позволяет вtravenous инъекции 10 6 макрофагов в общем объеме 100 мкл, что объем, который можно безопасно и комфортно мышам в хвостовую вену.
  2. Теплый мышей с использованием грелки или тепла коленях в течение 5-10 мин, чтобы расширить хвостовую вену. Мониторинг мыши на все времена признаки гипертермии.
  3. Передача мыши сдерживающим устройство, которое обеспечивает доступ к хвосту вен.
  4. Поверните хвост 90 °, так что вены вверх. Вены работать с боков вниз обе стороны хвоста и как вены могут быть использованы.
  5. Очистите место инъекции спиртом и медленно вводят 100 мкл (10 6 макрофаги), используя 1 мл шприц с 26 или 28 иглы. Вставьте иглу с наклонной вверх и под небольшим углом, почти параллельно вене.
  6. Если игла вставлена ​​никакого сопротивления должно ощущаться и вены должно стать ясно после инъекции. Если игла не находится ввены, хвост будет деформироваться. Если это произойдет, удалите иглу и попробуйте еще раз проксимальнее последняя попытка или в другом ключе. Новая игла должна быть использована для каждой инъекции, как хвост жесткие и иглы быстро притупляются в хвост инъекции вену.
  7. После инъекции, удалите иглу, применить легкое давление в месте инъекции, пока кровотечение не останавливается, и следить за мышью на дополнительные 5 минут, чтобы кровотечение остановилось.
  8. Повторите макрофагов инъекции каждые 4 дня, чтобы обеспечить непрерывную доставку поляризованных макрофагов при экспериментальном порядке.
  9. В конце эксперимента, а также экспериментальные исследования, удаление тканей с сайта интерес и закрепить параформальдегид или формалина для подтверждения эффективности оказания поляризованных макрофагов иммуногистохимического окрашивания.

4. Представитель Результаты

Количество и фенотип резидентов macrophages в той или иной ткани зависит от ткани рассматривается и будет меняться в течение инфекции или воспаления. Кроме того, способность клодронат содержащих липосомы, чтобы исчерпать макрофаги из ткани будет зависеть от способа введения и эффективной доставки в ткани-мишени. Внутрибрюшинного введения клодронат содержащих липосомы приводит к снижению в F4/80 + макрофагов у мышей толстой кишки в течение DSS-индуцированной колит очевидным иммуногистохимического окрашивания для макрофагов маркер, F4/80 (рис. 1А). Гистологическое окрашивание также может быть использован для определения количественных различий в число макрофагов и фенотип в срезах тканей. Рисунок 1B показывает, что в среднем 55% макрофагов исчерпывается клодронат содержащих липосомы, по сравнению с истощением не обнаружили у мышей двоеточия, когда мышам вводили PBS только в виде инъекций управления. Каждое значение определяется путем подсчета F4/80 и Арги пятноизд-положительных клеток в серийных срезов ткани от 6 мышей на 3 балла, на 3 секции на мышь с подсчетом выполняется на двух человек, ослепленный экспериментальных условиях. Эти результаты показывают, что внутрибрюшинного введения клодронат липосомы разрушают толстой макрофагов у мышей.

Вывод макрофаги из костного мозга в присутствии различных факторов роста урожайности макрофаги, которые классически активирован (MCSF, полученных или MCSF, полученных и обработанных IFNγ), либо активировать (GM-CSF и IL-3-производных или MCSF, полученных и относились с IL-4). Промывка костного мозга от 2 бедренные кости голени и 2 из 8-недельных мышей обычно дает 6 × 10 7 ядросодержащих клеток на мышь и дает 8 × 10 6 MCSF производные макрофаги, 10 × 10 6 GM-CSF производные макрофаги, или 12 × 10 6 IL-3-производных макрофагов. Рисунок 2А показывает, нитритов и IL-12p70/IL-10 соотношение макрофагов вирernatants относиться с ЛПС в течение 24 часов рис. 2б показана типичная Западная блоттинга 0,5 × 10 6 макрофагов MCSF + / -. IL-4 вывод условиях исследовали с антителами в качестве альтернативы активированного макрофагов маркеры, Арги, YM1, или как GAPDH загрузки контроля. Эти данные показывают, что костный мозг производные макрофаги могут быть искажены в поляризованном фенотип при выводе.

Эффективная передача бывших естественных получены поляризованные макрофагов в ткани зависит от способа введения и доступа к ткани. В DSS-индуцированной колит, макрофаги вводят внутривенно поехать в месте воспаления и наоборот активированными макрофагами уменьшить тяжесть заболевания. показывает общее количество макрофагов и число Арги + (или активирована) макрофаги учитываются в гистологических срезов от мышей вводили с поляризованными костный мозг, Полученных макрофагов. Влияние переноса поляризованного макрофагов в толстой кишке в течение DSS-индуцированной колит проявляется болезнь индекс активности, добавка оценка основана на потере веса, ректальное кровотечение, и снижение консистенции стула (рис. 3В). Эти результаты показывают, что бывший естественных получены, восприимчиво переданы макрофаги могут трафика на толстой кишке и влияние индуцированного воспаления. M1 макрофаги не влияют воспаление в то время как М2 макрофаги значительно снизить индекс активности заболевания.

figure-protocol-10260
Рисунок 1. Клодронат содержащих липосомы эффективно разрушают F4/80 + и F480 + Арги + клеток у мышей двоеточия в естественных условиях. F2 поколение мышей дикого типа на смешанной C57BL / 6 × 129Sv фоне были даны 5% DSS в течение 7 дней, а введенный IP с PBS (контроль) или клодронат содержащих липосомы (клодронат) за 4 дня до лечения DSSи на 0, 2, 4 и 6 в DSS лечения. (A) Колоны были удалены, фиксированы, и срезы окрашивали по иммуногистохимии для зрелых макрофагов (F4/80) и М2 маркер макрофагов, Арги. (B) Количественная оценка F4/80 + + и Арги макрофагов. Положительно окрашенных клеток были подсчитаны по два человека знали о экспериментальных условиях при 40-кратном увеличении в 6 полей с 3 разделов / мыши и мыши с 6 / группы. * P <0,01.

figure-protocol-11134
Рисунок 2. MCSF производные макрофаги выразить классическим активированный фенотип и MCSF производные макрофаги относиться с IL-4 выразить альтернативы активированного макрофагов фенотипа. (А) В соответствии с классическим активированный фенотип, MCSF производные макрофаги производят более высокий уровень окиси азота в ответ на ЛПС и может быть измерен Грисса тест, который обнаруживает ее вниз по течению метаболитов, нитритов. Они ALSО производить более IL-12p70/IL-10 отношение, которое можно измерить с помощью иммуноферментного анализа. * P <0,01 для п = 3. (B) в соответствии с альтернативно активированный фенотип, MCSF производные макрофаги относиться с IL-4 конститутивно экспресс YM1 и Арги, которые могут быть обнаружены западными иммуноблоттинга. Данные представитель 3-х независимых экспериментов с аналогичными результатами.

figure-protocol-12091
Рисунок 3. Внутривенный впрыском, экс-живом, полученные альтернативы активированными макрофагами трафик на толстой кишки и уменьшить воспаление кишечника. F2 поколение мышей дикого типа на смешанной C57BL / 6 × 129Sv фоне были даны 5% DSS в питьевой воде в течение шести дней. М1 и М2 макрофагов вводили IV на 0, 4 во время лечения DSS. (A) Колоны были удалены, фиксированы, и срезы окрашивали по иммуногистохимии для зрелых макрофагов (F4/80) и М2 маркер макрофагов (Арги).Количественный макрофагов для контроля PBS вводили мышам (C), мышей вводили M1 макрофагов (+ М1) и мышей вводили M2 макрофагов (+ M2) проводили путем подсчета положительно окрашенных клеток при 40-кратном увеличении на 6 полей из 3 разделов / мышь и от 6 мышей / группу. Подсчет проводился на двух человек, ослепленный экспериментальных условиях. (B), болезни деятельность контролировалась и забил ежедневно во время лечения и добавка оценка основана на потере веса, ректальное кровотечение, и снижение консистенции стула. * P <0,05 для п = 6 мышей в 2-х независимых экспериментов.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Обсуждение

Макрофаги являются фагоциты, которые играют важную роль в иммунной системе. Они несут ответственность за развязывание врожденного иммунного ответа и направления приобретенного иммунного ответа. Как правило, классически активированные макрофаги активируются IFNγ или LPS и несут ответс?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Эта работа была поддержана "Грант в помощь исследованиям" от Крона и колит Фонд Канады LMS, которые поддерживают Канадская ассоциация гастроэнтерологов / Канадская ассоциация здравоохранения с Исследования / Крона и колит Фонд Канады премии следователь новый.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Название реагента Компания Номер по каталогу
Клодронат содержащих липосомы Clodronateliposomes.org
PBS-содержащих липосомы Clodronateliposomes.org
Стерильные PBS pH7.4 Invitrogen 14190
IMDM Invitrogen 12440
Эмбриональной телячьей сыворотки (FCS) Invitrogen 12483
уксусная кислота BDH Aristar BDH3092-500MLP
Монотиоглицерин (MTG) Сигма 96-275
Recombinant мышиных MCSF Stemcell технологии 02951
Рекомбинантный мышиный GM-CSF Stemcell технологии 02935
Рекомбинантный мышиный IL-3 Stemcell технологии 02903
Рекомбинантный мышиный IFNγ Stemcell технологии 02746
Рекомбинантный мышиный ИЛ-4 Stemcell технологии 02714
Клеточная диссоциация буфер Invitrogen 13150-016
Крыса anti-F4/80 антител Абд Serotec MCA497GA
Мышь против Арги антител Лаборатории BD трансдукция 610708

Таблица 1. Конкретные реагенты, используемые в настоящем протоколе.

Ссылки

  1. Gordon, S. Alternative activation of macrophages. Nat. Rev. Immunol. 3, 23-35 (2003).
  2. Rescigno, M., Lopatin, U., Chieppa, M. Interactions among dendritic cells, macrophages, and epithelial cells in the gut: implications for immune tolerance. Curr. Opin. Immunol. 20, 669-675 (2008).
  3. Heinsbroek, S. E., Gordon, S. The role of macrophages in inflammatory bowel diseases. Expert Rev. Mol. Med. 11, e14(2009).
  4. Collins, S. M., Piche, T., Rampal, P. The putative role of inflammation in the irritable bowel syndrome. Gut. 49, 743-745 (2001).
  5. Maeda, S. Colon cancer-derived factors activate NF-kappaB in myeloid cells via TLR2 to link inflammation and tumorigenesis. Mol. Med. Report. 4, 1083-1088 (2011).
  6. van Rooijen, N., van Kesteren-Hendrikx, E. Clodronate liposomes: perspectives in research and therapeutics. J. Liposome Res. 12, 81-94 (2002).
  7. Hunter, M. M. In vitro-derived alternatively activated macrophages reduce colonic inflammation in mice. Gastroenterology. 138, 1395-1405 (2010).
  8. Weisser, S. B. SHIP-deficient, alternatively activated macrophages protect mice during DSS-induced colitis. J. Leukoc. Biol. 90, 483-492 (2011).
  9. Qualls, J. E., Kaplan, A. M., van Rooijen, N., Cohen, D. A. Suppression of experimental colitis by intestinal mononuclear phagocytes. J. Leukoc. Biol. 80, 802-815 (2006).
  10. Van Rooijen, N., Sanders, A. Liposome mediated depletion of macrophages: mechanism of action, preparation of liposomes and applications. J. Immunol. Methods. 174, 83-93 (1994).
  11. Smith, P. Infection with a helminth parasite prevents experimental colitis via a macrophage-mediated mechanism. J. Immunol. 178, 4557-4566 (2007).
  12. van Rooijen, N., Hendrikx, E. Liposomes for specific depletion of macrophages from organs and tissues. Methods Mol. Biol. 605, 189-203 (2010).
  13. Kataoka, K. The roles of vitreal macrophages and circulating leukocytes in retinal neovascularization. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 52, 1431-1438 (2011).
  14. Weisser, S. B. Alternative activation of macrophages by IL-4 requires SHIP degradation. Eur. J. Immunol. 41, 1742-1753 (2011).
  15. Cailhier, J. F. Conditional macrophage ablation demonstrates that resident macrophages initiate acute peritoneal inflammation. J. Immunol. 174, 2336-2342 (2005).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

66

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены