Bu çalışma NIH hibe HL093196 (RCR) ve Atlanta Araştırma ve Eğitim Vakfı (Aref) tarafından desteklenmiştir.

I. Alerjen duyarlılığı ve Challenge (bkz. Şekil 1) Intratrakeal Mücadelesi için A. <ol><li> İlk sensitizasyon için, ovalbumin 20 ug (; Sigma-Aldrich, St. Louis, MO OVA) ile birlikte günde 0 ve tekrar 7. günde erkek ya da dişi C57BL / 6 ya BALB / c farelerinin (6-8 haftalık) periton içine enjekte Steril fosfat 0.2 ml emülsifiye alüminyum hidroksit ile 2 mg (Sigma-Aldrich) içeren salin (PBS) tamponlu veya kontrolü gibi steril PBS içerisinde 0.2 ml 2 mg alüminyum hidroksit ile. </li><li> Uygun olarak antijen ile challenge (örneğin, günde 14, 16, 18 ve 20 üzerindeki). Mücadelesi prosedürü takip eder. </li><li> Intraperitoneal ketamin bir karışımı (ip) enjeksiyonu (90 mg / kg) ve Xylazine (10 mg / kg) ile anestezi fare. Fare, en azından 10 dakika için tam olarak anestezi uygulanmış olmasına dikkat edin. </li><li> 45 derece veya daha az Açısı işlemi yüzey. Bu yukarı doğru ventral taraf tutmak yüzeyi ve üst baş koyun fare. </li><li> Kanca tgeri kafa tutmak için ön kesici dişler altında hread. Seviye trakea düz sağlamak ve bacaklarını tutmak için etiket şerit kullanmak birbirleriyle pençeleri. % 70 EtOH ve çubukla cerrahi alan ıslatın. </li><li> Insizyon yerinde lokal bupivakain (% 0,25 solüsyonu 0.1 ile 0.2 ml) uygulayın. </li><li> Nip forseps ile boğaz üzerindeki deri ve hafifçe dışarı doğru çekin. Cerrahi makas ile küçük bir düşey kesi olun. Insizyon boyutu en aza indirin. </li><li> 50 PBS ul veya PBS içinde% 0.1 OVA ile 1 ml şırınga hazırlayın ve tekrarlayan bir pipet (Tridak Step, Torrington) takın. Bir elinde pipet alın ve cımbız ile geri doku tutmak için diğer kullanmak ve trakea ortaya. </li><li> Mümkün olduğunca trakea paralel olarak şırınga Holding, trakea duvarı boyunca iğne takın ve çözüm enjekte edin. </li><li> Akciğerlere yerleşip çözüm için zaman tanımak için dikey aşağıdaki enjeksiyon fare koruyun. </li><li> Yavaşça ve sterilely yakın yara alan ilesütür ile cımbız ve mühür. </li><li> Yer fare bir ısıtma yastığı sternumun aşağı ve tamamen ayaktan kadar kurtarmak için izin verir. Yara tamamen iyileşene kadar düzelmesini, hayvan bakım tesisi için fareyi dönmek ve seroma, iltihap veya enfeksiyon ve yara açılması belirtileri için günlük olarak izliyoruz. </li></ol> Nebulizasyon tarafından Mücadelesi B. <ol><li> Kontrol olarak, steril PBS içinde 0.2 ml alüminyum hidroksit ile 2 mg (Sigma-Aldrich) içeren steril bir 0.2 ml PBS içerisinde ya da 2 mg alüminyum hidroksit ile emülsiyon haline OVA ve 20 ug intraperitoneal (Sigma-Aldrich) ile 0. günde farelere sensitize . </li><li> Yukarıda açıklandığı gibi 14. günde, ip enjeksiyon duyarlılığa artırmak. </li><li> 21., 22., 23., 24. ve 25. gün sonra bir ultrasonik nebülizatör (Buxco Araştırma Sistemleri, Wilmi ile teslim tek başına nebülize% 1 OVA veya PBS ile 30 dakika süreyle maruz ilk hassasiyete, meydan farelerengton, NC). </li><li> WBP ana odacık içinde yer fareleri;, en azından 10 dakika süreyle pletismografisi odacık içinde bunları alışmak. </li><li> Bir fincan nebülizatör ile steril PBS veya aşağıdaki adımları 4-6 açıklanan steril PBS, yalnız% 0.1 OVA Yeri 1 ml. 30 dakika boyunca Nebülize. </li><li> Nebulizatör fincan çıkarın ve kalan çözüm atın. </li><li> Nebülizasyon eşzamanlı olarak, bir odacık nebülizasyon kullanılarak bütün fareler üzerinde gerçekleştirilebilir. </li></ol> II. Metakolin için hava yolu aşırı duyarlılığı Belirlenmesi Tüm vücut Pletismografi tarafından hava yolu aşırı duyarlılığı A. Noninvaziv Ölçümü (WBP; Buxco Araştırma Sistemleri, Wilmington, NC) <ol><li> Toz metakolin şişe açmadan önce oda sıcaklığına kadar ısınmasını bekleyin (metakolin çok higroskopiktir ve su absorbe izin işe yaramaz öbekler şeklinde olacak). Steril PBS içinde bir 200 mg / ml stok çözeltisi hazırlanır, ardından 2-kat seri seyreltiler (örn., 100, 50, 25, 12.5 ve 6 hale0,25 mg / ml). Çözümler soğuk tutun. </li><li> Aşağıdaki gibi ekipmanları ayarlayın: nebülizatör, hava pompasına önyargı-akış giriş ve dar lastik boru kullanılarak gaz tuzak WBP prizine WBP ana girişine bağlayın. WBP ana ve referans odaların satış köprü basınç sensörü takın. Verilen kabloları ile preamplifier için basınç sensörü bağlayın ve özel bir veri toplama kartı kullanarak bilgisayara preamplifikatör bağlayın. </li><li> Üretici tavsiyelerine göre yazılımını kullanarak preamplifikatör kalibre. </li><li> WBP ana odasında Yeri fareler, 3 dakika sonra en az 10 dakika, kayıt bazal değerleri (Penhbase) için pletismografisi odasında onları iklime alıştırmak. </li><li> Nebulizer fincan steril PBS Yeri 1 ml. 2 dakika süreyle Nebülize ve daha sonra kurutma aşamasında ek bir 6 dakika için solunum değişkenlerin kontrol. Nebulizatör fincan çıkarın ve kalan PBS atın. </li><li> Nebulizer fincan ve r 6.25 mg / ml metakolin Yeri 1 ml2 dakika artı bir 6 dakikalık izleme döngüsü için EPEAT nebulizasyon. </li><li> Aynı 2-min nebülizasyon süresi ve 6-dakika izleme döngüsü kullanarak, 12.5, 25, 50 ve 100 mg / ml metakolin ile ölçümü tekrarlayın. </li><li> Odalarından farelerin çıkarın ve kafese onları geri. </li><li> Dolum nebulizatör 1 ml steril PBS ile fincan ve boru temizlemek için başka bir dizi çalıştırın. </li><li> , Hava akımları kapatın sökmeye ve hayvanların ikinci bir set çalıştırmadan önce tüm odaları temiz silin. </li></ol> Bilgisayar kontrollü Vantilatör tarafından Havayolu Duyarlılık B. İnvaziv Ölçümü (flexiVent; SCIREQ A.Ş., Montreal, Kanada) <ol><li> Fare tartılır ve kg sodyum pentobarbital başına 60 mg intraperitoneal (ip) enjeksiyonu ile uyutmak. </li><li> Yeterli anestezi, pozisyon ventro-dorsal trakeostomi için farelerin ardından. </li><li> % 70 etanol ile boyun deri dezenfekte. I da topikal olarak bupivakain (% 0.25 çözeltisi 0,1-0,2 ml) uygulamakncision sitesi. Boyun derisi kesilirken ve açın. Boyun kasları ayırın ve trakea ortaya. </li><li> Ince makas ile trakeada 2 mm kesi (trakea koparmaya değil emin olmak) ve dikkatli trakeal tüpü - 1 yapın. Bir hava kaçağı önlemek için trakea etrafında bir sütür bağlayın. </li><li> Vü odasında fare Lay ve ventilatöre takılı tüp bağlayın. </li><li> Mekanik ventilasyon başlayın. Uygun solunum hızı ve tidal / atım hacmi (150 vuruş / dk ve 200 ul, sırasıyla 20 g fare) ayarlayın. Toraks ventilatör ile senkronize hareket ediyor emin olun. Fare ventilatör (öz-solunum) ile &quot;kavga&quot; ise, daha fazla anestezik enjekte ve senkronizasyon için bekleyin. </li><li> Başlangıç ​​ölçümlerinin ardından, başka bir 3 dakika temel havalandırma altında bulunan farelerin korumak ve sonra empedans ölçümleri kümesi 2. alır. Başlangıç ​​ölçümleri kümesi Bu 2. kalk için kullanılırortalama başlangıç ​​değerleri ulate. </li><li> Ultrasonik nebulizatör ile ventilatörden kanalize inspiratuar akış PBS veya metakolin (MCh) zorlukları (6.25, 12.5, 25, 50 ve 100 mg / ml) sunun. </li><li> MCh her uyarım (6.25, 12.5, 25, 50 ve 100 mg / ml), sonra, 120 solunum / dak 10 ml / kg &#39;lık bir Vt sunma piston döner ve empedans ölçümleri alır. </li></ol> III. Hava sahası içine Hücresel İnfiltrasyonunun Ölçümü A. Perform&#39;un Bronkoalveoler Lavaj (BAL) <ol><li> AHR ölçüldükten sonra, CO 2 fareler euthanize ve cerrahi yastığı, sırtında her fare yerleştirin. </li><li> % 70 EtOH ile alan ıslatın. </li><li> Alt karın başlayarak, karın boşluğu kesip açmak ve kaburgaların doğru yukarı hareket, deri / kas üst kaldırın. </li><li> Kaburga görünür sonra, dikkatle ponksiyon diyaframa makas kullanın. Akciğerler, diyafram uzak daraltmak gerekir. Özellikle ca olunreful değil nick akciğer veya kalp için. </li><li> Tam akciğer / kalp (site dolum kan tutmak için herhangi bir büyük kan damarları kesme önlemek) ortaya çıkarmak için göğüs kafesi kesti. </li><li> 27 gauge iğne (BD şırıngalar, Franklin Lakes, NJ), delinme kalp ventrikülleri ve yavaş ve dikkatli kan toplamak için şırınga geri çekin ile 1 ml şırınga kullanma. Kalp çöken özen göstermeli. </li><li> Standart protokolü kullanarak bu kandan serum toplayın. -70 ° C&#39;de saklayın kullanılıncaya kadar. </li><li> Trakea ortaya kadar cilt ve boğaz doku kesti. Alanı içinde kolayca çalışmak için yeterli doku temizlemek (tekrar, herhangi bir büyük kan damarları kesme kaçının). </li><li> Bir yolunu temizlemek için trakea altında kesilen kavisli makas, kullanma. </li><li> Trakea altında kavisli bir forseps noktası Pass ve sütür bir parça sonunda kavramak. Trakea altında dikiş ipliğinin çizin. </li><li> Boğaz düşük, trakea hakkında yarım düğüm gevşek bir bağla. </li><li> Carefully dikiş ipliğinin üstünde, kanül için boyut yeterli, bir çentik kesti. </li><li> Dikkatle dikiş ipliğinin noktadan deliğe ve trakeanın aşağı kanül takın. Kanül sadece (:;: BAL kurtarmak için çalışırken çöküşü trakea çok kısa ponksiyon akciğerler çok uzak) akciğerlere girişinde çıkana kadar yavaşça ileri tuşuna basın. </li><li> Kanül etrafında trakea mühürlemek için dikiş ipliğinin ve tam düğüm sıkın. </li><li> Kanül Lock şırınga (1 ml PBS) ve yavaşça akciğer içine sıvı basın. Akciğer lobları ayrı ayrı yavaş şişirmek gerekir. Aşırı doldurma yapmayın. Tam yetiştirilen fare 0,9-1,0 ml mutlak maksimum. 0.8 ml güvenli olabilir. Kanül için gevşek şırınga kilitle, aksi halde boşa çalışırken hasara neden olabilir. </li><li> Akciğerlerde sıvı çekin. Direnç varsa (kanül içine çekilir doku), basın kanül yavaşça akciğer içine daha fazla ve çıkarma devam. Ayrıca yerinde kanül döndürmeyi deneyin. Durumunda bütün else başarısız, kanül kısmı yol çekme; trakea daha bu durumda daraltmak muhtemeldir. </li><li> Kanül, konteyner içerisinde mevduat BAL sıvısı, gelen şırınga ayırın ve taze PBS çözeltisi ile 2 kez tekrarlayın. </li><li> Aşağı bükülmüş kadar buz üzerinde BAL çözüm tutun. </li><li> BAL sıvısı ve ticari fare IgE ELISA kitleri (MD Bioproducts, St Paul, MN) kullanarak OVA spesifik IgE ölçmek için serum kullanın. </li></ol> B. Hücreleri sayın ve Diferansiyeller belirleyin <ol><li> ~ 600 × g BAL sıvısı 5 dakika, 4 ° C&#39;de santrifüje </li><li> PBS içinde yavaşça hücre pelletini ve buz üzerinde tutun. </li><li> Seyreltilmiş hücre süspansiyonu ile standart bir Neubauer hemasitometre yükleyin ve hücreleri saymak. </li><li> Cytospins için 10 ile 40 ul hacim içinde 2 alikotları × 10 4 hücre çıkarın. Gerekirse hücreleri sulandırınız. </li><li> Cytospins için, 2 mix × 10 4 hücre, 130 ul PBS ve 10 ul FBS. Şüphe etmek, tüm hücre karışımı ekleyinle Sitospin yinelenen örnekler için çift cytoslides kullanarak, 700 rpm&#39;de 10 dakika huni ve santrifüj. </li><li> Slaytlar boyamadan önce 1 saat boyunca oda sıcaklığında kurumaya bırakın. </li><li> (Siemens, Newark, DE) Diff-Quick leke kullanarak slaytlar Leke. </li></ol> IV. Temsilcisi Sonuçlar Provakatif uyaranlara takip Aşırı havayollarındaki konstriksiyon klinik astım önemli bir özelliğidir. FlexiVent sistemi (Şekil 3) ile Tüm-vücut pletismografisi (Şekil 2) ve zorlanmış salınımlar: Biz OVA-duyarlı ve meydan farelerde metakoline gibi hava yolu aşırı duyarlılığı ölçmek için iki yöntem açıklanmaktadır. Her iki yöntem OVA sensitizasyon ve meydan farelerde hava yolu aşırı duyarlılığı üretir göstermektedir. Eozinofil zengin hava yolu inflamasyonu klinik astım ve alerjik solunum yolu hastalığı hem de bir başka önemli özelliğidir. Şekil 4 &#39;de gösterildiği gibi </strong&gt;, OVA sensitizasyon ve meydan büyük ölçüde BAL tarafından hava yolları elde edilebilir hücrelerinin toplam sayısını artırır. Daha az bir ölçüde eozinofil ve sayıları, nötrofil özellikle artar. Kanıt IgE antikorlarının aşırı gelen duyarlılaştırıcı antijenlere karşı allerjik solunum yolu hastalığı sonuçları gösterir. Bizim tarif protokolleri kullanarak OVA ile sensitizasyon ve meydan tedavi edilen farelerin serum ve BAL hem sıvı (Şekil 5) IgE düzeyleri artar. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/3771/3771fig1.jpg" /> Şekil 1.. OVA bağlı alerjik astım için deneysel şeması. Fareler takip edilen, steril PBS, ya da steril PBS tek başına 0.2 ml alüminyum hidroksit ile 2 mg 0,2 ml, alüminyum hidroksit 2 mg emülsifiye OVA ve 20 ug ile duyarlı hale getirilmiş iki ip edildi onun tarafından belirtilen zaman noktalarında 0.1 OVA% veya steril PBS çözeltisi ile veya günlük ex meydan<html> PBS veya PBS içinde% 1 nebülize OVA için 30 dakika süreyle posure tek başına bir ultrasonik nebülizatör (Buxco) vasıtasıyla sevk. Yirmi dört saat nihai OVA maruz kaldıktan sonra, havayolu duyarlılığı tespit edildi. Daha sonra, BAL sıvısı, kan örnekleri, akciğer hücreleri, doku ve daha fazla analiz için toplanmıştır. <img alt="Şekil 2" src="/files/ftp_upload/3771/3771fig2.jpg" /> Şekil 2. Noninvaziv bir yöntem ile alerjene bağlı hava yolu aşırı duyarlılığı Değerlendirilmesi. Fareler (n = 4/group) duyarlıydı ve OVA ile meydan okudu. Son meydan takiben yirmi dört saat, metakolin inhalasyon için hava yolu aşırı olarak protokolde tarif tüm vücut pletismografisi kullanılarak belirlendi. Penh belirlenir ve Penh oranı (PBS ile 8-dk aralığındaki ortalama Penh bölünmesiyle metakolin ile 8-dakikalık bir zaman aralığı boyunca ortalama Penh) olarak ifade edildi. * P &lt;0.05 vs PBS. iles/ftp_upload/3771/3771fig3.jpg &quot;/&gt; Şekil 3. Invazif bir yöntem ile alerjene bağlı hava yolu aşırı duyarlılığı Değerlendirmesi (zorla salınım). Fare (n = 4/group) duyarlıydı ve OVA ile meydan okudu. Son meydan takiben yirmi dört saat, metakolin inhalasyon konsantrasyonları artan havayolu aşırı olarak protokolde tarif zorla osilasyon (flexiVent) metodu ile tespit edildi. A, B) Havayolu direnci; C) Akciğer elastiki. * P &lt;0.05 vs PBS. <img alt="Şekil 4" src="/files/ftp_upload/3771/3771fig4.jpg" /> Şekil 4. BAL sıvısı hücre sayımı. Fareler (n = 4/group) duyarlıydı ve OVA ile meydan okudu. Son meydan, (Üst) takiben Yirmi dört saat BAL hücreleri toplanmış ve protokol açıklandığı gibi toplam hücre sayıldı. (Alt) Sitospin slaytlar p edildirepared ve Diff-Quick ile boyandı. Tot = toplam hücreleri; Eos = eozinofiller; Neu = nötrofiller, Mac = makrofajlar; LYM = lenfositler. * P &lt;0.05 vs PBS. <img alt="Şekil 5," src="/files/ftp_upload/3771/3771fig5.jpg" /> Şekil 5. OVA-spesifik IgE. Fareler (n = 4/group) duyarlıydı ve OVA ile meydan okudu. Son meydan takiben yirmi dört saat, IgE lavajda ve protokolde tarif edildiği gibi kalp ponksiyonu ile toplanır kandan serum ölçüldü. * P &lt;0.05 vs PBS.

<ol>
	<li>Braman, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+global+burden+of+asthma.">The global burden of asthma.</a> Chest. 130, 4S-12S (2006).</li><li>Akinbami, L. J., Mooman, J. E., Liu, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Asthma+Prevalence,+Health+Care+Use,+and+Mortality:+2005-2009.">Asthma Prevalence, Health Care Use, and Mortality: 2005-2009.</a> National Health Statistics Reports. 32, 2005-2009 (2011).</li><li>Bates, J. H., Rincon, M., Irvin, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+asthma.">Animal models of asthma.</a> Am. J. Physiol. Lung. Cell. Mol. Physiol. 297, 401-410 (2009).</li><li>Drazen, J. M., Finn, P. W., De Sanctis, G. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+models+of+airway+responsiveness:+physiological+basis+of+observed+outcomes+and+analysis+of+selected+examples+using+these+outcome+indicators.">Mouse models of airway responsiveness: physiological basis of observed outcomes and analysis of selected examples using these outcome indicators.</a> Annu. Rev. Physiol. 61, 593-625 (1999).</li><li>Epstein, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Do+mouse+models+of+allergic+asthma+mimic+clinical+disease.">Do mouse models of allergic asthma mimic clinical disease.</a> Int. Arch. Allergy Immunol. 133, 84-100 (2004).</li><li>Blyth, D. I., Pedrick, M. S., Savage, T. J., Hessel, E. M., Fattah, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lung+inflammation+and+epithelial+changes+in+a+murine+model+of+atopic+asthma.">Lung inflammation and epithelial changes in a murine model of atopic asthma.</a> Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 14, 425-438 (1996).</li><li>Martin, T. R., Gerard, N. P., Galli, S. J., Drazen, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pulmonary+responses+to+bronchoconstrictor+agonists+in+the+mouse.">Pulmonary responses to bronchoconstrictor agonists in the mouse.</a> J. Appl. Physiol. 64, 2318-2323 (1988).</li><li>Hamelmann, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Noninvasive+measurement+of+airway+responsiveness+in+allergic+mice+using+barometric+plethysmography.">Noninvasive measurement of airway responsiveness in allergic mice using barometric plethysmography.</a> Am. J. Respir. Crit. Care Med. 156, 766-775 (1997).</li><li>Gelfand, E. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pro:+mice+are+a+good+model+of+human+airway+disease.">Pro: mice are a good model of human airway disease.</a> Am. J. Respir. Crit. Care Med. 166, 5-8 (2002).</li><li>Shapiro, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+asthma:+Pro:+Allergic+avoidance+of+animal+(model[s])+is+not+an+option.">Animal models of asthma: Pro: Allergic avoidance of animal (model[s]) is not an option.</a> Am. J. Respir. Crit. Care Med. 174, 1171-1173 (2006).</li><li>Zosky, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ovalbumin-sensitized+mice+are+good+models+for+airway+hyperresponsiveness+but+not+acute+physiological+responses+to+allergen+inhalation.">Ovalbumin-sensitized mice are good models for airway hyperresponsiveness but not acute physiological responses to allergen inhalation.</a> Clin. Exp. Allergy. 38, 829-838 (2008).</li><li>Nials, A. T., Uddin, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+models+of+allergic+asthma:+acute+and+chronic+allergen+challenge.">Mouse models of allergic asthma: acute and chronic allergen challenge.</a> Dis. Model. Mech. 1, 213-220 (2008).</li><li>Wenzel, S., Holgate, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mouse+trap:+It+still+yields+few+answers+in+asthma.">The mouse trap: It still yields few answers in asthma.</a> Am. J. Respir. Crit. Care Med. 174, 1173-1178 (2006).</li><li>Rayamajhi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Non-surgical+Intratracheal+Instillation+of+Mice+with+Analysis+of+Lungs+and+Lung+Draining+Lymph+Nodes+by+Flow+Cytometry.">Non-surgical Intratracheal Instillation of Mice with Analysis of Lungs and Lung Draining Lymph Nodes by Flow Cytometry.</a> J. Vis. Exp. (51), e2702 (2011).</li><li>Swedin, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+aerosol+and+intranasal+challenge+in+a+mouse+model+of+allergic+airway+inflammation+and+hyperresponsiveness.">Comparison of aerosol and intranasal challenge in a mouse model of allergic airway inflammation and hyperresponsiveness.</a> Int. Arch. Allergy Immunol. 153, 249-258 (2010).</li><li>Gueders, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+models+of+asthma:+a+comparison+between+C57BL/6+and+BALB/c+strains+regarding+bronchial+responsiveness,+inflammation,+and+cytokine+production.">Mouse models of asthma: a comparison between C57BL/6 and BALB/c strains regarding bronchial responsiveness, inflammation, and cytokine production.</a> Inflamm. Res. 58, 845-854 (2009).</li><li>Zhu, W., Gilmour, M. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+allergic+lung+disease+in+three+mouse+strains+after+systemic+or+mucosal+sensitization+with+ovalbumin+antigen.">Comparison of allergic lung disease in three mouse strains after systemic or mucosal sensitization with ovalbumin antigen.</a> Immunogenetics. 61, 199-207 (2009).</li><li>Flandre, T. D., Leroy, P. L., Desmecht, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+somatic+growth,+strain,+and+sex+on+double-chamber+plethysmographic+respiratory+function+values+in+healthy+mice.">Effect of somatic growth, strain, and sex on double-chamber plethysmographic respiratory function values in healthy mice.</a> J. Appl. Physiol. 94, 1129-1136 (2003).</li><li>Hoymann, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Invasive+and+noninvasive+lung+function+measurements+in+rodents.">Invasive and noninvasive lung function measurements in rodents.</a> J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 55, 16-26 (2007).</li><li>Chong, B. T., Agrawal, D. K., Romero, F. A., Townley, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+bronchoconstriction+using+whole-body+plethysmograph:+comparison+of+freely+moving+versus+restrained+guinea+pigs.">Measurement of bronchoconstriction using whole-body plethysmograph: comparison of freely moving versus restrained guinea pigs.</a> J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 39, 163-168 (1998).</li></ol>

Hayvanlar üzerinde deney protokolü # V010-10 kapsamında Atlanta VAMC IACUC Komitesi tarafından belirtilen kurallar ve düzenlemelere uygun olarak yapılmıştır.

Allerjik solunum yolu hastalığının hayvan modelleri klinik astım ile ilgili çalışmalar için önemli bir araç sağlar. Değişik tür ve istihdam antijenleri farklı modelleri, bir dizi geliştirilmiştir. Fare, bir çekici ve sık kullanılan laboratuvar türleri, alerjik solunum yolu hastalığı modelleri için bir çok avantaj sunuyor. 9,10 gibi modeller üretmek için özellikle zor olan, kronik hastalığı yönleri ile her bakımdan astım, 11 taklit etmese de, 12,13 biz ...

<table border="1"><tbody><tr><td> Malzeme Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog Numarası </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> Ovalbumin </td><td> Sigma-Aldrich Louis, MO </td><td> A5503 </td><td></td></tr><tr><td> Alüminyum hidroksit </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 239186 </td><td></td></tr><tr><td> Asetil-β-methylcholine klorür </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> A2251 </td><td></td></tr><tr><td> Pentobarbital sodyum tuzu </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P3761 </td><td></td></tr><tr><td> Tüm vücut pletismografisi (WBP) sistemi </td><td> Buxco Araştırma Sistemleri Wilmington, NC </td><td></td><td> <a href="http://www.buxco.com" target="_blank">http://www.buxco.com</a> </td></tr><tr><td> FlexiVent </td><td>SCIREQ, Inc Montreal, Kanada </td><td></td><td> <a href="http://www.scireq.com" target="_blank">http://www.scireq.com</a> </td></tr><tr><td> Işık mikroskobu </td><td> Leica Microsystems, Inc Buffalo Grove, IL </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Sitospin 4 </td><td> Thermo Scientific Asheville, NC </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Diff-Quick leke </td><td> Siemens Newark, DE </td><td> B4132-1A </td><td></td></tr><tr><td> Tekrarlanan pipet </td><td> Tridak Torrington </td><td> STP4001-0025 </td><td></td></tr></tbody></table>

murine model of allergen induced asthma

Astım dünyada 300 milyon kişiyi etkileyen, morbidite ve mortalitenin önemli bir nedenidir. ABD nüfusunun 1 fazla% 8 yaygınlığı artan, astım vardır. 2 büyük ölçüde kolaylaştıracağını diğer hastalıklar, alerjik solunum yolu hastalığı hayvan modellerinde olduğu gibi patofizyolojisinin anlaşılması, terapötik hedefleri belirlemek, yardım ve olası yeni tedavilerin klinik öncesi testler sağlar. Allerjik solunum yolu hastalığı Modelleri Çeşitli hayvan türlerinde geliştirilen, ancak sıçan modellerinde düşük maliyet, hazır durumu ve bu hayvanların iyi karakterize bağışıklık sistemleri nedeniyle, özellikle cazip olmuştur. Transgenik suşlarının çeşitli 3. Yer daha çekiciliğini arttırır Bu modellerin. biz allerjik solunum yolu hastalığının iki sıçan modellerinde tarif Burada 4, antijen olarak istihdam ovalbumin hem de. Intraperitoneal tarafından ilk duyarlılığın, bir model deliv ardındannebulizasyon, intratrakeal teslimi ile diğer tarafından antijen ers. Bu iki model her insan astım önemli özellikleri taklit ile, tamamlayıcı avantajları sunuyoruz. 5 Ve eozinofil zengin hava yolu inflamasyonu, akut astım başlıca özellikleri gibi metakolin (AHR hava yolu aşırı duyarlılığı) gibi uyaranlara karşı abartılı bir hava yolu yanıtı içerir. Bu da bizim fare modelleri, 5,6 de allerjen belirgin etkileri nelerdir ve biz onlara ölçüm teknikleri açıklamak ve böylece deneysel manipülasyon etkilerini değerlendirmek. Özellikle, hava yolu aşırı duyarlılığı ölçüm yanı sıra hava yolları ve akciğer içine inflamatuar hücre infiltrasyonu değerlendirilmesi için yöntemler için hem de 7 invaziv ve non-invaziv 8 teknikleri anlatıyoruz. Akciğer histopatolojisi organın her inflamasyon belirteçleri değerlendirmek için kullanılırken, Havayolu inflamatuar hücreler bronkoalveoler lavaj tarafından toplanmaktadır. Buteknikleri insanlarda mümkün olmazdı şekilde astımı eğitim için güçlü araçlar sunuyoruz.

Watch this Scientific Journal Video about Murine Model of Allergen Induced Asthma at JoVE.com

Murine Model of Allergen Induced Asthma

Alerjik astım Deneysel fare modelleri hastalığı patogenezinde okuyan ve yeni ilaçlar geliştirmek için yeni olanaklar sunar. Bu modeller de alerjik immün yanıt, hava yolu inflamasyonu ve pulmoner patofizyolojisi yöneten ölçüm faktörleri için uygundur.

Alerjen Bağlı Astım murin Modeli

Asthma is a major cause of morbidity and mortality, affecting some 300 million people throughout the world.1 More than 8% of the US population has asthma, ...

Research

Education

JoVE Core

JoVE Journal

Pharmacology

Immunology and Infection

Unit 1

Lower Respiratory Disorders

SCIENTISTS IN ACTION

39.8K Görüntüleme.  Emory University and Atlanta VA Medical Center. Alerjik astım Deneysel fare modelleri hastalığı patogenezinde okuyan ve yeni ilaçlar geliştirmek için yeni olanaklar sunar. Bu modeller de alerjik immün yanıt, hava yolu inflamasyonu ve pulmoner patofizyolojisi yöneten ölçüm faktörleri için uygundur.

Video: Murine Model of Allergen Induced Asthma

Murine Model of CD40-activation of B cells

Research on B cells has shown that CD40 activation improves their antigen presentation capacity. When stimulated with interleukin-4 and CD40 ligand (CD40L), human B cells can be expanded without difficulties from small amounts of peripheral blood within 14 days to very large amounts of highly-pure CD40-B cells (&gt;109 cells per patient) from healthy donors as well as cancer patients1-4. CD40-B cells express important lymph node homing molecules and can attract T cells in vitro5. Furthermore they efficiently take up, process and present antigens to T cells6,7. CD40-B cells were shown to not only prime na&iacute;ve, but also expand memory T cells8,9. Therefore CD40-activated B cells (CD40-B cells) have been studied as an alternative source of immuno-stimulatory antigen-presenting cells (APC) for cell-based immunotherapy1,5,10. In order to further study whether CD40-B cells induce effective T cell responses in vivo and to study the underlying mechanism we established a cell culture system for the generation of murine CD40-activated B cells. Using splenocytes or purified B cells from C57BL/6 mice for CD40-activation, optimal conditions were identified as follows: Starting from splenocytes of C57BL/6 mice (haplotype H-2b) lymphocytes are purified by density gradient centrifugation and co-cultured with HeLa cells expressing recombinant murine CD40 ligand (tmuCD40L HeLa)11. Cells are recultured every 3-4 days and key components such as CD40L, interleukin-4, -Mercaptoethanol and cyclosporin A are replenished. In this protocol we demonstrate how to obtain fully activated murine CD40-B cells (mCD40B) with similar APC-phenotype to human CD40-B cells (Fig 1a,b). CD40-stimulation leads to a rapid outgrowth and expansion of highly pure (&gt;90%) CD19+ B cells within 14 days of cell culture (Fig 1c,d). To avoid contamination with non-transfected cells, expression of the murine CD40 ligand on the transfectants has to be controlled regularly (Fig 2). Murine CD40-activated B cells can be used to study B-cell activation and differentiation as well as to investigate their potential to function as APC in vitro and in vivo. Moreover, they represent a promising tool for establishing therapeutic or preventive vaccination against tumors and will help to answer questions regarding safety and immunogenicity of this approach12.

In this video, we demonstrate the procedure of CD40-activation and expansion of murine B cells from splenocytes of C57BL/6 mice, which can be used as a model antigen-presenting cell (APC) to study induction of immunity.

Murin Model B hücreleri CD40 aktivasyonu

Research on B cells has shown that CD40 activation improves their antigen presentation capacity. When stimulated with interleukin-4 and CD40 ligand ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Pseudomonas aeruginosa Induced Lung Injury Model

In order to study human acute lung injury and pneumonia, it is important to develop animal models to mimic various pathological features of this disease. Here we have developed a mouse lung injury model by intra-tracheal injection of bacteria Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa or PA). Using this model, we were able to show lung inflammation at the early phase of injury. In addition, alveolar epithelial barrier leakiness was observed by analyzing bronchoalveolar lavage (BAL); and alveolar cell death was observed by Tunel assay using tissue prepared from injured lungs. At a later phase following injury, we observed cell proliferation required for the repair process. The injury was resolved 7 days from the initiation of P. aeruginosa injection. This model mimics the sequential course of lung inflammation, injury and repair during pneumonia. This clinically relevant animal model is suitable for studying pathology, mechanism of repair, following acute lung injury, and also can be used to test potential therapeutic agents for this disease.

Pseudomonas aeruginosa Induced Lung Injury Model

We have developed a mouse lung injury model by intra-tracheal injection of bacteria Pseudomonas aeruginosa. This model mimics lung injury during pneumonia and is clinically relevant.

Pseudomonas aeruginosa Kaynaklı Akciğer Hasarı Modeli

In order to study human acute lung injury and pneumonia, it is important to develop animal models to mimic various pathological features of this disease. ...

A Murine Model of Group B Streptococcus Vaginal Colonization

Streptococcus agalactiae (group B Streptococcus, GBS), is a Gram-positive, asymptomatic colonizer of the human gastrointestinal tract and vaginal tract of 10 - 30% of adults. In immune-compromised individuals, including neonates, pregnant women, and the elderly, GBS may switch to an invasive pathogen causing sepsis, arthritis, pneumonia, and meningitis. Because GBS is a leading bacterial pathogen of neonates, current prophylaxis is comprised of late gestation screening for GBS vaginal colonization and subsequent peripartum antibiotic treatment of GBS-positive mothers. Heavy GBS vaginal burden is a risk factor for both neonatal disease and colonization. Unfortunately, little is known about the host and bacterial factors that promote or permit GBS vaginal colonization. This protocol describes a technique for establishing persistent GBS vaginal colonization using a single &#946;-estradiol pre-treatment and daily sampling to determine bacterial load. It further details methods to administer additional therapies or reagents of interest and to collect vaginal lavage fluid and reproductive tract tissues. This mouse model will further the understanding of the GBS-host interaction within the vaginal environment, which will lead to potential therapeutic targets to control maternal vaginal colonization during pregnancy and to prevent transmission to the vulnerable newborn. It will also be of interest to increase our understanding of general bacterial-host interactions in the female vaginal tract.

A Murine Model of Group B Streptococcus Vaginal Colonization

The purpose of this protocol is to imitate human group B Streptococcus (GBS) vaginal colonization in a murine model. This method may be used to investigate host immune responses and bacterial factors contributing to GBS vaginal persistence, as well as to test therapeutic strategies.

B Grubu bir murin modelinde<em&gt; Streptococcus</em&gt; Vajinal Kolonizasyon

Streptococcus agalactiae (group B Streptococcus, GBS), is a Gram-positive, asymptomatic colonizer of the human gastrointestinal tract and vaginal tract of ...

Flow Cytometric Analysis of Particle-bound Bet v 1 Allergen in PM10

Flow cytometry is a method widely used to quantify suspended solids such as cells or bacteria in a size range from 0.5 to several tens of micrometers in diameter. In addition to a characterization of forward and sideward scatter properties, it enables the use of fluorescent labeled markers like antibodies to detect respective structures. Using indirect antibody staining, flow cytometry is employed here to quantify birch pollen allergen (precisely Bet v 1)-loaded particles of 0.5 to 10 &#181;m in diameter in inhalable particulate matter (PM10, particle size &#8804;10 &#181;m in diameter). PM10 particles may act as carriers of adsorbed allergens possibly transporting them to the lower respiratory tract, where they could trigger allergic reactions.
So far the allergen content of PM10 has been studied by means of enzyme linked immunosorbent assays (ELISAs) and scanning electron microscopy. ELISA measures the dissolved and not the particle-bound allergen. Compared to scanning electron microscopy, which can visualize allergen-loaded particles, flow cytometry may additionally quantify them. As allergen content of ambient air can deviate from birch pollen count, allergic symptoms might perhaps correlate better with allergen exposure than with pollen count. In conjunction with clinical data, the presented method offers the opportunity to test in future experiments whether allergic reactions to birch pollen antigens are associated with the Bet v 1 allergen content of PM10 particles &#62;0.5 &#181;m.

Here, we present a protocol to quantify allergen-loaded particles by flow cytometry. Ambient particulate matter particles may act as carriers of adsorbed allergens. We show here that flow cytometry, a method widely used to characterize suspended solids &#62;0.5 &#181;m in diameter, can be used to measure these allergen-loaded particles.

PM10 parçacık bağlı Bet v 1 Allergen Akışı Sitometrik Analizi

Flow cytometry is a method widely used to quantify suspended solids such as cells or bacteria in a size range from 0.5 to several tens of micrometers in ...

Small RNA Transfection in Primary Human Th17 Cells by Next Generation Electroporation

CD4+ T cells can differentiate into several subsets of effector T helper cells depending on the surrounding cytokine milieu. Th17 cells can be generated from na&#239;ve CD4+ T cells in vitro by activating them in the presence of the polarizing cytokines IL-1&#946;, IL-6, IL-23, and TGF&#946;. Th17 cells orchestrate immunity against extracellular bacteria and fungi, but their aberrant activity has also been associated with several autoimmune and inflammatory diseases. Th17 cells are identified by the chemokine receptor CCR6 and defined by their master transcription factor, ROR&#947;t, and characteristic effector cytokine, IL-17A. Optimized culture conditions for Th17 cell differentiation facilitate mechanistic studies of human T cell biology in a controlled environment. They also provide a setting for studying the importance of specific genes and gene expression programs through RNA interference or the introduction of microRNA (miRNA) mimics or inhibitors. This protocol provides an easy to use, reproducible, and highly efficient method for transient transfection of differentiating primary human Th17 cells with small RNAs using a next generation electroporation device.

Next generation electroporation is an efficient method for transfecting human Th17 cells with small RNAs to alter gene expression and cell behavior.

Yeni Nesil Electroporasyonun tarafından İlköğretim İnsan Th17 Hücreleri Küçük RNA Transfeksiyon

CD4+ T cells can differentiate into several subsets of effector T helper cells depending on the surrounding cytokine milieu. Th17 cells can be generated ...

Noninvasive Sampling of Mucosal Lining Fluid for the Quantification of In Vivo Upper Airway Immune-mediator Levels

This protocol describes noninvasive sampling of undisturbed upper airway mucosal lining fluid. It also details the extraction procedure used prior to the analysis of immune mediators in fluid eluates for the study of the airway topical immune signature, without the need for stimulation procedures (often used by other techniques). The mucosal lining fluid is sampled on a strip of filter paper placed at the anterior part of the inferior turbinate and left for 2 min of absorption. Analytes are eluted from the filter papers, and the extracted protein-based eluates are analyzed by an electrochemiluminescence-based immunoassay, allowing for the high-sensitivity quantification of low- and high-level analytes in the same sample. We measured the in vivo levels of 20 preselected immune mediators related to specific immune signaling pathways in the upper airway mucosa, but the technique is not limited to that specific panel or sampling site. The technique was first implemented in 7-year-old children from the Copenhagen Prospective Studies on Asthma in Childhood2000 (COPSAC2000) cohort with allergic rhinitis. It was thereafter used in the longitudinal COPSAC2010 birth cohort, sampled at 1 month, 2 years, and 6 years of age and at instances of acute respiratory symptoms. We successfully obtained and analyzed samples from 620 (89%) of 700 1-month-old children; a few samples were below the assay detection limit (reported as the median (Inter-Quartile Range (IQR)). The number of samples below the detection limit (i.e.&#160;from 0 to the set point for the lower limit of detection) for each mediator was 29 (7.25 - 119.5). This technique enables the quantification of the in vivo airway mucosal immune profile from birth, can be applied longitudinally, and can be applied to studies on the effect of genetics and early-life environmental exposures, pathophysiology, endotyping, and monitoring of respiratory diseases, and development and evaluation of novel therapeutics.

Noninvasive Sampling of Mucosal Lining Fluid for the Quantification of In Vivo Upper Airway Immune-mediator Levels

This protocol describes a noninvasive technique for the sampling of undisturbed mucosal lining fluid from the upper airways. It can be used to perform the quantification of in vivo levels of protein mediators, such as cytokines and chemokines, in subjects of all ages.

Mukozal astar sıvı noninvaziv örnekleme için In Vivo üst solunum yolu bağışıklık arabulucu düzeyleri miktar

This protocol describes noninvasive sampling of undisturbed upper airway mucosal lining fluid. It also details the extraction procedure used prior to the ...

Analysis of Shear Flow-induced Migration of Murine Marginal Zone B Cells In Vitro

Marginal zone B cells (MZBs) are a population of B cells that reside in the mouse splenic marginal zones that envelop follicles. To reach the follicles, MZBs must migrate up the shear force of blood flow. We present here a method for analyzing this flow-induced MZB migration in vitro. First, MZBs are isolated from the mouse spleen. Second, MZBs are settled on integrin ligands in flow chamber slides, exposed to shear flow, and imaged under a microscope while migrating. Third, images of the migrating MZBs are processed using the MTrack2 automatic cell tracking plugin for ImageJ, and the resulting cell tracks are quantified using the Ibidi chemotaxis tool. The migration data reveal how fast the cells move, how often they change direction, whether the shear flow vector affects their migration direction, and which integrin ligands are involved. Although we use MZBs, the method can easily be adapted for analyzing migration of any leukocyte that responds to the force of shear flow.

Marginal zone B cells (MZBs) respond to the force of shear flow by re-orienting their migration path up the flow. This protocol shows how to record and analyze the migration using a fluidics unit, pump, microscope imaging system, and free software.

Yamultma akış kaynaklı geçiş antikorundan marjinal bölge B hücrelerinin in Vitro analizine

Marginal zone B cells (MZBs) are a population of B cells that reside in the mouse splenic marginal zones that envelop follicles. To reach the follicles, ...

A Murine Model of Dengue Virus-induced Acute Viral Encephalitis-like Disease

Dengue virus (DENV), an arthropod-borne virus transmitted by mosquitoes, may cause the severe disease known as dengue hemorrhagic fever, which is characterized by lethal complications due to plasma leakage, ascites, pleural effusion, respiratory distress, severe bleeding, and organ impairment. A few cases of DENV infection present neurological manifestations; however, studies have not explored DENV-induced neuropathogenesis further. In this study, we present a protocol to use an immunocompetent outbred ICR (Institute of Cancer Research) mouse for investigating the induction of central nervous system (CNS) infection with DENV, followed by the progression of acute viral encephalitis-like disease.

Here, we present a protocol for creating an immunocompetent ICR (Institute of Cancer Research) murine model of central nervous system infection to display the development of neuropathy. Monitoring acute viral encephalitic disorders by identical disease scores could be performed for showing dengue virus-induced neuropathy in vivo.

Dang humması virüs kaynaklı akut viral Ensefalitis-benzeri hastalık bir Murine modeli

Dengue virus (DENV), an arthropod-borne virus transmitted by mosquitoes, may cause the severe disease known as dengue hemorrhagic fever, which is ...

Robust Ligature-Induced Model of Murine Periodontitis for the Evaluation of Oral Neutrophils

The main advantages of studying the pathophysiology of periodontal disease utilizing murine models are the reduced cost of animals, array of genetically modified strains, the vast number of analyses that can be performed on harvested soft and hard tissues. However, many of these systems are subject to procedural criticisms. As an alternative, the ligature-induced model of periodontal disease, driven by the localized development and retention of a dysbiotic oral microbiome, can be employed, which is rapidly induced and relatively reliable. Unfortunately, the variants of ligature-induced murine periodontitis protocol are isolated to focal regions of the periodontium and subject to premature avulsion of the installed ligature. This minimizes the amount of tissue available for subsequent analyses and increases the number of animals required for study. This protocol describes the precise manipulations required to place extended molar ligatures with improved retention and usage of a novel rinse technique to recover oral neutrophils in mice with an alternative approach that mitigates the aforementioned technical challenges.

This article presents a protocol for establishing a ligature-induced model of murine periodontitis involving multiple maxillary molars, resulting in larger areas of the involved gingival tissue and bone for subsequent analysis as well as reduced animal usage. A technique to assess oral neutrophils in a manner analogous to human subjects is also described.

Oral Nötrofillerin Değerlendirilmesinde Mürin Periodontitin Sağlam Ligatür Kaynaklı Modeli

The main advantages of studying the pathophysiology of periodontal disease utilizing murine models are the reduced cost of animals, array of genetically ...

Systematic Scoring Analysis for Intestinal Inflammation in a Murine Dextran Sodium Sulfate-Induced Colitis Model

Murine colitis models are tools that are extensively employed in studies focused on understanding the pathobiology of inflammatory intestinal disorders. However, robust standards for objective and reproducible quantification of disease severity remain to be defined. Most colitis analysis methods rely on limited histological scoring of small segments of intestine, leading to partial or biased analyses. Here, we combine high-resolution image acquisition and longitudinal analysis of the entire colon to quantify intestinal injury and ulceration in the dextran sodium sulfate (DSS) induced model of murine colitis. This protocol allows for the generation of objective and reproducible results without extensive user training. Here, we provide comprehensive details on sample preparation and image analysis using examples of data from DSS induced colitis. This method can be easily adapted to other models of murine colitis that have significant inflammation associated with mucosal injury. We demonstrate that the fraction of inflamed/injured and eroded/ulcerated mucosa relative to the complete length of the colon closely parallels clinical findings such as weight loss amid DSS-induced disease progression. This histological protocol provides a reliable time and cost-effective aid to standardize analyses of disease activity in an unbiased way in DSS colitis experiments.

Systematic scoring of intestinal inflammation using a free computer-assisted system is a powerful tool to quantitatively compare histopathological changes in colitis models characterized by the presence of ulcers and inflammatory changes. Histological colitis score evaluation strengthens clinical observations and facilitates data interpretation.

Murine Dextran Sodyum Sülfat Kaynaklı Kolit Modelinde Bağırsak İltihabı İçin Sistematik Puanlama Analizi

Murine colitis models are tools that are extensively employed in studies focused on understanding the pathobiology of inflammatory intestinal disorders. ...