JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

We provide a detailed description of a protocol for flow cytometric analysis of surface antigens and/or intracellular antigens in neural cell types. Critical aspects of experimental planning, step-by-step methodological procedures, and fundamental principles of flow cytometry are explained in order to enable neurobiologists to exploit this powerful technology.

Özet

Flow cytometry has been extensively used to define cell populations in immunology, hematology and oncology. Here, we provide a detailed description of protocols for flow cytometric analysis of the cluster of differentiation (CD) surface antigens and intracellular antigens in neural cell types. Our step-by-step description of the methodological procedures include: the harvesting of neural in vitro cultures, an optional carboxyfluorescein succinimidyl ester (CFSE)-labeling step, followed by surface antigen staining with conjugated CD antibodies (e.g., CD24, CD54), and subsequent intracellar antigen detection via primary/secondary antibodies or fluorescently labeled Fab fragments (Zenon labeling). The video demonstrates the most critical steps. Moreover, principles of experimental planning, the inclusion of critical controls, and fundamentals of flow cytometric analysis (identification of target population and exclusion of debris; gating strategy; compensation for spectral overlap) are briefly explained in order to enable neurobiologists with limited prior knowledge or specific training in flow cytometry to assess its utility and to better exploit this powerful methodology.

Giriş

Akım sitometri yoğun içsel dağılım özellikleri, hücre yüzey antijeni ifade ve diğer floresan parametreleri 1-3 vasıtasıyla hücre popülasyonlarının tanımlamak için immünoloji, hematoloji ve onkoloji istismar edilmiştir. Kan soy geliştirme ve hastalık halinde bizim anlayışlar ilk uygulama 4,5'ten sonra bu metodolojinin sürekli arıtma önemli ölçüde bir sonucudur. Akış nicel ve genel analitik potansiyeli artan farkındalık sitometri son zamanlarda kök hücre araştırmalarında da daha yaygın kullanımını teşvik etmiştir ve kısa bir zaman dilimi 6 benzer derin ilerleme sağlayabilir. Ancak, özellikle nöral popülasyonları analiz ve izole etmek için akış sitometri uygulaması uzun zorlu olarak algılanmıştır. Doğal olarak süspansiyonda mevcut hematopoietik hücrelerin aksine, sinir hücresi tipleri, tipik olarak glia ve çeşitli o içerebilir aşırı derecede karmaşık kaynaklardan toplanırTher çevreleyen hücreleri ve aynı zamanda işlem taşıyan nöronların karmaşık bir ağdır. Sonuç olarak, nörobiyoloji günlük araştırma rutinleri onun tam potansiyeline flow sitometri çok yönlülüğünü uygulamak için henüz. Ancak nörobiyolojisinde analitik repertuarın değerli unsuru olarak kabul edilebilir olduğu sürece uygun bir tek hücre süspansiyonu elde edilebilir (ve protokoller bu amaçla 7 için tasarlanmış ve optimize edilmiş) halinde, akış sitometrisi ve floresans ile aktive edilen hücre çeşitleme (FACS) 8-11.

figure-introduction-1548
. Fluidik, optik ve elektronik: akım sitometri analizi ve bir akış sitometresinde bileşenlerinin Şekil 1. İlke akış sitometrelerinde üç ana sistemleri içermektedir. Süspansiyon içinde bulunan hücrelerin bir akıcı akış kılıf flui ile gerçekleştirilir (birincil doku ya da in vitro kültürü hazırlanmış)hidrodinamik yoluyla d merkez çekirdek örneği kısıtlayan, odaklama. Optik parçalar uygun dedektör sinyal doğrudan hücrelere ve optik filtrelerin akışı aydınlatmak lazerler oluşmaktadır. elektronik sinyaller, daha sonra bir bilgisayar tarafından işlenir ve veri analizi ve yolluk için bir monitörde görüntülenebilir dönüştürülür tespit ışık sinyalleri. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Bir sitometresinin yapı blokları dahil altta yatan temelleri en azından temel bir anlayış akış sitometri yöntemleri kar Kullanıcılar (inceleme için 12,13 görüyorum; ayrıca bakınız Şekil 1). Bir lazer ışını da 'tek dosya' birbiri ardına lazer ışınının geçmesine süspansiyon hücreleri içeren bir hidrodinamik odaklı akışkan akışı ile kesişir. interceptiBu sorgulama alanına ışık saçılması lazer sonuçları ile hücre (veya bu konuda herhangi bir diğer parçacık, sırasıyla) ile. (Parçacık / hücre granulosity yansıtan tarafında dağılım) Dağınık ışık, hem de dik olan doğrultu (parçacık boyutu ile ilişkili ileri dağılım, hem) lazer yönünde devamında tespit edilebilir. Bu Anılan dağılım özellikleri (aynı zamanda veya hücresel enkaz, hava kabarcıkları, vb) bir etiketsiz örnek yaygın ilk yolluk için kullanılan yan dağılım grafiği iki değişkenli ileri saçılma bir sinyal (olay) üretecektir neden özel etiketleme, gerekmez. Uygun lazerler ve karşılık gelen uyarma ve emisyon spektrumu için özel filtreler kullanılarak, bir hücrenin pozitiflik, yoğunluk seviyesinde veya flüoresan işaretler yokluğu için analiz edilebilir. Akış sitometrik uygulamalarının çoğunluğu hücre yüzey antijenleri üzerinden karakterizasyonu üzerine odaklanmıştır. Hematopoietik lineag aksineE, sinir soy yüzey epitop ifade desenleri 5'e göre daha az kapsamlı tanımlanmış kalmıştır. Yüzey antijenleri istismar bir avantajı, canlı hücreler, FACS gibi sıralama paradigmalar hücre tabi olmasıdır. Buna karşılık, hücre içi antijen boyama canlı hücreler gerektiren mansap uygulamaları engelleyen, epitop-antikor etkileşimi aracılık tespit ve permeabilization adımları gerektirir. Dikkat çekici bir şekilde, bu tür yaklaşımlar yine çok nicel deneyleri 14 yanı sıra, RNA ve protein ekspresyonu 15 alt baş analizler için izin verir. Hematoloji, immünoloji ve onkoloji genellikle belirli alt popülasyonlar 16 tanımlamak için birlikte bir düzineden fazla belirteçleri kullandık. Ayrıca, kitle sitometri veya CyTOF geç 30 parametreleri aynı anda 17,18 kadar analiz etmek için kullanılabilir.

Nöral kök hücre uygulamaları yanı sıra birincil kültürlerin 14,19,20 hücrelerin heterojen olarak içinIn vitro ortak bir olgudur 21-23 olduğunu. ilgi hedef kitleyi temsil etmeyen hücreler deneysel okuma 24,25 için bir potansiyel karıştırıcı faktör somutlaştırmak. Uygun, heterojen bir hücre süspansiyonu içinde bulunan farklı hücresel alt kümeleri bu çeşitli popülasyonları tanımlamak için kullanılabilir farklı (bilinen veya henüz deşifre edilecek) antijen ifade profilleri, ayı. Biyomedikal uygulamaları kolaylaştırmak, dolayısıyla böylece, hücresel heterojenite çözümünde önemli bir rol oynayabilir ve Flow sitometri (in vitro deneyler, hücre tedavisi) ve en alakalı alt kümesi 24,26 odaklanarak kantitatif okuma optimize. Çeşitli yüzey antijen kombinasyonları özel nöral hücre tiplerinin kantitatif ve izole izin vermek için son birkaç yıl içinde tespit edilmiştir. Bu nöral kök hücreler 27 NSC izolasyonu için CD15 / CD24 / CD29 yüzey antijenlerinin kombinasyonu, differentia zenginleştirilmesi için CD133 içerirTed nöron ve nöral krest hücreleri 28 veya CD15 / CD24 / CD44 / CD184 / CD271, diğer imzalar 29,30 arasında nöral ve glial alt kümeleri 25, izole etmek. Nöronlar ötesinde, gliyal belirteçler A2B5 31, CD44, 25 NG2 32 ve GLAST 33 içerir. Son zamanlarda yayın Parkinson hücre nakli dopaminerjik öncüleri zenginleştirmek için orta beyin tabanının habercisi işaretleyici CORIN 34,35 36 paradigmalar istismar etmiştir. CD molekülleri sadece belirteçler değil, hücre-hücre etkileşimleri ve hücrenin yeteneği fonksiyonel ilgili arabulucular dışı matriks molekülleri ipuçlarını cevap ve büyüme faktörleri 37. Ayrıca sinir soy gelişimini karakterize etmek için kombinasyon CD antijenlerinin cephanelik arttırıcı bir strateji, söz konusu özel bir hücre tipi için bir CD antijeni kombinasyonu için taranması ve tanımlamak için bilinen hücre içi belirteçler kullanmaktır. Biz son zamanlarda böyle bir yaklaşım sömürülen ve CD4 belirledik9f - / CD200 nöral ayırt uyarılmış pluripotent kök hücre kültürü sistemleri 38 nöronal alt kümelerini zenginleştirmek için yeni bir yaklaşım olarak yüksek birleştirici ifade desenleri. Burada, içerir ve ikinci protokolü (ve bunların isteğe bağlı varyasyonlar) 'in yüzey boyama ve hücre içi boyama akış sitometrisi ile nöral hücre alt-popülasyonunu tanımlamak için aynı anda kullanılabilir tartışır.

figure-introduction-7316
Deneysel protokol seçenekleri Şekil 2. akış diyagramı. Şekil protokolde yer alan önemli adımlardan şematik bir temsilini tasvir etmektedir. İsteğe bağlı adımlar (KAKE boya veya hücre içi antijen etiketleme) açık gri kutular ile gösterilir. Hasattan sonra, bu hücre yüzey boyamadan önce nöral hücre süspansiyonlarının yaşayabilirliği ve hücre sayısını belirlemek için gereklidir. Pozitif olarakde negatif kontroller olarak ilgi örneklere ek olarak dahil edilmesi gerekir. Numuneler akım sitometri ile analiz ve / veya hücre sıralama paradigmalar kullanılabilir. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Daha önce hücre içi boyama 38 için ikincil bir antikor ile kombinasyon halinde birincil antikor kullanmış iken, şimdi, böylece hücre manipülasyonu 39 aşamaları azaltarak küçük bir değişikliği gibi floresan Fab parçaları (Zenon etiketleme) yoluyla birincil antikor kovalent olmayan etiketleme getirmektedir. Ayrıca, protokolün çok yönlü bir başka örnek olarak, antijen lekeleme yüzey önce süksinimidil ester (CFSE) karboksifloresan ile bir deney alt-grubun isteğe bağlı bir etiketleme kullanır. Böyle KAKE ön-etiketleme, iki hücre hatları ya da deneysel koşullar hemen doğrudan karşılaştırma (sağlarVs KAKE-etiketli. Tek bir örnek tüpü, değişiklik veya inkübasyon süresi ince farklılıkların azaltılması ve antikor tasarruf içinde) etiketsiz. CFSE, yaygın üreme 41,42 ve Barkod deneylerde 43,44, hücre takibi 40 için kullanılan kurulu bir floresan boya olan. Gerçek sıralama adımlar (FACS, immünomanyetik hücre ayırma veya immunopanning) Bu protokolün bir parçası değil ise Nihayet, prensip olarak, burada açıklanan hasat ve etiketleme işlemleri antijen ya da hücre içi etiketleme-tabanlı uygulamaları sıralama yüzey tabi olabilir verim örnekleri yapmak 15 25,28.

Bu makale ile, biz hedefliyoruz: bir olarak hücre içi KAKE boya etiketleme adım 41,45 sunmak, bir hücre içi hedeflerin tespiti için protokol yanı sıra kombine yüzeyi ve hücre içi antijen analizi 38 özetlemek, geçerli bir yüzey antijeni boyama protokolü 25,28 özetlemek com için deneysel seçenekkarşılaştırmalı nöral hücre popülasyonlarının analizleri ve sitometrik analizi (strateji ve veri sunumu 47 yolluk uygun kontrolleri 13,46) akış yaklaşımları özetlemek.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protokol

1. Sinir Hücre Hasat

  1. Mikroskopla Değerlendirme:
    1. Bir deney başlamadan önce, parlak alan veya faz kontrast mikroskobu ile kültür durumunu kontrol edin.
      NOT: disseksiyonlar elde edilen primer sinir dokusu iken, ilke olarak, eşit mükellef sitometri analizi 14,28 akış, protokolün odak in vitro nöral hücre sistemleri elde edilen hücreler üzerinde olduğuna dikkat edin.
  2. Hücrelerin Toplanması 7:
    1. Yavaşça Mg + 2 ile yapışık hücre çanak / şişe, yıkama / Ca2 + serbest fosfat tamponlu tuzlu su (PBS), oda sıcaklığında (örneğin, T75 şişesinin 5 mi, 6-çukurlu plaka için oyuk başına 3 ml veya 10 mi için 10 cm çanak).
      NOT: PBS protokol boyunca kullanılan Mg 2+ / Ca 2+ ücretsizdir.
      1. Video Örneğin,% 80 birbirine karıştığında, SH-SY5Y nöroblastoma hücrelerinin bir T75 şişesinin kullanımı. Durumlarda nerede ek yıkama adımları uygulayınönemli ölçüde çöp kabı içinde mevcuttur.
      2. Serum albümini içeren PBS 48, Percoll, ya da Ficoll 49 santrifüj gradyanlar ve / veya ticari olarak temin edilebilen boncuklar 50,51 ile yıkama düşünün. Miyelin ve diğer lipid ya da diğer kirletici maddelerin çıkarılması yetişkin birincil doku kaynakları kullanılıyorsa, özellikle önemlidir.
    2. Doku kültürü kabının tüm yüzeyini kaplar, uygun bir hacminde önceden ısıtılmış (37 ° C), tripsin değiştirme ekleyin.
      NOT: Alternatif, Accutase veya diğer enzimatik sindirim seçenekleri göz önünde bulundurun. Bu kritik adım olumsuz (7 bakınız) yüzey epitop ifadesini etkileyebilir.
    3. Hücreleri ayırmak için izin vermek için (hücre tipine göre), 5 dakika - 2 37 ° C 'de çanak / şişeyi inkübe edin. Yavaşça hücreleri çıkarmak için bir serolojik pipet ile doku kültürü gemi veya gömme dokunun. (Bu gibi daha sonraki aşamada hücre kaybı ve pıhtılaşmayı neden olabilir) sindirim üzerinde kaçının.
    4. Siki kez akış tamponu (PBS içinde% 2 FBS) hacminin eklenmesiyle tripsin değiştirme uench ve 15 ml konik bir tüp içinde hücreleri toplamak.
    5. Tek bir hücre süspansiyonu meydana getirmek üzere - (1.000 ul, 100) ya da bir 5 mi serolojik pipet yavaşça mikrolitre pipet kullanılarak bir hücre süspansiyonu çiğnemek.
    6. 25 ° C'de 5 dakika boyunca 220 x g'de hücreleri santrifüjleyin. Dikkatle geride bırakarak pelet süpernatant aspire.
    7. Yeniden askıya pellet (boyutuna bağlı olarak, akış tamponu uygun hacimde bir pelet gibi, SH-SY5Y hücrelerinin bir T75 şişesinin birleşik için tipik bir verim, en az 10 x 10 6 hücre, bu durumda hücreler içinde Akış tamponu, 5 ml) içinde tekrar süspanse edilir.
      NOT: Daha büyük parçalar veya pıhtılaşma gözlenmesi halinde, 30 ile filtre - 100 mikron örgü.
  3. Hücre sayımı 52:
    1. Tr hacminde belli bir oranda bir mikrosantrifüj tüpüne hücre süspansiyonu küçük bir kısım aktarın ve seyreltikypan mavi veya bir hemositometrede transfer veya otomatik hücre sayım sistemi önce alternatif bir canlılığı boya.
    2. (CFSE etiketi ile devam ise)% 0.1 BSA ile akış tamponu veya PBS uygun hacimde eklenmesiyle, 1 x 10 6 yaşar hücre / ml'lik bir konsantrasyonda hücre süspansiyonu seyreltin.
      NOT: Propidyum iyodür, 7-aminoactinomycin D, anneksin V ve piyasada mevcut düzeltilebilir canlılığı tahlil kitleri hücrelerin canlılığını değerlendirmek için alternatif seçenekler temsil eder. Daha önce 53 kullanılabilir tarif edildiği gibi aynı zamanda, apoptoz deneyleri kaspaz-3 floresans kullanılmıştır. Floresan kanallar tüm örneklerin dahil halinde sonraki adımlar için seçenekleri sınırlayabilir Bu reaktiflerin tarafından "işgal" olacak.

CFSE kullanma 2. Hücre içi Boya Etiketleme (Şekil 3)

  1. Kolayca kullanılabilen bir arzu stok konsantrasyonu CFSE seyreltin.
    NOT: Bu deneylerin bir stok konsantrasyonu için0.01 mM kullanılmıştır. Ampirik KAKE optimal çalışma konsantrasyonunu belirlemek.
  2. 0,1 uM değerinde bir nihai konsantrasyona hücrelerin ml başına 0.01 mM CFSE çözeltisi (Bölüm 1.3.2, PBS +% 0.1 BSA içinde, 1 x 10 6 hücre / ml konsantrasyonda), 10 ul ekle. Kısaca girdap iyice karıştırın.
    Not: Burada kullanılan CFSE konsantrasyonları boyanın toksikliği hücre dolayısıyla, genel olarak çoğalma deneylerinde uygulanabilir göre daha düşük bir on-kat azdır. Biz hücre canlılığı üzerindeki olumsuz etkilerini gözlemlemek yok.
  3. Sabit şekilde çalkalanarak (200 rpm) oda sıcaklığında 5 dakika süreyle inkübe edilir. Işıktan koruyunuz.
  4. Tüplere akış tamponu 5 hacmi eklenerek boya söndürüldü. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 94 x g'de santrifüjleyin.
  5. Geride bırakarak pelet süpernatant atın. Akış tamponu, 5 hacim ile hücrelerin yeniden askıya.
  6. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 94 x g'de santrifüjleyin. Süpernatant atılır ve 1 x 10 6 hücre konsantrasyonunda akış tamponu içerisinde hücrelerin yeniden askıya / mi.
  7. Lekeli hücre süspansiyonu ilgi boyanmamış hücrelerin eşit sayıda ekleyin. Antijen boyama protokolü (Bölüm 3) yüzey geçin.

figure-protocol-5376
CFSE, boya etiketleme. SH-SY5Y nöroblastoma hücreleri ile iki hücre hatları arasında farklı CD ​​yüzey antijeni ifade Şekil 3. Algılama önceden etiketlenmiş olan etiketlenmemiş BJ fibroblastlar ile karşılaştırıldığında daha sonra tespit edilebilmesi için CFSE ile. (; Ok uçları = BJ fibroblastlar ok = SH-SY5Y) yüzey işaretleyicileri CD24 ya da CD54 (her ikisi de APC birleşik) ile karıştırılmış numunenin (sağ panel) eş zamanlı boyama hücre çizgileri bağlı CFSE boyama kolaylıkla ayırt edilebilir olduğunu göstermektedir. SH-SY5Y hücrelerinin çoğunluğu CD24 fakat CD54 (ICAM-1) ifade etmektedir. Buna karşılık, BJ fibroblastlar (negatif KAKE) CD54 pozitif ama CD24 için büyük ölçüde olumsuzdur."Https://www.jove.com/files/ftp_upload/52241/52241fig3highres.jpg" target = "_ blank"> bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için burayı tıklayınız.

3. Hücre Yüzey Boyama

  1. Numunelerin ve kritik kontroller (Tablo 1) olmak üzere Etiket tüpler.
Tüp hayır. Örnek adı Antijen-florofor Seyreltme
1 Lekesiz hücreler -
2 Tek lekeli CD24-APC 01:50
3 Tek lekeli Tuj1-Alexa fluor 488nm 1: 2000
4 Lekeli Çift CD24-APC 01:50
Tuj1-Alexa fluor 488nm 1: 2000
5 Tek lekeli İkincil Sadece: Alexa fluor 488nm 1: 2000

Tüplerin Tablo 1. L ist deney sitometrisi tipik akış dahil edilecek. Tablo, bu video makalede tarif edilen bir ko-lekeleme deneyi için gerekli örnek tüplerinin en az bir setini göstermektedir. İdeal deney elde edilen sonuçların doğru yorumlanması için gerekli tüm kontrolleri (negatif, pozitif yanı sıra tazminat kontrolleri) içermesi gerekir.

  1. Her bir 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü (Bölüm 2.7 veya 1.3.2 itibaren) hücre süspansiyonu 100 ul ekle.
    NOT: Emin 0,1 x 10 6 hücre minimum hücre süspansiyonu 100 ul başına mevcut olduğundan emin olun.
  2. Uygun seyreltmede örnek flüorofor konjuge antikor ekleyin.
    NOT: deney öncesinde her antikor için seyreltme çalışma belirleyin. Bir liste için o Tablo 2 bakınızf sinir yüzey antijenleri.
Antijen Hücre Tipi Referans
CD15 Nöral kök hücreler [28, 67]
CD24 Nöronal hücre [28, 68]
CD29 Nöral kök hücreler [28, 69, 70]
CD44 Glial hücreler [25]
CD49f Nöral kök hücreler [38]
CD56 (NCAM) Nöronal hücre [71]
CD133 Nöral kök hücreler [27]
CD184 Nöral kök hücreler ve glial hücreler [25]
CD200 Nöronal hücre [38]
CD271 Nöral krest kök hücreleri [25]
A2B5 Glial hücreler [31]
CORIN Dopaminerjik öncüleri [35, 36]
FORSE1 Nöral kök hücreler (MGK) [72]
GLAST Glial hücreler [33]
NG2 Glial hücreler [32]

Sinir yüzey antijenlerinin Tablo 2. seçilmesi. Bu tabloda, sinir soyu karakterize etmek için kullanılan yüzey antijenleri artan paneli örnek için çeşitli sinir hücresi tipleri tarafından eksprese edildiği yüzey epitoplarının bir listesini sağlar. Bu seçim tam ve bu belirteçlerin çoğu diğer nöral ve nöral olmayan hücrelerin bir dizi ifade olduğunu olmaktan uzak olduğunu unutmayın. Sonuç olarak, çok sayıda markalama kombinasyonları için daha iyi tanımlaması ve belirtilen sinir alt kümeleri izole etmek için gerekli olacaktır.

  1. Karanlıkta orbital bir karıştırıcı (200 rpm) üzerinde 30 dakika süreyle inkübe edin.
  2. Akış tampon yıkama
    1. Tüplere akış tamponu 1 ml ilave edilir. 4 ° C de 4 dakika boyunca 380 x g'de santrifüjleyin.
    2. Geride bırakarak pelet süpernatant atın.
  3. Tekrar yıkama adımı tekrarlayın.
  4. İkinci yıkamadan sonra, süpernatant süzün ve 100 ul son hacim olması için akış tamponu içerisinde hücrelerin yeniden askıya.
  5. Akım sitometri analizi için numune kullanın. Alternatif olarak, Bölüm 4 ve 5 ile devam edin.
    NOT: Hücreler sıralanır ve kültür sonrası FACS içine geri koymak için ise (yani, fiksasyon veya permeabilization olmadan canlı hücre süspansiyonu), hasat, boyama ve analitik adımlar sırasında aseptik teknikleri uygulamak.

4. Sabitleme ve Permeabilization 38

  1. Sabitleme kullanarak paraformaldehid (PFA):
    1. PBS içinde% 2 PFA içeren sabitleme tamponu hazırlayın.
      Not: PFA insanlar ve çevre için zararlıdır. Uygun kişisel koruyucu ekipman kullanın ve yerel yönetmeliklere uygun olarak atık atın.
    2. Hücre süspansiyonunun 100 ul sabitleme tampon 500 ul ekle.
    3. Karanlıkta orbital bir karıştırıcı (100 rpm) üzerinde 15 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin.
  2. PBS yıkama:
    1. Tüpüne PBS içinde 1 ml ilave edilir. 4 ° C'de 3 dakika boyunca 380 x g'de santrifüjleyin.
    2. Tüp yaklaşık 100 ul bırakarak süpernatant süzün / atın.
  3. Tween-20 ile geçirgenleştirme:
    1. PBS içinde% 0.7 Tween-20 içeren permeabilizasyon tampon hazırlayın.
    2. Hücre süspansiyonunun 100 ul permeabilizasyon tampon maddesi içinde 500 ul ekle.
    3. Karanlıkta orbital bir karıştırıcı (100 rpm) üzerinde 15 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin.
  4. (Bölüm 4.2 de tarif edildiği gibi), bir kez PBS ile hücre yıkayın ve tüpler co süpernatanmpletely, geride sadece topak bırakılmıştır.

5. Hücre içi Antijen Boyama 38 (Şekil 4)

  1. Birincil antikor çözeltileri hazırlanması:
    1. % 1 sığır serum albümin,% 10 serum (örneğin, normal eşek veya keçi serumu) ve% 0.5 Tween-20 ile PBS içinde ihtiva eden seyreltme tamponu içinde primer antikorlar ile seyreltilir.
      NOT: İkincil antikorlar büyütüldüğü türe bağlı kullanılmak üzere serum seçin.
    2. Seçenek olarak ise, üreticinin talimatlarına uygun olarak primer antikorun Zenon floresan etiketleme kullanın.
      1. Uygun bir seyreltme (20 ul ≤ toplam hacim) PBS içinde birincil antikor 1 ug hazırlayın.
      2. Antikor çözeltisi Zenon floresan IgG etiketleme reaktifi (Bileşen A) 5 ul ekle.
      3. Oda sıcaklığında 5 dakika süreyle inkübe karışımı.
      4. Reaksiyon karışımına Zenon bloke belirteci (Bileşen B), 5 ul ekle.
      5. Kuluçkaya yatmakOda sıcaklığında 5 dakika boyunca bir karışımı. 30 dakika içinde örnek antikor uygulayın.
  2. Birincil antikor boyama:
    1. Hücre pelet birincil antikor solüsyonu, 100 ul ekleyin ve hafifçe karıştırın çiğnemek.
    2. Seçenek olarak ise, uygun seyreltme hücre süspansiyonu Zenon fluoresein etiketli antikor ekleyin.
    3. Işıksız bir orbital bir karıştırıcı (200 rpm) ile 30 dakika süreyle oda sıcaklığında inkübe edin. (Bölüm 4.2 açıklar gibi) PBS ile bir kez hücreleri yıkayın ve arkasında sadece pelet bırakarak, tamamen tüplerin süpernatant kaldırmak.
  3. (Zenon fosforla etiketlenmiş antikorlar için gerekli değildir) sekonder antikor boyama:
    1. Uygun bir konsantrasyonda PBS içinde sekonder antikor ile seyreltilir.
    2. Hücre pelet sekonder antikor çözeltisi 100 ul ekleyin ve hafifçe karıştırın çiğnemek. Karanlıkta bir çalkalama (200 rpm) ile 30 dakika süreyle oda sıcaklığında inkübe edin.
  4. (Bölüm 4.2 açıklandığı gibi) PBS ile numuneleri iki kez yıkayın.
  5. Akış tamponu ile bir kez yıkayın (Bölüm 3.5).
  6. Akış tampon yaklaşık 150 ul hücreleri yeniden askıya ve akış sitometresinde analiz.

figure-protocol-14125
Yüzeyi ve hücre içi proteinlerin Şekil 4. Eş-boyama. Veri Flow sitometri ikincil + primer yüzey boyama ile birlikte Zenon floresein-tabanlı hücre içi boyama karşı antikor bazlı arasında bir karşılaştırma örneğidir. Y-ekseni (sol üst kadran) ve x-ekseni (sağ alt kadranda) üzerinde özel pozitifliği sırasıyla map2 ve CD24, lekeli hücreleri gösterir. Ko-boyama işleminden sonra ortak MAP2 ve CD24 ifadesi, üst sağ çeyrek dairesi (sağ panel) 'de görülebilir. Ile karşılaştırılmasıAlexa fluor 488.; MAP2-etiketleme verimleri benzer sonuçlar için Zenon floresein (alt) karşı (üst AF488) Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

6. Akış Sitometrik Analizi

  1. Sinyal tespiti için uygun filtreler ile akış sitometresiyle boyama protokolü tamamlanmasından hemen sonra akış sitometrik analiz yapıldı. FL-1 (533/30), FL-2 (585/40), ve FL-4 (675/25) bant geçiren filtreler ile 488 nm mavi ve 640 nm kırmızı lazer kullanın.
  2. Enkaz ve ölü hücreleri hariç ileri ve yan dağılım dayalı birincil kapıları ayarlayın.
  3. Yüzey ve tek lekeli kontrolleri kullanarak spektral örtüşme için boyanmamış örnekleri ve tazminat dayalı ≤0.5% intraselüler antijen için ayarlayın floresan kapıları.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Sonuçlar

Burada sunulan protokol yönlü deneysel yaklaşımlar (Şekil 2) sağlar. En kısa versiyonda, yüzey antijenlerinin basit boyama için bir kılavuz olarak kabul edilebilir (1, 3 ve 6 aşamada). Bunu daha karmaşık bir formda, hücre içi antijenlere bir dizi eş-etiketleme paradigmaların bir sayısı (2 ve / veya 4-5 isteğe bağlı aşama) takip edilebilir. Ayrıca, KAKE etiketleme adım hücre-hücre etkileşimi ?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Tartışmalar

Burada sunulan protokol, insan kök hücrelerinden elde edilen nöral hücre kültürleri için oluşturulmuş, ancak aynı derecede birincil doku ya da nöral hücre hatları dahil olmak üzere, diğer nöral hücre kaynaklarına uygulanabilir. Embriyonik kaynaklardan ek olarak, nöral kök veya progenitor hücreler yetişkin beyin 27 nörojenik bölgelerinden elde edilebilir. Ayrıca, akım sitometri ve FACS olgun nöronlar 54, astroglial 33, mikrogliyal 55, oligodendrositle...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Açıklamalar

The authors declare no potential conflicts of interest.

Teşekkürler

Our research program is funded through the Emmy Noether-Program of the German Research Foundation (DFG), grant PR1132/3-1. Further support by the Müller-Fahnenberg Foundation of the University of Freiburg is gratefully acknowledged. This study was supported in part by the Excellence Initiative of the German Research Foundation (GSC-4, Spemann Graduate School).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
DMEM/F12 (1:1) (Dulbecco's Modified Eagle Medium/Nutrient Mixture F-12)figure-materials-161 Life Technologies11330057
DPBS without Ca2+ Mg2+figure-materials-369 Life Technologies14190169
Fetal bovine serum, qualified, E.U.-approved, South America origin (FBS)figure-materials-605 Life Technologies10270-106
MEM Non-essential amino acids (100x)figure-materials-806 Life Technologies11140035
TrypLE Expressfigure-materials-984 Life Technologies12604013
Trypan blue solution, 0.4%figure-materials-1174 Life Technologies15250061
Paraformaldehydefigure-materials-1346 Carl Roth335.3
Bovine serum albumin (BSA) Fraction Vfigure-materials-1534 PAA Laboratories, CoelbeK41-001
Tween-20 Detergentfigure-materials-1719 Calbiochem655205
Carboxyfluorescein succinimidyl ester (CFSE)figure-materials-1913 eBioscience65-0850-84
DMSOfigure-materials-2070 AppliChemA1584
Bottle top filters express plus 0.22 µm, 250 mlfigure-materials-2269 MilliporeSCGPU02RE
Cell culture treated flasks (T 25)figure-materials-2460 NUNC156367
Cell culture treated flasks (T 75)figure-materials-2643 NUNC156499
Conical tubes (15 ml)figure-materials-2810 Greiner Bio-One188271
Conical tubes (50 ml)figure-materials-2988 Greiner Bio-One227261
Pasteur pipet, glass (150 mm)figure-materials-3178 STEIN Labortechnik, RemchingenS03710150
Pipet tips (0.1-10 µl)figure-materials-3375 Corning4125
Pipet tips (1-200 µl)figure-materials-3543 Corning4126
Pipet tips (100-1000 µl)figure-materials-3714 Corning4129
Serological pipets, 5 mlfigure-materials-3879 Corning4051
Serological pipets, 10 mlfigure-materials-4045 Corning4101
Serological pipets, 25 mlfigure-materials-4211 Corning4251
Microcentrifuge tubes (0.5 ml)figure-materials-4383 Sarstedt72,699
Microcentrifuge tubes (1.5 ml)figure-materials-4563 Greiner Bio-One616201
Microcentrifuge tubes (2.0 ml)figure-materials-4745 Sarstedt72,695,500
Anti-Human CD24 APC monoclonal antibodyfigure-materials-4936 eBioscience17-0247-42Working dilution 1:50
Anti-Human CD54 PE monoclonal antibodyfigure-materials-5150 eBioscience12-0549-42Working dilution 1:50
Neuronal Class III β-Tubulin (Tuj1) polyclonal antibodyfigure-materials-5382 CovancePRB-435PWorking dilution 1:2,000
Alexa Fluor 488 Donkey anti Rabbitfigure-materials-5594 Life TechnologiesA21206Working dilution 1:2,000
Zenon® Fluorescein Rabbit IgG Labeling Kitfigure-materials-5826 Life TechnologiesZ-25342
Neubauer-Improved counting chamberfigure-materials-6026 Marienfeld0640010
Vortexfigure-materials-6192 Scientific IndustriesG560E
Thermomixer comfortfigure-materials-6369 Eppendorf5355 000.001
Accuri C6 flow cytometerfigure-materials-6569 Becton Dickinson (BD)653118
Microcentrifuge refrigerated, PerfectSpin 24 Rfigure-materials-6770 Peqlab91-PSPIN-24R
Orbital shaker, Unimax 1010figure-materials-6957 Heidolph543-12310-00
Centrifuge refrigerated, Rotanta 96 RCfigure-materials-7148 Hettich4480-50
Class II Biological safety cabinet Safe 2020figure-materials-7345 Thermo Scientific51026640
CO2 Incubator, Heracell 240ifigure-materials-7548 Thermo Scientific51026331
Vacuum system, Vacusafe comfortfigure-materials-7745 Integra Biosciences158320
Microscope, Axiovert 40 CFLfigure-materials-7924 Zeiss451212
Pipet controller, accu-jet profigure-materials-8092 Brand26303
Micropipet, Pipetman neo P20N (2-20 µl)figure-materials-8276 GilsonF144563
Micropipet, Pipetman neo P200N (20-200 µl)figure-materials-8466 GilsonF144565
Micropipet, Pipetman neo P1000N (100-1000 µl)figure-materials-8659 GilsonF144566

Referanslar

  1. Herzenberg, L. A., et al. The History and Future of the Fluorescence Activated Cell Sorter and Flow Cytometry: A View from. 48 (10), 1819-1827 (2002).
  2. Chattopadhyay, P. K., Roederer, M. Cytometry: today’s technology and tomorrow's horizons. Methods (San Diego, Calif). 57 (3), 251-258 (2012).
  3. Jaye, D. L., Bray, R. A., Gebel, H. M., Harris, W. A. C., Waller, E. K. Translational applications of flow cytometry in clinical practice). J. Immunol. 188 (10), 4715-4719 (2012).
  4. Henel, G., Schmitz, J. Basic Theory and Clinical Applications of Flow Cytometry. Lab Med. 38 (7), 428-436 (2007).
  5. Seita, J., Weissman, I. L. Hematopoietic stem cell: self-renewal versus differentiation. Wiley Interdiscip. Rev. Syst. Biol. Med. 2 (6), 640-653 (2010).
  6. Ulrich, H., Bocsi, J. Phenotypes of stem cells from diverse origin. Cytometry. A. 77 (1), 6-10 (2010).
  7. Panchision, D. M., et al. Optimized flow cytometric analysis of central nervous system tissue reveals novel functional relationships among cells expressing CD133, CD15, and CD24. Stem cells. 25 (6), 1560-1570 (2007).
  8. Meyer, R. A., Zaruba, M. E., McKhann, G. M. Flow cytometry of isolated cells from the brain. Anal. Quant. Cytol. 2 (1), 66-74 (1980).
  9. Junger, H., Junger, W. G. CNTF and GDNF, but not NT-4, support corticospinal motor neuron growth via direct mechanisms. Neuroreport. 9 (16), 3749-3754 (1998).
  10. McLaren, F. H., Svendsen, C. N., Vander Meide, P., Joly, E. Analysis of neural stem cells by flow cytometry: cellular differentiation modifies patterns of MHC expression. J. Neuroimmunol. 112 (1-2), 35-46 (2001).
  11. Wang, S., Roy, N. S., Benraiss, A., Goldman, S. A. Promoter-based isolation and fluorescence-activated sorting of mitotic neuronal progenitor cells from the adult mammalian ependymal/subependymal. 22 (1-2), 167-176 (2000).
  12. Tanke, H. J., vander Keur, M. Selection of defined cell types by flow-cytometric cell sorting. Trends Biotechnol. 11 (2), 55-62 (1993).
  13. Baumgarth, N., Roederer, M. A practical approach to multicolor flow cytometry for immunophenotyping. J. Immunol. Methods. 243 (1-2), 77-97 (2000).
  14. Sergent-Tanguy, S., Chagneau, C., Neveu, I., Naveilhan, P. Fluorescent activated cell sorting (FACS): a rapid and reliable method to estimate the number of neurons in a mixed population. J. Neurosci. Methods. 129 (1), 73-79 (2003).
  15. Ernst, A., et al. Neurogenesis in the striatum of the adult human brain. Cell. 156 (5), 1072-1083 (2014).
  16. Perfetto, S. P., Chattopadhyay, P. K., Roederer, M. Seventeen-colour flow cytometry: unravelling the immune system. Nat. Rev. Immunol. 4 (8), 648-655 (2004).
  17. Bandura, D. R., et al. Mass cytometry: technique for real time single cell multitarget immunoassay based on inductively coupled plasma time-of-flight mass spectrometry. Anal. Chem. 81 (16), 6813-6822 (2009).
  18. Bendall, S. C., et al. Single-cell mass cytometry of differential immune and drug responses across a human hematopoietic continuum. Science. 332 (6030), 687-696 (2011).
  19. Neveu, I., Rémy, S., Naveilhan, P. The neuropeptide Y receptors, Y1 and Y2, are transiently and differentially expressed in the developing cerebellum. Neuroscience. 113 (4), 767-777 (2002).
  20. Pruszak, J., Just, L., Isacson, O., Nikkhah, G. Isolation and culture of ventral mesencephalic precursor cells and dopaminergic neurons from rodent brains. Curr. Protoc. Stem Cell Biol. 2 (Unit 2D.5), (2009).
  21. Suslov, O. N., Kukekov, V. G., Ignatova, T. N., Steindler, D. A. Neural stem cell heterogeneity demonstrated by molecular phenotyping of clonal neurospheres. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99 (22), 14506-14511 (2002).
  22. Bez, A., et al. Neurosphere and neurosphere-forming cells: morphological and ultrastructural characterization. Brain Res. 993 (1-2), 18-29 (2003).
  23. Pruszak, J., Isacson, O. Molecular and cellular determinants for generating ES-cell derived dopamine neurons for cell therapy. Adv. Exp. Med. Biol. 651, 112-123 (2009).
  24. Carson, C. T., Aigner, S., Gage, F. H. Stem cells: the good, bad and barely in control. Nat. Med. 12 (11), 1237-1238 (2006).
  25. Yuan, S. H., et al. Cell-surface marker signatures for the isolation of neural stem cells, glia and neurons derived from human pluripotent stem cells. PloS One. 6 (3), e17540(2011).
  26. Roy, N. S., Cleren, C., Singh, S. K., Yang, L., Beal, M. F., Goldman, S. Functional engraftment of human ES cell-derived dopaminergic neurons enriched by coculture with telomerase-immortalized midbrain astrocytes. Nat. Med. 12 (11), 1259-1268 (2006).
  27. Uchida, N., et al. Direct isolation of human central nervous system stem cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 97 (26), 14720-14725 (2000).
  28. Pruszak, J., Ludwig, W., Blak, A., Alavian, K., Isacson, O. CD15, CD24, and CD29 define a surface biomarker code for neural lineage differentiation of stem cells. Stem Cells. 27 (12), 2928-2940 (2009).
  29. Peh, G. S. -L., Lang, R. J., Pera, M. F., Hawes, S. M. CD133 expression by neural progenitors derived from human embryonic stem cells and its use for their prospective isolation. Stem Cells Dev. 18 (2), 269-282 (2009).
  30. Golebiewska, A., Atkinson, S. P., Lako, M., Armstrong, L. Epigenetic landscaping during hESC differentiation to neural cells. Stem Cells. 27 (6), 1298-1308 (2009).
  31. Dietrich, J., Noble, M., Mayer-Proschel, M. Characterization of A2B5+ glial precursor cells from cryopreserved human fetal brain progenitor cells. Glia. 40 (1), 65-77 (2002).
  32. Nishiyama, A. NG2 cells in the brain: a novel glial cell population. Hum. Cell. 14 (1), 77-82 (2001).
  33. Jungblut, M., et al. Isolation and characterization of living primary astroglial cells using the new GLAST-specific monoclonal antibody ACSA-1. Glia. 60 (6), 894-907 (2012).
  34. Ono, Y., et al. Differences in neurogenic potential in floor plate cells along an anteroposterior location: midbrain dopaminergic neurons originate from mesencephalic floor plate cells. Development. 134 (17), 3213-3225 (2007).
  35. Chung, S., et al. ES cell-derived renewable and functional midbrain dopaminergic progenitors. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108 (23), 9703-9708 (2011).
  36. Doi, D., et al. Isolation of Human Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Dopaminergic Progenitors by Cell Sorting for Successful Transplantation. Stem Cell Reports. 2 (3), 337-350 (2014).
  37. Solozobova, V., Wyvekens, N., Pruszak, J. Lessons from the embryonic neural stem cell niche for neural lineage differentiation of pluripotent stem cells. Stem Cell Rev. 8 (3), (2012).
  38. Turaç, G., et al. Combined flow cytometric analysis of surface and intracellular antigens reveals surface molecule markers of human neuropoiesis. PloS One. 8 (6), e68519(2013).
  39. Buchwalow, I. B., Böcker, W. Chapter 2. Immunohistochemistry: Basics and Methods. , 9-17 (2010).
  40. Tario, J. D., et al. Optimized staining and proliferation modeling methods for cell division monitoring using cell tracking dyes. J. Vis. Exp. (70), e4287(2012).
  41. Lyons, A. B., Parish, C. R. Determination of lymphocyte division by flow cytometry. J. Immunol. Methods. 171 (1), 131-137 (1994).
  42. Hawkins, E. D., et al. Measuring lymphocyte proliferation, survival and differentiation using CFSE time-series data. Nat. Protoc. 2 (9), 2057-2067 (2007).
  43. Quah, B. J. C., Parish, C. R. The use of carboxyfluorescein diacetate succinimidyl ester (CFSE) to monitor lymphocyte proliferation. J. Vis. Exp. 44, (2010).
  44. Sukhdeo, K., et al. Multiplex flow cytometry barcoding and antibody arrays identify surface antigen profiles of primary and metastatic colon cancer cell lines. PloS One. 8 (1), e53015(2013).
  45. Jiang, L., et al. Daucosterol promotes the proliferation of neural stem cells. The J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 140, 90-99 (2014).
  46. Hulspas, R., et al. Considerations for the control of background fluorescence in clinical flow cytometry. Cytometry. B. 76 (6), 355-364 (2009).
  47. Moloney, M., Shreffler, W. G. Basic science for the practicing physician: flow cytometry and cell sorting. Annals of Allergy, Asthm., & Immunology: Official Publication of the American College of Allergy, Asthma., & Immunology. 101 (5), 544-549 (2008).
  48. Siebzehnrubl, F. A., et al. Isolation and characterization of adult neural stem cells. Methods Mol. Biol. 750, 61-77 (2011).
  49. Guez-Barber, D., et al. FACS purification of immunolabeled cell types from adult rat brain). J. Neurosci. Methods. 203 (1), 10-18 (2012).
  50. Tham, C. -S., Lin, F. -F., Rao, T. S., Yu, N., Webb, M. Microglial activation state and lysophospholipid acid receptor expression. Int. J. Dev. Neurosci. 21 (8), 431-443 (2003).
  51. Nguyen, H. X., Beck, K. D., Anderson, A. J. Quantitative assessment of immune cells in the injured spinal cord tissue by flow cytometry: a novel use for a cell purification method. J. Vis. Exp. (50), e2698(2011).
  52. Marchenko, S., Flanagan, L. Counting human neural stem cells. J. Vis. Exp. (7), 262(2007).
  53. Brunlid, G., Pruszak, J., Holmes, B., Isacson, O., Sonntag, K. C. Immature and neurally differentiated mouse embryonic stem cells do not express a functional Fas/Fas ligand system. Stem Cells. 25 (10), 2551-2558 (2007).
  54. Brewer, G. J. Isolation and culture of adult rat hippocampal neurons. J. Neurosci. Methods. 71 (2), 143-155 (1997).
  55. Cardona, A. E., Huang, D., Sasse, M. E., Ransohoff, R. M. Isolation of murine microglial cells for RNA analysis or flow cytometry. Nat. Protoc. 1 (4), 1947-1951 (2006).
  56. Nielsen, J. A., Maric, D., Lau, P., Barker, J. L., Hudson, L. D. Identification of a novel oligodendrocyte cell adhesion protein using gene expression profiling. J. Neurosci. 26 (39), 9881-9891 (2006).
  57. Daneman, R., et al. The mouse blood-brain barrier transcriptome: a new resource for understanding the development and function of brain endothelial cells. PloS One. 5 (10), e13741(2010).
  58. Gräbner, R., Till, U., Heller, R. Flow cytometric determination of E-selectin, vascular cell adhesion molecule-1, and intercellular cell adhesion molecule-1 in formaldehyde-fixed endothelial cell monolayers. Cytometry. 40 (3), 238-244 (2000).
  59. Quah, B. J. C., Parish, C. R. New and improved methods for measuring lymphocyte proliferation in vitro and in vivo using CFSE-like fluorescent dyes. J. Immunol. Methods. 379 (1-2), 1-14 (2012).
  60. Lathia, J. D., et al. High-throughput flow cytometry screening reveals a role for junctional adhesion molecule a as a cancer stem cell maintenance factor. Cell Rep. 6 (1), 117-129 (2014).
  61. Ganat, Y. M., et al. Identification of embryonic stem cell-derived midbrain dopaminergic neurons for engraftment. J. Clin. Invest. 122 (8), 2928-2939 (2012).
  62. Hedlund, E., et al. Embryonic stem cell-derived Pitx3-enhanced green fluorescent protein midbrain dopamine neurons survive enrichment by fluorescence-activated cell sorting and function in an animal model of Parkinson’s disease. Stem Cells. 26 (6), 1526-1536 (2008).
  63. Maroof, A. M., et al. Directed differentiation and functional maturation of cortical interneurons from human embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 12 (5), 559-572 (2013).
  64. Chivet, M., Hemming, F., Pernet-Gallay, K., Fraboulet, S., Sadoul, R. Emerging role of neuronal exosomes in the central nervous system. Front. Physiol. 3, 145(2012).
  65. Graner, M. W., et al. Proteomic and immunologic analyses of brain tumor exosomes. FASEB J. 23 (5), 1541-1557 (2009).
  66. Eldh, M., Lötvall, J. Isolation and characterization of RNA-containing exosomes. J. Vis. Exp. (59), e3037(2012).
  67. Capela, A., Temple, S. LeX is expressed by principle progenitor cells in the embryonic nervous system, is secreted into their environment and binds Wnt-1. Dev. Biol. 291 (2), 300-313 (2006).
  68. Nieoullon, V., Belvindrah, R., Rougon, G., Chazal, G. mCD24 regulates proliferation of neuronal committed precursors in the subventricular zone. Mol. Cell. Neurosci. 28 (3), 462-474 (2005).
  69. Nagato, M., et al. Prospective characterization of neural stem cells by flow cytometry analysis using a combination of surface markers. J. Neurosci. Res. 80 (4), 456-466 (2005).
  70. Hall, P. E., Lathia, J. D., Miller, N. G. A., Caldwell, M. A., French-Constant, C. Integrins are markers of human neural stem cells. Stem Cells. 24 (9), 2078-2084 (2006).
  71. Hargus, G., et al. Differentiated Parkinson patient-derived induced pluripotent stem cells grow in the adult rodent brain and reduce motor asymmetry in Parkinsonian rats. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107 (36), 15921-15926 (2010).
  72. Elkabetz, Y., et al. Human ES cell-derived neural rosettes reveal a functionally distinct early neural stem cell stage. Genes Dev. 22 (2), 152-165 (2008).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

NeuroscienceSay 94CD belirte leriy zey antijenlerih cre i i antijenler ak sitometrisi n ronlargliyal h crelern ral k k h creFACSCD24CD54CFSE s ralama floresan aktive edilmi h cre

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır