JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Методика, основанная на модифицированном градиенте плотности центрифугирования, была использована для выделения эпителиальных клеток из ткани кишечника Ripicephalus microplus . Поверхностные белки биотинилировали и очищали с помощью стрептовидиновых магнитных гранул для использования в нисходящих приложениях.

Аннотация

Rhipicephalus microplus - клещ крупного рогатого скота - является самым значительным эктопаразитом с точки зрения экономического воздействия на скот в качестве вектора нескольких патогенов. Усилия были направлены на контроль клеща крупного рогатого скота, чтобы уменьшить его пагубные последствия, с упором на открытие кандидатов на вакцины, таких как BM86, расположенных на поверхности эпителиальных клеток кишечника. В текущих исследованиях основное внимание уделяется использованию кДНК и геномных библиотек для скрининга других кандидатов на вакцины. Выделение клеток клещей кишки является важным преимуществом при исследовании состава поверхностных белков на мембране клеток клещей. Эта статья представляет собой новый и осуществимый метод выделения эпителиальных клеток, из содержимого кишечника в виде полупоглощенного R. microplus. В этом протоколе используются TCEP и EDTA для высвобождения эпителиальных клеток из субэпителиальных опорных тканей и градиента дискретной плотности центрифугированияNt для отделения эпителиальных клеток от других типов клеток. Белки клеточной поверхности были биотинилированы и выделены из эпителиальных клеток тикового кишечника, используя магнитные гранулы, связанные с стрептавидином, что позволяет использовать последующие приложения в FACS или LC-MS / MS-анализе.

Введение

Rhipicephalus microplus , крупный рогатый скот, является самым значительным эктопаразитом с точки зрения экономического воздействия на крупный рогатый скот в тропических и субтропических регионах, поскольку он переносит лихорадку крупного рогатого скота (бабезиоз), анаплазмоз и конский пироплазмоз 1 , 2 , 3 , 4 . Усилия были направлены на контроль крупного рогатого скота, чтобы уменьшить пагубный эффект, однако обычные методы, такие как использование химических акарицидов, имеют скрытые недостатки, такие как наличие химических остатков в молоке и мясе, а также увеличение распространенности химически устойчивых клещей 5 , 6 , 7 . Следовательно, были изучены разработки альтернативных методов контроля тика, такие как использование натурального скота, биологический контроль (биопестициды) и вакцинация4 , 5 , 6 , 7 , 8 , 9 .

В погоне за белками, которые могут быть использованы в качестве кандидатов на вакцины, текущие исследования сосредоточены на кишке. Стена средней кишки построена из одного слоя эпителиальных клеток, опирающегося на тонкую базальную пластинку, а наружная базальная пластинка образует сеть мышц. Наблюдения света и электронного микроскопа показывают, что средняя кишка состоит из трех типов клеток: резервной (недифференцированной), секреторной и пищеварительной. Количество типов клеток значительно варьируется в зависимости от физиологической фазы. Секреторные и пищеварительные клетки происходят из резервных клеток 18 , 19 , 20 .

Построение библиотек кДНКДля изучения состава клещей кишки привело к идентификации антигенных белков, таких как Bm86, в качестве потенциальных кандидатов вакцины 2 , 3 , 4 . Гликопротеин Bm86 локализуется на поверхности клеток кишечника клещей и индуцирует защитный иммунный ответ против клеща крупного рогатого скота ( R. microplus ) у вакцинированного крупного рогатого скота. Анти-Bm86 IgG, продуцируемые иммунизированным хозяином, проглатываются клещей, распознают этот антиген на поверхности клеток кишечника клеща и впоследствии нарушают функцию и целостность ткани кишечника. Вакцины, основанные на антигенах Bm86, показали эффективный контроль R. microplus и Rhipicephalus annulatus за счет сокращения числа, веса и репродуктивной способности сыпучих самок, что привело к снижению личиночной инвазии в последующих клеточных поколениях 4 . Однако вакцины на основе Bm86 не эффективны против всех этапов тика и имеютПродемонстрировали неудовлетворительную эффективность против некоторых географических штаммов R. microplus , поэтому говядина и молочная промышленность плохо приняли эти вакцины 2 , 4 .

Способность изолировать эпителиальные клетки от клещей кишечника является важным новшеством, которое позволило бы прогрессировать исследования для определения состава белковой мембраны, включая морфологию и физиологию в различных условиях окружающей среды. Описанный здесь способ использует хелатирующий агент этилендиаминтетрауксусную кислоту (ЭДТА) и восстановитель трис (2-карбоксиэтил) фосфин (TCEP) для высвобождения эпителия из его субэпителиальных поддерживающих тканей 10 . Эпителий восстанавливается после механического разрушения тканей путем встряхивания с последующим центрифугированием с разрывом градиента в Percoll. В этой статье описывается возможный и новый метод изоляции клещей кишечника epiТеалиальные клетки. Биотинилированные клеточные поверхностные белки, выделенные с поверхности этих эпителиальных клеток, могут впоследствии анализироваться в нисходящих приложениях, таких как FACS и / или LC-MS / MS-анализ.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

протокол

1. Рассечение кишечного эпителия от R. microplus

  1. Собирайте полупоглощенные клещи от крупного рогатого скота в день эксперимента. Просеивать тики в течение 24 часов после удаления с хозяина.
  2. Прикрепите полоску клейкой ленты к нижней части чашки Петри размером 92 мм x 16 мм. Добавьте каплю супер клея на ленту. Поместите тик, вентральную сторону вниз на супер клей, дайте высохнуть в течение 2 мин.
  3. Налейте 100 мл фосфатно-буферного солевого раствора (PBS) в чашку Петри или до тех пор, пока тик не будет полностью погружен в воду.
  4. С помощью скальпеля размером 11, вырезанного с верхней части глаз до нижнего фестона, с обеих сторон клеща.
  5. С помощью стерильного пинцета, полностью удалить Щит и alloscutum, чтобы выставить внутренние органы.
  6. Удалите мелкие белые нитевидные органы (трахею) и другие мембраны, чтобы предотвратить загрязнение.
  7. Удалите кишку, используя щипцы, зажав верхнюю область и вытащив ее изтушки. Удалите все оставшиеся ткани кишечника, гарантируя, что никакие другие ткани не будут расчленены.
  8. Хранить кишечник в ледяном солевом растворе Хэнкса (HBSS) без хлорида кальция и сульфата магния с коктейлем ингибитора протеиназы (ПОС). Snap заморозить кишки в сухом льду и хранить при -20 ° C.
    Примечание: для оказания помощи при расщеплении кишечника и деталях клеточных внутренних органов см. Главу 3.1 Д. Sonenshine, «Biology of Ticks» 19 .

2. Диссоциация эпителиальных клеток

  1. Вылейте расчлененную кишку на сетчатый фильтр размером 70 мкм внутри трубки объемом 50 мл.
  2. Промойте ткань кишечника 50 мл ледяного HBSS с помощью PIC, пока раствор не станет прозрачным, и кишки приобретают белый / прозрачный вид.
  3. Повторно суспендируйте кишки в 30 мл ледяной HBSS с помощью PIC, осторожно перемешайте и центрифугируйте при 500 × g при 4 ° C в течение 10 минут, чтобы осадить кишечник. Удалите супернатант и повторите процесс стирки три раза.
  4. Чтобы выбить эпителиальные кишечные клетки, повторно суспендировать кишечник в 10 мл среды культивирования клеток Дульбекко, модифицированную среду орла (DMEM), 2% фетальной телячьей сыворотки (FCS), 0,5 мМ этилендиаминтетрауксусной кислоты (EDTA), 1 мМ Трис (2 -карбоксиэтил) фосфина (TCEP), ПОС и инкубируют в течение 60 мин при 37 ° С при медленном вращении с использованием ролика при 6 об / мин.
  5. Отфильтруйте суспензию через сетчатый фильтр размером 250 мкм, прокрутите проточный фильтр и процедите через сетчатый фильтр размером 70 мкм, собирая оставшийся сквозной поток.
  6. Центрифугируйте суспензию при 500 × g при 4 ° C в течение 20 минут, чтобы осадить отдельные клетки.

3. Выделение одиночных эпителиальных клеток с использованием градиента центрифугирования плотности

  1. Подготовьте градиент центрифугирования плотности ( например , Percoll) путем фильтрации через предварительно фильтрующую бумагу AP15. Подготовьте 40% и 20% Percoll в mqH 2 0 (об. / Об.) И охладите при 4 ° C в течение 1 часа перед расслоением градиента.
  2. Использование перистальтикиНасос на минимальной скорости, слой 3 мл градиента центрифугирования плотности 40% в пробирку для ультрацентрифугирования емкостью 16 мл, позволяя ему оседать на льду в течение 15 мин. Скорость насоса должна приводить к скорости потока <1 мл на мин.
  3. Наклоняя трубку под углом 45 °, используйте перистальтический насос для выравнивания градиента центрифугирования плотности 20% поверх слоя 40%. Скорость насоса должна составлять менее 1 мл на минуту. Дайте слоям оседать на льду в течение 15 мин.
  4. Используйте перистальтический насос со скоростью <1 мл на минуту до слоя 3 мл среды DMEM, содержащей клетки клещевого кишки, с градиентом центрифугирования с концентрацией 20-40%.
  5. Запрограммируйте центрифугу для максимального ускорения и минимального замедления. Центрифуга при 600 мкг в течение 10 мин. Собирайте интерфазы между градиентом центрифугирования плотности DMEM: 20% и градиентами центрифугирования плотности 20%: 40% для выделения эпителиальных отдельных клеток. Храните собранные интерфазы при 4 ° C для последующего анализа.

4. Оценка изоляции клеток

  1. гомоцитометр
    1. Очистите гемацитометр слайдом со спиртом.
    2. . Подвесить клетки, осторожно пипеткой клеток вверх и вниз. Пипеткой 100 мкл клеточной суспензии и помещают в 1,5 мл микроцентрифужную пробирку.
    3. Добавить 400 мкл 0,4% трипанового синего. Аккуратно перемешайте трубку.
    4. Внесите 100 мкл суспензии клеток, обработанной Trypan Blue, для медленного заполнения обеих камер гемоцитометра.
    5. Поместите гемоцитометр под световым микроскопом, сосредоточив внимание на линиях сетки гемоцитометра с объективом 10X.
    6. Используя ручной счетчик счетчиков, подсчитайте живые незакрашенные ячейки в пределах набора из 16 квадратов. В пределах одной и той же площади подсчитайте синие мертвые клетки. Продолжайте считать до четырех наборов из 16 квадратов.
    7. Рассчитайте общее количество клеток на мл, используя формулу:
      47eq1.jpg "/>
    8. Вычислите процентную жизнеспособность клеток, используя формулу:
      figure-protocol-5393
  2. Визуализация изолятов клеток
    1. Разбавьте 1 мкл изолированных клеток в 9 мкл HBSS в 1,5 мл микроцентрифужной пробирке. Протрите микроцентрифужную пробирку мягко, чтобы перемешать.
    2. Внесите 5 мкл изолированных клеток в HBSS в середину стеклянного слайда. Нанесите три капли монтажной среды с помощью 4 ', 6-диамидино-2-фенилиндола (DAPI).
    3. Инкубируйте слайд при комнатной температуре в течение 5 мин. Осторожно поместите крышку над препаратом, избегая пузырьков воздуха.
    4. Визуализируйте клетки, окрашенные DAPI при возбуждении 360 нм, и излучение при 460 нм под флуоресцентным микроскопом.

5. Биотинилирование поверхностных белков клеток

  1. Биотинилируют 100 мкл одноклеточных эпителиальных клеток с использованием конъюгации биотина (типа А)Комплект, при молярном отношении поверхностного белка 1: 1 к конъюгату, согласно инструкциям производителя
  2. Для лизиса клеток добавьте 100 мкл PBS, 1% Triton X-100, 10% глицерина, 100 мкМ окисленного глутатиона и PIC в биотинилированные клетки. Инкубируйте на льду в течение 1 ч с осторожным перемешиванием каждые 10 мин.
  3. Центрифугируют биотинилированные клетки при 20 000 × g при 4 ° C в течение 20 минут до нерастворимого в гранулах материала. Собирают супернатант, содержащий цитоплазматические и биотинилированные мембранные белки.
  4. Определите концентрацию белка, используя анализ Брэдфорда.

6. Выделение биотинилированных поверхностных белков

  1. Добавить 50 мкл магнитных шариков Стрептавидина в 1,5 мл микроцентрифужную пробирку.
  2. Поместите трубу в магнитную подставку, собирая бусины сбоку от трубки. Удалите и выбросьте супернатант.
  3. Добавить 1000 мкл TBS, 0,1% Tween-20 в пробирку. Аккуратно перемешайте и соберите бусины с магнитной стойкойд. Удалите и выбросьте супернатант.
  4. Объединить 40 мкг биотинилированных поверхностных белков клеток, разведенных до 300 мкл в 1х PBS с промытыми магнитными шариками. Инкубируйте в течение 2 ч при комнатной температуре при перемешивании.
  5. Соберите бусины с магнитной подставкой, удалите и выбросьте супернатант.
  6. Добавить 300 мкл TBS, 0,1% Tween-20 в пробирку, осторожно перемешивая для повторного суспендирования гранул. Соберите бусинки, удалите и выбросьте надосадочную жидкость. Повторите эту операцию промывки дважды.
  7. Добавьте 100 мкл 0,1 М глицина pH 2,0 к магнитным гранулам и инкубируйте при комнатной температуре в течение 5 мин. Соберите гранулы и удалите супернатант, содержащий элюированные биотинилированные поверхностные белки.
  8. Визуализируйте изолированные поверхностные белки на 4-20% гель Tris-MOPS SDS-PAGE.

7. Оценка биотинилированного поверхностного белка

  1. Dot Blot
    1. Отрежьте полосу нитроцеллюлозы размером 7 см х 3 см.
    2. Примените 10 мкг общего тика гу(От 1,8 выше) и 10 мкг биотинилированного поверхностного белка к мембране. Разрешить сушку в течение 15 мин при комнатной температуре.
    3. Перенесите в контейнер и погрузите в 100 мл блокирующего буфера. Инкубируйте при комнатной температуре с перемешиванием в течение часа. Отменить блокирующий буфер.
    4. Промыть нитроцеллюлозную мембрану в 100 мкл PBS, 0,05% Tween-20 в течение 5 мин при перемешивании. Откажитесь от промывочного буфера и повторите промывки три раза.
    5. Инкубируйте в 1/5000 пероксидазы стрептавидин-хрена (HRP) в 100 мкл PBS, 0,05% Tween-20 в течение 2 часов при перемешивании при комнатной температуре и отбрасывают любой оставшийся раствор.
    6. Промыть нитроцеллюлозную мембрану в 100 мкл PBS, 0,05% Tween-20 в течение 5 мин при перемешивании. Удалите промывочный буфер и повторите промывку три раза.
    7. Для обнаружения растворите 1 таблетку 4-хлор-1-наптола в 10 мл ледяного метанола. Добавьте 4 мл метанола в 20 мл TBS. Добавьте 10 мкл свежего 30% перекиси водорода и немедленноПрименяются к нитроцеллюлозной мембране.
    8. Инкубируйте при перемешивании при комнатной температуре, пока субстрат не образует нерастворимый синий конечный продукт. Это может занять от 2 до 15 минут.
    9. Откажитесь от раствора для обнаружения и промойте мембрану три раза в 100 мкл mqH 2 O.
  2. Анализ ELISA
    1. Разбавьте 200 нг каждого образца 400 мкл 100 мМ буфера для карбонатного покрытия и слоем 2 полосы первого ряда (A #) пластины ELISA (плоские дно)
    2. Добавьте 100 мкл 100 мМ буфера для карбонатного покрытия во все другие соответствующие лунки в рядах (BH).
    3. Подготовьте серийные разведения каждого образца путем пипетирования 100 мкл из каждой лунки в ряду А и переноса в ряд В. Смешайте осторожно путем пипетирования и избегайте образования пузырьков. Повторите разведения вниз по каждой строке, отбросив окончательные 100 мкл от каждой лунки в ряду H.
    4. Накройте пластину парафильмом и инкубируйте при 4 ° C в течение ночи.
    5. Вымойте плитуС 200 мкл PBS, 0,05% Tween-20 на лунку три раза.
    6. Добавьте 200 мкл блокирующего буфера в покрытые лунки, накройте Parafilm и инкубируйте при 4 ° C в течение ночи.
    7. Разбавьте 1/15 000 стрептавидин-HRP в блокирующем буфере и добавьте 100 мкл в каждую лунку планшета. Накрыть парафильмом и инкубировать при 4 ° C в течение ночи.
    8. Промойте планшет в 200 мкл PBS, 0,05% Tween-20 на лунку пять раз.
    9. Чтобы обнаружить, добавьте 100 мкл реагента ТМБ на лунку. После достаточного развития цвета, обычно между 10-15 мин, добавьте 100 мкл 1 М фосфорной кислоты, чтобы остановить реакцию.
    10. Прочтите поглощение каждой лунки при λ = 450 нм.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Результаты

Эпителиальные клетки были выделены из тканей кишечника R. microplus в соответствии с схемой, представленной на рисунке 1 . Репрезентативные снимки флуоресцентной микроскопии эпителиальных клеток кишечника, полученные с использованием этог?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Обсуждение

Население крупного рогатого скота представляет собой серьезную проблему для крупного рогатого скота в тропических и субтропических регионах мира, причем наиболее распространенный метод контроля зависит от использования акарицидов 1 , 4 . Bm86 ранее был и?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Авторы хотели бы поблагодарить биозащищенности Tick колонию (Квинсленд Департамент сельского хозяйства и рыболовство, Австралия) для предоставления Rhipicephalus MicroPlus клещи , используемой для данного исследования, и Лукас Karbanowicz за помощью видеосъемки.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
0.4% Trypan BlueThermoFisher Scientific15250061
1.5 mL microcentrifuge tubeEppendorf3322
100mM Carbonate Buffer3.03 g Na2CO3, 6.0 g NaHCO3 1000 ml distilled water pH 9.6
16 mL centrifuge tubes with sealing capThermo Scientific3138-0016Cool in ice prior to gradient
250 µM cell strainerThermo Fisher87791
3,3′,5,5′-Tetramethylbenzidine (TMB) Liquid Substrate System for ELISASigmaT0440Stored at 4C
30% Hydrogen PeroxideLabsceneBSPA5.500
4-20% Tris-MOPS GelGen ScriptM42015
4-Chloro-1-naphthol tabletSigma-AldrichC6788
50 mL Falcon TubeCorning Blue30 x 115mm style. Polyproplyene conical tube.
70 µM cell strainerBD Falcon352350
AP15 filter paperMilliporeAO1504200
Biotin (Type A) Conjugation KitAbcamAb102865
Dissection microscopeOlympusSZX7
DP Manager Olympus2.2.1.195Cell imagery software
Duct TapeHome Handyman48mm x 25mm Duct Tape
Dulbecco’s Modified Eagle MediumGibco11995-065DMEM - ice cold for protocol
EDTAAmresco0105-500G
F96 Maxisorp Immuno PlateNunc439454
Fetal Bovine SerumSigma-Aldrich12003CFCS
Fluorescence microscope  Olympus BX51
Fluoroshield with DAPISigma-AldrichF6057-20MLDAPI
ForcepsDumont#9 Dumont - Switerzland
GlycerolSigma-AldrichG5516Glycerol for molecular biology >99%
GlycineSigma-Aldrich410225
Hand-Held CounterOfficeworksJA0376230
Hank’s Balanced Salt SolutionSigma Life SciencesH9394HBSS – ice cold for protocol
HemacytometerOptik Lakor--
L-Glutathione oxidizedSigma-AldrichG4376
Magnetic Separation StandNovagen-4-Tube Magnetic Separation Rack
MethanolSigma-Aldrich179337
Milli-Q WaterMilliporeZRXQ003WWIntegral Water Purification System for Ultrapure Water
Nitrocellulose MembraneLife Sciences6648530cm x 3M pure nitrocellulose membrane
PageRuler Prestained protein LadderThermo-FisherSM0671
PBS1.16 g Na2HPO4, 0.1 g KCl, 0.1 g K3PO4, 4.0 g NaCl (500 ml distilled water) pH 7.4
PercollSigma-AldrichP1644-500ML
Peristaltic PumpMasterflex7518-10
Phosphoric AcidSigma-AldrichP6560
Pierce Protein-Free T20 PBS Blocking BufferThermo-Scientific37573Stored at 4C. Blocking Buffer
Protease Inhibitor CocktailSigma-AldrichP8215-5MLPIC – stored at -20 °C
Quick Start Bradford Dye Reagent 1xBiorad500-0205For Bradford Assay
Quick Start BSA StandardsBiorad500-0207BSA standards for Bradford Assay
ScalpelLab. CoSize 11 Scalpel
SilverQuest TM Staining KitInvitrogenLC6070
Simply Blue TM Safe Stain InvitrogenLC6060
Sorvall C6+ UltracentrifugeThermo Scientific46910
Streptavidin (HRP)AbcamAB7403
Streptavidin Magnetic BeadsNew England BiolabsS1420S
Super Glue - Ultra Fast MiniUHUUHU Super Glue 1mg. Ultra Fast mini
Table-top CentrifugeEppendorf22331
TCEPThermo Fisher20490
Triton X-100Biorad161-0407
Tween-20SigmaP2287-500ML
Vortex MixerRatekVM1
Water BathGrantGD100

Ссылки

  1. Rodriguez-Valle, M., et al. Efficacy of Rhipicephalus (Boophilus) microplus Bm86 against Hyalomma dromedarii and Amblyomma cajennense tick infestations in camels and cattle. Vaccine. 30, 3453-3458 (2012).
  2. De Rose, R., et al. Bm86 antigen induces a protective immune-response against Boophilus microplus following DNA and protein vaccination in sheep. Vet. Immunol. Immunopathol. 71, 151-160 (1999).
  3. García-García, J. C., et al. Sequence variations in the Boophilus microplus Bm86 locus and implications for immunoprotection in cattle vaccinated with this antigen. Exp. Appl. Acarol. 23, 883-895 (1999).
  4. Abbas, R. Z., Zaman, M. A., Colwell, D. D., Gilleard, J., Iqbal, Z. Acaricide resistance in cattle ticks and approaches to its management: The state of play. Vet. Parasitol. 203, 6-20 (2014).
  5. Kearney, S. Acaricide (chemical) resistance in cattle ticks. , AgNote No. K58. (2013).
  6. Foil, L. D., et al. Factors that influence the prevalence of acaricide resistance and tick-borne diseases. Vet. Parasitol. 125, 163-181 (2004).
  7. Rodriguez, M., et al. High level expression of the B. microplus Bm86 antigen in the yeast Pichia pastoris forming highly immunogenic particles for cattle. J Biotechnol. 33, 135-146 (1994).
  8. Rodriguez, M., et al. Effect of vaccination with a recombinant Bm86 antigen preparation on natural infestations of Boophilus microplus in grazing dairy and beef pure and cross-bred cattle in Brazil. Vaccine. 13 (18), 1804-1808 (1995).
  9. Lew-Tabor, A. E., Rodriguez Valle, M. A review of reverse vaccinology approaches for the development of vaccines against ticks and tick borne diseases. Ticks Tick Borne Dis. 7, 573-585 (2016).
  10. Capella, A. N., Terra, W. R., Ribeiro, A. F., Ferreira, C. Cytoskeleton removal and characterization of the microvillar membranes isolated from two midgut regions of Spodoptera frugiperda (Lepidoptera). Insect Biochem. Mol. Biol. 27, 793-801 (1997).
  11. Cioffi, M., Wolfersberger, M. G. Isolation of separate apical, lateral and basal plasma membrane from cells of an insect epithelium. A procedure based on tissue organization and ultrastructure. Tissue Cell. 15, 781-803 (1983).
  12. Koefoed, B. M. A simple mechanical method to isolate the basal lamina of insect midgut epithelial cells. Tissue Cell. 17, 763-768 (1985).
  13. Roche, J. K. Isolation of a purified epithelial cell population from human colon. Methods Mol. Med. 50, 15-20 (2001).
  14. Terra, W. R., Costa, R. H., Ferreira, C. Plasma membranes from insect midgut cells. An. Acad. Bras. Ciênc. 78, 255-269 (2006).
  15. Vargas, A. E., Markoski, M. M., Cañedo, A. D., Helena, F., Nardi, N. B. Identification, isolation and culture of intestinal epithelial stem cells from murine intestine. Stem Cells. 879, 479-490 (2012).
  16. Autengruber, A., Gereke, M., Hansen, G., Hennig, C., Bruder, D. Impact of enzymatic tissue disintegration on the level of surface molecule expression and immune cell function. Eur. J. Microbiol. Immunol. 2, 112-120 (2012).
  17. Karhemo, P. R., et al. An optimized isolation of biotinylated cell surface proteins reveals novel players in cancer metastasis. J. Proteomics. 77, 87-100 (2012).
  18. Obenchain, F. R., Galun, R. Physiology of Ticks. Current Themes in Tropical Science Volume 1. , Pergamon Press. 201-205 (1982).
  19. Sonenshine, D., Roe, R. Chapter 3.1. "Biology of Ticks". 1, Two, Oxford University Press. (2014).
  20. Raikhel, A. S., Balashov, Y. S. "An Atlas of Ixodid Tick Ultrastructure" (English Translation). , Entomology Society of America Entomological Society of America. (1983).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

Biochemistry

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены