Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu yayında, böylece yalıtma ve sıçangil pankreas kültür birincil pankreatik acinar hücreleri için bir hızlı ve uygun bir prosedürü açıklar. Bu yöntem taze birincil dönüştürülmemiş / Normal ekzokrin pankreas hücrelerinin fizyolojisi incelemek için değerli bir yaklaşım oluşturmaktadır.

Özet

Bu protokol, bu birden fazla olası hafta bunların kültür korumak için yapmak, kemirgen pankreas asinüs hızlı izolasyonu (en az 1 saat olarak) izin verir. En az 20 x 10 6 asiner hücrelerin, tek bir sıçangil pankreasından elde edilebilir. Bu protokol bağımsız paralel 10 gibi pankreaslarında işlemek için imkan sunuyor. Bu asiner mimarisi korur, çünkü bu model de kendi asiner farklılaşma kısmen veya tamamen kaybı ile sonuçlanan birçok genetik değişiklikler görüntülemek pankreas tümörleri, gelen kurulan hücre hatları aksine in vitro pankreas fizyolojisi eğitim için uygundur.

Giriş

Ekzokrin pankreas dokusu üzerinde çalışan araştırma laboratuvarları için sık karşılaşılan sorun yeterince uzun uzun vadeli bir deneme sağlamak için bir süre için in vitro asiner hücrelerin yetiştirilmesi zorluğudur.

Bu tür kültür sistemlerinin geliştirilmesi engelleyen bir faktör de pankreas hücrelerinin izolasyonu sırasında serbest zaman tam anlamıyla pankreas doku sindirmek, glikolitik proteolitik ve lipolitik enzimler, en yüksek içeriği nedeniyle deneysel manipülasyon için pankreas dokusunun içsel duyarlılığı.

İkinci bir faktör, salgı özelliklerini yitirmesine ve bu pankreatik duktal hücreleri veya hepatosit benzeri hücreler 1. Gibi diğer olgun hücrelerin, için transdifferentiate eğilimi asiner hücreler, in vitro plastisitede dikkat çekicidir in vitro olarak, bu hücre plastisite deneysel koşullar ile değişir (örneğin, kültür ortamının bileşimi gibi) 2 destek ve ekzokrin pankreas hücreleri 1 için uygun kültür şartları ile içine karmaşıklığı bir ölçüde tanıttı.

Birçok yöntem ilk kobay pankreas asinar 3-5, hücrelerin izolasyonu ve kültürü için geliştirilmiştir. Başlangıçta, bu protokoller güçlü mekanik ayrışma ile nihai yalıtımlı, kollajenaz, kimotripsin ve bir proteaz kokteyl ile pankreas doku sindirim çıkıyor. Bu şekilde izole edilmiş pankreas hücreleri, özellikle anormal yapısal ve işlevsel özellikleri, apikal yapıları ve membran reseptörlerine önemli hasar bir kayıp gösterdi. İzole hücreler sadece 1 ya da 2 gün boyunca yaşayabilecek durumda kalır.

Hazırlanması asinüs salgı 6-8 cevaben yüzeyi reseptörlerine hasar görmesini sınırlayarak, ve böylece ekzokrin salgılanması iyileştirilmesi, hücre zarı koruyarak, bunların hücre içi ve arası mimari korur dağıldı. Bir resu olarakLT, bu yöntem, in vitro olarak 7-10 gün asinar hücre canlılığı uzanan en önemli avantaj sağlar. Gap junction ile hücre bağlantısı da dahil olmak üzere hücreler arası iletişim, bakımı ekzokrin pankreas asiner hücre fenotip 13 önemli bir belirleyicisi olduğu için Ayrıca, bu yöntem şu anda 9-12 asiner hücre izolasyonu için tercih edilir.

Asiner hücreler ve duktal hücrelerine kendi transdiferansiasyon en dediferansiyonunu agresif ekzokrin pankreas kanserleri 14 doğuşu için önerilen mekanizmalardan biri olduğu için, dağınık acini modeli aynı zamanda pankreas plastisite ve sonraki moleküler mekanizmaları incelemek için yeterli bir sistemdir. Ayrıca, genetik olarak değiştirilmiş hayvanların 15,16 kullanımı ve gen transfer tekniklerinin geliştirilmesi (adenoviral 2 veya lentiviral transdüksiyon, nanopartiküller, vb kullanımı), ile birlikte bu vitro birincil asiner hücre modelinde yapabilirsinizçeşitli genetik bozukluklar asiner hücre farklılaşması veya dediferansiyonunu düzenlenmesi etkiler ve pankreatit başlangıcı, prekanseröz lezyonlar, ve hücre plastisite değişiklikler sorumlu moleküler olayların daha iyi anlaşılmasını sağlamak nasıl belirlemede çok yararlı olabilir.

Dağınık acini izolasyonu biz kültür pankreas asiner hücrelere Laboratuvarımızda kullandığımız yaklaşımdır. Biz burada açıklamak ve kullanılan yöntemi tartışmak. Bu asiner hücre ayrışma olmadan mekanik bozulmasına birleştiğinde pankreas doku (bir bakteri kollajenazlarla) enzimatik ayrışma içerir. En protokoller süspansiyon veya özel işleme tabi tutulan plastik yüzeylerde ya kültür acini, dahil ederken, uzun süreli hücre kültürü gerekli ise matris iskeleleri üzerine sonradan tohumlama, sadece kısa bir süre (24 saat) süspansiyon bunları büyür.

Bu protokol dağınık pankreas ac hızlı izolasyonu (az 1 saat içinde) sağlarini, kültür birden fazla hafta sürdürülebilir. Bu fare pankreası başına en fazla 20 x 10 6 asiner hücrelerin izolasyonu sağlar. Sadeliği mümkün bağımsız paralel olarak 10 gibi pankreaslarında işlemek için yapar. Mevcut diğer tüm ekzokrin pankreas modelleri birçok genetik gösteren pankreas tümörleri türetilen gibi asini içi ve hücreler arası mimari ve böylece izole primer hücrelerin asiner fenotip koruyarak, bu model, transdiferansiasyon mekanizmalarının çalışma için tercih edilen bir sistem oluşturur Değişiklik hücresel dönüşüme yol açar.

Protokol

Tüm işlemler kamu otoriteleri düzenleyici altında bir etik kurul tarafından onaylanmış ("Comité d'Değerlendirme Haberleşme au Merkezi Léon Bérard, à l'ANIMALERIE de geçiş de l'ENS, au PBES et au laboratuarı P4" (CECCAPP)). Edildi Fareler "PLATEFORME AniCan, Merkezi Léon Bérard" (Lyon, Fransa) bir spesifik patojen free hayvan tesis muhafaza ve kurumsal düzenlemeler uygun olarak ele alınmıştır.

Prosedürünün bir şematik gösterimi Şekil 1 'de gösterilmiştir.

1. Pankreas Diseksiyon ve Dilaceration (Gün 0)

Bir çok hızlı bir diseksiyon ekstraksiyon optimal verim için önemlidir ve kültür içinde hücreleri iyi bir canlılığı sağlamak için. Pankreas izolasyonu için gereken zamanı azaltmak için, tüm alet ve ekipmanlar fare ötenazi önce hazır olmalıdır.

  1. CO 2 boğulma veya servikal dislokasyon ile fare Euthanize.

Bu adım, tüm işlemler steril diseksiyon ekipmanları ile steril bir ortamda (mikrobiyolojik güvenlik kabini, seviye II) altında yapılması gerekir.

  1. Fare düzeltmek ve% 70 etanol ile fare karın sprey. Herhangi bir diseksiyon makas ve forseps ile, genital bölgede bir V şeklinde kesi yapmak ve tamamen karın boşluğuna açmak için diyafram o kadar devam ediyor.
  2. Diyafram karşı karaciğer lobları yerleştirin; vücut boşluğuna yeterince açık ise orada kalmalıdır. Sol için karın boşluğu dışında bağırsak ve kolon çekin ve rektum bulmak. Kavisli bir forseps ve diseksiyon makas, kapmak ve bölüm rektum bir çift.
  3. Forseps aynı çifti ile, dikkatli bir şekilde sol tarafta bağırsak çekerek mide rektum tamamen bağırsak göz önüne sermek.
Bu aşamada ent ">, pankreas, mide ve bağırsak başlangıcı arasında ince bir şerit olarak ayırt edilebilir. dalak ile onun ligasyonu sağlam kalır.

  1. Dikkatle bağırsak boyunca pankreas kesme ve sindirim sistemi geri kalanından dalak ile kurtarmak, Noyes makas ve forseps bir çift kullanarak.
  2. Dalak ve bu bölümü (Şekil 2) bağlı olan pankreas al.

Bu aşamada, hiçbir mezenterik yağ dokusu ve / veya diğer komşu doku (dalak, bağırsak, vb) hücresel kirlenmesini önlemek için, pankreas ile toplanmış olabilir emin olun.

Prosedürün geri kalanı için, her bir tampon acinar hücreleri içinde, ekzokrin pankreas dokusunun tam ayrılma önlemek için kalsiyum iyonu kenetleyiciler Ca2 + olmadan hazırlanmış olmalıdır.

  1. Hank Dengeli Tuz Çözeltisi (HBSS) içinde iki kez 1x pankreas durulayın.

Bu adımda, gibi yağ dokusu batar pankreas aykırı, hala pankreas bağlı kirletici beyaz yağ dokusu görselleştirmek ve hızlı bir şekilde kaldırmak için kolayca mümkündür yüzer.

Pankreas hücre kültürü tesisine taşınması gerekiyorsa, bu HBSS 1x buz üzerinde tutulmalıdır.

  1. HBSS 1x 5 ml içeren steril Petri kabındaki pankreas aktarın. Noyes makas ve bir neşter kullanılarak, 1-3 mm 3 (Şekil 3A), küçük parçalar halinde pankreas dilim.

2. Pankreas enzimatik ve mekanik ayrışmalar (Gün 0)

  1. , Steril bir 50 ml polipropilen tüpe aktarın.
  2. 450 x g ve 4 de 2 dakika süre ile santrifüje ° C Aspire ve hücre parçaları ve kan hücreleri çıkarmak için supernatant atın.
  3. Kollajenaz IA 10 ml çözelti (HBSS 1x 10 mM HEPES collagena 200 U / ml ihtiva eden eklemepankreas bölümleri SE, IA ve 0.25 mg / ml tripsin inhibitörü). 25 ml serolojik pipet kullanarak, bir 25 cm 2 balon aktarabilirsiniz. 37 20-30 dakika için inkübe ° C Bu süre (her 5 dk) sırasında, azalan büyüklükte steril pipetler (25, 10, ve 5 ml serolojik pipet) içinde, enerjik on kere geri ve ileri-pankreas parçaları hareket ettirerek mekanik bir ayrışma gerçekleştirin.

Bu aşamada, bu sık sık pankreas bölümlerinin enzimatik ayrılma derecesini izlemek için gereklidir.

  1. Pankreatik doku de-ayrışmış gibi durduğu zaman (pankreas parçalarının ortadan kalkması ve solüsyonun yüksek bulanıklık göre) (Şekil 3B), soğuk 10 ml eklenerek enzimatik reaksiyonu durdurmak (HBSS 1x 5 ihtiva eden yıkama çözeltisi tamponlu % fetal sığır serumu (FBS) ve 10 mM HEPES).
  2. , Steril bir 50 ml polipropilen boru ve centr içine aktarın450 x g'de 2 dakika ve 4 ° C ve ifuge Dikkatlice aspire ve kollajenaz IA çözüm kaldırmak için süpernatant atın.
  3. Yeniden süspanse edin ve tamponlu yıkama solüsyonu 10 ml ile pelet yıkayın. 450 x g ve 4 3 dakika boyunca santrifüj ° C Dikkatlice aspire ve supernatant atın. Bu adımı iki kez daha tekrarlayın.

3. Filtrasyon ve tohumlama (Gün 0) acini Dağınık

  1. % 2.5 FBS içeren Waymouth orta 7 ml hücre pelletini,% 1 Penisilin-Streptomisin karışımı (PS), 0.25 mg / tripsin inhibitörü, ve 25 ng / yeniden birleştirici insan epidermal büyüme faktörü (EGF) ml ml.
  2. Bu non-sindirilmiş parçaların (kanalları, kan damarları ve Langerhans adacıkları) korumak için bir filtre 100 mikron geçmesine izin süzüntü hücre karışımı. Pankreas asiner yapılar (10-15 hücre acinus) geçer.
  3. Waymouth orta FBS ihtiva eden, PS, tripsin inh 6 mL 'si ile yıkayınız filtreibitor, ve EGF.

Bu aşamadan sonra, hücreler, herhangi bir asinüs ayrışma önlemek için, çok dikkatli bir şekilde tedavi edilmesi gerekir.

  1. Tohum, 6-çukurlu kültür kaplarına izole asinüs (oyuk başına 2 ml) (Şekil 3C). ° C altında% 5 (v / v) CO2 atmosfer 37 Kültür bunları.

Bu aşamadan sonra, asiner hücreler süspansiyonda kültürlendi.

4. Asiner Hücre Kültürü (Gün 1 ile 10)

  1. Yirmi dört saat sonra, kirletici hücreleri ve (Şekil 4) gece yapıştırılır var hücresel kalıntıları ortadan kaldırmak için, yeni bir 6-iyi bir kültür çanak içine (süspansiyon) acini aktarın.

Hücre kültürü birkaç gün ya da deneysel koşullar hücreleri tek tabaka yetiştirilen gerektiriyorsa, bu matris iskele üzerinde transferi ve tohum acini tavsiye edilir uzatılabilir gerekiyorsa.

  1. Görmeden günmatris destek ding (Gün 0), ceket tipi bir 6-iyi bir kültür çanak I kollajen (5 mg / cm 2). (0.02 M asetik asit içinde 50 ug / ml, 0.2 mikron filtre) her kuyuya tip I kolajen çözeltisi 1 ml ilave edilir ve 37 ° C'de (ya da gece boyunca 4 de, 1 saat boyunca, plastik üzerinde pasif olarak adsorbe izin ° C .)
  2. Tip I kolajen çözeltisi aspire edin ve fosfat-tamponlu tuzlu su ile 1x iki kat daha iyi kaplanmış yıkayın.
  3. Kullanmadan önce (bir mikrobiyolojik güvenlik kabini altında) en az 12 saat kuruması için de kaplı izin verin.
  4. Türü daha önce tarif edilenle aynı koşullarda I kollajen kaplı 6 oyuklu kültür çanağı ve bunların kültür (37 ° C de% 5 altında (v / v) CO2 atmosferi) içine izole edilmiş primer asinüs (Basamak 4.1 'de elde edilmiş) transferi . Hücreler, 2 gün boyunca, tip I kollajen alt tabakaya yapışır.
  5. Gün 3, uymadığımızı cansız hücreleri ortadan kaldırmak için kültür ortamı değiştirin. Kültür Zamanla, hücreleri giderek sp olacakkollajen ihtiva eden destek üzerinde okuyun. Kültür ortamı her 3 günde bir (Şekil 5) değiştirin.

Elde edilen izole asiner hücreler Thoma hücre sayımı odası kullanarak tam bir mekanik ayrılma sonra, sayılabilir. Izole asiner hücreler daha sonra kültüründe muhafaza edilemez unutmayın.

Elde edilen asiner kültür kalitesi gibi Tripsinojen, Pankreas Transkripsiyon Faktör 1 alt birimi Alpha veya karboksipeptidaz A1 (immünsitokimya veya immünofloresan deneyleri ile) olarak asiner spesifik belirteçler ifade kontrol ederek kontrol edilebilir.

Sonuçlar

Şekil 1 birincil asiner hücrelerin izolasyonu için "dağınık" acini yöntemi şematize etmektedir. Kesinlikle protokolü esnasında yerine getirilmesi gereken kritik adımlar, tartışma kısmında tarif edilmiştir.

Onun çıkarılmasını kolaylaştırmak için, pankreas ekli dalak (Şekil 2) ile birlikte karın tahsil edilmesi gerekir. Her iki ayrı organ kesmek gerekir ve yine de pankreas bağlı olabilir kalıntı yağ dokusu (Basamak 1.6...

Tartışmalar

Bu protokol, pankreas asiner hücreleri izole etmek için bir prosedür açıklanmaktadır. Bu yöntem, en az 1 saat, hayvan başına en fazla 20 x 10 6 asiner hücreleri izole etmek mümkün kılar. Hızlı ve basit bir uygulama (10 gibi pankreaslarında bağımsız paralel Deneme başına işlenebilir) sayesinde, bu protokol mevcut izolasyon yöntemleri 3-5,9-12,17 arasında iyi bir uzlaşma olarak görünür.

Kritik adımları / Sorun Giderme

Açıklamalar

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarının olmadığını beyan ederim.

Teşekkürler

Biz hayvan bakımı ile teknik yardım için AniCan personeli (CrCl, Lyon) teşekkür ederim. Bu çalışma Derneği pour la Recherche sur le Kanser tarafından, Institut National du Kanser tarafından ve burs tarafından Institut National de la Santé Et de la Recherche Médicale (INSERM Avenir Programı), Ligue Nationale Contre le Kanser, tarafından desteklenmiştir Fransa'nın Ministère de l'Enseignement Supérieur et de la Recherche gelen Institut National du Kanser (JG), (RMP ve DFV) gelen ve Derneği pour la Recherche sur le Kanser Ligue Nationale Contre le Cancer (JG), ( DFV).

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Name of Reagent/MaterialCompanyCatalog NumberComments
0.2 μm filterDutscher146560
10 ml serological pipettesBeckton Dickinson357551
100 μm filterBeckton Dickinson352360
100 mm Petri dishBeckton Dickinson353003
1000 μl filter tipsStarlabS1122-1830
20 μl filter tipsStarlabS1120-1810
200 μl filter tipsStarlabS1120-8810
25 ml serological pipettesBeckton Dickinson357535
5 ml serological pipettesBeckton Dickinson357543
50 ml polypropylene tubeBeckton Dickinson352070
6-well plateBeckton Dickinson353046
Acetic acid 100%VWR BDH Prolabo20104.298
Collagenase IASigma-AldrichC2676
Curved forceps, Dumont #7World Precision Instruments14188To sterilize before use
Dissecting scissors, straightWorld Precision Instruments14393To sterilize before use
Epidermal Growth Factor, humanPromokineC-60180
Ethanol absolute (AnalaR Normapur)VWR BDH Prolabo20821.310
Fetal Bovine SerumLonza14-801F
Forceps, Dumont #5World Precision Instruments14098To sterilize before use
Hank's Balanced Salt Solution 1x Gibco14025050
HEPES 1 M (pH 6.98-7.30)Lonza17-737F
Incubator O2/CO2SanyoMCO-19M
Inverted microscopeNikonEclipse TS100
MatrigelBeckton Dickinson356234
Microbiological Safety Cabinet, level IIFasterSafeFast Elite 212 S
Noyes scissors, sharp/sharp tips, GermanWorld Precision Instruments500228-GTo sterilize before use
Penicillin-Streptomycin mixtureGibco15140122
Phosphate Buffer Saline 10x Gibco14200067
Pipet-AidDrummond Scientific CompanyPipet-Aid XP
Pipetman P1000GilsonF123602
Pipetman P20GilsonF123600
Pipetman P200GilsonF123601
Refrigerated centrifugeEppendorf5810R
ScalpelParamount Surgimed Ltd.Disposable Scalpel Size 23
T25 flask, 25 cm2Sigma-AldrichZ707481
Trypsin inhibitor, from Glycine MaxSigma-AldrichT6522
Type I collagenBeckton Dickinson354236
Waymouth's mediumGibco31220-023

Referanslar

  1. Lardon, J., Bouwens, L. Metaplasia in the pancreas. Differentiation. 73, 278-286 (2005).
  2. Sphyris, N., Logsdon, C. D., Harrison, D. J. Improved retention of zymogen granules in cultured murine pancreatic acinar cells and induction of acinar-ductal transdifferentiation in vitro. Pancreas. 30, 148-157 (2005).
  3. Amsterdam, A., Jamieson, J. D. Structural and functional characterization of isolated pancreatic exocrine cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 69, 3028-3032 (1972).
  4. Amsterdam, A., Jamieson, J. D. Studies on dispersed pancreatic exocrine cells. I. Dissociation technique and morphologic characteristics of separated cells. J. Cell. Biol. 63, 1037-1056 (1974).
  5. Amsterdam, A., Jamieson, J. D. Studies on dispersed pancreatic exocrine cells. II. Functional characteristics of separated cells. J. Cell. Biol. 63, 1057-1073 (1974).
  6. Schultz, G. S., et al. Guinea pig pancreatic acini prepared with purified collagenase. Exp. Cell Res. 130, 49-62 (1980).
  7. Williams, J. A., Korc, M., Dormer, R. L. Action of secretagogues on a new preparation of functionally intact, isolated pancreatic acini. Am. J. Physiol. 235, 517-524 (1978).
  8. Logsdon, C. D., Williams, J. A. Epidermal growth factor binding and biologic effects on mouse pancreatic acini. Gastroenterology. 85, 339-345 (1983).
  9. Han, B., Logsdon, C. D. Cholecystokinin induction of mob-1 chemokine expression in pancreatic acinar cells requires NF-kappaB activation. Am. J. Physiol. 277, 74-82 (1999).
  10. Ji, B., Kopin, A. S., Logsdon, C. D. Species differences between rat and mouse CCKA receptors determine the divergent acinar cell response to the cholecystokinin analog JMV-180. J. Biol. Chem. 275, 19115-19120 (2000).
  11. Ji, K. A., Yang, M. S., Jou, I., Shong, M. H., Joe, E. H. Thrombin induces expression of cytokine-induced SH2 protein (CIS) in rat brain astrocytes: involvement of phospholipase A2, cyclooxygenase, and lipoxygenase. Glia. 48, 102-111 (2004).
  12. Gaiser, S., et al. Intracellular activation of trypsinogen in transgenic mice induces acute but not chronic pancreatitis. Gut. 60, 1379-1388 (2011).
  13. Logsdon, C. D., Williams, J. A. Pancreatic acinar cells in monolayer culture: direct trophic effects of caerulein in vitro. Am. J. Physiol. 250, 440-447 (1986).
  14. Stanger, B. Z., Dor, Y. Dissecting the cellular origins of pancreatic cancer. Cell Cycle. 5, 43-46 (2006).
  15. Vincent, D. F., et al. Tif1gamma suppresses murine pancreatic tumoral transformation by a smad4-independent pathway. Am. J. Pathol. 180, 2214-2221 (2012).
  16. Vincent, D. F., et al. Inactivation of TIF1gamma cooperates with Kras to induce cystic tumors of the pancreas. PLoS Genet. 5, e1000575 (2009).
  17. Dorrell, C., et al. Isolation of mouse pancreatic alpha, beta, duct and acinar populations with cell surface markers. Mol. Cell Endocrinol. 339, 144-150 (2011).
  18. Case, R. M. Synthesis, intracellular transport and discharge of exportable proteins in the pancreatic acinar cell and other cells. Biol. Rev. Camb. Philos. Soc. 53, 211-354 (1978).
  19. Blauer, M., Nordback, I., Sand, J., Laukkarinen, J. A novel explant outgrowth culture model for mouse pancreatic acinar cells with long-term maintenance of secretory phenotype. Eur. J. Cell. Biol. 90, 1052-1060 (2011).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Kanser BiyolojisiSay 78H cresel BiyolojiMolek ler BiyolojiBiyomedikal M hendisli iT pAnatomiFizyolojiCerrahiOnkolojiPankreasEkzokrinH crelerK lt rFarePrimer H cre K lt rg r len pankreasH cre k lt rlk retim asiner h crelerFarepankreas kanserikansert m rdokuhayvan modeli

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır