Method Article
Attività spontanea di sviluppare le reti neuronali può essere misurato con AM-estere forme di calcio-sensibili coloranti indicatore. Variazioni di calcio intracellulare, indicando l'attivazione neuronale, vengono rilevati come variazioni transitorie della fluorescenza indicatore con uno o due fotoni di imaging. Questo protocollo può essere adattato per una serie di reti neuronali evolutivamente-dipendente In vitro.
Un modello segno distintivo di attività nello sviluppo di sistemi nervosi è spontaneo, attività di rete sincronizzato. L'attività sincronizzata è stata osservata in intatti midollo spinale, tronco encefalico, retina, corteccia e dissociato preparati cultura neuronale. Durante i periodi di attività spontanea, i neuroni depolarizzare a fuoco singolo o raffiche di potenziali d'azione, l'attivazione di canali ionici molti. Depolarizzazione attiva voltaggio-dipendenti canali del calcio in dendriti e spine che mediano afflusso di calcio. Altamente sincronizzato attività elettrica è stata misurata dal livello locale reti neuronali utilizzando elettrodi di campo. Questa tecnica consente elevate velocità di campionamento temporale, ma più bassa risoluzione spaziale grazie alla lettura integrata di neuroni più a un elettrodo. Risoluzione singola cella di attività neuronale è possibile utilizzando patch-clamp su singoli neuroni elettrofisiologia per misurare l'attività di tiro. Tuttavia, la capacità di misurare da una rete è limitato al numero di neuroni patch simultaneously, ed è in genere solo una o due neuroni. L'uso di calcio-dipendente coloranti indicatore fluorescente ha permesso la misurazione dell'attività sincronizzate attraverso una rete di cellule. Questa tecnica dà sia ad alta risoluzione spaziale e temporale di campionamento sufficiente per registrare l'attività spontanea della rete di sviluppo.
Una caratteristica fondamentale di reti corticali e dell'ippocampo appena formatisi durante il pre-e del primo sviluppo post-natale è spontaneo, sincronizzato attività neuronale (Katz & Shatz, 1996; Khaziphov e Luhmann, 2006). Questa attività di rete correlati è ritenuta essenziale per la generazione di circuiti funzionali del sistema nervoso (Spitzer, 2006). In entrambi i primati e il cervello di roditori, i primi e le onde della rete elettrica di calcio sono stati osservati prima e dopo la nascita in vivo e in vitro (Adelsberger et al, 2005;. Garaschuk et al, 2000;.. Lamblin et al, 1999). Questi primi modelli di attività, che sono noti per il controllo diversiprocessi di sviluppo tra cui la differenziazione neuronale, sinaptogenesi e la plasticità (Rakic & Komuro, 1995;. Spitzer et al, 2004) sono di fondamentale importanza per il corretto sviluppo e la maturazione dei circuiti corticali.
In questo video Giove, ci dimostra i metodi utilizzati per attività immagine spontanea nello sviluppo di reti corticali. Calcio-sensibili indicatori, come Fura 2-AM diffuso estere attraverso la membrana cellulare dove l'attività esterasi intracellulari si unirà il AM esteri di lasciare la cellula-impermeant forma di colorante indicatore. La forma di impermeant indicatore ha gruppi acido carbossilico che sono in grado di rilevare e poi legare ioni calcio all'interno delle cellule .. La fluorescenza del colorante calcio-sensibile è transitoriamente alterata dal legame al calcio. Tecniche di imaging singola o multi-fotone vengono utilizzati per misurare la variazione di fotoni emessi dal colorante, e quindi indicare una alterazione di calcio intracellulare. Inoltre, questi calcio-dindicatori ependent può essere combinato con altri marcatori fluorescenti per indagare tipi di cellule all'interno della rete attiva.
1. Fare orizzontale entorinale, dell'ippocampo fettine di cervello
Entorinale, dell'ippocampo fettine di cervello sono realizzati con guide anatomiche, dettagliato in una visione 3D della regione secondo Canto, Wouterlood & Witter (2008) ID plasticità neurale 381.243 9.
Slice soluzione (in mm) - 10 | |
110 | cloruro di colina |
25 | NaHCO 3 |
11,6 | 11,6 |
10 | D-glucosio |
7 | MgCl 2 |
3,1 | sodiumpyruvate |
2,5 | KCl |
1,25 | NaH 2 PO 4 |
0,5 | CaCl 2 |
Tabella 1. Ricetta per la soluzione fetta.
ACSF (in mm) | |
125 | NaCl |
26 | NaHCO 3 |
10 | D-glucosio |
3 | KCl |
2.5/1.5 | MgCl 2 (recupero / esperimento) |
1,6 | CaCl 2 |
1,25 | NaH 2 PO 4 |
Tabella 2. Ricetta per entrambi il recupero (r-ACSF) e sperimentali (e-ACSF) soluzione.
2. Preparazione del ch colorazioneambra
Per caricare le celle con i calcio-dipendente indicatore o cellulo-specifici marcatori, le fette devono essere trasferiti in una camera per la procedura di colorazione. Sebbene camere di commercio possono essere disponibili, si può facilmente essere assemblato da apparecchiature di laboratorio standard per il costo molto poco. Le caratteristiche principali di questa camera sono che le fette vengono riscaldati a tra i 30 ei 35 ° C, incubate in un mezzo continuo ossigenato e che la camera è al riparo dalla luce.
Metodologia Figura 1. Sezione della camera di colorazione che mostra fetta di incubazione (in alto) e l'applicazione di calcio-sensibile indicatore (pipettati colorante verde, sotto).
3. Colorazione delle fette
Nel corso di qualsiasi trattamento che coinvolgono coloranti fluorescenti, evitare photobleaching lavorando con poca luce e mantenere il colorante e tha macchiato il tessuto al buio tra maneggevolezza.
Età (giorno dopo la nascita) | Tempo di incubazione (min) |
20 | |
P8-P9 | 25 |
p10-p11 | 30 |
p12-13 | 35 |
> P13 | 40 |
Tabella 3. I tempi di incubazione per le diverse età, empiricamente determinato in laboratorio.
4. Altri coloranti e più tessuti
Forse a causa di un aumento della mielinizzazione del tessuto cerebrale, le fette da vecchi roditori non occupano Fura 2-AM estere che facilmente. Per facilitare l'assorbimento di questo colorante è utilizzato un passo di preincubazione con Cremophor EL (Sigma) per il cervello dei topi a P13 e oltre 11. Cremophor è un tensioattivo non ionico usato come eccipiente in molti farmaceuticaAl applicazioni. Senza questo passo, troviamo che cellula-specifica etichettatura è estremamente povera e inconsistente per tutta la fetta corticale.
Coloranti calcio caricare sia i neuroni e non i neuroni nella preparazione fetta. Per identificare e distinguere tra questi tipi di cellule all'interno della rete, solforodamina 101 (SR101) può essere utilizzato per gli astrociti etichetta all'interno della fetta.
Colorazione delle fette di solforodamina 101
Seguire i passaggi 1-3 come in precedenza (sezione 3).
Prendere 1 ml di soluzione madre 10mM di solforodamina (Sigma), dalla sua conservazione a -20 ° C e si sciolgono in 999 microlitri r-ACSF per dare una soluzione al 10 micron. Pipettare la porpora tinta over le fette come prima (passi 5-7), lasciando le fette in incubazione per un periodo di 15 minuti.
Microglia e le cellule endoteliali sono etichettati con FITC colorante lectina pomodoro
Seguire i passaggi 1-3 come prima.
Prelevare 25 ml di 2mg/ml Lycopersicon esculentum (pomodoro) lectine FITC coniugato (L0401, Sigma) in 2,5 ml soluzione stock r-ACSF dare 20 mg / ml concentrazione. Pipettare il colorante sulle fette come prima (passi 5-7), lasciando le fette di incubazione per un periodo di 45 minuti.
Nota, non è possibile combinare questo colorante con un calcio-sensibile indicatore di come Fura 2-AM o Oregon Verde Bapta-1 (OGB-1) che la fluorescenza nella gamma verde dello spettro in quanto i fotoni da entrambi i coloranti vengono emessi a lunghezze d'onda si sovrappongono. Tuttavia, ci sono altri calcio-indicatore di coloranti come il calcio arancione, rosso Fura che possono essere utilizzati in combinazione con filtri appropriati o Texas-Red coniugati lectina di unire ingegnoh calcio indicatore coloranti nello spettro verde.
5. Collegamento fette di camera di registrazione
Durante le fette di imaging devono essere stabili sotto il microscopio. Di solito un arpa metallo è in grado di tenere premuto il tessuto ma può distorcere in modo non uniforme la superficie della fetta, dando solo una parte del campo visivo per l'imaging a fuoco. Per evitare questo, le fette sono bloccati alla camera di registrazione utilizzando Polyethylenimine (PEI).
PEI soluzione | |
1 ml | Poli (etilenoimina) soluzione |
in 250 ml di buffer borico | |
40mm | acido borico |
10mM | sodio tetraborato decaidrato |
Tabella 4. Soluzione Ricetta PEI.
6. Iminvecchiamento
Calcio-dipendente coloranti indicatore può essere ripreso utilizzando uno o due fotoni microscopia. L'uso di due fotoni di imaging si attiva solo colorante indicatore all'interno del volume focale della regione di interesse, riducendo così la quantità di diffusione della luce nel tessuto. Inoltre, consente una migliore penetrazione profondità della luce nel fetta.
Per l'imaging funzionale di calcio si usa un laser titanio zaffiro forniti da Coherent accoppiato ad un microscopio Olympus con un obiettivo 20x (NA 0,95) e un sistema di Trimscope da LaVision Biotec. Il sistema consente Trimscope telaio scansione con 64 beamlets contemporaneamente ed è accoppiato con un C9100 Hamamatsu EM-CCD per una rapida scansione frame-tassi.
7. Rappresentante risultati
Carico di successo degli indicatori di calcio, Fura 2-AM sono mostrati in figura 1 nello sviluppo di reti corteccia entorinale e neocorticale utilizzando l'imaging multiphoton. Alcuni colorante si presenta ancora come la colorazione di fondo nel soma cellulare e tissutale, ma in alcuni casi, dendriti prossimali sono chiaramente visibili e separata dal circostante neuropilo. Se il carico non ha avuto successo, molto poco specifico delle cellule colorazione è osservato e piccoli gruppi di macchie tintura sono spesso visibili sulla superficie della membrana fetta di detriti morti.
In questi screenshot, la rete di cellule è chiaramente visibile in un unico piano di messa a fuoco per l'imaging cellulare simultanea. L'uso di un arpa metallo o attaccare incompleta della fetta alla camera di registrazione può risultare in una superficie irregolare fetta da acquisire.
550fig1.jpg "alt =" Figura 1 "/>
Figura 1. Fura 2-AM-estere caricato sviluppo neocorticale (A, a sinistra) e entorinale (B, a destra) le reti. Barre Scala 100 micron.
Per separare i neuroni da astrociti, co-applicazione di solforodamina 101 con Fura 2-AM estere consente di separare i tipi di cellule all'interno della rete.
Figura 2. Etichettatura astrociti con solforodamina 101. A Co-etichettatura dei Fura 2-AM estere e solforodamina 101. Eccitazione lunghezza d'onda: 820nm. Raccolta di immagini su PMT con specchio dicroico a 560/70nm per la separazione lunghezza d'onda. B tracce Rappresentante fluorescenza da un neurone (sopra) e un astrociti (sotto). Scala bar 60 sec, ΔF 10 (au fluo).
Figura 3. FITC-coniugato Lycopersicon esculentum (pomodoro) lectina colorazione . Etichettatura di microglia e le cellule endoteliali nello sviluppo dell'ippocampo mouse (A) e superficiale della corteccia entorinale (B).
Coloranti indicatore di calcio vengono utilizzati per attività di read-out da più celle contemporaneamente nello sviluppo di reti corticali e dell'ippocampo.
Figura 4. Transienti di calcio dinamica nelle reti ippocampali e corticali.
Video 1: Fura 2-AM carico estere del mouse corteccia entorinale durante la seconda settimana dopo la nascita.
Clicca qui per vedere film 1.
Movie 2: Fura 2-AM estere carico dell'ippocampo del mouse durante la prima settimana post-natale.
Clicca qui per vedere film 2.
Movie 3: Fluo-4 carico del mouse corteccia, durante la prima settimana post-natale.
50movie3.avi "> Clicca qui per vedere film 3.
Nel caso della Fura 2-AM estere, l'attivazione delle cellule che coinvolge una depolarizzazione indotta afflusso di calcio, diminuisce fluorescenza colorante. Per i coloranti come Fluo-4, è vero il contrario e depolarizzazione delle cellule si osserva come un aumento delle emissioni di fotoni. Transienti di calcio somatiche sono essenzialmente misurato ma l'attività in grandi dendriti prossimali può essere visto anche in alcune preparazioni, come mostrato in Movie 2.
Lettura delle attività di rete può essere quantificato utilizzando script software commerciale o in-house. Nel nostro laboratorio, l'identificazione delle cellule e l'attività di rete è misurato e analizzato in un modo semi-automatico con in-house codice Matlab (Mathworks).
Figura 5. Analisi rappresentante dei transitori di calcio sincronizzato da una rete di sviluppo corticale. Rappresentazione 3D di un neurone ( A) utilizzato per creare automaticamente una maschera neurone (B) da un z-stack per il rilevamento automatico dei neuroni. Misure di transienti di calcio sono l'ampiezza, frequenza e numero delle cellule attive che possono essere letti dal singolo neurone dati (C). Sincronia tra diverse tracce possono essere visualizzati con un plot raster (D).
I metodi si dimostra qui mostrano protocolli idonei per l'imaging di calcio delle dinamiche di rete a partire da cellule identificabile all'interno di sviluppo di reti corticali e dell'ippocampo nel topo e anche nel cervello di ratto. Questi metodi forniscono ottimale risoluzione spaziale di visualizzare una rete locale di somas cellula contemporaneamente per la misurazione dell'attività suprathreshold. Risoluzione temporale di attività di rete può essere variata, a seconda del telaio acquisizione CCD impostazioni della fotocamera, per ottimizzare il segnale: misure di rumore per gli eventi suprathreshold lunga durata, tipici di sviluppo del sistema nervoso. Questi protocolli non sono limitate alle reti ippocampali e corticali ma anche le cellule etichetta per tutto lo sviluppo del sistema nervoso. La limitazione di questo metodo è che l'attività suprathreshold solo possono essere registrati.
LaVision Biotec GmbH (Bielefeld, Germania) ha sponsorizzato la presentazione onorari di questo articolo manoscritto.
Lavoro in laboratorio è supportato da Organisatie Nederlandse Wetenschappelijk voor Onderzoek (NWO) (917.10.372) per RMM. JD è affiliata alla 7 ° PQ dell'UE BrainTrain programma ( www.brain-train.nl ). Ringraziamo Pieter Laurens-Baljon e Sabine Schmitz (entrambi CNCR, VU University Amsterdam) per le immagini delle forme d'onda multielectrode serie FP e culture neuronali usati nella sequenza video.
Richiedi autorizzazione per utilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE
Richiedi AutorizzazioneThis article has been published
Video Coming Soon