Мы благодарим Сантьяго Суарес за критическое прочтение рукописи и Бетти Cowgill для помощи в фотографии. Мы также благодарим анонимных рецензентов за их критической обратной связи. Эта работа проводится при поддержке Университета штата Делавэр исследовательского фонда.

1. Подготовка протаминсульфат (PS) с покрытием Посуда <ol><li> Подготовка 1%-ный раствор сульфата протамина (PS), добавляя 0,5 г PS в 50 мл деионизованной дистиллированной воде (DDH 2 O) в 50 мл коническую пробирку. Хорошо взболтать на высокой скорости на скамейке шейкере при комнатной температуре в течение 1-2 часов, чтобы обеспечить полное растворение PS. Это решение может храниться при температуре 4 ° С в течение не менее 3 месяцев (убедитесь, что для полного растворения гелеобразную осадка перед каждым использованием) 3. </li><li> Возьмите рукав 60 мм х 15 мм полистирола чашки Петри и выложить обе крышки и основания на скамейке. </li><li> Залить 1%-ный раствор PS в каждом блюде (оба днища и крышки можно использовать) только достаточно, чтобы покрыть поверхность, оставить на 2 мин. Раствор PS остаток может быть повторно использован много раз в течение 3 месяцев при хранении при 4 ° С. </li><li> Место PS обработанные блюда в химический стакан, наполненный дистиллированной воде (дН 2 O). Оставьте стакан под струей дН 2 O, по крайней мере10 мин. </li><li> Блюда ПС-покрытием можно использовать сразу или воздух сухой для хранения. Покройте их, чтобы предотвратить накопление пыли. Они могут храниться при комнатной температуре в течение 1 месяца 3. </li></ol> 2. Получить морской еж гамет и Остановите яйца на блюдо ПС-покрытием для микроинъекции <ol><li> Spawn морские ежи при встряхивании или внутрицеломических инъекция до 1 мл 0,5% хлорида калия, чтобы вызвать сокращение гладких мышц, чтобы освободить гаметы 3 (рис. 2). </li><li> Если животное мужского пола, как указано в белый цвет спермы, собирать спермы в сухом от поверхности животного в 1,5 мл трубки. Сухой сперма может храниться при 4 ° С в течение недели без существенной потери биологической функции. </li><li> Если животное является женщина, на что указывает желтый цвет из-за содержания яичного желтка, собирать его гаметы путем погружения gonopores в химический стакан, полный морской воды. Яйца будут освобождены от gonopores и поселиться под действием силы тяжести. &lt;/ Li&gt; <li> Фильтр яйца от мусора, например шипами на животных с использованием 80 нейлоновый фильтр сетку мкм. Лучшие результаты достигаются, если яйца используются в пределах 5-7 часов после нереста. </li><li> Dejelly яйца: <ol><li> Подготовка 100 мл кислой морской воде в течение приблизительно 1 мл яйца. Используйте 0,5 М лимонной кислоты, чтобы довести рН морской воды от рН 8,0 до 5,1-5,2. Слишком низкое рН снизится оплодотворение и слишком высокой рН не позволит яйца приложить к пластинам на PS покрытием. </li><li> Добавить яйца (не более 1 мл), кислой морской воды и позволяют яйца, чтобы успокоиться на льду в течение 10 мин. Кроме того, удаление студенистой оболочки может быть облегчено путем осторожного закрученной яиц во время лечения. Можно эффективно dejelly S. purpuratus яйца в 3-4 мин этот путь. </li><li> Тщательно слейте кислой морской воды, добавить свежий морской воды и пусть яйца поселиться на льду снова. Dejellied яйца можно хранить на льду в течение до 6 часов без проблем оплодотворения </li></ol></литий&gt; </ol> 3. Ряд яйца <ol><li> Подготовка 1 М исходного раствора 3-аминотриазол (3-AT, ММ = 84,08) путем растворения 0,84 г 3-АТ в 10 мл DDH 2 O. Этот раствор можно хранить при температуре 4 ° С в течение до 6 месяцев. </li><li> Подготовка 1 мм Рабочий раствор 3-AT добавлением 50 мкл 1 М раствора в 50 мл prechilled морской воды. Держите решение на льду. </li><li> Подготовка рот пипеткой (рис. 3) для бережной обработки яиц: <ol><li> Пипетки вручную вытащил из стеклянных микропипеток (100 х OD 1,09 мм). Держите микропипетки обеими руками над открытым пламенем. Как стекло начинает плавиться, осторожно потяните концы пипетки в противоположных направлениях. </li><li> Подключите один вытащил пипетки к пластиковой трубки (ID 1,14 мм), печать туго с парафильмом. Длина трубки должна быть примерно 50-70 см. </li><li> Вставка стерильно фильтруют P20 или P200 наконечник на конце, противоположном патрубка к стеклянной трубки киспользоваться как мундштук. </li><li> Клип конец стеклянной микропипетки с ножницами, чтобы регулировать диаметр наконечника. Оптимальный диаметр слегка превышает диаметр яйца (80 мкм). </li></ol></li><li> Налейте 4 мл 1 мМ 3-АТ морской воды в каждую PS покрытием блюдо (внизу или крышки). </li><li> Возьмите рот пипеткой, введите наконечник P20/P200 в рот и закрепите его с помощью зубов. Для аспирации яйца, первый аспирации небольшого количества морской воды. Имея столба жидкости перед загрузкой яйца, то придется максимальный контроль над техникой пипетки ртом. </li><li> Разместите наконечник микропипетки возле яиц и аккуратно аспирации в несколько сотен яиц в пипетку. Ограничьте яйца в стеклянной микропипетки. </li><li> Ряд dejellied яйца в прямой линии на блюдо, осторожно дует их из рта пипетки при перемещении наконечника по прямой. Ряд яйца прямо перед инъекциями, потому что проблемы оплодотворения может произойти из-за рrolonged воздействия 3-АТ морской воды 3. Кроме того, катионные клеи, как ПС могут быть токсичными для яиц, и это не рекомендуется подвергать эмбрионов этих реагентов в течение длительного времени, особенно если оплодотворение конверты были удалены. </li><li> Сделать царапину на блюдо вблизи линии гребли яиц с помощью стеклянной пипетки. Это царапина будет важно сломать инъекционной иглы для регулировки потока раствора по мере необходимости. С другой стороны, царапина может быть сделано перед заливкой морской воды 3-AT к блюду. </li></ol> 4. Микроинъекции морского ежа зиготы <ol><li> Включите микроинъекции станции. Здесь мы опишем использование системы впрыска FemtoJet. </li><li> Потяните впрыска капилляры помощью иглы съемник. Пример хорошего иглы показан на рисунке 4. Примечание: Для РНК инъекций, инъекций капилляры должны быть предварительно обработаны, чтобы избежать РНКазы загрязнения 31: <ol><li> Месте инъекции капилляры в 50 мл коническуютрубы и добавить 50 мл отфильтрованной смеси метанол / HCl (9:1). Хорошо встряхните и оставьте на ночь в течение не более 10 часов. </li><li> Слейте метанол / HCl и промыть капилляры 2x с фильтрованной метанола в той же трубе. </li><li> Слить метанол, насколько это возможно и лиофилизуют в течение ночи капилляры, чтобы обеспечить полное удаление метанола. </li></ol></li><li> Осторожно установите иглы капилляр на иглы загрузки держателя и загрузить его с &lt;0,5 мкл раствора образца с использованием microloader советы. Растворы образцов обычно содержат 20% глицерина, в зависимости от впрыскиваемого материала 3. </li><li> Место блюдо с гребли яиц на столик микроскопа (яйца должны быть выровнены по вертикали, если смотреть через окуляры) и сосредоточиться на яйцах. </li><li> Осторожно установите загруженный иглу на держатель иглы microinjecting и отрегулировать положение иглы, чтобы иметь полностью сфокусированное наконечник в середине поля. </li><li> Нажмите на кнопку, чтобы применить максимальное давление FOг очистки иглы. Решение должно прийти из иглы. Регулировка давления в случае необходимости: давление впрыска должна быть в диапазоне 90-360 кПа, при давлении компенсации приблизительно 1/3 от давления впрыска. </li><li> Отрегулируйте поток раствора путем введения в неоплодотворенных яиц. Использование джойстика микроманипулятор, направить кончик инъекционной иглы в неоплодотворенных яиц. Для облегчения ввода иглы, создать легкую дрожь, осторожно разговоров сцены с твердым предметом, таких как отвертки. Болюсной инъекции формирования внутри яйца следует рассматривать (рис. 5). </li><li> Если болюсной инъекции не видно, слегка приподнимите кончик иглы выше яиц, найдите царапину на блюдо и настроить его должен быть расположен в середине поля. Слегка постучите кончик иглы к царапиной сломать кончик инъекционной иглы. Отрегулируйте впрыска и компенсации давления для того, чтобы болюсной инъекции не превышает 1/5 тон диаметр яйца (1-2 мкм). </li><li> После болюсной инъекции откалиброван, оплодотворить яйца, добавив разбавленный сперму (1:1000) или 1-2 мкл спермы. Хорошо перемешать тщательно, чтобы предотвратить смещение строку яиц. </li><li> Начните инъекции сразу после оплодотворения конверт становится видимым (рис. 5). Перемещение по линии гребли яиц с использованием контроллера этап и ввести столько зиготы, насколько это возможно, тыкая их с иглой под контролем джойстика микроманипулятора. </li><li> После 10-15 мин, вновь оплодотворенных яиц станет закаленного и не может быть введен больше. Снимите блюдо со сцены и тщательно аспирата из спермы в морской воде 3-АТ с помощью пластиковой пипетки Пастера. </li><li> Не позволяйте зиготы сухой. Быстро добавить свежий prechilled морскую воду, чтобы покрыть блюдо. Инкубируйте эмбрионов при 15 ° С </li></ol>

<ol>
	<li>Muramatsu, T., Mizutani, Y., Ohmori, Y., Okumura, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+three+nonviral+transfection+methods+for+foreign+gene+expression+in+early+chicken+embryos+in+ovo.">Comparison of three nonviral transfection methods for foreign gene expression in early chicken embryos in ovo.</a> Biochem. Biophys.Res. Commun. 230, 376-380 (1997).</li><li>Peng, H., Wu, Y. Y., Zhang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficient+Delivery+of+DNA+and+Morpholinos+into+Mouse+Preimplantation+Embryos+by+Electroporation.">Efficient Delivery of DNA and Morpholinos into Mouse Preimplantation Embryos by Electroporation.</a> Plos One. 7, 13 (2012).</li><li>Ettensohn, C. A., Wray, G. A., Wessel, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> eds. Development of sea urchins, ascidians, and other invertebrate deuterostomes: experimental approaches. 74, (2004).</li><li>Franks, R. R., Houghevans, B. R., Britten, R. J., Davidson, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+introduction+of+cloned+DNA+into+the+sea+urchin+zygote+nucleus,+and+fate+of+injected+DNA.">Direct introduction of cloned DNA into the sea urchin zygote nucleus, and fate of injected DNA.</a> Development. 102, 287-299 (1988).</li><li>Kinsey, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+signaling+pathways+in+zebrafish+development+by+microinjection.">Analysis of signaling pathways in zebrafish development by microinjection.</a> Methods Mol. Biol. 518, 67-76 (2009).</li><li>Kola, I., Sumarsono, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microinjection+of+in+vitro+transcribed+RNA+and+antisense+oligonucleotides+in+mouse+oocytes+and+early+embryos+to+study+the+gain-+and+loss-of-function+of+genes.">Microinjection of in vitro transcribed RNA and antisense oligonucleotides in mouse oocytes and early embryos to study the gain- and loss-of-function of genes.</a> Mol. Biotechnol. 6, 191-199 (1996).</li><li>Mishina, T., Fuchimukai, K., Igarashi, K., Tashiro, K., Shiokawa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modification+of+secondary+head-forming+activity+of+microinjected+a+dagger+beta-catenin+mRNA+by+co-injected+spermine+and+spermidine+in+Xenopus+early+embryos.">Modification of secondary head-forming activity of microinjected a dagger beta-catenin mRNA by co-injected spermine and spermidine in Xenopus early embryos.</a> Amino Acids. 42, 791-801 (2012).</li><li>O'Meara, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gene+silencing+in+bovine+zygotes:+siRNA+transfection+versus+microinjection.">Gene silencing in bovine zygotes: siRNA transfection versus microinjection.</a> Reprod. Fertil. Dev. 23, 534-543 (2011).</li><li>Dean, D. A., Gasiorowski, J. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nonviral+gene+delivery.">Nonviral gene delivery.</a> Cold Spring Harb. Protoc. , (2011).</li><li>Hiramoto, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+division+without+mitotic+apparatus+in+sea+urchin+eggs.">Cell division without mitotic apparatus in sea urchin eggs.</a> Exp. Cell Res. 11, 630-636 (1956).</li><li>Wilson, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Methods in Cell Biology. 25, (1982).</li><li>Gross, J. M., McClay, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+Brachyury+(T)+during+gastrulation+movements+in+the+sea+urchin+Lytechinus+variegatus.">The role of Brachyury (T) during gastrulation movements in the sea urchin Lytechinus variegatus.</a> Dev. Biol. 239, 132-147 (2001).</li><li>Yajima M, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Autonomy+in+specification+of+primordial+germ+cells+and+their+passive+translocation+in+the+sea+urchin.">Autonomy in specification of primordial germ cells and their passive translocation in the sea urchin.</a> Development. 139, 3786-3794 (2012).</li><li>Duboc, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nodal+and+BMP2/4+pattern+the+mesoderm+and+endoderm+during+development+of+the+sea+urchin+embryo.">Nodal and BMP2/4 pattern the mesoderm and endoderm during development of the sea urchin embryo.</a> Development. 137, 223-235 (2010).</li><li>Ernst, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Offerings+from+an+Urchin.">Offerings from an Urchin.</a> Dev. Biol. 358, 285-294 (2011).</li><li>McClay, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evolutionary+crossroads+in+developmental+biology:+sea+urchins.">Evolutionary crossroads in developmental biology: sea urchins.</a> Development. 138, 2639-2648 (2011).</li><li>Sodergren, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Research+article+-+The+genome+of+the+sea+urchin+Strongylocentrotus+purpuratus.">Research article - The genome of the sea urchin Strongylocentrotus purpuratus.</a> Science. 314, 941-952 (2006).</li><li>Roux, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+functional+genomic+and+proteomic+perspective+of+sea+urchin+calcium+signaling+and+egg+activation.">A functional genomic and proteomic perspective of sea urchin calcium signaling and egg activation.</a> Dev. Biol. 300, 416-433 (2006).</li><li>Turner, P. R., Sheetz, M. P., Jaffe, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fertilization+increases+the+polyphosphoinositide+content+of+sea+urchin+eggs.">Fertilization increases the polyphosphoinositide content of sea urchin eggs.</a> Nature. 310, 414-415 (1984).</li><li>Voronina, E., Marzluff, W. F., Wessel, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cyclin+B+synthesis+is+required+for+sea+urchin+oocyte+maturation.">Cyclin B synthesis is required for sea urchin oocyte maturation.</a> Dev. Biol. 256, 258-275 (2003).</li><li>Wong, J. L., Wessel, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracellular+matrix+modifications+at+fertilization:+regulation+of+dityrosine+crosslinking+by+transamidation.">Extracellular matrix modifications at fertilization: regulation of dityrosine crosslinking by transamidation.</a> Development. 136, 1835-1847 (2009).</li><li>Shuster, C. B., Burgess, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transitions+regulating+the+timing+of+cytokinesis+in+embryonic+cells.">Transitions regulating the timing of cytokinesis in embryonic cells.</a> Curr. Biol. 12, 854-858 (2002).</li><li>Morris, R. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+cytoskeletal+and+motility+proteins+in+the+sea+urchin+genome+assembly.">Analysis of cytoskeletal and motility proteins in the sea urchin genome assembly.</a> Dev. Biol. 300, 219-237 (2006).</li><li>Minc, N., Burgess, D., Chang, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+Cell+Geometry+on+Division-Plane+Positioning.">Influence of Cell Geometry on Division-Plane Positioning.</a> Cell. 144, 414-426 (2011).</li><li>Davidson, E. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+genomic+regulatory+network+for+development.">A genomic regulatory network for development.</a> Science. 295, 1669-1678 (2002).</li><li>Oliveri, P., Tu, Q., Davidson, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+regulatory+logic+for+specification+of+an+embryonic+cell+lineage.">Global regulatory logic for specification of an embryonic cell lineage.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 5955-5962 (2008).</li><li>Peter, I. S., Davidson, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+gene+regulatory+network+controlling+the+embryonic+specification+of+endoderm.">A gene regulatory network controlling the embryonic specification of endoderm.</a> Nature. 474, (2011).</li><li>Nam, J. M., Dong, P., Tarpine, R., Istrail, S., Davidson, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+cis-regulatory+genomics+for+systems+biology.">Functional cis-regulatory genomics for systems biology.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 3930-3935 (2010).</li><li>Showman, R. M., Foerder, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Removal+of+the+fertilization+membrane+of+sea-urchin+embryos+employing+aminotriazole.">Removal of the fertilization membrane of sea-urchin embryos employing aminotriazole.</a> Exp. Cell Res. 120, 253-255 (1979).</li><li>Lepage, T., Sardet, C., Gache, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spatial+expression+of+the+hatching+enzyme+gene+in+the+sea-urchin+embryo.">Spatial expression of the hatching enzyme gene in the sea-urchin embryo.</a> Dev. Biol. 150, 23-32 (1992).</li><li>Jaffe, L. A., Terasaki, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+microinjection+of+oocytes,+eggs,+and+embryos.">Quantitative microinjection of oocytes, eggs, and embryos.</a> Development of Sea Urchins, Ascidians, and Other Invertebrate Deuterostomes: Experimental Approaches. 74, 219-242 (2004).</li></ol>

Авторы заявляют каких конкурирующих финансовых интересов или другие конфликты интересов.

Микроинъекция является мощным средством для доставки различных процедур, таких как ДНК, РНК, рекомбинантных белков, потеря функции и увеличение функциональных реагентов, красителей и их комбинаций в яйца, эмбрионов и клеток различных организмов 1-7. Тем не менее, несколько сообра?...

Эффективное и воспроизводимое доставка лечение является одним из основных методологических проблем для исследователей. Некоторые методы были созданы для временно поставлять решения по лечению в яйца, эмбрионов и клеток. Эти методы включают электропорации (на основе генерирующих переходных пор в мембране с помощью коротких электрических импульсов) 1,2, липофекция (доставка путем слияния лечения, содержащих липосомы с мембраной) 1, бомбардировки микрочастицами 1 (ДНК осаждают на микрон размеров металлических частиц, которые затем используются для проникновения в клетки с высокой скоростью), и трансдукции (вирус используют в качестве средства доставки трансгенов). На данный момент, микроинъекции единственный подход, который держит преимущество доставки любого решения с 100%-ной эффективности с минимальными реагентов. Кроме того, один инъекционный раствор может состоять из сложного коктейль из обработок. Этот метод был использован для успешнойлы microinject яйца и эмбрионы из многочисленных видов, таких как морские ежи 3,4, зебры рыбы 5, мыши 6, лягушки 7, и крупного рогатого скота 8, а также отдельных клеток в культуре ткани 9. Холост бластомеров инъекции в более поздних стадиях развития также были проведены 10-12. Современные методы микроинъекции основаны на методе давления впрыска, который был первоначально описываемой Hiramoto 10, однако, большой прогресс был достигнут в направлении оптимизации этого процесса. Отличные методы микроинъекции были описаны в других 11, и здесь мы описали один из специфических методов, которые в настоящее время используются для microinject морского ежа (Strongylocentrotus purpuratus) недавно оплодотворенных яйцеклеток. Более века, морские ежи были ценным экспериментальная модель 15,16. Морские ежи эволюционно тесно связаны с хордовых (включая нас) и анализаих геном показал, что они содержат все основные семейств генов, как человека 17. Они производят большое количество синхронно разработки прозрачных эмбрионов, которые можно легко манипулировать. Использование морского ежа в качестве модельного организма, морской еж сообщество внесло свой ​​вклад в наше понимание процесса оплодотворения 18-21, биологических процессов клеточных 22-24 и генных регуляторных сетей (GRNs) 25-28. Микроинъекция в морских ежей зиготы требует нескольких шагов. Во-первых, яйца должны быть иммобилизованы до инъекции (см. ниже). Микроинъекция блюда покрыты сульфат протамина (PS), который создает положительно заряженную поверхность, к которой отрицательно заряженные яйца могут прилипать 3. Яйца dejellied путем инкубации в кислой морской воды (рН 5,15) в течение 10 мин, с последующими двумя промывками в натуральной морской воде или искусственной морской воды (рН 8,0). В dejellied яйца тщательно гребли по прямойв середине покрытого PS-Петри в присутствии 1 мМ 3-аминотриазола (3-AT), который необходим, чтобы ингибировать активность ovoperoxidase, который секретируется из корковых гранул яйца в результате оплодотворения 29. Этот шаг важен, чтобы предотвратить затвердевание оболочки оплодотворения и для облегчения ввода микроинъекции иглы. В качестве альтернативы 1 мМ 3-АТ, 10 мМ paraminobenzoic кислоты (PABA) могут быть использованы. Инъекционный раствор загружают в микроинъекции иглы с использованием специализированного наконечник пипетки microloading и установлен на держателе, прикрепленной к микроманипулятором и блок давления (рис. 1). Каждая игла может быть использован для microinject отдельные зиготы в нескольких экспериментах на отдельные дни. Микроинъекция может быть выполнена в течение 10-15 мин, пока не затвердеет зиготы. В зиготы затем промывают с морской водой и культивировали при 15 ° С Когда эмбрионы достигают вылупления бластулы этап, они выпускают штриховки фермент, который расщепляет компоненты ферtilization конверт 30 и позволить им естественно оторваться от тарелки ПС-покрытием. Если необходимо, эмбрионы могут быть осторожно отделена от тарелки с помощью рот пипеткой или пипетки Пастера, осторожно дует морской воды на эмбрионов. Описанный способ позволяет эффективную и надежную микроинъекции 100-400 недавно оплодотворенных яиц на одном блюде, предоставляя метод высокой пропускной ниже по течению анализов.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:793px;" width="794">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Glass pasteur pipettes</td>
			<td style="width:200px;">VWR</td>
			<td style="width:211px;">14673-043</td>
			<td style="width:167px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Inverted microscope Axiovert 40C</td>
			<td style="width:200px;">Zeiss</td>
			<td style="width:211px;">4109431007990000</td>
			<td>Injection microscope</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Microloader tips</td>
			<td style="width:200px;">Eppendorf</td>
			<td style="width:211px;">5242 956.003</td>
			<td style="width:167px;">Load injection solution</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Nylon filter mesh 80 &#956;m</td>
			<td style="width:200px;">Amazon.com</td>
			<td style="width:211px;">03-80-37</td>
			<td style="width:167px;">Filter eggs to get rid of debris</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">P20 or P200 Aerosol Barrier Pipette Tips</td>
			<td style="width:200px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:211px;">02707432 or 02707430</td>
			<td style="width:167px;">Part of a mouth pipette</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Parafilm</td>
			<td style="width:200px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:211px;">13 374 12</td>
			<td style="width:167px;">Part of a mouth pipette</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Polyethylene tubing</td>
			<td style="width:200px;">Intramedic</td>
			<td style="width:211px;">PE-160</td>
			<td style="width:167px;">Part of a mouth pipette</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Protamine sulfate</td>
			<td style="width:200px;">MP Biomedicals, LLC</td>
			<td style="width:211px;">194729</td>
			<td style="width:167px;">Attach dejellied eggs to injection dishes</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Sea urchins S. purpuratus</td>
			<td>Pt. Loma Marine Invertebrate Lab</td>
			<td style="width:211px;">N/A</td>
			<td style="width:167px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Sea water</td>
			<td style="width:200px;">any pet store</td>
			<td style="width:211px;">Instant Ocean</td>
			<td style="width:167px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Sterile 60 mm x 15 mm Polystyrene Petri Dish</td>
			<td style="width:200px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:211px;">0875713A</td>
			<td style="width:167px;">Injection dishes</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Three-Axis Coarse Positioning Micromanipulator MMN-1</td>
			<td style="width:200px;">Narishige</td>
			<td style="width:211px;">9124</td>
			<td>Manipulate injection needle</td>
		</tr>
		<tr height="84">
			<td height="84" style="height:84px;width:216px;">Three-Axis Joystick Type Oil Hydraulic Fine Micromanipulator MMO-202ND</td>
			<td style="width:200px;">Narishige</td>
			<td style="width:211px;">9212</td>
			<td>Manipulate injection needle</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Transfer pipettes</td>
			<td style="width:200px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:211px;">13-711-9AM</td>
			<td style="width:167px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Vertical needle puller </td>
			<td style="width:200px;">Narishige</td>
			<td style="width:211px;">PC-10</td>
			<td>Pull injection needles</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

high throughput microinjections of sea urchin zygotes

Микроинъекции в клетки и эмбрионы в является общим методом, который используется для изучения широкий спектр биологических процессов. В этом методе небольшое количество обрабатывающего раствора загружают в микроинъекции иглы, используемой для физически вводить индивидуальные иммобилизованных клеток или эмбрионов. Несмотря на необходимость первоначального обучения для выполнения этой процедуры для доставки высокой пропускной, микроинъекции обеспечивает максимальную эффективность и воспроизводимую доставку широкого спектра лечебных решений (в том числе сложных смесей образцов) в клетки, яйца или эмбрионы. Приложения к микроинъекций включают доставку конструкций ДНК, мРНК, рекомбинантных белков, усиления функции и потери функциональных реагентов. Флуоресцентный краситель или колориметрический добавляется введенного раствора, чтобы позволить мгновенную визуализацию эффективной доставки, а также средство для надежного нормализации количества подаваемого раствора. Описанный способ позволяет микроинъекции 100-400 морского ежа гygotes пределах 10-15 мин.

GFP и mCherry репортер конструкции были в пробирке транскрипции и микроинъецировали во вновь оплодотворенных яиц. Эмбрионы инкубировали при 15 ° С в течение 24 ч (до стадии бластулы) и отображаемого использованием Zeiss наблюдатель Z1 микроскопа. Инъекция репортер конструкций не приводит н?...

Watch this Scientific Journal Video about High Throughput Microinjections of Sea Urchin Zygotes at JoVE.com

High Throughput Microinjections of Sea Urchin Zygotes

Микроинъекция является общим методом, используемым для доставки конструкций ДНК, мРНК, морфолино антисмысловых олигонуклеотидов или другие процедуры в яиц, эмбрионов и клеток различных видов.

Высокая пропускная Микроинъекции из морского ежа зиготы

Microinjection into cells and embryos is a common technique that is used to study a wide range of biological processes. In this method a small amount of ...

high-throughput-microinjections-of-sea-urchin-zygotes

Research

JoVE Journal

Biology

14.4K Views.  University of Delaware.  Микроинъекция является общим методом, используемым для доставки конструкций ДНК, мРНК, морфолино антисмысловых олигонуклеотидов или другие процедуры в яиц, эмбрионов и клеток различных видов. 

Video: High Throughput Microinjections of Sea Urchin Zygotes

Intravenous Microinjections of Zebrafish Larvae to Study Acute Kidney Injury

In this video article we describe a zebrafish model of AKI using gentamicin as the nephrotoxicant.  The technique consists of intravenous microinjections on 2 dpf zebrafish. This technique represents an efficient and rapid method to deliver soluble substances into the bloodstream of zebrafish larvae, allowing for the injection of 15-20 fish per hour. In addition to AKI studies, this microinjection technique can also be used for other types of experimental studies such as angiography.  We provide a detailed protocol of the technique from equipment required to visual measures of decreased kidney function. In addition, we also demonstrate the process of fixation, whole mount immunohistochemistry with a kidney tubule marker, plastic embedding and sectioning of the larval zebrafish. We demonstrate that zebrafish larvae injected with gentamicin show morphological features consistent with AKI: edema, loss of cell polarity in proximal tubular epithelial cells, and morphological disruption of the tubule.

We describe a technique of microinjecting the aminoglycoside, gentamicin, into 2 days post-fetilization (dpf) zebrafish larvae to induce acute kidney injury (AKI). We also describe a method for whole mount immunohistochemistry, plastic embedding and sectioning of zebrafish larvae to visualize the AKI mediated damage.

Внутривенно микроинъекции данио рерио Личинки по изучению Острое повреждение почек

In this video article we describe a zebrafish model of AKI using gentamicin as the nephrotoxicant.  The technique consists of intravenous microinjections ...

High-throughput Yeast Plasmid Overexpression Screen

The budding yeast, Saccharomyces cerevisiae, is a powerful model system for defining fundamental mechanisms of many important cellular processes, including those with direct relevance to human disease. Because of its short generation time and well-characterized genome, a major experimental advantage of the yeast model system is the ability to perform genetic screens to identify genes and pathways that are involved in a given process. Over the last thirty years such genetic screens have been used to elucidate the cell cycle, secretory pathway, and many more highly conserved aspects of eukaryotic cell biology 1-5. In the last few years, several genomewide libraries of yeast strains and plasmids have been generated 6-10. These collections now allow for the systematic interrogation of gene function using gain- and loss-of-function approaches 11-16. Here we provide a detailed protocol for the use of a high-throughput yeast transformation protocol with a liquid handling robot to perform a plasmid overexpression screen, using an arrayed library of 5,500 yeast plasmids. We have been using these screens to identify genetic modifiers of toxicity associated with the accumulation of aggregation-prone human neurodegenerative disease proteins. The methods presented here are readily adaptable to the study of other cellular phenotypes of interest.

Here we describe a plasmid overexpression screen in Saccharomyces cerevisiae, using an arrayed plasmid library and a high-throughput yeast transformation protocol with a liquid handling robot.

Высокая пропускная способность дрожжей плазмиды экрана Сверхэкспрессия

The budding yeast, Saccharomyces cerevisiae, is a powerful model system for defining fundamental mechanisms of many important cellular processes, ...

High-throughput Saccharification Assay for Lignocellulosic Materials

Polysaccharides that make up plant lignocellulosic biomass can be broken down to produce a range of sugars that subsequently can be 
used in establishing a biorefinery. These raw materials would constitute a new industrial platform, which is both sustainable and carbon neutral, to replace 
the current dependency on fossil fuel. The recalcitrance to deconstruction observed in lignocellulosic materials is produced by several intrinsic properties 
of plant cell walls. Crystalline cellulose is embedded in matrix polysaccharides such as xylans and arabinoxylans, and the whole structure is encased by the 
phenolic polymer lignin, that is also difficult to digest 1. In order to improve the digestibility of plant materials we need to discover the main bottlenecks 
for the saccharification of cell walls and also screen mutant and breeding populations to evaluate the variability in saccharification 2. These tasks require 
a high throughput approach and here we present an analytical platform that can perform saccharification analysis in a 96-well plate format. This platform has 
been developed to allow the screening of lignocellulose digestibility of large populations from varied plant species. We have scaled down the reaction volumes 
for gentle pretreatment, partial enzymatic hydrolysis and sugar determination, to allow large numbers to be assessed rapidly in an automated system.
This automated platform works with milligram amounts of biomass, performing ball milling under controlled conditions to reduce the plant 
materials to a standardised particle size in a reproducible manner. Once the samples are ground, the automated formatting robot dispenses specified and recorded 
amounts of material into the corresponding wells of 96 deep well plate (Figure 1). Normally, we dispense the same material into 4 wells to have 4 replicates for 
analysis. Once the plates are filled with the plant material in the desired layout, they are manually moved to a liquid handling station (Figure 2). In this 
station the samples are subjected to a mild pretreatment with either dilute acid or alkaline and incubated at temperatures of up to 90&deg;C. The pretreatment solution 
is subsequently removed and the samples are rinsed with buffer to return them to a suitable pH for hydrolysis. The samples are then incubated with an enzyme
mixture for a variable length of time at 50&deg;C. An aliquot is taken from the hydrolyzate and the reducing sugars are automatically determined by the MBTH 
colorimetric method.

A simple, rapid method for determining the saccharification potential of large numbers of plant biomass samples is described. The automated platform for this analysis involves the preparation of the plant biomass for analysis in 96 well plates and the subsequent performance of pretreatment, hydrolysis and quantification of the sugars released.

Высокая пропускная способность осахаривания Пробирной для лигноцеллюлозной материалы

Polysaccharides that make up plant lignocellulosic biomass can be broken down to produce a range of sugars that subsequently can be 
used in establishing ...

High-throughput Purification of Affinity-tagged Recombinant Proteins

X-ray crystallography is the method of choice for obtaining a detailed view of the structure of proteins. Such studies need to be complemented by further biochemical analyses to obtain detailed insights into structure/function relationships. Advances in oligonucleotide- and gene synthesis technology make large-scale mutagenesis strategies increasingly feasible, including the substitution of target residues by all 19 other amino acids. Gain- or loss-of-function phenotypes then allow systematic conclusions to be drawn, such as the contribution of particular residues to catalytic activity, protein stability and/or protein-protein interaction specificity.
In order to attribute the different phenotypes to the nature of the mutation - rather than to fluctuating experimental conditions - it is vital to purify and analyse the proteins in a controlled and reproducible manner. High-throughput strategies and the automation of manual protocols on robotic liquid-handling platforms have created opportunities to perform such complex molecular biological procedures with little human intervention and minimal error rates1-5.
Here, we present a general method for the purification of His-tagged recombinant proteins in a high-throughput manner. In a recent study, we applied this method to a detailed structure-function investigation of TFIIB, a component of the basal transcription machinery. TFIIB is indispensable for promoter-directed transcription in vitro and is essential for the recruitment of RNA polymerase into a preinitiation complex6-8. TFIIB contains a flexible linker domain that penetrates the active site cleft of RNA polymerase9-11. This linker domain confers two biochemically quantifiable activities on TFIIB, namely (i) the stimulation of the catalytic activity during the 'abortive' stage of transcript initiation, and (ii) an additional contribution to the specific recruitment of RNA polymerase into the preinitiation complex4,5,12 . We exploited the high-throughput purification method to generate single, double and triple substitution and deletions mutations within the TFIIB linker and to subsequently analyse them in functional assays for their stimulation effect on the catalytic activity of RNA polymerase4. Altogether, we generated, purified and analysed 381 mutants - a task which would have been time-consuming and laborious to perform manually. We produced and assayed the proteins in multiplicates which allowed us to appreciate any experimental variations and gave us a clear idea of the reproducibility of our results.
This method serves as a generic protocol for the purification of His-tagged proteins and has been successfully used to purify other recombinant proteins. It is currently optimised for the purification of 24 proteins but can be adapted to purify up to 96 proteins.

We describe a method for the affinity-tagged purification of recombinant proteins using liquid-handling robotics. This method is generally applicable to the small-scale purification of soluble His-tagged proteins in a high-throughput format.

Высокая пропускная способность очистки Affinity с метками рекомбинантных белков

X-ray crystallography is the method of choice for obtaining a detailed view of the structure of proteins. Such studies need to be complemented by further ...

Flow Cytometry-based Purification of S. cerevisiae Zygotes

Zygotes are essential intermediates between haploid and diploid states in the life cycle of many organisms, including yeast (Figure 1) 1. S. cerevisiae zygotes result from the fusion of haploid cells of distinct mating type (MATa, MATalpha) and give rise to corresponding stable diploids that successively generate as many as 20 diploid progeny as a result of their strikingly asymmetric mitotic divisions 2. Zygote formation is orchestrated by a complex sequence of events: In this process, soluble mating factors bind to cognate receptors, triggering receptor-mediated signaling cascades that facilitate interruption of the cell cycle and culminate in cell-cell fusion. Zygotes may be considered a model for progenitor or stem cell function.
Although much has been learned about the formation of zygotes and although zygotes have been used to investigate cell-molecular questions of general significance, almost all studies have made use of mating mixtures in which zygotes are intermixed with a majority population of haploid cells 3-8. Many aspects of the biochemistry of zygote formation and the continuing life of the zygote therefore remain uninvestigated.
Reports of purification of yeast zygotes describe protocols based on their sedimentation properties 9; however, this sedimentation-based procedure did not yield nearly 90% purity in our hands. Moreover, it has the disadvantage that cells are exposed to hypertonic sorbitol. We therefore have developed a versatile purification procedure. For this purpose, pairs of haploid cells expressing red or green fluorescent proteins were co-incubated to allow zygote formation, harvested at various times, and the resulting zygotes were purified using a flow cytometry-based sorting protocol. This technique provides a convenient visual assessment of purity and maturation. The average purity of the fraction is approximately 90%. According to the timing of harvest, zygotes of varying degrees of maturity can be recovered. The purified samples provide a convenient point of departure for "-omic" studies, for recovery of initial progeny, and for systematic investigation of this progenitor cell.

Flow Cytometry-based Purification of S. cerevisiae Zygotes

To purify zygotes of S. cerevisiae, haploid cells of opposite mating type were engineered to express red or green fluorescent proteins, co-incubated to allow zygote formation, and fractionated using a flow cytometry-based protocol. The highly-enriched fraction enables subsequent "-omic" studies, recovery of initial progeny, and systematic investigation of zygote morphogenesis.

Проточной цитометрии на основе очистки<em&gt; S. CEREVISIAE</em&gt; Зиготы

Zygotes are essential intermediates between haploid and diploid states in the life cycle of many organisms, including yeast (Figure 1) 1. S. cerevisiae ...

High-throughput Titration of Luciferase-expressing Recombinant Viruses

Standard plaque assays to determine infectious viral titers can be time consuming, are not amenable to a high volume of samples, and cannot be done with viruses that do not form plaques. As an alternative to plaque assays, we have developed a high-throughput titration method that allows for the simultaneous titration of a high volume of samples in a single day. This approach involves infection of the samples with a Firefly luciferase tagged virus, transfer of the infected samples onto an appropriate permissive cell line, subsequent addition of luciferin, reading of plates in order to obtain luminescence readings, and finally the conversion from luminescence to viral titers. The assessment of cytotoxicity using a metabolic viability dye can be easily incorporated in the workflow in parallel and provide valuable information in the context of a drug screen. This technique provides a reliable, high-throughput method to determine viral titers as an alternative to a standard plaque assay.

This article presents a high-throughput luciferase expression-based method of titrating various RNA and DNA viruses using automated and manual liquid handlers.

Высокая пропускная Титрование люциферазы экспрессирующих рекомбинантные вирусы

Standard plaque assays to determine infectious viral titers can be time consuming, are not amenable to a high volume of samples, and cannot be done with ...

A Method for Microinjection of Patiria minata Zygotes

Echinoderms have long been a favorite model system for studies of reproduction and development, and more recently for the study of gene regulation and evolution of developmental processes. The sea star, Patiria miniata, is gaining prevalence as a model system for these types of studies which were previously performed almost exclusively in the sea urchins, Strongylocentrotus purpuratus and Lytechinus variegatus. An advantage of these model systems is the ease of producing modified embryos in which a particular gene is up or downregulated, labeling a group of cells, or introducing a reporter gene. A single microinjection method is capable of creating a wide variety of such modified embryos. Here, we present a method for obtaining gametes from P. miniata, producing zygotes, and introducing perturbing reagents via microinjection. Healthy morphant embryos are subsequently isolated for quantitative and qualitative studies of gene function. The availability of genome and transcriptome data for this organism has increased the types of studies that are performed and the ease of executing them.

A Method for Microinjection of Patiria minata Zygotes

Methods that produce morphant embryos are essential to study developmental mechanisms and gene regulatory networks. The sea star Patiria miniata is an emerging model system for these studies. Here we present a protocol for obtaining gametes, producing cultures of embryos, and rapid microinjection of zygotes from this species.

Метод микроинъекции<em&gt; Patiria Minata</em&gt; Зиготы

Echinoderms have long been a favorite model system for studies of reproduction and development, and more recently for the study of gene regulation and ...

Recovery of Adult Zebrafish Hearts for High-throughput Applications

Use of the zebrafish model system for studying development, regeneration, and disease is expanding toward use of adult hearts for cell dissociation and purification of RNA, DNA, and proteins. All of these applications demand the rapid recovery of significant numbers of zebrafish hearts to avoid gene regulatory, metabolic, and other changes that begin after death. Adult zebrafish hearts are also required for studying heart structure for a variety of mutants and for studying heart regeneration. However, the traditional zebrafish heart dissection is slow and difficult and requires specialized tools, making large-scale dissection of adult zebrafish hearts tedious. Traditional methods also harbor the risk of damaging the heart during the dissection. Here, we describe a method for dissection of adult zebrafish hearts that is fast, reproducible, and preserves heart architecture. Furthermore, this method does not require specialized tools, is painless for the zebrafish, can be performed on fresh or fixed specimens, and can be performed on zebrafish as young as one month old. The approach described expands the use of adult zebrafish for cardiovascular research.

Use of zebrafish for cardiovascular research is expanding towards research on adult hearts. For these applications, quick and simple isolation of cardiac tissues is key to avoid post-mortem changes and to obtain an adequate number of samples. Here, we describe a fast and reproducible method for dissecting adult zebrafish hearts.

Восстановление взрослых данио сердца для высокой пропускной приложений

Use of the zebrafish model system for studying development, regeneration, and disease is expanding toward use of adult hearts for cell dissociation and ...

High-throughput Screening for Chemical Modulators of Post-transcriptionally Regulated Genes

Both transcriptional and post-transcriptional regulation have a profound impact on genes expression. However, commonly adopted cell-based screening assays focus on transcriptional regulation, being essentially aimed at the identification of promoter-targeting molecules. As a result, post-transcriptional mechanisms are largely uncovered by gene expression targeted drug development. Here we describe a cell-based assay aimed at investigating the role of the 3&#39; untranslated region (3&#8217; UTR) in the modulation of the fate of its mRNA, and at identifying compounds able to modify it. The assay is based on the use of a luciferase reporter construct containing the 3&#8217; UTR of a gene of interest stably integrated into a disease-relevant cell line. The protocol is divided into two parts, with the initial focus on the primary screening aimed at the identification of molecules affecting luciferase activity after 24 hr of treatment. The second part of the protocol describes the counter-screening necessary to discriminate compounds modulating luciferase activity specifically through the 3&#8217; UTR. In addition to the detailed protocol and representative results, we provide important considerations about the assay development and the validation of the hit(s) on the endogenous target. The described cell-based reporter gene assay will allow scientists to identify molecules modulating protein levels via post-transcriptional mechanisms dependent on a 3&#8217; UTR.

Here we describe a cell-based reporter gene assay as a valuable tool to screen chemical libraries for compounds modulating post-transcriptional control mechanisms exerted through 3&#8217; UTR.

Высокопроизводительный скрининг для химических модуляторов посттранскрипционно регулируемых генов

Both transcriptional and post-transcriptional regulation have a profound impact on genes expression. However, commonly adopted cell-based screening assays ...

Identification of Kinase-substrate Pairs Using High Throughput Screening

We have developed a screening platform to identify dedicated human protein kinases for phosphorylated substrates which can be used to elucidate novel signal transduction pathways. Our approach features the use of a library of purified GST-tagged human protein kinases and a recombinant protein substrate of interest. We have used this technology to identify MAP/microtubule affinity-regulating kinase 2 (MARK2) as the kinase for a glucose-regulated site on CREB-Regulated Transcriptional Coactivator 2 (CRTC2), a protein required for beta cell proliferation, as well as the Axl family of tyrosine kinases as regulators of cell metastasis by phosphorylation of the adaptor protein ELMO. We describe this technology and discuss how it can help to establish a comprehensive map of how cells respond to environmental stimuli.

Protein phosphorylation is a central feature of how cells interpret and respond to information in their extracellular milieu. Here, we present a high throughput screening protocol using kinases purified from mammalian cells to rapidly identify kinases that phosphorylate a substrate(s) of interest.

Идентификация киназы-подложки пар Использование высокопроизводительного скрининга


We have developed a screening platform to identify dedicated human protein kinases for phosphorylated substrates which can be used to elucidate novel ...