Biz teknik yardım için Virginia Doherty ve Junmei Yao teşekkür ederiz. Bu araştırma NIMH (R01 MH084966) ve Amerikan Ordusu Araştırma Ofisi ve Savunma İleri Araştırma Projeleri Ajansı tarafından finanse edildi KAG için (W911NF-10-1-0059 hibe).

Bütün deneyler, yetişkin erkek Long-Evans sıçanları kullanılarak yapıldı. Tüm işlemler Laboratuvar Hayvanları Bakım ve Kullanım Sağlık (NIH) Rehberi ABD Ulusal Sağlık Enstitüleri ile uyumlu idi ve Massachusetts Institute of Technology Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi ve Hayvan Bakımı ve Kullanımı İnceleme Bürosu tarafından kabul edildi USAMRMC. 1. Hazırlık <ol><li> Iğne ile heparin çözeltisi (1000 USP birim / ml) 500 ul tüpü ihtiva eden heparin korunan iğne yerleştirilmesi ve daha sonra aspire edilmesiyle ve atarak kateter ve şırınga Heparinise. <ol><li> Şırıngaya bir kelebek kateter takın. Hasardan keskin ucu korumak için kateterin iğne üzerine kalkanını tutun. </li><li> Toplanacaktır kan hacmi biraz daha büyüktür heparin bir hacim çıkarın. Şırınga ayırın ve hava ile doldurun. </li><li> Yeniden takın kateter şırınga ve kullanımıHava aşırı heparin çözüm sınırdışı etmek; Sadece tutarlar boru, iğne, şırınga ve iz kalmasını sağlamak. </li><li> Steril bir yüzey üzerinde, hala bağlı şırınga ile steril kateter yerleştirin. </li></ol></li><li> Hızla ön ve pençelerin rahat bir konumda ve nefes sınırsız olmasını sağlamak temiz bir bez sıçan sabitleyin. <ol><li> Kanca ve halka bant ile sarın sabitleyin; Dış genital ş değil emin olun. </li><li> Yavaşça bir asistana sahip ve sıkıca kuyruk sayaç kenarına asılı olan katı bir çalışma yüzeyine sıçan (karın ve kuyruk tabanı) dizginlemek. </li></ol></li></ol> 2. Kan Alınması <ol><li> Kan damarlarını genişletmek ve bir kağıt havlu ile kuyruk kurumasını 40-50 saniye 42 ° C su içinde kuyruk daldırın. (Kuyruk büküm önlemek için kuyruk ile bütün vücudu döndürmek) kanadı olan kuyruk ven bulun. Not: kuyruk yeterli ısınma hızlı collectio için kritik öneme sahiptirBir kan numunesinin n. Damar ş ise, kateter doğru yerleştirilmesi güçtür ve kan akımı büyük ölçüde azalır. Bir ısıtma yastığı suya daldırma için bir alternatif olarak kullanılabilir. </li><li> Örnekleme noktasını tanımlayın. Not: arter kuyruk orta dorsal boyunca yatıyor; örnekleme için bu kullanmayın. <ol><li> Arterin lateral yalan sol ve sağ kuyruk damarları ya hedefleyin. Suşu göre değişir ve yaşla birlikte artar kuyruk, pigmentasyon, damarsal bazı gizleyebilir. Kuyruk alt kısmında ven bir kısmını hedef. </li><li> % 2 klorheksidin antiseptik solüsyonla hedef alan silin. </li></ol></li><li> Yaklaşık 50 ul sıfırdan pistonu çekerek şırınga ve kateter negatif basınç oluşturur. </li><li> Düz numune toplama boyunca kuyruk tutmak için ucuna yakın yavaşça ve sıkıca kuyruk tutun. Kan akımı aşırı sıkı tutuş ile tıkalı olmadığından emin olun.</li><li> Yavaşça yaklaşık 5 cm kuyruğun ucundan eğik bir açıda damar içine kateter yerleştirin. Damar nüfuz edildiğinde, kan kateterin akacaktır. Yavaş yavaş (~ saniyede 20 ul) sabit bir hızda istenen hacmi toplamak için şırınga pistonu geri çekin. <ol><li> Tahsil edilebilir maksimum kan hacmi hakkında bilgi için veteriner personel danışın. toplanması gereken kan maksimum miktarı sıçan ağırlığı ve sağlık durumuna bağlıdır. 14 günlük bir süre içinde toplam kan hacminin% 15&#39;den fazla çekmeyin. Not: Kan akut stres hormonları damar sıkmak çünkü toplama örnek öncesinde dakikada vurguladı hayvanlardan toplamak çok daha zordur. Örneğin, bir damar içine hayvan veya kateterin tekrarlayan sokulmasını sarmak için birkaç dakika alarak, yeni bir odaya sıçan ev kafes hareketli tüm akut stres yanıtı tetiklemek için muhtemeldir. </li><li> Bloo kolaylaştırılması&#39;sağım&#39; ven yoluyla d akışı. Kuyruğun ucuna doğru tabanından, damar uzunluğu boyunca parmak başlat ama damarından yerinden olabilir yerleştirilen iğne veya kateter ucundan 2 cm ve daha kalır. </li><li> Kan başarıyla kateter penetrasyon ilk siteden tahsil edilemezse, ven daha da yukarı iğne yeniden takın. Kan, ilk yerinde toplandı Eğer çıkarmadan sonra ven-sokulmasını yeniden öncesinde kateter ve şırınga yeniden bağlamadan tarafından iğne yeniden basınç. Genel olarak, ilave girmeler kaçının. </li><li> Birden girmeler kuyruk kan akımı kesilir ve yumuşak doku kuyruk ölen bir hale geldiği kuyruk ven çökmesine neden olabilir gibi kuyruk damar çöküşü varsa, sıçan euthanize. </li></ol></li><li> Yeterli örnek hacmi toplandığı zaman ayırmadan ve kateter yeniden bağlantı yoluyla şırınga basıncı bırakın. Aspire biraz şırınga pistonu kullanarak (~ 50 &amp; #181; l) ve damardan iğneyi çıkartın. Not: İğne ilk şırınga basınç bırakmadan geri edilirse, kan iğneden damla olacaktır. </li><li> Kısaca kanamayı durdurmak ve antiseptik solüsyon ile bölgeyi silin ekleme siteye basınç uygulayın. Kendi ev kafesine sıçan dönün. </li></ol> 3. Kan Örnek İşleme <ol><li> Aspire hava kan kateter iğne içine kalmasını sağlamak ve sadece iğne üstünde kateter boru kesmek için makas kullanın. Steril 1.5 ml mikrosantrifüj tüp içine kan sınırdışı. Not: Kan iğne ile basıldığında, kesme kuvveti çok sayıda alt analizlere müdahalede hangi rüptüre kırmızı kan hücrelerinin sebep olabilir. Hemoliz önlemek için iğneyi çıkarın. <ol><li> , Kan plazması, burada pıhtılaşma önleyici (olarak EDTA ihtiva kullanımı tüpleri toplar kan 200-400 ul 0.1 M EDTA, 10 ul kullanmak için, temin w karışmaz kullanılan EDTA konsantrasyonununBuz üzerinde aşağı tahlil) ve yerine i. <ol><li> Toplama, 10 dakika içinde, 10 dakika boyunca, bir soğutmalı santrifüj (4 ° C) &#39;de 2,100 xg&#39;de tam kan numuneleri dönerler. Kırmızı ve beyaz kan hücresi katmanları rahatsız kaçınarak, plazma Zehir. </li></ol></li><li> Pıhtılaşmayı sağlamak için en fazla 30 dakika boyunca oda sıcaklığında kan serumu, (antikoagülan) olmadan yer numuneleri toplamak için. 2000 x g&#39;de soğutuculu santrifüj (4 ° C) &#39;de toplama tüpleri dönerler. Serum daha sonra ayrılabilir. </li></ol></li><li> Kullanım derhal numuneler veya mağaza en fazla bir yıl süreyle -80 ° C&#39;de. </li></ol>

<ol>
	<li>Vausort, M., Wagner, D. R., Devaux, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long+Noncoding+RNAs+in+Patients+with+Acute+Myocardial+Infarction.">Long Noncoding RNAs in Patients with Acute Myocardial Infarction.</a> Circ Res. 115 (7), 668-677 (2014).</li><li>Shah, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biomarkers+for+Early+Detection+of+Colorectal+Cancer+and+Polyps:+Systematic+Review.">Biomarkers for Early Detection of Colorectal Cancer and Polyps: Systematic Review.</a> Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 23 (9), 1712-1728 (2014).</li><li>Chan, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Applications+of+blood-based+protein+biomarker+strategies+in+the+study+of+psychiatric+disorders.">Applications of blood-based protein biomarker strategies in the study of psychiatric disorders.</a> Prog Neurobiol. , (2014).</li><li>Cao, L., Li, L., Lin, D., Zuo, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isoflurane+induces+learning+impairment+that+is+mediated+by+interleukin+1beta+in+rodents.">Isoflurane induces learning impairment that is mediated by interleukin 1beta in rodents.</a> PLoS One. 7 (12), e51431 (2012).</li><li>Culley, D. J., Baxter, M. G., Yukhananov, R., Crosby, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+impairment+of+acquisition+of+a+spatial+memory+task+following+isoflurane-nitrous+oxide+anesthesia+in+rats.">Long-term impairment of acquisition of a spatial memory task following isoflurane-nitrous oxide anesthesia in rats.</a> Anesthesiology. 100 (2), 309-314 (2004).</li><li>Vahl, T. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+analysis+of+ACTH+and+corticosterone+sampling+methods+in+rats.">Comparative analysis of ACTH and corticosterone sampling methods in rats.</a> Am J Physiol Endocrinol Metab. 289 (5), E823-E828 (2005).</li><li>Kalinichenko, L. S., Koplik, E. V., Pertsov, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cytokine+profile+of+peripheral+blood+in+rats+with+various+behavioral+characteristics+during+acute+emotional+stress.">Cytokine profile of peripheral blood in rats with various behavioral characteristics during acute emotional stress.</a> Bull Exp Biol Med. 156 (4), 441-444 (2014).</li><li>McEwen, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Central+effects+of+stress+hormones+in+health+and+disease:+Understanding+the+protective+and+damaging+effects+of+stress+and+stress+mediators.">Central effects of stress hormones in health and disease: Understanding the protective and damaging effects of stress and stress mediators.</a> Eur J Pharmacol. 583 (2-3), 174-185 (2008).</li><li>Sanchez, A., Toledo-Pinto, E. A., Menezes, M. L., Pereira, O. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+in+norepinephrine+and+epinephrine+concentrations+in+adrenal+gland+of+the+rats+submitted+to+acute+immobilization+stress.">Changes in norepinephrine and epinephrine concentrations in adrenal gland of the rats submitted to acute immobilization stress.</a> Pharmacol Res. 48 (6), 607-613 (2003).</li><li>Meyer, R. M., Burgos-Robles, A., Liu, E., Correia, S. S., Goosens, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+ghrelin-growth+hormone+axis+drives+stress-induced+vulnerability+to+enhanced+fear.">A ghrelin-growth hormone axis drives stress-induced vulnerability to enhanced fear.</a> Mol Psychiatry. , (2013).</li><li>Knoll, A. T., Carlezon, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynorphin,+stress,+and+depression.">Dynorphin, stress, and depression.</a> Brain Res. 1314 (56-73), (2010).</li><li>Harvey, B. H., Brand, L., Jeeva, Z., Stein, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cortical/hippocampal+monoamines,+HPA-axis+changes+and+aversive+behavior+following+stress+and+restress+in+an+animal+model+of+post-traumatic+stress+disorder.">Cortical/hippocampal monoamines, HPA-axis changes and aversive behavior following stress and restress in an animal model of post-traumatic stress disorder.</a> Physiol Behav. 87 (5), 881-890 (2006).</li></ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Burada, yaygın olarak kullanılan diğer tekniklere göre önemli avantajlar sunan bir sıçan, bir kan örneği elde etmek için hızlı ve basit bir prosedürü açıklar. İlk olarak, juguler ven veya retroorbital sinüsten örnekleme ile tersine, anestezi gerektirmez. Kan örnekleri davranışsal prosedürleri çevreleyen toplanan zaman öğrenme ve bellek, 4,5 ile karışabilir, çünkü anestezik yönetimi istenmeyen bir durumdur. İkincisi, bu tür safen veya dorsal pedal damarlar koleksiyon gibi diğer venipunktür teknikleri, daha büyük kan hacimleri toplamak için yeteneği sunar. Kan 1,5 mi kadar burada tarif edilen teknik kullanılarak, tek bir zaman noktasında bir sıçandan toplanabilir, hali hazırda birden çok deneyler, paralel olarak çalışmasına izin veren bir birim. Son olarak, bu yordamı kuyruk ucu amputasyon veya retroorbital kanama ile karşılaştırıldığında doku hasarı olasılığını en aza indirir. Bu prosedürün kullanılması Hayvan W uyumu kolaylaştırırelfare Kanunu ve hayvanlar üzerinde yapılan laboratuar prosedürlerine kaynaklanan acı ve sıkıntı minimize gerektiren Laboratuvar Hayvanları Bakım ve Kullanım için Kılavuzu. Bu yönteme yeni araştırmacılar deney hayvanları tutulmuştur zamanı en aza indirmek amacıyla kısıtlama ve kuyruk kanama tekniklerini uygulama önerilir. Kısıtlama başlangıcından itibaren en az 3 dakika içinde toplanan kan optimum sonuçlar sağlar. Burada açıklanan protokol haftada 1-4 kez numune için kullanılır, ancak günde iki defa daha fazla olabilir. Tekrar kan toplama gerçekleştirilebilir olsa da, kuyruk tabanından yukarı doğru hareket farklı örnekleme siteleri kullanılmalıdır ve sol ve sağ arka damarları numune alanı olarak değişmelidir. kemirgenler, toplam kan hacmi vücut ağırlığının% 6-7, ve toplam kan hacminin en fazla% 15, bir 2 haftalık süre içinde alınmalıdır. Serumya da plazma toplanmış numune hacminin yaklaşık% 40-60 ihtiva etmektedir. Bir kaç küçük modifikasyonlarla burada açıklandığı gibi yanal kuyruk venleri yoluyla kan örneği alınması, aynı zamanda fare içinde gerçekleştirilebilir. İlk olarak, sadece küçük göstergesi (27 g) kateter kullanılabilmektedir. İkinci olarak, bu fareler hareketsiz hale getirmek için, daha ziyade, bir sargı yerine bir boru koruyucularını kullanılması tavsiye edilir. submandibuler vasküler demet (200-500 ul) Damara kullanılarak fareden elde edilebilir kan hacmi güvenli bir şekilde kuyruk damarından (200 ul maksimum) alınabilir daha büyüktür. Submandibuler damar paket kan örnekleme az kısıtlama gerektiren ve daha fazla kan verebilir, çünkü bu fare örnekleme için tercih edilen yoldur. Bu prosedür, minimal invaziv doğası ile birlikte yapılabilir hangi hız, aynı zamanda akut stres tepkisi 6 kan esaslı tedbirlerin potansiyel pertürbasyon en aza indirir.akut stres tepkisi interlökinler ve diğer immün aktif faktörlerin 7, hipotalamus-hipofiz-adrenal ekseninin 8 hormonlar, sempatik sinir sisteminin 9 hormonlar, ghrelin 10, endojen opioidler 11, dopamin gibi birçok moleküllerin dolaşımdaki düzeyleri, değiştirebilir ve olabilir Serotonin 12. Bu moleküllerin düzenlenir, bu moleküllerin veya başkalarının dinlenme dolaşımdaki önlemler arzu edildiği takdirde, bir stres maruz bırakılmanın başlamasından bir dakika gibi kısa bir süre içinde tetiklenir stres cevabı, en aza indirmek için önemlidir. Stres tepkiler sadece kan kompozisyonunu değiştirmek değil, aynı zamanda sempatik sinir sistemi artan sürücü ile nedeniyle damar daralması kan örneklemesi için bir teknik engel teşkil değil. Bu akut stres yanıtı montaj olduğunu bir sıçan sürekli kan akışını elde etmek zor artan olur. Bu nedenle, hayvanın sıkıntı minim olmalıHızla ilgi fizyolojik durumunu yansıtır örnekleri elde etmek için ized.

Kanından elde edilen Biyomarkörler yararlı tanı, prediktif sağlamak ve kardiyovasküler hastalık 1, kanser bilimleri 2, ve psikiyatrik hastalık 3 dahil olmak üzere birçok klinik bağlamda önlemler stratifying. Onlar da açlık, inflamasyon, ya da stres mevcut derecesi de dahil olmak üzere, bir organizmanın &quot;devlet&quot; değerlendirmek için temel bilimlerdeki kullanılabilir. Bu tür önlemler ya da örnek elde edilir günün saatine ve konuların cinsiyet de dahil olmak üzere ilgi sorusuna, kritik olmayabilir değişkenler tarafından etkilenebilir. Aynı zamanda kan örnekleme prosedürleri kendini sırasında uyarılan strese etkilenebilir. Stres hormonları ve ağrı algısı hızla kan bileşimini değiştirebilir. Kemirgenler en sık kullanılan laboratuar hayvanları, ve birden çok yöntem, kan toplama için geliştirilmiştir. kan örneklemesi ideal yöntem asgari physiologica olmalıdırHayvansal l etkisi, anestezi gerektirmez, hızlı ve tekrarlanan örnekleme izin ve çok sayıda downstream uygulamalar için yeterli kan hacmi sağlar. Bu tür kriterlere uymayan şahdamarı veya kuyruk ucu amputasyon kateterizasyon olarak kan toplamak için Popüler teknikleri. Bu protokolün amacı, anestezi gerektirmez, minimal stresli farelerde kullanılmak üzere bir kan numunesi alma tekniği açıklamak için bir tek bir konu içinde birden fazla kan alma sağlar ve çok sayıda deneyler gerçekleştirilebilir, öyle ki nispeten büyük bir numune hacmi sağlar Tek bir numune üzerinde. Bu yöntemin amacı, minimal akut stres tepkisi etkilenmektedir kan örnekleri elde etmektir.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Sodium heparin (1000 USP units/ml)</td>
			<td>Patternson Veterinary Supply</td>
			<td>25021040010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)</td>
			<td>JT Taylor</td>
			<td>JT2020-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dermachlor Rinse-Chlorhexadine</td>
			<td>Butler Schein</td>
			<td>6356</td>
			<td>Topical antiseptic solution, 2% chlorhexidine gluconate</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SURFLO Winged Infusion Sets, Terumo, butterfly catheters</td>
			<td>VWR Scientific</td>
			<td>TESV25BLK</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Tuberculin 1cc syringes</td>
			<td>VWR Scientific</td>
			<td>BD309659</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.5 ml microcentrifuge tubes</td>
			<td>VWR Scientific</td>
			<td>89202-682</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>500 &#956;l microcentrifuge tubes</td>
			<td>VWR Scientific</td>
			<td>21150-330</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors, stainless steel, 5&#34;</td>
			<td>VWR Scientific</td>
			<td>82027-586</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>500ml plastic beaker</td>
			<td>VWR Scientific</td>
			<td>414004-149</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clean cloth wrap</td>
			<td>Butler Schein</td>
			<td>2993</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Velcro tape, .75&#34; width</td>
			<td>Monoprice</td>
			<td>B004AF9II6</td>
			<td>Hook and loop tape</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Timer</td>
			<td>VWR Scientific</td>
			<td>62344-641</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

sampling blood from the lateral tail vein of the rat

Blood samples are commonly obtained in many experimental contexts to measure targets of interest, including hormones, immune factors, growth factors, proteins, and glucose, yet the composition of the blood is dynamically regulated and easily perturbed. One factor that can change the blood composition is the stress response triggered by the sampling procedure, which can contribute to variability in the measures of interest. Here we describe a procedure for blood sampling from the lateral tail vein in the rat. This procedure offers significant advantages over other more commonly used techniques. It permits rapid sampling with minimal pain or invasiveness, without anesthesia or analgesia. Additionally, it can be used to obtain large volume samples (upwards of 1 ml in some rats), and it may be used repeatedly across experimental days. By minimizing the stress response and pain resulting from blood sampling, measures can more accurately reflect the true basal state of the animal, with minimal influence from the sampling procedure itself.

Protokolde tarif edildiği gibi, yan kuyruk damarından alınan kan, plazma yarı saydam ve görünüm olarak soluk sarı bir plazma örneği sağlar. Şekil 1 &#39;de gösterildiği gibi, bir numunedeki hemoliz plazma kırmızı bir renk tonu verir. Akut stres tepkisi hızla kan bileşimini değiştirebilir. Şekil 2&#39;de görüldüğü gibi, örneğin, dolaşımdaki kortikosteron konsantrasyonu belirgin, stres maruz kalma 10 dakika içinde artabilir. Pozu stres öncesinde bu yöntemle elde edilen kortikosteron düşük bazal seviyeleri örnekleme prosedürü kendisi stres önemli bir kaynak olmadığını ortaya koymaktadır. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/52766/52766fig1.jpg" /> Şekil 1:. Örnek görünüm (A) pıhtılaşmış numuneler gösterilmektedir. Santrifüjlemeden sonra, plazma ya da serum katmanı (yüzey siyah ar ile gösterilensatır) pembe ya da kırmızı ile renklendirilmiş görünür. Koyu renk tonları hemoliz daha seviyelerini göstermektedir. (B) Santrifüj işleminden sonra, uygun bir şekilde, toplanmış numune olmayan pıhtılaşmış plazma ya da serum karşılık gelen üst bant (siyah okla gösterilen bir yüzey), bir berrak, sarımsı bir görünüme sahip olur. Bu tabakanın uzaklaştırılması, bu, ya da bütün kan tabakası içine pipet iterek veya ucu içine tam kan, bazı aspire yatan tam kan rahatsız önemlidir. Tam kan ile kirlenmiş herhangi bir plazma veya serum atılmalıdır. <img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/52766/52766fig2.jpg" /> Şekil 2: Plazma kortikosteron hızla stresli bir deneyim şu yükselir Kan önce yetişkin dişi Long-Evans sıçanlarda lateral kuyruk damarından alınan ve 10 dakika 4 sesleri (10 sn, 2 kHz, 85 dB) maruz kaldıktan sonra eş sonlandırma oldu. foo iletshocks (1 sn, 350 uA). Taban (290,4 ± 138.8 pg / ml) Kan plazma kortikosteron seviyeleri ayak şoku stresi sunumu takip eden 10 dakika gözlenenden daha belirgin olarak daha düşük (2204,8 ± 454.5 pg / ml, p = 0.02, n = 4), eşleştirilmiş t ile belirlendiği gibi -testi. * P &lt;0.05

Watch this Scientific Journal Video about Sampling Blood from the Lateral Tail Vein of the Rat at JoVE.com

Sampling Blood from the Lateral Tail Vein of the Rat

Blood samples are useful for assessing biomarkers of physiological states or disease in vivo. Here we describe the methodology to sample blood from the lateral tail vein in the rat. This method provides rapid samples with minimal pain and invasiveness.

Rat Yanal Kuyruk Ven gelen Kan Örnekleme

Blood samples are commonly obtained in many experimental contexts to measure targets of interest, including hormones, immune factors, growth factors, ...

sampling-blood-from-the-lateral-tail-vein-of-the-rat

Research

JoVE Journal

Biology

102.3K Görüntüleme.  Massachusetts Institute of Technology. Blood samples are useful for assessing biomarkers of physiological states or disease in vivo. Here we describe the methodology to sample blood from the lateral tail vein in the rat. This method provides rapid samples with minimal pain and invasiveness.

Video: Sampling Blood from the Lateral Tail Vein of the Rat

Drawing Blood from Rats through the Saphenous Vein and by Cardiac Puncture

Drawing blood from rodents is necessary for a large number of both in vitro and in vivo studies. Sites of blood draws are numerous in rodents: retro-orbital sinus, jugular vein, maxillary vein, saphenous vein, heart. Each technique has its advantages and disadvantages, and some are not approved any more in some countries (e.g., retro-orbital draws in Holland). A discussion of different techniques for drawing blood are available 1-3.
Here, we present two techniques for drawing blood from rats, each with its specific applications.
Blood draw from the saphenous vein, provided it is done properly, induces minimal distress in animals and does not require anesthesia. This technique allows repeated draws of small amounts of blood, such as needed for pharmacokinetic studies 4,5, determining plasma chemistry, or blood counts 6.
Cardiac puncture allows the collection of large amounts of blood from a single animal (up to 10 ml of blood can be drawn from a 150 g rat). This technique is therefore very useful as a terminal procedure when drawing blood from the saphenous would not provide a large enough sample. We use cardiac puncture when we need sufficient amounts of serum from a specific strain of rats to grow T lymphocyte lines in vitro 4-9.

Blood draws are necessary in a large number of studies, for example to study the pharmacokinetics profile of a compound. Here, we demonstrate how to draw blood from rats using two techniques: blood draw from the saphenous vein or by cardiac puncture.

Safen Ven ve Kardiyak Delinme Ratlarda Kan Alma

Drawing blood from rodents is necessary for a large number of both in vitro and in vivo studies. Sites of blood draws are numerous in rodents: ...

Biyoloji

Micro-dissection of Rat Brain for RNA or Protein Extraction from Specific Brain Region

Micro-dissection of rat brain into various regions is extremely important for the study of different neurodegenerative diseases. This video demonstrates micro-dissection of four major brain regions include olfactory bulb, frontal cortex, striatum and hippocampus in fresh rat brain tissue. Useful tips for quick removal of respective regions to avoid RNA and protein degradation of the tissue are given.

Micro-dissection of rat brain into various regions is extremely important for the study of different neurodegenerative diseases. This video demonstrates micro-dissection of four major brain regions include olfactory bulb, frontal cortex, striatum and hippocampus in fresh rat brain tissue. Useful tips for quick removal of respective regions to avoid RNA and protein degradation of the tissue are given.

RNA veya Protein Ekstraksiyonu Özgül Beyin Bölgesi&#39;nden Rat Beyin Mikro-disseksiyon

Micro-dissection of rat brain into various regions is extremely important for the study of different neurodegenerative diseases. This video demonstrates ...

Blood Collection from the American Horseshoe Crab, Limulus Polyphemus

The horseshoe crab has the best-characterized immune system of any long-lived invertebrate. The study of immunity in horseshoe crabs has been facilitated by the ease in collecting large volumes of blood and from the simplicity of the blood. Horseshoe crabs show only a single cell type in the general circulation, the granular amebocyte. The plasma has the salt content of sea water and only three abundant proteins, hemocyanin, the respiratory protein, the C-reactive proteins, which function in the cytolytic destruction of foreign cells, including bacterial cells, and &alpha;2-macroglobulin, which inhibits the proteases of invading pathogens. Blood is collected by direct cardiac puncture under conditions that minimize contamination by lipopolysaccharide (a.k.a., endotoxin, LPS), a product of the Gram-negative bacteria. A large animal can yield 200 - 400 mL of blood. For the study of the plasma, blood cells are immediately removed from the plasma by centrifugation and the plasma can then be fractionated into its constituent proteins. The blood cells are conveniently studied microscopically by collecting small volumes of blood into LPS-free isotonic saline (0.5 M NaCl) under conditions that permit direct microscopic examination by placing one of more LPS-free coverglasses on the culture dish surface, then mounting those coverglasses in simple observation chambers following cell attachment. A second preparation for direct observation is to collect 3 - 5 mL of blood in a LPS-free embryo dish and then explanting fragments of aggregated amebocytes to a chamber that sandwiches the tissue between a slide and a coverglass. In this preparation, the motile amebocytes migrate onto the coverglass surface, where they can readily be observed. The blood clotting system involves aggregation of amebocytes and the formation of an extracellular clot of a protein, coagulin, which is released from the secretory granules of the blood cells. Biochemical analysis of washed blood cells requires that aggregation and degranulation does not occur, which can be accomplished by collecting blood into 0.1 volumes of 2% Tween-20, 0.5 M LPS-free NaCl, followed by centrifugation of the cells and washing with 0.5 M NaCl.

The American horseshoe crab, Limulus polyphemus, is arguably the most convenient source for large quantities of blood of any invertebrate. The blood is simple in composition, with only one cell-type in the general circulation, the granular amebocyte, and only three abundant proteins in the plasma, hemocyanin, the C-reactive proteins, and &alpha;2-macroglobulin. Blood is collected from the heart and the blood cells and plasma are separated by centrifugation.

Amerikan Horseshoe Yengeç, Limulus Polyphemus&#39;un Kan Toplama

The horseshoe crab has the best-characterized immune system of any long-lived invertebrate.  The study of immunity in horseshoe crabs has been facilitated ...

Preparation of Rat Tail Tendons for Biomechanical and Mechanobiological Studies

Rat tail tendons (RTTs) are a common biological model used in experimental in vitro studies in the fields of tendon physiology and tendinopathy. Working with those tissues is challenging because they are very fragile, and until now there was no rigorously detailed protocol for their isolation.
Faced with these challenges, we have developed methods and instruments to facilitate manipulation of RTTs and control tissue viability, sterility and integrity. This article describes the experimental procedures used to prepare RTTs for biomechanical and mechanobiological studies. Our work is divided into four main steps: extraction, cross-sectional area measurement, rinsing and loading into the bioreactor chamber.
At each step, all procedures, materials and manipulations are presented in detail so that they can be easily reproduced. Moreover, the specific instruments developed are presented: a manipulation plate used to segregate RTTs, an optic micrometer to position the tissue during the cross-sectional area measurement and an anchoring system to attach the RTTs onto a bioreactor.
Finally, we describe the results obtained after multiple tests to validate our methods. The viability, sterility and integrity evaluations demonstrate that our procedures are sufficiently rigorous for manipulations of fragile tissues such as rat tail tendons.

This article describes the experimental procedures used to prepare rat tail tendons for biomechanical and mechanobiological studies. Several features of the main steps in preparation are demonstrated, beginning with extraction, cross-sectional area measurement, rinsing and loading into the bioreactor chamber.

Biyomekanik ve Mechanobiological Araştırmalar Rat Kuyruk Tendonlar hazırlanması

Rat tail tendons (RTTs) are a common biological model used in experimental in vitro studies in the fields of tendon physiology and tendinopathy. Working ...

Isolation and Culture of Pulmonary Endothelial Cells from Neonatal Mice

Endothelial cells provide a useful research model in many areas of vascular biology. Since its first isolation 1, human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) have shown to be convenient, easy to obtain and culture, and thus are the most widely studied endothelial cells. However, for research focused on processes like angiogenesis, permeability or many others, microvascular endothelial cells (ECs) are a much more physiologically relevant model to study 2. Furthermore, ECs isolated from knockout mice provide a useful tool for analysis of protein function ex vivo. Several approaches to isolate and culture microvascular ECs of different origin have been reported to date 3-7, but consistent isolation and culture of pure ECs is still a major technical problem in many laboratories. Here, we provide a step-by-step protocol on a reliable and relatively simple method of isolating and culturing mouse lung endothelial cells (MLECs). In this approach, lung tissue obtained from 6- to 8-day old pups is first cut into pieces, digested with collagenase/dispase (C/D) solution and dispersed mechanically into single-cell suspension. MLECS are purified from cell suspension using positive selection with anti-PECAM-1 antibody conjugated to Dynabeads using a Magnetic Particle Concentrator (MPC). Such purified cells are cultured on gelatin-coated tissue culture (TC) dishes until they become confluent. At that point, cells are further purified using Dynabeads coupled to anti-ICAM-2 antibody. MLECs obtained with this protocol exhibit a cobblestone phenotype, as visualized by phase-contrast light microscopy, and their endothelial phenotype has been confirmed using FACS analysis with anti-VE-cadherin 8 and anti-VEGFR2 9 antibodies and immunofluorescent staining of VE-cadherin. In our hands, this two-step isolation procedure consistently and reliably yields a pure population of MLECs, which can be further cultured. This method will enable researchers to take advantage of the growing number of knockout and transgenic mice to directly correlate in vivo studies with results of in vitro experiments performed on isolated MLECs and thus help to reveal molecular mechanisms of vascular phenotypes observed in vivo.

Here, we describe a protocol for isolation and culture of murine pulmonary endothelial cells. This method comprises mechanic and enzymatic lung tissue dissociation as well as a 2-step purification process using anti-PECAM-1 and anti-ICAM-2 antibodies conjugated to magnetic beads, which produces a pure endothelial cell population of mostly microvascular origin.

Yenidoğan Fareler Pulmoner Endotel Hücreleri İzolasyon ve Kültür

Endothelial cells provide a useful research model in many areas of vascular biology. Since its first isolation 1, human umbilical vein endothelial cells ...

Quantifying Single Microvessel Permeability in Isolated Blood-perfused Rat Lung Preparation

The isolated blood-perfused lung preparation is widely used to visualize and define signaling in single microvessels. By coupling this preparation with real time imaging, it becomes feasible to determine permeability changes in individual pulmonary microvessels. Herein we describe steps to isolate rat lungs and perfuse them with autologous blood. Then, we outline steps to infuse fluorophores or agents via a microcatheter into a small lung region. Using these procedures described, we determined permeability increases in rat lung microvessels in response to infusions of bacterial lipopolysaccharide. The data revealed that lipopolysaccharide increased fluid leak across both venular and capillary microvessel segments. Thus, this method makes it possible to compare permeability responses among vascular segments and thus, define any heterogeneity in the response. While commonly used methods to define lung permeability require postprocessing of lung tissue samples, the use of real time imaging obviates this requirement as evident from the present method. Thus, the isolated lung preparation combined with real time imaging offers several advantages over traditional methods to determine lung microvascular permeability, yet is a straightforward method to develop and implement.

The isolated blood-perfused lung preparation makes it feasible to visualize microvessel networks on the lung surface. Here we describe an approach to quantify permeability of single microvessels in isolated lungs using real time fluorescence imaging.

İzole Kan-perfüze Sıçan Akciğer Hazırlık Tek Mikrodamar Geçirgenliği miktarının

The isolated blood-perfused lung preparation is widely used to visualize and define signaling in single microvessels. By coupling this preparation with ...

Non-Terminal Blood Sampling Techniques in Guinea Pigs

Guinea pigs possess several biological similarities to humans and are validated experimental animal models1-3. However, the use of guinea pigs currently represents a relatively narrow area of research and descriptive data on specific methodology is correspondingly scarce. The anatomical features of guinea pigs are slightly different from other rodent models, hence modulation of sampling techniques to accommodate for species-specific differences, e.g., compared to mice and rats, are necessary to obtain sufficient and high quality samples. As both long and short term in vivo studies often require repeated blood sampling the choice of technique should be well considered in order to reduce stress and discomfort in the animals but also to ensure survival as well as compliance with requirements of sample size and accessibility. Venous blood samples can be obtained at a number of sites in guinea pigs e.g., the saphenous and jugular veins, each technique containing both advantages and disadvantages4,5. Here, we present four different blood sampling techniques for either conscious or anaesthetized guinea pigs. The procedures are all non-terminal procedures provided that sample volumes and number of samples do not exceed guidelines for blood collection in laboratory animals6. All the described methods have been thoroughly tested and applied for repeated in vivo blood sampling in studies within our research facility.

Though a known model, the guinea pig currently represents a niche in experimental animal sciences and limited data is available on the execution of most procedures. Here we present four different approaches to non-terminal in vivo blood sampling techniques in either conscious or anaesthetized guinea pigs.

Kobaylardaki Sigara Terminal Kan Örnekleme Teknikleri

Guinea pigs possess several biological similarities to humans and are validated experimental animal models1-3. However, the use of guinea pigs currently ...

Efficient iPS Cell Generation from Blood Using Episomes and HDAC Inhibitors

This manuscript illustrates a protocol for efficiently creating integration-free human induced pluripotent stem cells (iPSCs) from peripheral blood using episomal plasmids and histone deacetylase (HDAC) inhibitors. The advantages of this approach include: (1) the use of a minimal amount of peripheral blood as a source material; (2) nonintegrating reprogramming vectors; (3) a cost effective method for generating vector free iPSCs; (4) a single transfection; and (5) the use of small molecules to facilitate epigenetic reprogramming. Briefly, peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) are isolated from routine phlebotomy samples and then cultured in defined growth factors to yield a highly proliferative erythrocyte progenitor cell population that is remarkably amenable to reprogramming. Nonintegrating, nontransmissible episomal plasmids expressing OCT4, SOX2, KLF4, MYCL, LIN28A, and a p53 short hairpin (sh)RNA are introduced into the derived erythroblasts via a single nucleofection. Cotransfection of an episome that expresses enhanced green fluorescent protein (eGFP) allows for easy identification of transfected cells. A separate replication-deficient plasmid expressing Epstein-Barr nuclear antigen 1 (EBNA1) is also added to the reaction mixture for increased expression of episomal proteins. Transfected cells are then plated onto a layer of irradiated mouse embryonic fibroblasts (iMEFs) for continued reprogramming. As soon as iPSC-like colonies appear at about twelve days after nucleofection, HDAC inhibitors are added to the medium to facilitate epigenetic remodeling. We have found that the inclusion of HDAC inhibitors routinely increases the generation of fully reprogrammed iPSC colonies by 2 fold. Once iPSC colonies exhibit typical human embryonic stem cell (hESC) morphology, they are gently transferred to individual iMEF-coated tissue culture plates for continued growth and expansion.

Here we describe a protocol for generating human induced pluripotent stem cells from peripheral blood using an episome based reprogramming strategy and histone deacetylase inhibitors.

Epizomlar ve HDAC inhibitörleri kullanarak Blood Verimli iPS Hücre Üretimi

This manuscript illustrates a protocol for efficiently creating integration-free human induced pluripotent stem cells (iPSCs) from peripheral blood using ...

Detecting Establishment of Shared Blood Supply in Parabiotic Mice by Caudal Vein Glucose Injection

Parabiosis is an experimental method for surgically combining two parallel animals along the longitudinal axis of the body. We present a protocol for detecting the successful establishment of blood chimerism in parabionts by a caudal vein injection of glucose. Parabiotic mice were constructed. Glucose was injected into the donor mouse through the tail vein, and the fluctuation of blood glucose level was measured in both mice using a blood glucometer at different time points. Our results showed that after glucose injection, the blood glucose level in donor mice increased sharply after 1 min and decreased slowly thereafter. Meanwhile, the blood glucose level of the recipient mice peaked 15 min after injection. Similar results were obtained with Evans blue, used as a positive control for glucose. The synchronous fluctuation of blood glucose levels indicates that blood flow between the two mice was established successfully.

Here we describe a new method of detecting successful establishment of shared blood circulation of two parabionts through a caudal vein injection of glucose, which causes minimal damage and is not fatal to the parabionts.

Ködal Ven Glukoz Enjeksiyonu ile Parabiyotik Farelerde Ortak Kan Akımının Saptanmasına Neden

Parabiosis is an experimental method for surgically combining two parallel animals along the longitudinal axis of the body. We present a protocol for ...

A High Output Method to Isolate Cerebral Pericytes from Mouse

In recent years, cerebral pericytes have become the focus of extensive research in vascular biology and pathology. The importance of pericytes in blood brain barrier formation and physiology is now demonstrated but its molecular basis remains largely unknown. As the pathophysiological role of cerebral pericytes in neurological disorders is intriguing and of great importance, the in vitro models are not only sufficiently appropriate but also able to incorporate different techniques for these studies. Several methods have been proposed as in vitro models for the extraction of cerebral pericytes, although an antibiotic-free protocol with high output is desirable. Most importantly, a method that has increased output per extraction reduces the usage of more animals.
Here, we propose a simple and efficient method for extracting cerebral pericytes with sufficiently high output. The mouse brain tissue homogenate is mixed with a BSA-dextran solution for the separation of the tissue debris and microvascular pellet. We propose a three-step separation followed by filtration to obtain a microvessel rich filtrate. With this method, the quantity of microvascular fragments obtained from 10 mice is sufficient to seed 9 wells (9.6 cm2 each) of a 6-well plate. Most interestingly with this protocol, the user can obtain 27 pericyte rich wells (9.6 cm2 each) in passage 2. The purity of the pericyte cultures are confirmed with the expression of classical pericyte markers: NG2, PDGFR-&#946; and CD146. This method demonstrates an efficient and feasible in vitro tool for physiological and pathophysiological studies on pericytes.

We present a protocol for the extraction of murine cerebral pericytes. Based on an antibiotic-free enrichment oriented pericyte extraction, this protocol is a valuable tool for in vitro studies providing high purity and high yield, thus decreasing the number of experimental animals used.

Serebral Perisitleri Fareden Ayırmak Için Yüksek Çıkış Yöntemi

In recent years, cerebral pericytes have become the focus of extensive research in vascular biology and pathology. The importance of pericytes in blood ...

Rat Yanal Kuyruk Ven gelen Kan Örnekleme

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler