Этот метод исключает любую серьезную инвазию во время инъекций клеток, вызванную раствором клеточной суспензии.
Непосредственное введение клеток в ткани является необходимым процессом при введении клеток и/или заместительной терапии. Для введения клеток требуется достаточное количество суспензионного раствора, чтобы позволить клеткам проникнуть в ткани. Объем раствора суспензии влияет на ткани, и это может привести к серьезному инвазивному повреждению в результате введения клеток. В этой статье сообщается о новом методе клеточной инъекции, называемом медленной инъекцией, который направлен на предотвращение этой травмы. Однако для выталкивания ячеек из кончика иглы требуется достаточно высокая скорость впрыска в соответствии с законом сдвиговой силы Ньютона. Для разрешения вышеуказанного противоречия в качестве раствора клеточной суспензии в данной работе использовалась неньютоновская жидкость, такая как раствор желатина. Раствор желатина обладает температурной чувствительностью, так как его форма меняется от геля к золю примерно на 20 °C. Поэтому для поддержания раствора клеточной суспензии в форме геля шприц держали охлажденным в этом протоколе; Однако, как только раствор был введен в организм, температура тела превратила его в золь. Поток межтканевой жидкости может абсорбировать излишки раствора. В этой работе техника медленной инъекции позволила шарикам кардиомиоцитов войти в миокард хозяина и прижиться без окружающего фиброза. В этом исследовании использовался метод медленной инъекции для введения очищенных и сформированных в виде шара кардиомиоцитов новорожденных крыс в отдаленную область инфаркта миокарда в сердце взрослой крысы. Через 2 месяца после инъекции в сердцах трансплантированных групп наблюдалось значительное улучшение сократительной функции. Кроме того, гистологический анализ медленно вводимых сердец выявил бесшовные связи между кардиомиоцитами хозяина и трансплантата через интеркалированные диски, содержащие щелевые соединения. Этот метод может внести вклад в клеточную терапию следующего поколения, особенно в регенеративной медицине сердца.
Введение и замена клеток являются многообещающими новыми терапевтическими стратегиями для сильно поврежденных органов. Среди этих новых терапевтических стратегий значительное внимание привлекла регенеративная медицина сердца. Однако воспаление, вызванное травмами, опосредует образование рубцов в нескольких органах 1,2,3,4. Человеческое сердце состоит примерно из10-10 кардиомиоцитов; Следовательно, теоретически5,6, его нужно лечить более чем 10-9 кардиомиоцитами. Введение большого количества кардиомиоцитов традиционными инъекционными методами может привести к значительному повреждению тканей7. Этот метод представляет собой новый метод введения клеток с минимальной инвазией в ткани.
Введение клеток в паренхиму органа требует инъекции. Однако существует несоответствие в том, что сама инъекция может привести к повреждению тканей. Повреждение тканей вызывает местное воспаление и неизлечимое рубцевание в органах и тканях, а также нарушение регенеративной способности 8,9,10. Сердце млекопитающих имеет чрезвычайно высокую склонность к образованию рубцов вместо того, чтобы восстанавливаться, потому что оно требует немедленного восстановления после травмы, чтобы выдержать высокое кровяное давление, вызванное его непрерывной насоснойфункцией. Абляционная терапия использует эту высокую склонность к образованию рубцов и блокирует цепь, которая может подвергнуться образованию рубцов с помощью аритмии12. В предыдущем исследовании было замечено, что рубцовая ткань изолирует введенные кардиомиоциты в миокарде хозяина. Таким образом, это представляет собой следующую целевую проблему, которую необходимо преодолеть для повышения терапевтической эффективности в сердечной регенеративной медицине.
Поток межтканевой жидкости играет жизненно важную роль в транспортировке кислорода и питательных веществ к клеткам и удалении выводимых из клеток отходов. Физиологическая скорость потока интерстициальной жидкости в каждой ткани/органе различна (диапазон 0,01-10 мкм/с)13. Насколько известно автору, нет данных о способности отдельных тканей/органов поддерживать избыточное количество жидкости без патологического отека; Тем не менее, в этом эксперименте предпринята попытка использовать медленную скорость инъекции, чтобы, возможно, уменьшить повреждение тканей, и результаты могут быть использованы для определения практичности этой концепции.
Эксперименты на животных проводились в соответствии с этическими рекомендациями Медицинского университета Кансай для экспериментов на животных и были одобрены этическими комитетами (номер одобрения: 23-104). Все животные были выращены в постоянном цикле света и темноты в специфической среде, свободной от патогенов. Все стерилизованные хирургические инструменты, такие как ножницы, щипцы и ретракторы, были автоклавированы и тщательно высушены.
1. Приготовление шариков кардиомиоцитов новорожденной крысы
2. Препараты для медленного инъекционного метода
3. Разработка модели инфаркта миокарда крысы при тупой окклюзии коронарных артерий
4. Чрескожная трансплантация клеток под контролем эхо-контроля методом медленной инъекции
5. Оценка сердечной функции
6. Иммуногистохимия
Влияние медленной инъекции на выживаемость клеток и отложение коллагена
Шарики кардиомиоцитов новорожденных крыс, меченные PKH26, вводили в нормальный голый миокард крысы с помощью обычного или медленного метода инъекции. Результаты показали, что метод медленной инъекции значительно увеличил объем приживленных клеток (рис. 3А) и значительно снизил отложение коллагена I типа на месте (рис. 3Б).
Влияние медленной инъекции на эффективность лечения в модели инфаркта крыс
Метод медленной инъекции под контролем эхокардиографа был использован для введения шариков кардиомиоцитов новорожденных крыс или PBS(−) в инфарктные сердца модельных крыс. Только в группе, получавшей инъекции клеток, наблюдалось значительное улучшение функции сокращения сердца через 2 месяца (рис. 4A). Иммуногистохимический анализ выявил бесшовную связь между привитыми клетками и миоцитами хозяина через интеркалированные диски, содержащие щелевые контакты (рис. 4Б).
Рисунок 1: Схема всей системы впрыска . (А) Основной инжекторный аппарат. (B) Система охлаждения инъекционного шприца. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 2: Чрескожная медленная инъекция под контролем эхокардиографии . (A) Настройка животного, эхо-зонда и инъекционного аппарата. (Б) Эхокардиографический снимок инъекционного шприца и сердца. Обратите внимание, что левая и правая картинки совпадают, но добавлена желтая линия для обозначения положения иглы. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 3: Влияние метода медленной инъекции на объем приживленных клеток и отложение коллагена. (A) Объемы привитых клеток (N = 3) рассчитывали по последовательным срезам. Столбцы погрешности показывают стандартные отклонения. *P < 0,01 в непарном t-критерии. (B) Иммуногистохимическое окрашивание коллагена I типа. Масштабная линейка показывает 200 мкм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 4: Улучшение функции сердца и гистологическая интеграция с шариками кардиомиоцитов, привитыми методом медленной инъекции. (A) Репрезентативные виды эхокардиографа в М-режиме. На графике показан переход укорочений фракций в группе кардиомиоцитарного шара, трансплантированного (сплошная красная линия; N = 4) и транспортная (клеточная суспензионная раствор для метода медленного впрыска) (пунктирная синяя линия; N = 3). Сокращения: ИМ = инфаркт миокарда; Cx43 = коннексин 43; DAPI = 4',6-диамидино-2-фенилиндол; PKH26 = красная флуоресцентная метка клеточной мембраны. Столбцы погрешности обозначают стандартные отклонения. *P < 0,01 в парном t-критерии. (Б) Иммуногистохимический анализ взаимосвязи между трансплантированными шариками кардиомиоцитов и кардиомиоцитами хозяина. В левой колонке показаны обычные лазерные микроскопические наблюдения с использованием объектива с 2-кратным увеличением. Увеличенные версии (с использованием объектива с 20-кратным увеличением) двух областей, показанных в рамке, помеченных * и #, представлены ниже. Масштабные линейки: верхнее изображение = 300 мкм; * и # = 30 мкм. Конфокальные лазерные микроскопические изображения с использованием 20-кратного объектива демонстрируются вместе для сравнения. Показаны три позиции. На объединенных изображениях стрелки указывают на существование щелевых контактов (Cx43), непосредственно соединяющих трансплантат и кардиомиоциты хозяина. Масштабная линейка показывает 30 мкм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Дополнительное видео 1: Метод медленного впрыска под эхо-контролем. На В-режиме эхокардиограммы в фронтальной проекции видно, что кончик инъекционной иглы продвинулся в миокард. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.
Одним из критических моментов успешного выполнения метода медленного впрыска является подготовка эффективной системы впрыска с использованием мощного шприцевого насоса и прочной трубки для перекачки давления. Для выталкивания геля из кончика тонкой иглы требуется система высокого давления. Второй критический момент – стабилизация работы сердца. Биение сердца о инъекционную иглу, введенную в миокард, может повредить ткань. В этом исследовании была проведена инъекция под эхо-контролем, чтобы избежать второй открытой травмы грудной клетки у животных и ввести инъекцию клеток в стабилизированное сердце с надутыми легкими. Более того, в некоторых случаях для более крупных животных или людей некоторые инъекционные устройства, прикрепленные к сердцу, следует рассматривать как часть стратегического дизайна приложения. Для открытых грудных инъекций в сердце мелких животных рекомендуется использовать длинную гибкую иглу, учитывая их более высокую частоту сердечных сокращений.
В данной работе метод медленной инъекции значительно увеличил объем сохранившихся кардиомиоцитов по сравнению с обычным инъекционным методом. Нормальный впрыск вызывает повреждение клетки из-за напряжения сдвига15. В отличие от этого, метод медленного впрыска теоретически не вызывает такого напряжения, потому что он использует неньютоновское решение в дополнение к медленному впрыскиванию.
Что касается локального фиброза, то интерстициальное пространство вокруг нормально введенных выживших кардиомиоцитов показало сильное и широкое отложение коллагена I типа. Напротив, сигналы коллагена I типа вокруг привитых кардиомиоцитов, пересаженных методом медленной инъекции, были намного слабее и ограниченнее. Это говорит о том, что метод медленного впрыска нанес значительно меньший ущерб. Медленное введение неонатальных кардиомиоцитов во взрослый миокард значительно улучшило сократительную функцию инфарктного сердца. Гистологический анализ показал, что пересадка кардиомиоцитов методом медленной инъекции приводит к прямым связям и функциональному сопряжению с кардиомиоцитами хозяина. Это явление объясняет механизм функционального восстановления миокарда хозяина. Насколько нам известно, это первое сообщение об инплантированных неонатальных кардиомиоцитах с крупномасштабными бесшовными соединениями с кардиомиоцитами взрослого хозяина. Функциональные связи с миокардом хозяина через электрическую и механическую связь могут сделать привитые кардиомиоциты зрелыми и позволить им действовать как функциональные миоциты, которые вносят свой вклад в функцию сердца хозяина. Длительные физические силовые взаимодействия между хозяином и кардиомиоцитами трансплантата имеют решающее значение для полного созревания. Таким образом, после инъекции может потребоваться 2 месяца для функционального восстановления инфаркта сердца. Зависящее от времени восстановление сердечной функции пациента может быть ожидаемым явлением в терапевтических приложениях, и это может быть отличительной чертой успешного установления функциональной связи de novo и интеграции между хозяином и трансплантированными кардиомиоцитами.
Метод медленной инъекции может быть выполнен во время открытой операции на грудной клетке. Кроме того, этот метод может быть применен к мышам. Для будущих применений в терапии человека нам все еще необходимо решить несколько вопросов. Скорость инъекции должна быть оптимизирована с учетом буферной емкости потока интерстициальной жидкости в каждом органе-мишени человека. Следует применять материалы, не содержащие ксено, такие как человеческий желатин или биоразлагаемые синтетические материалы. Необходимо разработать клинические аппараты для медленных инъекций в соответствии с требованиями GMP, такие как компактные одноразовые инструменты для специфических органов или многоразовые аппараты, применимые для широких органов.
Автору нечего раскрывать.
Исследование выполнено при поддержке грантов JSPS KAKENHI (грант No 23390072 и 19K07335) и AMED (грант No A-149).
Name | Company | Catalog Number | Comments |
18-gauge needle & tuberculin, 1 mL | Terumo | NN1838R, SS-01T | |
29-gauge 50 mm-long needle | Ito Corporation, Tokyo, Japan | 14903 Type-A | |
A copper tube | General Suppliers | outer diameter, 1 mm; inner diameter, 0.3 mm; thickness, 0.35 mm | |
Ads Buffer | Each ingredient was purchased from Fuji Film Wako Chemical Inc., Miyazaki, Japan | Hand made, Composition: 116 mM NaCl, 20 mM HEPES, 12.5 mM NaH2PO4, 5.6 mM glucose, 5.4 mM KCl, 0.8 mM MgSO4, pH 7.35 | |
alpha-MEM | Fuji Film Wako Chemical Inc., Miyazaki, Japan | 051-07615 | |
Anti-collagen type I rabbit polyclonal antibody (H+L) | Proteintech | 14695-1-AP | using dilution 1:100 |
Anti-Connexin-43 rabbit polyclonal antibody (H+L) | Sigma Aldrich | C6219 | using dilution 1:100 |
Anti-rabbit IgG (H+L) donley polyclonal antibody-AlexaFluo488 | Thermo Scientific | A21206 | using dilution 1:300 |
blocking solution (Blocking One) | Nacalai Tesque, Kyoto, Japan | 03953-95 | |
collagenase | Fuji Film Wako Chemical Inc., Miyazaki, Japan | 034-22363 | |
confocal laser microscope | Carl Zeiss Inc., Oberkochen, Germany | LSM510 META | |
DNase I | Sigma-Aldrich | DN25 | |
FACS Aria III | Becton Dickinson, Franklin Lakes, NJ, USA | ||
fetal bovine serum | BioWest, FL, USA | S1820-500 | |
fine movement device (Micromanipulator) | Narishige Co., Ltd., Tokyo, Japan | M-44 | |
fluorescence microscope | Nikon Instruments, Tokyo, Japan | Eclipse Ti2 | |
gelatin from bovine skin | Sigma-Aldrich | G9382 | dissolving in PBS (-) to 10%, and autoclaving it |
Neonatal Sprague-Dawley (SD) rats | Japan SLC Inc., Shizuoka, Japan | 0–2 d after birth | |
non-adhesive 96-well plates (spheloid plate) | Sumitomo Bakelite, Tokyo, Japan | MS-0096S | |
Optimal Cutting Temperature (OCT) Compound | Sakura Finetek USA, Inc., CA, USA | Tissue-Tek OCT compound | |
peristaltic pump (for cooling system) | As One Co., Osaka, Japan | SMP-23AS | |
PKH26 | Sigma-Aldrich | PKH26GL | |
Stir Bar, Micro, Magnetic, PTFE, Length x Dia. in mm: 5 x 2 | Chemglass life sciences LLC, NJ, USA | CG-2003-120 | |
syringe | Ito Corporation, Tokyo, Japan | MS-N25 | |
syringe pump with remote controller | As One Co., Osaka, Japan | MR-1, CT-10 | |
tetramethylrhodamine methyl ester | Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA | T668 | |
trypsin | DIFCO, Becton Dickinson, Franklin Lakes, NJ, USA | 215240 | |
Tween-20 | Fuji Film Wako Chemical Inc., Miyazaki, Japan | 167-11515 | |
veterinarian ointment | Fujita Pharmaceutical Co., Ltd. | Hibikusu ointment #WAK-95832 | |
Vevo 2100 Imaging System | Fujifilm VisualSonics, Inc., Toronto, Canada | Vevo 2100 | |
Vevo 2100 Imaging System software version 1.0.0 | Fujifilm VisualSonics, Inc., Toronto, Canada | Vevo 2100 | |
Weakly curved needle with ophthalmic thread | Natsume Seisakusho Co., Ltd., Tokyo, Japan | C7-70 |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеСмотреть дополнительные статьи
This article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены