組織再生用ゼラチンのウェット ベース回転成形プロセス

要約

我々 は開発し、ティッシュ エンジニア リングのアプリケーションに使用されるゼラチン ベースの生体材料の構築のため、湿式紡糸概念に基づくプロトコルを記述します。

要約

この記事は、モノフィラメント繊維または他の適切な形態に天然高分子としてゼラチンを製造するための安価な方法を示します。湿式紡糸法をゼラチン繊維は適切な凝固中のスムーズな押し出しによって生成されます。、これらのゼラチン繊維の組織の特徴を模倣する能力を機能面を向上させるため、ゼラチンは、この概念を参照して管形状に成形できます。ゼラチン チューブ, in vitro および in vivo 検査を受け、組織工学の適用のための大きな可能性を示しています。ゼラチンに (例えば、緊張または心血管系システム)、被災地域の組織を置き換えると同様幹細胞と神経回路の直接の代替を提供することによって再生を促進するためにチューブを使用ことができます適切な詰め物ギャップ材料として機能します。このプロトコルに基づいて天然高分子生体材料を作成する詳細な手順について説明し、その実装は、大きな組織再生の戦略を実現する相関の天然高分子開発メリットを得る予定です。

概要

組織再生における最新の開発には、医療における新たな治療戦略の改善のための挑戦を表す組織工学」のアプリケーションが含まれます。たとえば、神経系の再生、次の傷害または病気の限られた可能性は世界的に重大な健康問題を生じます。神経系に関連する病態生理学的プロセスの複雑さのためまたは伝統的な自家の使用安定化手術の実装機能の成果に利点を提供する示されているのための強力な証拠がないです。脊柱固定手術^1,2の効果。被災地で組織が失われた、hypertrophically によるアストロ サイト³、最終的に密集したグリア瘢痕^4,5を形成に置き換え。この行列は、ブロック神経の回復は^6、7の機能し、は、このように、大きく再生の妨げのバリアとして機能します。組織の損失を防ぐために、破損した領域の整合性を維持することによってだけでなく、神経細胞の直接の代替を提供することにより瘢痕関連結合組織の形成を減らす適切な充填のギャップを期待すると軸索の再生を促進するための回路。

高分子生体材料として自然な細胞外マトリックス (ECM) のサポートを通じて、細胞または軸索行動と組織進行の規程に基づき、組織再生療法の足場として推奨されています。繊維の形式は、その一次元構造⁸により、様々 な材料のためのビルディング ブロックとして一般的と見なされます。繊維は、溶融押出成形や湿式紡糸法によって一般に得ることがただし、大きいサイズとコスト、装置およびこれらのメソッドを実行する難しさの挑戦しています。さらに、高分子繊維に関連する仕事の大半は合成または複合材料に集中しています。天然の高分子生体材料の源としては、人間の体の良い生体適合性プロパティを提供しています。それにもかかわらず、天然高分子繊維の配置を得るに比較的合成高分子ソース⁹のよりも難しいです。したがって、良質なたんぱく源としての天然高分子生体材料繊維への変換が重要な戦略 — だけでなく生体材料の繊維は、直接モノマーに不要な変換を回避するため、原料から分離されたが、見た目と良好な特性¹⁰またタンパク質繊維があります。

この点では、湿式紡糸、組織工学のための実験室規模で実装できるの基本的な概念を自然なポリマー繊維の生産のための安価な処理法について述べる。湿式紡糸は、押出、適したポリマー無溶剤に高分子溶液の凝固によって実行されます。適切な粘性ソリューション凝固中にドープした溶解するポリマー分子が発生します。相転移によるフィラメントの溶解度を失うし、固体高分子相¹¹の形で沈殿します。組織再生アプリケーションのために適切考慮される成形プロセスによって管形状にゼラチンの開発を拡大してこの概念を参照します。さらに、本質的に、我々 開発することもゼラチン繊維からの材料の任意の形状 (例えば、ゼラチン コンジットを重ねいくつかのゼラチン繊維)、他のアプリケーションを必要に応じて。

ゼラチン、生分解性天然高分子は、変性、加水分解コラーゲン、コラーゲン¹²の結晶、非晶質、またはトリプル ヘリカル状態などから形成されます。そのコラーゲンは脊椎動物と無脊椎動物^13,14神経の成長を誘導する主要な ECM の蛋白質の構造に類似しているすべての結合組織の重要な構造蛋白質をよく知られていると、同時に脊髄損傷の中に分泌するグリコサミノグリカンの大量に置き換えられます。したがって、ソースとしてゼラチンの使用は任意の医療車両に最適になります。ゼラチンは生分解性も安価なソースばかりかと cytocompatible と一時的な欠陥フィラー¹⁵に臨床的に実証済み。管形成,を in vitro および in vivo のテストここで説明は、ゼラチンは、優れた生体適合性と今後組織エンジニア リング アプリケーションの適合性を示しています。ひと脂肪幹細胞を培養、ゼラチン チューブは、神経細胞マーカーとして肯定的な特異染色による神経前駆細胞に分化を向上します。さらに、この研究では、定められた方法によって生成されるギャップ材料を充填としてゼラチンが期待されている管理しやすく安全にする組織の強化のため相関自然なポリマーの開発が現在組織の技術者が大いに再生戦略。

プロトコル

脂肪組織は、認定機関のレビュー ボードの三サービス総合病院、整形外科手術から得られた、動物を対象とする台北、台湾 (中華民国) 手続きは、国立で動物ケア委員会によって承認されています。国防医学院、台湾 (中興)。

1 湿式紡糸

1. ソリューションの準備
   1. 5% (w/v) 濃度を取得する二重蒸留水 100 ml ゼラチン パウダー 5 g を溶かします。
   2. 任意の気泡なし完全に同質な分散を達成するために 60-70 ° C を一晩でゆっくり混合物をかき混ぜます。
2. 湿式紡糸
   1. 繊維の形成
      注:方法の模式図を図 1に示します。回転セットアップが蠕動性ポンプ機装備 (材料の表を参照) には高精度速度を提供し、流れのスムーズな配信を制御します。
      1. 透明なビニール チューブにソリューション インジェクターとして 26 x 1/2 インチ (0.45 mm × 12 mm) 注射器を差し込みます。
      2. 凝固浴として使用するビーカー ガラスで 99.5% アセトン溶液の 100 mL を準備します。
      3. 21 rpm (3.25 mL/分) で蠕動運動型ポンプのマシンを実行し、ゼラチン溶液展開する前にアセトン溶液に数秒間スタンドします。
      4. アセトン溶液からのゼラチン繊維を取り出し、1:20 (w/w)/ジクロロ メタン ポリカプロラクトン (PCL/DCM) ソリューションの 2.5% (w/v) にそれらを浸します。
      5. 室温でボンネットの下、一夜に PCL/DCM ソリューション乾燥繊維ゼラチンをしましょう。
   2. 管形成
      注:方法の模式図を図 1Bに示します。
      1. チューブ金型として 24 x 3/4 インチ (0.7 mm × 19 mm) の末梢静脈カテーテルを使用します。
      2. ゼラチン溶液にカテーテルを読み込むし、3 のそこにそれを保持する s。
      3. アセトン溶液にカテーテルを読み込むし、1 分間保持します。
      4. ゼラチン溶液にカテーテルを再度読み込むし、3 のそこにそれを保持する s。
      5. この代替手順 20 倍を繰り返します。
      6. アセトン溶液からカテーテルを取り出し、5 分間室温で乾燥成形チューブをしましょう。
      7. 優しく、止血を使用してカテーテルからゼラチン チューブを取り出し、慎重に PCL/DCM ソリューションの 2.5% (w/v) の浸漬とパスツール ピペット グラスにゼラチン チューブを転送します。
      8. ゼラチン チューブと PCL/DCM ソリューション乾燥一晩、室温でボンネットの下を含むパスツール ピペットをしましょう。

2. ゼラチン チューブの形態

1. 炭素スタブに乾燥ゼラチン チューブの部分をマウントします。
2. イオン スパッタ コーター機にサンプルを入れて (材料の表を参照してください)、60 のための金でサンプルをコート s;それから、その形態を走査型電子顕微鏡による観察 (材料の表を参照してください)。

3. ひと脂肪幹細胞の培養

1. 0.1 M リン酸緩衝生理食塩水 (PBS)、1% ペニシリン/ストレプトマイシン、および 0.1% のブドウ糖から成る転送溶液 10 mL を含むペトリ皿に (臨床外科によって口腔の脂肪組織から得られた) 脂肪組織を配置します。
2. 小さな断片 (1 mm²未満) に組織をメスの刃でカットします。
3. 15 mL プラスチック チューブに 500 x gで 5 分間遠心する組織を転送します。
4. 上澄みを除去し、加湿雰囲気の中で、37 ° C で 0.1% コラゲナーゼ ダルベッコ変法イーグル培地 (フェノールレッド 15 mg/L、1 mM ピルビン酸ナトリウム、4 mM L グルタミンから成る DMEM) 10 mL を含むプラスチック管の堆積物を孵化させなさい1 日の 95% 空気と 5% CO₂を含みます。
5. 500 x gで 5 分でプラスチック製のチューブを遠心、上清を慎重に破棄 (堆積物が接触していない)、10% 牛胎児血清 (FBS) を含む DMEM の 10 mL を追加することによってゆっくり堆積物を中断し、37 ° C で 1 日放置、95% 空気と 5% CO₂を含む加湿雰囲気の中。
6. 500 x gで 5 分でプラスチック製のチューブを遠心し、上清を慎重に破棄その後、文化の T25 フラスコ 4 mL を含む (表皮細胞無血清培地 (K SFM)、アムホテリシン、N アセチル L システイン、アスコルビン酸-2-リン酸、ストレプトマイシン、FBS の 5% の構成) を土砂を中断、それを転送幹細胞培地 1 mL を追加します。幹細胞の培地、95% 空気と 5% CO₂を含む加湿雰囲気の中で、37 ° C で 3 日間放置します。
7. 上澄みを廃棄、0.25% トリプシン エチレンジアミン四酢酸 (EDTA) の 1 つの mL を追加し、37 ° c で培養用フラスコの底から細胞をデタッチするのには 95% の空気と、3.5 分間 5% CO₂を含む加湿雰囲気の中でインキュベートします。
8. FBS の 1 mL を追加し、混合物を中断、微量遠心チューブに転送。
9. 500 x g 3.5 分の懸濁液を遠心分離機、幹細胞培地 1 mL で土砂を中断および幹細胞用培地; 5 mL を含む培養用フラスコに転送その後、95% 空気と 5% CO₂を含む加湿雰囲気で 37 ° C でそれを維持します。
10. 幹細胞培地ごとに 3 日間を変更することによって、サブカルチャーを維持します。

4. ゼラチン管の細胞の培養

1. 2 h の UV ライトとゼラチン チューブを滅菌します。エタノール 75% (v/v) に没頭し、それを洗って残留エタノールを削除する幹細胞培地で 2 倍。
2. 培養用フラスコからひと脂肪幹細胞 (hASCs) を収集します。
   1. 培養用フラスコからメディアを削除します。
   2. 0.25% トリプシン-EDTA の 1 つの mL を追加し、, 95% の空気と 5% CO₂培養用フラスコの底から hASCs をデタッチするのには、3.5 分を含む加湿雰囲気で 37 ° C で。
   3. FBS の 1 mL を追加し、混合物を中断、微量遠心チューブに転送。
   4. 3.5 分; 500 × gで遠心チューブを遠心分離します。慎重に、上澄みを廃棄し、幹細胞用培地 1 mL で土砂を中断します。
3. 幹細胞培地 3 mL を含む 6 ウェル プレートでゼラチン チューブを置き、4 × 10 の⁴管; hASCs の種子95% 空気と 5% CO₂を含む加湿雰囲気の中で、37 ° C で 2 週間それらを孵化させなさい。
4. 細胞の成長のための十分な栄養を提供するために、幹細胞用培地 3 日ごとに変更します。

5. 免疫細胞化学

1. 幹細胞の培地を外し、PBS でよく洗います。
2. 0.1% 室温で 30 分間氷酢酸でセルとチューブを固定します。
3. PBS で洗浄も 2 倍。
4. 界面活性剤 (NP-40、0.05%) を追加します。室温で 10 分間インキュベートします。
5. PBS で洗浄も 3 倍。
6. 2% ヤギ血清を追加し、30 分間室温でインキュベートします。
7. ソリューションをデカント一次抗体ネスチン (神経前駆細胞マーカー) を追加して、4 ° C で一晩インキュベート
8. PBS で洗浄も 3 倍。
9. 二次抗体ロバ アンチ mouse フルオレセイン イソチオ シアン酸 (FITC) を追加、2 h の暗闇の中でサンプルを保ちます。
10. PBS で洗浄も 3 倍。
11. 核を染色し、室温で 10 分間インキュベート ヘキスト 33342 の 1 mL を追加します。
12. 井戸を洗って軽く蛍光顕微鏡下で観察して。

6. 生体生体適合性テストで

注:201-225 g の間で重量とラットは、このプロトコルを使用して正常にテストされています。

1. 麻酔
   1. 誘導し、維持麻酔;好ましくは、ラット (8 週齢ラット スプレイグ ・女)を介してチレタミンとチレタミンの筋肉内注射の麻酔 (25 mg/kg + 25 mg/kg、それぞれ)、キシラジン (5 mg/kg)。痛み刺激テストを実行するには、anesthetization を確認するラットの指を押します。
2. 手術部位の消毒
   1. ひげをそるし、(首の後ろ) をラットの僧帽筋部皮膚をきれい肌 (100 mg/mL) の無菌状態を準備するポビドン ヨード ローションで拭き取ってください。
   2. 細菌の転送と手術部位の後の汚染を削減する滅菌外科用ドレープとラットをカバーします。
3. ゼラチン チューブの注入
   1. 手術用ハサミでラットの僧帽筋エリアの皮膚を優しくカットします。
   2. 2 cm の創を作成し、筋と筋の間のレイヤーに直接ゼラチン チューブを置きます。
4. 体外手術
   1. ナイロン縫合糸で傷口を閉じて、ポビドン ヨード溶液 (100 mg/mL) で拭いてください。
   2. ケトプロフェン (2.5 mg/kg)、セファゾリン 15 mg/kg の筋肉内注射によるラットを誘発します。
   3. 7 日間の無菌条件下でのラットを維持します。
5. 安楽死
   1. ラットは安楽死の AVMA のガイドラインに従って CO₂窒息で安楽死させた。胸にハートビートを確実に触れることによって続いてつま先と尾のピンチによってラットの死を確認します。
   2. メス刃を持つラットを優しくカット、移植組織を削除および観察のための写真を撮る。

結果

本研究では、正常に繊維 (図 2A) にゼラチンとユーザーフレンドリーな湿式紡糸概念を介して管 (図 2B, C) を開発しました。これらのゼラチン ベースの材料は、その形状に応じて、任意の医療ツールとして利用できます。機能表面とそのような材料のフレームがより組織再生に適しているを考えると...

ディスカッション

我々 は単純な湿式紡績天然高分子組織再生の研究に適用できる技術を使ってゼラチン ベースの生体材料の開発を紹介しました。この作品は、ゼラチン ゼラチン自体のプロパティを最適化する目的で、他のソースの追加なしの素晴らしいたんぱく源として作製の可能性を示した。完全にゼラチン ベースの生体材料の開発を部屋の温度 (22-26 ° C) で行った。穏やかなソリューションの準備は、?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Solution preparation:
Gelatin type B (porcine)	Ferak	Art. -Nr. 10733	500 g vial
Wet spinning process:
Peristaltic pump	Gilson	Model M312	Minipuls*3
Plastic tube connector	World Precision Instruments	14011	1 box
Syringe	Sterican	5A06258541	26Gx1/2"(0.45 x 12mm)
Acetone	Ferak	Art. -Nr. 00010	2.5 L vial
Polycaprolactone CAPA 6500	Perstorp	24980-41-4	-
Dichloromethane	Scharlau	CL03421000	1 L vial
Glass Pasteur pipette	Fisher Scientific	13-678-20A	-
Hemostat	Shinetec instruments	ST-B021	-
Peripheral venous catheter (Introcan Certo)	B. Braun	1B03258241	24Gx3/4"(0.7 x 19mm)
Morphology of the gelatin tube:
Ion sputter coater machine	Hitachi	e1010	-
Scanning electron microscopy	Hitachi	S-3000N	-
Cultivation of cells on the gelatin tube:
Trypsin-EDTA	Gibco	488625	100 mL vial
Fetal bovine serum	Gibco	923119	500 mL vial
Dulbecco's modified Eagle's medium	Gibco	31600-034	Powder
Keratinocyte-SFM medium	Gibco	10744-019	500 mL vial
T25 culture flask	TPP	90025	VENT type
6-well plate	Falcon	1209938	-
Immunocytochemistry:
Phospate-buffered saline	Gibco	654471	500 mL vial
Acetic acid glacial	Ferak	Art. -Nr. 00697	500 mL vial
NP-40 surfactant (Tergitol solution)	Sigma	056K0151	500 mL vial
Normal goat serum	Vector Laboratories	S-1000-20	20 mL vial, concentrate
Nestin (primary antibody)	Santa Cruz Biotechnology	SC-23927	-
Donkey anti-mouse-fluorescein isothiocyanate (secondary antibody)	Santa Cruz Biotechnology	SC-2099	-
Hoechst 33342	Anaspec	AS-83218	5 mL vial
In vivo biocompatibility test:
Tiletamine+zolazepam	Virbac	BC91	5 mL vial
Xylazine	Bayer korea	KR03227	10 mL vial
Ketoprofen	Astar	1406232	2 mL vial
Povidone-iodine solution	Everstar	HA161202	4 L barrel
Cefazolin	China Chemical & Pharmaceutical	18P909	1 g vial
Scalpel blade	Shinetec instruments	ST-B021	-
Surgical scissor	Shinetec instruments	ST-B021	-