Method Article
Nöron ağları geliştirme spontan aktivite, kalsiyum duyarlı göstergesi boyalar AM ester formları kullanarak ölçülebilir. Nöronal aktivasyon gösteren hücre içi kalsiyum değişiklikler, bir veya iki foton görüntüleme göstergesi floresan geçici değişiklikler olarak algılanır. Bu protokol, gelişimsel bağımlı nöron ağları bir dizi için adapte edilebilir In vitro.
Sinir sistemleri gelişmekte olan faaliyet damgasını deseni kendiliğinden, senkronize ağ etkinliği. Senkronize aktivite, sağlam, spinal kord, beyin, retina, korteks ve ayrışmış nöronal kültür hazırlıkları görülmüştür. Spontan aktivite dönemlerinde, birçok iyon kanallarını aktive eden, tek ya da aksiyon potansiyelleri patlamaları yangın nöronlar depolarize. Depolarizasyon kalsiyum girişini arabuluculuk dendritler ve dikenler voltaj kapılı kalsiyum kanalları harekete geçirir. Yüksek senkronize elektriksel aktivite alanında elektrotlar kullanarak yerel nöronal ağlardan ölçülmüştür. Bu teknik bir elektrot okuma birden fazla nöron entegre nedeniyle yüksek zamansal örnekleme oranları ancak daha düşük uzaysal çözünürlüğü sağlar. Tek hücre çözünürlük nöronal aktivitenin faaliyet ateş ölçmek için tek nöron patch-kelepçe elektrofizyoloji kullanarak mümkündür. Ancak, ölçmek için bir ağ yeteneği, nöron yamalı s sayısı ile sınırlıdırimultaneously ve tipik olarak sadece bir ya da iki nöron. Kalsiyum-bağımlı floresan gösterge boyaların kullanımı hücrelerden oluşan bir ağ üzerinden senkronize aktivitesi ölçümü sağladı. Bu teknik, gelişmekte olan ağ spontan aktivite kayıt için yüksek uzaysal çözünürlüğü ve yeterli zamansal örnekleme verir.
Öncesi ve erken doğum sonrası gelişimi sırasında yeni oluşum kortikal ve hipokampal ağları önemli bir özelliği de, nöronal aktivitenin senkronize (Khaziphov & Luhmann'ın, 2006 Katz & Shatz, 1996), spontan. Bu korelasyon ağ aktivite, fonksiyonel devreleri nesil (Spitzer, 2006) gelişmekte olan sinir sistemi için gerekli olduğuna inanılmaktadır. Primat ve kemirgen beyin hem de, erken, elektrik ve kalsiyum ağ dalgaları gözlenir pre-ve postnatal in vivo ve in vitro (Adelsberger ve ark, 2005; Garaschuk ve ark, 2000;. Lamblin ve ark, 1999). Birkaç kontrol etmek için bilinen bu ilk çalışma, desen,nöronal farklılaşma, sinaptogenez ve plastisite (Rakic & Komuro, 1995, Spitzer ve ark, 2004) de dahil olmak üzere gelişimsel süreçleri kortikal devre doğru gelişmesi ve olgunlaşması için kritik öneme sahiptir.
Bu jove video, kortikal ağları geliştirmek görüntü spontan aktivite için kullanılan yöntemler göstermektedir. Intrasellüler esteraz aktivitesi parçalayarak hücre zarından gibi Fura Kalsiyum duyarlı göstergeler, 2-AM ester diffüz gösterge boya hücre geçirgenliği olmayan formu terk esterleri AM. Göstergesi laktobionat formu sonra algılar ve intraselüler kalsiyum iyonları bağlamak mümkün karboksilik asit grupları .. Kalsiyum duyarlı boya floresan geçici kalsiyum bağlayıcı üzerine değişir. Tek veya çoklu foton görüntüleme teknikleri boya yayılan fotonlar değişimi ölçmek için kullanılır ve böylece hücre içi kalsiyum bir değişiklik gösterir. Ayrıca, bu kalsiyum-dependent göstergeleri aktif ağ içindeki hücre türlerini araştırmak için diğer floresan işaretleri ile kombine edilebilir.
1. Yatay entorinal hipokampal beyin dilimleri yapma
Entorinal-hipokampal beyin dilimleri Canto, Wouterlood & Witter Sinir Plastisite kimliği 381.243 9 (2008) göre, bölgenin 3 boyutlu bir bakış ayrıntılı anatomik kılavuzları, kullanılarak yapılır .
Dilim çözeltisi (mM) - 10 | |
110 | kolin klorür |
25 | NaHCO 3 |
11,6 | 11,6 |
10 | D-glukoz |
7 | MgCl 2 |
3,1 | sodiumpyruvate |
2,5 | KCl |
1,25 | NaH 2 PO 4 |
0,5 | CaCl 2 |
Tablo 1 dilim çözümü için Reçete.
ACSF (mM) | |
125 | NaCl |
26 | NaHCO 3 |
10 | D-glukoz |
3 | KCl |
2.5/1.5 | MgCl 2 (kurtarma / deney) |
1,6 | CaCl 2 |
1,25 | NaH 2 PO 4 |
Tablo 2: Tarif için hem de kurtarma (r-ACSF) ve deneysel (e-ACSF) çözümü.
2. Boyama ch hazırlanmasıkehribar
Hücrelerin kalsiyum-bağımlı bir göstergesi ya da hücre-spesifik bir işaretleyici ile yüklemek için, dilimler, boyama işlemi için bir oda transfer edilmesi gerekir. Ticari odaları mevcut olsa da, bir çok az maliyet için kolayca standart laboratuar ekipmanları monte edilebilir. Böyle bir odasının temel özellikleri dilim 30 ve 35 arasında kaynaştı olduğunu ° C, sürekli oksijenli bir ortamda inkübe ve odanın ışık korumalıdır.
Metodoloji Şekil 1 dilim inkübasyon (üstte) ve kalsiyum hassas göstergesi (aşağıya yeşil boya, pipetle) uygulaması gösteren boyama odasının kesiti.
3. Dilimleri boyanması
Floresan boyalar içeren herhangi bir taşıma boyunca, az ışık ile çalışma photobleaching önlemek ve boya ve t tutmaktaşıma arasındaki karanlık doku boyandı.
Yaş (doğum sonrası gün) | İnkübasyon süresi (dk) |
20 | |
p8-p9 | 25 |
p10-p11 | 30 |
p12-13 | 35 |
> P13 | 40 |
Tablo 3 farklı yaş grubu için Kuluçka süreleri, laboratuvarda deneysel olarak belirlenir.
4. Diğer boyalar ve eski doku
Belki de beyin dokusunda artan miyelinasyonun nedeniyle, büyük kemirgenler dilimleri Fura sürebilir yok o kadar kolay ester 2-AM. Cremophor EL (Sigma) kullanarak preinkübasyon adım P13 ve 11 yaşlı farelerin beyinleri için kullanılan bu boya alımını kolaylaştırmak için. Cremophor birçok ecza bir yardımcı madde olarak kullanılan bir non-iyonik yüzeyal uygulamaları. Bu adım olmadan, hücre spesifik etiketleme kortikal dilim boyunca son derece kötü ve tutarsız olduğunu bulabilirsiniz.
Kalsiyum boyalar dilim hazırlık nöronlar ve olmayan nöronlar hem de yük. Belirlemek ve ağ içinde bu hücre tipleri arasında ayrım sulforhodamine 101 (SR101) dilim içinde etiket astrositler kullanılan olabilir.
Sulforhodamine 101 dilim boyanması
(Bölüm 3) daha önce olduğu gibi, 1-3 arasındaki adımları izleyin.
1 ul sulforhodamine (Sigma) -20 ° C'de depolama 10mM stok solüsyonu ve 10 mcM bir çözüm sağlamak için 999 ul r-ACSF çözülür. Mor boya ov Pipeter dilim daha önce olduğu gibi (5-7), 15 dakikalık bir süre için kuluçka dilim bırakarak.
Mikroglia ve endotel hücreleri FITC domates lektin boya etiketli.
Daha önce olduğu gibi, 1-3 arasındaki adımları izleyin.
25 ul 2mg/ml Lycopersicon esculentum (domates) lektin FITC konjuge (L0401, Sigma) stok solüsyonu 20 mg / ml konsantrasyonu vermek için 2.5ml r-ACSF içine atın. (Adım 5-7) daha önce olduğu gibi dilimleri üzerinde boya Pipet bırakarak, 45 dakikalık bir süre için kuluçka dilim.
Not: Bu boya Fura 2-AM veya Oregon Yeşil BAPTA-1 hem de boyalar fotonlar beri spektrumun yeşil alanda floresan (ÖGB-1) yayılan olacak gibi kalsiyum duyarlı bir göstergesi ile kombine etmek mümkün değildir çakışan dalga boylarında. Ancak, wit birleştirmek için, uygun filtreler veya Texas-Kırmızı lektin konjugatları ile birlikte kullanılmış olabilir, Kalsiyum, turuncu, Fura Kırmızı gibi diğer kalsiyum göstergesi boyalar vardıryeşil spektrum h kalsiyum göstergesi boyalar.
5. Kayıt odasına dilim takılması
Sırasında görüntüleme dilim mikroskop altında kararlı olması gerekir. Genellikle bir metal arp doku basılı tutun yerleştirilir ama dengesiz odak görüntüleme için görüş alanında sadece bir bölümünü vererek, dilim yüzeyi bozabilir. Bunu önlemek için, dilim Polyethylenimine (PEI) kullanarak kayıt odasına sıkışmış.
PEI çözümü | |
1ml | Poli (ethyleneimine) çözümü |
250ml borik tampon | |
40mm | asit borik |
10mM | sodyum tetraborat dekahidrat |
Tablo 4: Reçete PEI çözüm.
6. Imyaşlanma
Kalsiyum bağımlı göstergesi boyalar tek veya iki foton mikroskopi kullanılarak görüntülenebilir. Iki foton görüntüleme kullanın böylece dokuda ışık saçılımı miktarını azaltarak, faiz bölgenin odak hacmi içinde sadece gösterge boya harekete geçirir. Ayrıca, bu dilim içine ışık daha derinlemesine nüfuz sağlar.
Fonksiyonel kalsiyum görüntüleme için 20x objektif (NA 0.95) ve LaVision Biotec bir Trimscope sistemi, bir mikroskop Tutarlı birleştiğinde tarafından sağlanan bir Titanyum safir lazer kullanır. Trimscope sistemi aynı anda 64 küçük ışın tarama çerçeve sağlar ve bir kare hızlı tarama oranları için Hamamatsu C9100 EM-CCD kamera ile birleştirilmiştir.
7. Temsilcisi sonuçları
Başarılı yükleme, kalsiyum göstergeler Fura 2-AM multiphoton görüntüleme kullanarak neokortikal ve entorhinal korteks ağları geliştirmek Şekil 1'de gösterilmiştir. Bazı boya doku değil hücre soma ve bazı durumlarda arka plan boyama olarak hala mevcut, proksimal dendritler açıkça görünür ve neuropil çevreleyen ayrı. Yükleme başarılı olmamışsa, çok az hücre spesifik boyanması gözlenen ve boya lekeleri küçük kümeleri genellikle ölü membran enkaz dilim yüzeyinde görülebilir.
Bu ekran, hücre ağı, eş zamanlı olarak hücre görüntüleme için odak tek bir düzlemde açıkça görülebilir. Metal bir arp veya kayıt odasına dilim eksik yapışmasını kullanımı görüntülü, pürüzlü bir dilim yüzeye neden olabilir.
550fig1.jpg "alt =" Şekil 1 "/>
Şekil 1. Fura 2-AM ester yüklenmiş neokortikal gelişmekte olan (A, sol) ve (B, sağ) entorinal ağları Ölçek bar 100 mikron.
Astrositler gelen nöronlar ayırmak için, sulforhodamine 101 Fura ile ortak uygulama 2-AM ester ağ içindeki hücre tiplerinin ayrımı sağlar.
Şekil 2. Sulforhodamine 101 ile astrosit etiketleme. Fura 2-AM ester ve sulforhodamine 101 Co-etiketleme. Dalgaboyu 820nm. Bir nöron (üstte) ve astrosit (aşağıda) dalga boyu ayrılması için 560/70nm dikroik ayna ile Proje Yönetim Ekipleri Görüntü toplama B Temsilcisi floresan izleri. Ölçek bar 60 sn, mesafe kadar taşınmış 10 (au fluo).
Şekil 3. FITC-konjuge Lycopersicon esculentum (domates) lektin boyama Fare hipokampus (A) ve yüzeysel entorhinal korteks (B) gelişmekte olan mikroglia ve endotel hücreleri Etiketleme.
Kalsiyum göstergesi boyalar, gelişmekte olan kortikal ve hipokampal ağlar aynı anda birden fazla hücrelerden faaliyet okumak için kullanılır.
Şekil 4. Hipokampal ve kortikal ağları Dinamik kalsiyum transientler.
Film 1: Fura 2-ikinci postnatal haftasında fare entorhinal korteks ester yükleme.
Film 1 görmek için buraya tıklayın.
Movie 2: Fura 2-doğum sonrası ilk haftasında fare hipokampus ester yükleme.
Film 2 görmek için buraya tıklayın.
Film 3: doğum sonrası ilk haftasında fare korteksin Fluo-4 yükleme.
50movie3.avi "> 3 film izlemek için buraya tıklayın.
Fura durumunda 2-AM, kalsiyum depolarizasyon indüklenen akını içeren ester, hücre aktivasyonu, boya floresan azalır. Fluo-4 gibi boyalar için, bunun tam tersi doğrudur ve hücre depolarizasyon foton emisyon artış olarak görülmektedir. Somatik kalsiyum transientler ağırlıklı olarak ölçülür ama daha çok proksimal dendritler faaliyet Movie 2 gösterildiği gibi, bazı hazırlıklar olabilir.
Salt ağ etkinliği, ticari ya da in-house yazılım komut dosyalarını kullanarak belirlenebilir. Laboratuarı, hücre tanımlama ve ağ etkinliği ölçülür ve Matlab (Mathworks) in-house kodu kullanarak yarı otomatik bir şekilde analiz edilmiştir.
Şekil 5. Tek bir nöronun 3D gösterimi (gelişmekte olan kortikal ağ senkronize kalsiyum transientler Temsilcisi analizi . A), (B) z-yığını otomatik nöron tespiti için bir nöron maske otomatik olarak oluşturmak için kullanılmaktadır. Kalsiyum transientler ölçümleri, tek bir nöron veri (C) okunabilir aktif hücrelerinin genlik, frekans ve # içerir . Farklı izleri arasında senkronize bir raster arsa (D) kullanılarak görüntülenebilir.
Fare ve sıçan beyin kortikal ve hipokampal ağların geliştirilmesi içinde tanımlanabilir hücreler ağ dinamikleri kalsiyum görüntüleme için uygun protokoller burada göstermek yöntemleri. Bu yöntemler aynı zamanda hücre somas suprathreshold aktivitesi ölçümü için bir yerel ağ görselleştirmek için en iyi uzaysal çözünürlüğü sağlar. Gürültü ölçümleri, genellikle gelişmekte olan sinir sistemi uzun süre suprathreshold olaylar, ağ etkinliği Zamansal çözünürlük çerçeve satın alma CCD kamera ayarları bağlı olarak, sinyal optimize etmek için, çeşitli olabilir. Bu protokoller, gelişmekte olan sinir sistemi boyunca hipokampal ve kortikal ağları değil, aynı zamanda etiket hücreleri sınırlı değildir. Bu yöntemin sınırlama sadece suprathreshold faaliyet kaydedilebilir.
LaVision Biotec GmBH (Bielefeld, Almanya) Bu yazının makale gönderme ücreti sponsor oldu.
Laboratuarda çalışmalar RMM için Nederlandse Organisatie voor Wetenschappelijk Onderzoek (NWO) (917.10.372) tarafından desteklenmektedir. JD AB 7.ÇP BrainTrain programı (bağlı www.brain-train.nl ). Pieter Laurens-Baljon ve Sabine Schmitz (her ikisi de CNCR, Amsterdam VU Üniversitesi) Biz FP multielectrode dizi video sekansında kullanılan dalga şekilleri ve nöronal kültürlerin görüntüler için teşekkür ederiz.
Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi
Izin talebiThis article has been published
Video Coming Soon
JoVE Hakkında
Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır