Yazarlar Glenn Sanger-Hodgson, medya uzmanı FSU Üniversite Tıp video prodüksiyon, düzenleme ve ses çalışmaları için teşekkür etmek istiyorum.
Bu eser Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından (R01GM100474 ve R01GM072611) destek verdi.

Yöntemleri burada açıklanan ve Bölüm 2'de Florida Eyalet Üniversitesi Kurumsal hayvan bakım ve kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmış olan ve ileri Kılavuzu bakım ve kullanım laboratuvar hayvanlarının, 8th edition için belirlenen kuralları izler . Bunda bu protokol için kullanılan tüm özel laboratuvar hayvan tesisi evde kadar kullanmak hayvanlardır. Vivo deneyler gerçekleştirilen öncesinde kurban oldu. Hayvan sayıları ortalama hücre ve miyelin koleksiyonları kullanımını en aza indirmek için bir kılavuz olarak kullanarak deneysel ihtiyacına göre.
Not: Bu iletişim kuralı kemik iliği türevi makrofajlar (BMDMs) (Bölüm 1), fluorescently etiketli beyin kaynaklı miyelin enkaz (Bölüm 2), miyelin enkaz fagositoz (Bölüm 3), analiz genel yordamı hazırlanması nesil açıklar ve Genel yordam miyelin enkaz lipid birikimi (Bölüm 4) çözümlenmesi için. Reaktif hazırlık, hücre hasat ve işleme, miyelin koleksiyonu ve etiketleme ve tahlil performans Laminer hava akımı Biyogüvenlik kabini tamamlanmalıdır.
1. birincil kemik iliği türevi makrofajlar nesil
<ol>
	<li>Hazırlık tam makrofaj kültür ortamının (CMCM) Not: kemik iliği nesilden makrofaj makrofaj koloni uyarıcı faktör (M-CSF) kullanımını gerektirir. Bu hazırlık L929 fare fibroblast şartına medya M-CSF kaynağı olarak kullanır.<ol>
		<li>L929 fare fibroblast şartına medya kodlamayla hücreleri tarafından 145 mm yemekleri ile 50 mL, yüksek glikoz (4500 mg/L L-glikoz) Dulbecco'nın modifiye kartal orta (% 5 yeni doğan buzağı serum (NCS) ve penisilin/streptomisin ile 7 gün boyunca takıma DMEM) oluşturun.</li>
		<li>Medya 3500 x g, 4 ° c'de 30 dakika 50 mL konik santrifüj tüpleri ve santrifüj kültürler toplamak</li>
		<li>Supernatants yeni bir 50 mL konik santrifüj tüpüne 0.2 µm şırınga filtre ile filtre. Klimalı ortam-80 ° C'de 6 aya kadar muhafaza edilebilir.</li>
		<li>DMEM yüksek glikoz için % 5 vol/vol NCS ekleyin, DMEM ve %1 %15 vol/vol L929 fare fibroblast şartına penisilin/streptomisin. Medya 4 ° C'de 2-3 ay boyunca saklanır. Kullanmadan önce 37 ° c sıcak.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Birincil kemik iliği hücreleri ve makrofaj indüksiyon koleksiyonu 
	Not: Bu iletişim kuralı bir fare kullanarak yaklaşık 20 milyon kemik iliği türevi makrofajlar (BMDMs) oluşturur.<ol>
		<li>8-10 hafta standart CO2 boğulma yönergeleri kullanarak eski fareler tarafından servikal yerinden çıkması takip için istediğiniz sayıyı ötenazi.</li>
		<li>% 70 (vol/vol) etanol: H2O kullanarak, kürk doyurarak hayvan sterilize.</li>
		<li>Karın küçük bir açılış kesmek ve dikkatli bir şekilde geri çekin temel doku ortaya çıkarmak için cilt. Periton boşluğuna delik değil için dikkat ediniz.</li>
		<li>Kalçada başlayıp ayak bileği her iki arka ayakları kaldırın. Yer 5-10 mL steril fosfat içeren 100 mm Petri kabına toplanan dokusuna arabelleğe alınmış serum (PBS) % 1'ile desteklenmiş penisilin/streptomisin. 
		Not: Otelde çeşitli hayvanlar işleme yemekleri doku bozulması sınırlamak için buz üzerinde tutmak emin olun.</li>
		<li>Kas ve bağ dokusu bir neşter kullanarak kemiğinden kaldırın. Sadece femur ve tibia kullanılan hücre koleksiyonu için fibula atılır.</li>
		<li>Toplanan kemik iliği boşluğuna her iki ucu bir neşter ile küçük bir bölümünden çıkararak maruz.</li>
		<li>25 g iğne kullanarak, CMCM ile kemik iliği boşluklar içine 50 mL konik santrifüj tüpü sifonu çek. Bir kez onlar yeterince temizlenen kemikleri beyaz görünür.</li>
		<li>Koleksiyon tamamlandığında, örnekleri oluşturulan bir tek hücre süspansiyon 30-90 s için bir 18 g iğne ile tahrik. 
		Not: Bir isteğe bağlı kırmızı kan hücresi (RBC) lizis adım bu noktada gerçekleştirilebilir. Son zamanlarda hücre içi demir içeriği miyelin enkaz makrofaj polarizasyon16üzerine etkilerini etkileyebilir sürülmüştür. RBC lizis adım olmasıyla ilgili bilgi için Trouplin ve arkbakın. 17.</li>
		<li>Süspansiyon 70 µm steril hücre süzgeç aracılığıyla yeni bir 50 mL konik santrifüj tüpüne filtre.</li>
		<li>Tohum hücrelerini eşit olarak 15-20 mL CMCM içeren 145 mm hücre kültür yemekleri toplanan. Yaklaşık üç kültür yemekleri feda fare başına kullanın. Kültürler 37 ° c, % 5 CO2kuluçkaya.</li>
		<li>72 saat yapışık olmayan hücreleri kaldırmak için bir kez steril PBS ile plakalar yıkadıktan sonra 15-20 mL ekleyin taze CMCM. Kültürler için 37 ° c, % 5 CO2ek bir 4 gün kuluçkaya. Toplam kültürünün 7 gün sonra başlangıçta izole kemik iliği hematopoetik hücreler olgun BMDMs (şekil 1) olacaktır.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. nesil Fluorescently etiketli beyin kaynaklı miyelin enkaz
Not: Tüm reaktifler 4 ° C'de 1 ay boyunca saklanır.
<ol>
	<li>Miyelin enkaz toplama reaktifler hazırlanması
	<ol>
		<li>Tris· hazırlamak CL arabellek çözüm.<ol>
			<li>800 mL distile deiyonize H2O (ddiH2O) eklemek 1 M Tris· 20 mL CL, pH 7,45 (20 mM son konsantrasyonu) ve 20 mL 100 mm Na2EDTA (2 mM son konsantrasyonu).</li>
			<li>PH 7,45 için ayarlayın. DdiH2O. filtre solution'ı 0.2 µm filtrasyon ünitesi ile 1000 ml ses düzeyini ayarlayın.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>1 M Sükroz çözüm hazırlamak.<ol>
			<li>Tris· 100 mL için CL arabellek çözüm, 68.46 g Sükroz ekleyin. Tris· ile 200 mL için ses düzeyini ayarlama CL arabellek çözüm. 0.2 µm filtrasyon ünitesi ile çözüme filtre.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Tris· 1 M Çözümle sulandrarak 200 mL 0.32 M Sükroz çözeltisi hazırlamak CL arabellek çözüm 0.83:0.16 (vol/vol).</li>
		<li>Tris· 1 M Çözümle sulandrarak 150 mL 0,83 M Sükroz çözeltisi hazırlamak CL arabellek çözüm 0.83:0.16 (vol/vol).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Beyin elde edilen ham miyelin enkaz topluluğu 
	Not: Burada açıklanan koleksiyonu ham miyelin enkaz yalıtım için yöntemidir.<ol>
		<li>10-12 fareler 8-10 hafta-in yaş servikal çıkığı tarafından izlenen standart CO2 boğulma yönergeleri uygulayarak ötenazi.</li>
		<li>Beyni incelemek ve 10 mL 0.32 M Sükroz çözeltisi içeren bir 100 mm tabak koyun.</li></ol></li></ol>Buz üzerinde çanak tutmak.
		<li>Beyin içine kesilmiş steril Cerrahi makas kullanarak boyutu yaklaşık3 5 mm parçaları.</li>
		<li>50 mL konik santrifüj tüpü doku transferi ve yaklaşık 30 mL 0.32 M Sükroz çözeltisi ekleyin.</li>
		<li>Düzgün bir çözüm elde kadar steril bir el döner homogenizer ile homojenize.</li>
		<li>Homojenize beyin son hacmiyle 0.32 M Sükroz çözüm ile 90 mL seyreltik.</li>
		<li>Altı 38,5-mL ince duvarlı polipropilen ultracentrifuge tüpler için 20 mL 0,83 M Sükroz çözeltisi ekleyin.</li>
		<li>Yavaşça homojenize beyin çözüm iki kat karıştırmak için değil dikkat çekici 0,83 M Sükroz çözüm en üstüne ekleyin.</li>
		<li>Her tüpün 0.32 M Sükroz çözüm ile denge.</li>
		<li>Uygun bir kullanarak 4° C'de 45 dk için 100.000 x g, santrifüj ultracentrifuge rotor ön soğutmalı. Rotor hızlanma ve yavaşlama miyelin enkaz kaybını azaltmak için en düşük değerlerine geri ayarlayın.</li>
		<li>Miyelin enkaz iki Sükroz yoğunlukları arabiriminden toplamak. 
		Not: enkaz tüp merkezine doğru beyaz bir grup olarak görünmelidir.</li>
		<li>Ham miyelin enkaz bir 50 mL konik santrifüj tüpüne birleştirmek ve yaklaşık 35 ml Tris· kullanarak ses seviyesini CL arabellek çözüm.</li>
		<li>30-60 s için steril bir el döner homogenizer ile ham miyelin enkaz lunaparkçı.</li>
		<li>Süspansiyon 6 temiz ultracentrifuge tüpleri ve Tris· uygun bir hacmi ile denge arasında eşit olarak bölmek CL arabellek çözüm.</li>
		<li>Uygun bir kullanarak 4° C'de 45 dk için 100.000 x g, santrifüj ultracentrifuge rotor ön soğutmalı. Rotor hızlanma ve yavaşlama maksimum değerlerine döndürecek.</li>
		<li>Katı beyaz granül şimdi görünür olacak gibi süpernatant atmak ve granül 10-15 mL Tris· yeniden askıya alma CL arabellek çözüm.</li>
		<li>Süspansiyon 2 temiz ultracentrifuge tüpler ve Tris· uygun bir hacmi ile denge arasında eşit olarak bölmek CL arabellek çözüm.</li>
		<li>Santrifüj tekrar 100.000 x g için uygun bir kullanarak 4 ° C'de 45 dk de ultracentrifuge rotor ön soğutmalı. Rotor hızlanma ve yavaşlama maksimum değerlerine döndürecek.</li>
		<li>Süpernatant atın ve 5-6 mL steril PBS granül resuspend ve süspansiyon önceden ağırlığını 1.5 mL mikro-santrifüj tüpleri uygun sayıda arasında bölün.</li>
		<li>4 ° C'de 10 dakika için 22.000 x g, santrifüj</li>
		<li>Süpernatant atın ve miyelin enkaz parçaları ağırlığını belirlemek.</li>
		<li>Granül, yeniden 100 mg/mL nihai bir konsantrasyon için PBS içinde askıya alma. 
		Not: on kadar twelve beyin da 10-15 mL 100 mg/mL miyelin enkaz üretmek için yeterlidir. Miyelin enkaz-80 ° C'de deposu için 6 ay olabilir.</li>
	
	
	<li>Miyelin enkaz floresan etiketleme
	<ol>
		<li>50 µM carboxyfluorescein succinimidyl ester (CFSE) çözüm kullanımdan hemen önce hazırlayın.<ol>
			<li>Steril PBS kullanarak, 5 mM stok çözeltisi % 100 Dimetil sülfoksit (DMSO) 50 µM son çalışma konsantrasyon için hazırlanan CFSE oranında seyreltin.</li>
			<li>Çözüm 0.2 µm şırınga filtre ile filtre.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>100 mg/mL miyelin enkaz istenilen miktarda çözülme ve steril 29 g iğne ile yeniden askıya alma. 
		Not: miyelin enkaz buz gibi o çözüm resuspension kullanmadan önce gerektiren kadar neden olur.</li>
		<li>Miyelin enkaz önceden ağırlığını 1.5 mL mikro-santrifüj tüpü aktarın.</li>
		<li>4° C'de 10 dakika 14,800 x g, santrifüj Süpernatant atmak.</li>
		<li>CFSE çözüm pelleted 100 µL miyelin enkaz başına 200 µL miyelin enkaz resuspend.</li>
		<li>Oda sıcaklığında ışıktan korunan (RT) 30 dk için kuluçkaya.</li>
		<li>4 ° C'de 10 dakika 14,800 x g, santrifüj Süpernatant atmak.</li>
		<li>Pelet yıkama arabellek 600-800 µL içinde resuspend (0.2 µm filtre sterilize PBS 100 mM glisin).</li>
		<li>4 ° C'de 10 dakika 14,800 x g, santrifüj Süpernatant atmak.</li>
		<li>Adımları 2.3.8-2.3.9 iki kez daha tekrarlayın.</li>
		<li>Son yıkama sonra miyelin enkaz Pelet ağırlığını belirlemek ve 100 mg/mL steril PBS ile yeniden askıya alabiliriz. Not: Etiketli miyelin enkaz 6 aya kadar-80 ° C'de deposu olabilir.</li>
	</ol>
	</li>

3. miyelin enkaz fagositoz tahlil
Not: Fagositoz fluorescently etiketli miyelin enkaz gözlemlemek için temel yöntem aşağıdadır. Diğer tedaviler ve deneysel koşullar ek araştırmacı tarafından optimize edilmiş olması gerekir.
<ol>
	<li>Tedavi plakaları hazırlanması
	<ol>
		<li>Her 145 mm plaka için olgun BMDMs Dulbecco'nın fosfat tamponlu tuz (dPBS) (pH 7,4) 5-6 mL 10 mM ethylenediaminetetraacetic asit (EDTA) kullanarak bir 15 mL konik santrifüj tüpüne toplamak. 
		Not: Hücreleri18etkinleştirme durumunu değiştirebilir tripsin kullanmayın.</li>
		<li>Önceden ısıtılmış CMCM eşit bir hacmi kendine hakim hücre her tüp için ekleyin.</li>
		<li>8 dk. 20 ° C'de için 180 x g, santrifüj Süpernatant atmak.</li>
		<li>Hücreleri CMCM ve sayısı alanındaki yeniden askıya alma.</li>
		<li>24-şey hücre kültür plaka her şey için CMCM 1 mL 1 x 105 hücreleri ekleyin.</li>
		<li>37 ° c, % 5 CO2 24 h için kuluçkaya.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Miyelin enkaz tedavi ve analiz
	<ol>
		<li>Miyelin enkaz için her şey (son konsantrasyonu 1 mg/mL) olarak 100 mg/mL CFSE 10 µL etiketli ekleyin.</li>
		<li>1-3 saat 37 ° c, % 5 CO2kuluçkaya.</li>
		<li>Plaka sigara yuttu miyelin enkaz kaldırmak için 3 kez steril PBS ile yıkayın.</li>
		<li>400 µL % 4 paraformaldehyde, her şey için ekleyin. 30 dk RT. az için kuluçkaya</li>
		<li>Plaka 2 kez steril PBS ile yıkayın.</li>
		<li>Höchst 33258 çözüm 400 µL her şey için ekleyin. Işıktan korunan RT, 5 min için kuluçkaya.</li>
		<li>Tabak 2 kez steril PBS ile yıkayın.</li>
		<li>Fluoro-jel 200 µL Tris arabelleği ile photobleaching azaltmak için her şey için ekleyin.</li>
		<li>Görüntü hücre ters bir epi-floresan yetenekli mikroskop kullanarak. 
		Not: CFSE uyarma ve emisyon dalga boylarında 494 vardır nm ve 521 nm, anılan sıraya göre.</li>
		<li>CFSE pozitif hücre sayısı çekirdeği göreli miyelin enkaz alımını belirlemek için sayıya bölme.</li>
		<li>Görüntüleme önce plakaları ışıktan korunan 4 ° C'de 7 güne kadar korumak.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. yağ kırmızı-O boyama ile hücre içi lipidler miktar
Not: Hücre içi miyelin enkaz türetilmiş lipidler gözlemlemek için temel yöntem aşağıdadır.Miyelin enkaz etiketli CFSE kullanımı nedeniyle spektral örtüşme boyama ORO floresan miktar için tavsiye edilmez. Diğer tedaviler ve deneysel koşullar ek araştırmacı tarafından optimize edilmiş olması gerekir.
<ol>
	<li>Hazırlık çözümler boyama
	<ol>
		<li>% 0,5 yağ kırmızı-O (ORO) Boyama çözüm hazırlamak.<ol>
			<li>Yavaş yavaş ORO (1-([4-(Xylylazo)xylyl]azo)-2-naphthol) karıştırma süre. 0,5 g % 100 propilen glikol (1,2-Propanediol) 100 mL eklemek</li>
			<li>Çözüm 95 ° C'de 15 dakika veya tüm büyük parçacıklar çözünene kadar ısı. 
			Not: üzerinde 100 ° c ısı değil</li>
			<li>Solution'ı filtre kağıt hala sıcak iken yeni bir konteyner içine filtre.</li>
			<li>Serin gecede RT. çözüm çözüm-ebilmek var olmak stok RT. ilâ 1 yıl için izin</li>
		</ol>
		</li>
		<li>%85 propilen glikol çözeltisi hazırlamak.<ol>
			<li>% 100 propilen glikol 85 mL ddiH2O. kadar karışık heyecan için 15 mL ekleyin. Çözüm-ebilmek var olmak stok ilâ 1 yıl RT.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Tedavi plakaları hazırlanması
	<ol>
		<li>Tabi belgili tanımlık yöntem Bölüm 3'te özetlenen bir 24-şey tabak hazırlamak.</li>
		<li>37 ° c, % 5 CO2 24 h için kuluçkaya.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Miyelin enkaz tedavi
	<ol>
		<li>100 mg/mL miyelin enkaz 10 µL her şey (son konsantrasyonu 1 mg/mL) ekleyin.</li>
		<li>1-3 h 37 ° c, % 5 CO2için kuluçkaya.</li>
		<li>Plaka sigara sindirilmiş miyelin enkaz kaldırmak için 3 kez steril PBS ile yıkayın. Not: Bu noktada, tabaklar da hemen fiksasyon uygulayabilir veya taze CMCM eklenebilir ve hücreleri kuluçka için ek zaman Puan girildi.</li>
		<li>400 µL % 4 paraformaldehyde, her şey için ekleyin. 30 dk RT. az için kuluçkaya</li>
		<li>2 kez ile steril PBS sonra procced boyama için plaka yıkayın.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>ORO boyama ve analiz
	<ol>
		<li>Sabit plaka ddiH2O. ile 3 kez yıkamak</li>
		<li>Her şey % 100 propilen glikol 400 µL ekleyin ve RT., 5 min için kuluçkaya 
		Not: Bu ertelenmiş ddiH2O. azaltır</li>
		<li>Propilen glikol Aspire edin ve her şey için 400 µL ORO çözüm ekleyin.</li>
		<li>8 dk. 60 ° C'de için kuluçkaya</li>
		<li>ORO çözüm Aspire edin. Daha sonra her şey için % 85 propilen glikol 400 µL ekleyin ve RT., 5 minumintes için kuluçkaya</li>
		<li>Plaka ddiH2O. ile 3 kez yıkamak</li>
		<li>Höchst 33258 çözüm 400 µL her şey için ekleyin. RT, ışıktan korunan, 5 min için kuluçkaya.</li>
		<li>Tabak 2 kez steril PBS ile yıkayın.</li>
		<li>Fluoro-jel 200 µL Tris arabelleği ile her şey için ekleyin.</li>
		<li>Görüntü hücre ters bir epi-floresan yetenekli mikroskop kullanarak. ORO standart bir Texas kırmızı veya DsRed filtre seti kullanarak yansıma.</li>
		<li>ORO olumlu alanını her resim alanı belirleme ve çekirdeği sayısına bölen tarafından göreli lipid saklama ölçmek.</li>
		<li>İçin 7 gün 4 ° c seramik plakalar ışıktan korunan korumak.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol>
	<li>Wynn, T. A., Chawla, A., Pollard, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Macrophage+biology+in+development,+homeostasis+and+disease.">Macrophage biology in development, homeostasis and disease.</a> Nature. 496 (7446), 445-455 (2013).</li><li>Unanue, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Antigen-presenting+function+of+the+macrophage.">Antigen-presenting function of the macrophage.</a> Annu Rev Immunol. 2, 395-428 (1984).</li><li>Cavaillon, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cytokines+and+macrophages.">Cytokines and macrophages.</a> Biomed Pharmacother. 48 (10), 445-453 (1994).</li><li>Ren, Y., Savill, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Apoptosis:+the+importance+of+being+eaten.">Apoptosis: the importance of being eaten.</a> Cell Death Differ. 5 (7), 563-568 (1998).</li><li>Wang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Macrophages+in+spinal+cord+injury:+phenotypic+and+functional+change+from+exposure+to+myelin+debris.">Macrophages in spinal cord injury: phenotypic and functional change from exposure to myelin debris.</a> Glia. 63 (4), 635-651 (2015).</li><li>Goodrum, J. F., Earnhardt, T., Goines, N., Bouldin, T. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fate+of+myelin+lipids+during+degeneration+and+regeneration+of+peripheral+nerve:+an+autoradiographic+study.">Fate of myelin lipids during degeneration and regeneration of peripheral nerve: an autoradiographic study.</a> J Neurosci. 14 (1), 357-367 (1994).</li><li>Greenhalgh, A. D., David, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differences+in+the+Phagocytic+Response+of+Microglia+and+Peripheral+Macrophages+after+Spinal+Cord+Injury+and+Its+Effects+on+Cell+Death.">Differences in the Phagocytic Response of Microglia and Peripheral Macrophages after Spinal Cord Injury and Its Effects on Cell Death.</a> J Neurosci. 34 (18), 6316 (2014).</li><li>Sun, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myelin+activates+FAK/Akt/NF-kappaB+pathways+and+provokes+CR3-dependent+inflammatory+response+in+murine+system.">Myelin activates FAK/Akt/NF-kappaB pathways and provokes CR3-dependent inflammatory response in murine system.</a> PLoS One. 5 (2), e9380 (2010).</li><li>Gensel, J. C., Zhang, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Macrophage+activation+and+its+role+in+repair+and+pathology+after+spinal+cord+injury.">Macrophage activation and its role in repair and pathology after spinal cord injury.</a> Brain Res. , 1-11 (2015).</li><li>Bourre, J. M., Pollet, S., Daudu, O., Le Saux, F., Baumann, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myelin+consists+of+a+continuum+of+particles+of+different+density+with+varying+lipid+composition:+major+differences+are+found+between+normal+mice+and+quaking+mutants.">Myelin consists of a continuum of particles of different density with varying lipid composition: major differences are found between normal mice and quaking mutants.</a> Biochimie. 59 (10), 819-824 (1977).</li><li>Larocca, J. N., Norton, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Current Protocols in Cell Biology. , (2001).</li><li>Norton, W. T., Poduslo, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myelination+in+rat+brain:+method+of+myelin+isolation.">Myelination in rat brain: method of myelin isolation.</a> J Neurochem. 21 (4), 749-757 (1973).</li><li>Wang, X. Q., Duan, X. M., Liu, L. H., Fang, Y. Q., Tan, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Carboxyfluorescein+diacetate+succinimidyl+ester+fluorescent+dye+for+cell+labeling.">Carboxyfluorescein diacetate succinimidyl ester fluorescent dye for cell labeling.</a> Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai). 37 (6), 379-385 (2005).</li><li>Parish, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fluorescent+dyes+for+lymphocyte+migration+and+proliferation+studies.">Fluorescent dyes for lymphocyte migration and proliferation studies.</a> Immunol Cell Biol. 77 (6), 499-508 (1999).</li><li>Deutsch, M. J., Schriever, S. C., Roscher, A. A., Ensenauer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Digital+image+analysis+approach+for+lipid+droplet+size+quantitation+of+Oil+Red+O-stained+cultured+cells.">Digital image analysis approach for lipid droplet size quantitation of Oil Red O-stained cultured cells.</a> Anal Biochem. 445, 87-89 (2014).</li><li>Kroner, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=TNF+and+increased+intracellular+iron+alter+macrophage+polarization+to+a+detrimental+M1+phenotype+in+the+injured+spinal+cord.">TNF and increased intracellular iron alter macrophage polarization to a detrimental M1 phenotype in the injured spinal cord.</a> Neuron. 83 (5), 1098-1116 (2014).</li><li>Trouplin, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Marrow-derived+Macrophage+Production.">Marrow-derived Macrophage Production.</a> J Vis Exp. (81), e50966 (2013).</li><li>Chen, S., So, E. C., Strome, S. E., Zhang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+Detachment+Methods+on+M2+Macrophage+Phenotype+and+Function.">Impact of Detachment Methods on M2 Macrophage Phenotype and Function.</a> J Immunol Methods. 426, 56-61 (2015).</li><li>Guo, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rescuing+macrophage+normal+function+in+spinal+cord+injury+with+embryonic+stem+cell+conditioned+media.">Rescuing macrophage normal function in spinal cord injury with embryonic stem cell conditioned media.</a> Mol Brain. 9 (1), 48 (2016).</li><li>Bosco, D. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+synthetic+matrix+metalloproteinase+inhibitor+reduces+human+mesenchymal+stem+cell+adipogenesis.">A new synthetic matrix metalloproteinase inhibitor reduces human mesenchymal stem cell adipogenesis.</a> PLOS ONE. 12 (2), e0172925 (2017).</li><li>Ram&#237;rez-Zacar&#237;as, J. L., Castro-Mu&#241;ozledo, F., Kuri-Harcuch, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitation+of+adipose+conversion+and+triglycerides+by+staining+intracytoplasmic+lipids+with+oil+red+O.">Quantitation of adipose conversion and triglycerides by staining intracytoplasmic lipids with oil red O.</a> Histochem. 97 (6), 493-497 (1992).</li><li>Koopman, R., Schaart, G., Hesselink, M. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimisation+of+oil+red+staining+permits+combination+with+immunofluorescence+and+automated+quantification+of+lipids.">Optimisation of oil red staining permits combination with immunofluorescence and automated quantification of lipids.</a> Histochem Cell Biol. 116 (1), 63-68 (2001).</li><li>Fang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lipopolysaccharide-Induced+Macrophage+Inflammatory+Response+Is+Regulated+by+SHIP.">Lipopolysaccharide-Induced Macrophage Inflammatory Response Is Regulated by SHIP.</a> J Immunol. 173 (1), (2004).</li><li>Martinez, F. O., Sica, A., Mantovani, A., Locati, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Macrophage+activation+and+polarization.">Macrophage activation and polarization.</a> Front Biosci. 13, (2008).</li><li>Mosser, D. M., Edwards, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exploring+the+full+spectrum+of+macrophage+activation.">Exploring the full spectrum of macrophage activation.</a> Nat Rev Immunol. 8 (12), 958-969 (2008).</li></ol>

Yazarlar hiçbir açıklamalar var.

Burada açıklanan yordamları taze izole kaba CNS miyelin enkaz ve birincil kemik iliği türevi makrofajlar kullanmaktadır. Hayvan harcamaları azaltmak için her iki beyin önerilir ve kemik iliği hücreleri kurban anda her fare--dan hasat. Birlikte çalışan iki araştırmacı aynı anda her iki malzeme hazırlayabilirsiniz. Alternatif olarak, beyin-80 ° c miyelin enkaz yalıtım önce antibiyotik ile takıma PBS içinde saklanır. Hiç beyin bizim deneyim ilâ 1 ay miyelin enkaz üretme potansiyeli sezilebilir k...

Makrofajlar (BMDMs) kemik iliği türevi doğuştan gelen ve edinilmiş bağışıklık sistemleri arasında önemli bir bağlantı vardır. Antijen sunan hücreler (ZPT), olarak her iki antijen sunumu ile lenfositler ile iletişim kurabilir ve sitokin yayın1,2,3. Ancak, profesyonel fagositler onların birincil işlevi patojenler, yaşlı hücreler ve hücresel enkaz1,4temizlemektir. Bir omurilik yaralanması (SCI), miyelin enkaz önemli miktarda hücre tipi CNS axon myelination5için sorumlu ölmek üzere olan oligodendrocytes oluşturulur. Biz ve diğerleri miyelin enkaz temizleme BMDMs5,6,7infiltre öncelikle sorumluluğu olduğunu göstermiştir. Ancak, Medulla Spinalis Yaralanmalarında içinde siteleri engulfment miyelin enkaz bir pro-inflamatuar durumu5,8,9karşı bu normalde anti-inflamatuar hücreleri kaydırmaya sürülmüştür. Anahtar arabulucu nöro-inflamasyon yaralı spinal kord BMDMs önemli klinik hedefleridir.
BMDMs etkisi yaralı spinal kord araştırmak yardımcı olmak için nasıl BMDMs miyelin enkaz için yanıt doğrudan çalışmaya bir vitro modeli geliştirdik. Biyolojik alaka artırmak için birincil fare BMDMs ve taze izole miyelin enkaz bu araştırmalarda kullanılır. Bu nedenle, burada sunulan yöntemleri de detay yalıtım ve birincil fare BMDMs kültürünü ve fare CNS ayırmak için kullanılan bir değiştirilmiş Sükroz degrade teknik miyelin enkaz10,11,12türetilmiş. Miyelin enkaz kolayca floresan bir boya carboxyfluorescein succinimidyl ester (CFSE), sitotoksik sigara çünkü onun içselleştirilmesi BMDMs. CFSE tarafından de bu uygulama için uygun izlemek ve kendi dar floresan spektrum izni ile Etiketlenmiş diğer floresan ile çoğullama13,14sondalar. Fagositoz, miyelin enkaz lipidler organellerin taşınır ve nötr lipitler gibi hücre içi lipid damlacıkları5paketlenmiş. Bu hücre içi lipid birikimi ölçmek için boyama yöntemi kantitatif görüntü analizi için en iyi duruma getirilmiş bir yağ kırmızı O (ORO) mevcut. Bu basit boyama yöntemi sağlam tekrarlanabilir sonuçlar ve miktar15üretir. Bu yöntemlerden miyelin enkaz fagositoz ve lipid saklama sınırlı özel ekipman ile çalışma kolaylaştırmak.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="669">
	<tbody>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:42px;width:180px;">DMEM</td>
			<td style="width:149px;">GE Healthcare Life Sciences</td>
			<td style="width:115px;">SH30243.01</td>
			<td style="width:225px;">High glucose with L-glutamine, sodium pyruvate</td>
		</tr>
		<tr height="62">
			<td height="62" style="height:63px;width:180px;">Penicillin-Streptomycin Solution</td>
			<td style="width:149px;">Corning</td>
			<td style="width:115px;">30-002-CI</td>
			<td style="width:225px;">100X Solution</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:42px;width:180px;">New Born Calf Serum (NCS)</td>
			<td style="width:149px;">Rocky Mountain Biologics</td>
			<td style="width:115px;">NBS-BBT-5XM</td>
			<td style="width:225px;">United States Origin</td>
		</tr>
		<tr height="83">
			<td height="83" style="height:83px;width:180px;">NCTC clone 929 [L cell, L-929, derivative of Strain L]&#160;</td>
			<td style="width:149px;">ATCC</td>
			<td style="width:115px;">CCL-1</td>
			<td style="width:225px;">L929 Cell Line of Conditioned Media Preparation</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:42px;width:180px;">24-well Cell Culture Plates</td>
			<td style="width:149px;">VWR</td>
			<td style="width:115px;">10062-896&#160;</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:21px;width:180px;">Cell Culture Dish</td>
			<td style="width:149px;">Greiner Bio-One</td>
			<td style="width:115px;">639960</td>
			<td style="width:225px;">Polystyrine, 145/20mm</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:42px;width:180px;">CFSE Cell Proliferation Kit</td>
			<td style="width:149px;">Thermo Fisher</td>
			<td style="width:115px;">C34570</td>
			<td style="width:225px;">DMSO for Reconsitution Provided</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:42px;width:180px;">Fluoro-gel with Tris Buffer&#160;</td>
			<td style="width:149px;">Electron Microscopy Sciences</td>
			<td style="width:115px;">17985-11</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:21px;width:180px;">Oil Red O</td>
			<td style="width:149px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:115px;">O0625</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:180px;">Equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Materials</td>
			<td style="width:149px;">Company</td>
			<td style="width:115px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:225px;">Comments</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:42px;width:180px;">Ultracentrifuge Tubes</td>
			<td style="width:149px;">Beckman Coulter</td>
			<td style="width:115px;">326823</td>
			<td style="width:225px;">Thinwall, Polypropylene, 38.5 mL, 25 x 89 mm</td>
		</tr>
		<tr height="62">
			<td height="62" style="height:63px;width:180px;">SW 32 Ti Ultracentrifuge Rotor</td>
			<td style="width:149px;">Beckman Coulter</td>
			<td style="width:115px;">369650</td>
			<td style="width:225px;">SW 32 Ti Rotor, Swinging Bucket, Titanium</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:42px;width:180px;">Hand Held Rotary Homogenizer</td>
			<td style="width:149px;">Fisher Science</td>
			<td style="width:115px;">08-451-71</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in vitro phagocytosis of myelin debris by bone marrow-derived macrophages

Makrofajlar (BMDMs) kemik iliği elde edilen profesyonel fagositler olarak kritik bir fizyolojik rolü parçacıklar çeşitli Temizleme yeteneğine hizmet olgun lökosit vardır. Normalde, BMDMs merkezi sinir sistemi (MSS) sınırlı ama bir yaralanma, onlar kolayca sızmak olabilir. Bir kez yaralı CNS doku içinde BMDMs lipid zengin miyelin enkaz büyük miktarlarda dahil olmak üzere yaralanma kaynaklı hücresel enkaz için izni sorumlu birincil hücre türü vardır. BMDM infiltrasyon ve miyelin enkaz fagositoz MSS içinde neuropathological yansımaları karmaşık ve iyi anlaşılan. Burada, açıklanan protokollere izin ver BMDMs doğrudan vitro çalışma bağlamında, CNS yaralanma için. Biz fare BMDM yalıtım ve kültür, miyelin enkaz hazırlama ve deneyleri BMDM miyelin enkaz fagositoz değerlendirmek için kapağı. Bu teknikler önemli özel ekipman veya malzemeler için gerek kalmadan sağlam ölçülebilir sonuçlar üretmek henüz araştırmacılar ihtiyaçlarını karşılamak üzere kolayca özelleştirilebilir.

Miyelin enkaz etiketli CFSE ile BMDMs tedavisinde açık içselleştirilmesi (Şekil 2) verim. 3 saatlik etkileşim vakit BMDMs sağlam aşağı akım algılama için yeterli eklenen miyelin enkaz phagocytose için yeterli olsa da, hücre içi birikimi ile etkileşim 1 saat kadar görülebilir. Ancak, bazı miyelin enkaz hala yıkandıktan sonra hücre yüzeyinde mevcut olabilir. Bu yetersiz yıkama veya tam değil içselleştirilmiş fagositoz erken evrelerinde parçacıkları nedeniyle ola...

Watch this Scientific Journal Video about In Vitro Phagocytosis of Myelin Debris by Bone Marrow-Derived Macrophages at JoVE.com

In Vitro Phagocytosis of Myelin Debris by Bone Marrow-Derived Macrophages

Biz birincil fare kemik iliği türevi makrofajlar fluorescently etiketli miyelin enkaz ve hücre içi lipid damlacık boyama kullanarak fagositik kapasitesini değerlendirmek için yöntemler mevcut.

Vitro Fagositoz miyelin enkaz kemik iliği türevi makrofajlar tarafından

Bone marrow-derived macrophages (BMDMs) are mature leukocytes that serve a critical physiological role as professional phagocytes capable of clearing a ...

in-vitro-phagocytosis-myelin-debris-bone-marrow-derived

Research

JoVE Journal

Neuroscience

In Vitro Phagocytosis of Myelin Debris by Bone Marrow-Derived Macrophages

12.6K Görüntüleme.  Florida State University. Biz birincil fare kemik iliği türevi makrofajlar fluorescently etiketli miyelin enkaz ve hücre içi lipid damlacık boyama kullanarak fagositik kapasitesini değerlendirmek için yöntemler mevcut.

Video: In Vitro Phagocytosis of Myelin Debris by Bone Marrow-Derived Macrophages

Transfection of Mouse Retinal Ganglion Cells by in vivo Electroporation

The targeting and refinement of RGC projections to the midbrain is a popular and powerful model system for studying how precise patterns of neural connectivity form during development. In mice, retinofugal projections are arranged in a topographic manner and form eye-specific layers in the Lateral Geniculate Nucleus (dLGN) of the thalamus and the Superior Colliculus (SC). The development of these precise patterns of retinofugal projections has typically been studied by labeling populations of RGCs with fluorescent dyes and tracers, such as horseradish peroxidase1-4. However, these methods are too coarse to provide insight into developmental changes in individual RGC axonal arbor morphology that are the basis of retinotopic map formation. They also do not allow for the genetic manipulation of RGCs.
Recently, electroporation has become an effective method for providing precise spatial and temporal control for delivery of charged molecules into the retina5-11. Current retinal electroporation protocols do not allow for genetic manipulation and tracing of retinofugal projections of a single or small cluster of RGCs in postnatal mice. It has been argued that postnatal in vivo electroporation is not a viable method for transfecting RGCs since the labeling efficiency is extremely low and hence requires targeting at embryonic ages when RGC progenitors are undergoing differentiation and proliferation6. 
In this video we describe an in vivo electroporation protocol for targeted delivery of genes, shRNA, and fluorescent dextrans to murine RGCs postnatally. This technique provides a cost effective, fast and relatively easy platform for efficient screening of candidate genes involved in several aspects of neural development including axon retraction, branching, lamination, regeneration and synapse formation at various stages of circuit development. In summary we describe here a valuable tool which will provide further insights into the molecular mechanisms underlying sensory map development.

Transfection of Mouse Retinal Ganglion Cells by in vivo Electroporation

We demonstrate an in vivo electroporation protocol for transfecting single or small clusters of retinal ganglion cells (RGCs) and other retinal cell types in postnatal mice over a wide range of ages. The ability to label and genetically manipulate postnatal RGCs in vivo is a powerful tool for developmental studies.

Fare Retina Ganglion Hücreleri Transfeksiyon tarafından In vivo Elektroporasyon

The targeting and refinement of RGC projections to the midbrain is a popular and powerful model system for studying how precise patterns of neural ...

Nörobilim

Inducing Plasticity of Astrocytic Receptors by Manipulation of Neuronal Firing Rates

Close to two decades of research has established that astrocytes in situ and in vivo express numerous G protein-coupled receptors (GPCRs) that can be stimulated by neuronally-released transmitter. However, the ability of astrocytic receptors to exhibit plasticity in response to changes in neuronal activity has received little attention. Here we describe a model system that can be used to globally scale up or down astrocytic group I metabotropic glutamate receptors (mGluRs) in acute brain slices. Included are methods on how to prepare parasagittal hippocampal slices, construct chambers suitable for long-term slice incubation, bidirectionally manipulate neuronal action potential frequency, load astrocytes and astrocyte processes with fluorescent Ca2+ indicator, and measure changes in astrocytic Gq GPCR activity by recording spontaneous and evoked astrocyte Ca2+ events using confocal microscopy. In essence, a &#8220;calcium roadmap&#8221; is provided for how to measure plasticity of astrocytic Gq GPCRs. Applications of the technique for study of astrocytes are discussed. Having an understanding of how astrocytic receptor signaling is affected by changes in neuronal activity has important implications for both normal synaptic function as well as processes underlying neurological disorders and neurodegenerative disease.

Here we describe an adaptation of protocols used to induce homeostatic plasticity in neurons for the study of plasticity of astrocytic G protein-coupled receptors. Recently used to examine changes in astrocytic group I mGluRs in juvenile mice, the method can be applied to measure scaling of various astrocytic GPCRs, in tissue from adult mice in situ and in vivo, and to gain a better appreciation of the sensitivity of astrocytic receptors to changes in neuronal activity.

Nöronal Ateşleme Oranlarının Manipülasyon tarafından Astrositik reseptörleri Plastisite Inducing

Close to two decades of research has established that astrocytes in situ and in vivo express numerous G protein-coupled receptors (GPCRs) that can be ...

Simultaneous ex vivo Functional Testing of Two Retinas by in vivo Electroretinogram System

An In vivo electroretinogram (ERG) signal is composed of several overlapping components originating from different retinal cell types, as well as noise from extra-retinal sources. Ex vivo ERG provides an efficient method to dissect the function of retinal cells directly from an intact isolated retina of animals or donor eyes. In addition, ex vivo ERG can be used to test the efficacy and safety of potential therapeutic agents on retina tissue from animals or humans. We show here how commercially available in vivo ERG systems can be used to conduct ex vivo ERG recordings from isolated mouse retinas. We combine the light stimulation, electronic and heating units of a standard in vivo system with custom-designed specimen holder, gravity-controlled perfusion system and electromagnetic noise shielding to record low-noise ex vivo ERG signals simultaneously from two retinas with the acquisition software included in commercial in vivo systems. Further, we demonstrate how to use this method in combination with pharmacological treatments that remove specific ERG components in order to dissect the function of certain retinal cell types.

Simultaneous ex vivo Functional Testing of Two Retinas by in vivo Electroretinogram System

Ex vivo ERG can be used to record electrical activity of retinal cells directly from isolated intact retinas of animals or humans. We demonstrate here how common in vivo ERG systems can be adapted for ex vivo ERG recordings in order to dissect the electrical activity of retinal cells.

Eşzamanlı<em&gt; Ex vivo</emİki retina&gt; Fonksiyonel Test tarafından<em&gt; In vivo</em&gt; Elektroretinogram Sistemi

An In vivo electroretinogram (ERG) signal is composed of several overlapping components originating from different retinal cell types, as well as noise ...

A Novel In Vitro Live-imaging Assay of Astrocyte-mediated Phagocytosis Using pH Indicator-conjugated Synaptosomes

Astrocytes are the major cell type in the brain and directly contact synapses and blood vessels. Although microglial cells have been considered the major immune cells and only phagocytes in the brain, recent studies have shown that astrocytes also participate in various phagocytic processes, such as developmental synapse elimination and clearance of amyloid beta plaques in Alzheimer&#39;s disease (AD). Despite these findings, the efficiency of astrocyte engulfment and degradation of their targets is unclear compared with that of microglia. This lack of information is mostly due to the lack of an assay system in which the kinetics of astrocyte- and microglia-mediated phagocytosis are easily comparable. To achieve this goal, we have developed a long-term live-imaging in vitro phagocytosis assay to evaluate the phagocytic capacity of purified astrocytes and microglia. In this assay, real-time detection of engulfment and degradation is possible using pH indicator-conjugated synaptosomes, which emit bright red fluorescence in acidic organelles, such as lysosomes. Our novel assay provides simple and effective detection of phagocytosis through live-imaging. In addition, this in vitro phagocytosis assay can be used as a screening platform to identify chemicals and compounds that can enhance or inhibit the phagocytic capacity of astrocytes. As synaptic pruning malfunction and pathogenic protein accumulation have been shown to cause mental disorders or neurodegenerative diseases, chemicals and compounds that modulate the phagocytic capacity of glial cells should be helpful in treating various neurological disorders.

A Novel In Vitro Live-imaging Assay of Astrocyte-mediated Phagocytosis Using pH Indicator-conjugated Synaptosomes

This protocol presents an in vitro live-imaging phagocytosis assay to measure the phagocytic capacity of astrocytes. Purified rat astrocytes and microglia are used along with pH indicator-conjugated synaptosomes. This method can detect real-time engulfment and degradation kinetics and provides a suitable screening platform to identify factors modulating astrocyte phagocytosis.

Bir roman In Vitro canlı görüntüleme Astrocyte tahlil-aracılı fagositoz kullanarak pH göstergesi Birleşik Synaptosomes

Astrocytes are the major cell type in the brain and directly contact synapses and blood vessels. Although microglial cells have been considered the major ...

Ocular Kinematics Measured by In Vitro Stimulation of the Cranial Nerves in the Turtle

After animals are euthanized, their tissues begin to die. Turtles offer an advantage because of a longer survival time of their tissues, especially when compared to warm-blooded vertebrates. Because of this, in vitro experiments in turtles can be performed for extended periods of time to investigate the neural signals and control of their target actions. Using an isolated head preparation, we measured the kinematics of eye movements in turtles, and their modulation by electrical signals carried by cranial nerves. After the brain was removed from the skull, leaving the cranial nerves intact, the dissected head was placed in a gimbal to calibrate eye movements. Glass electrodes were attached to cranial nerves (oculomotor, trochlear, and abducens) and stimulated with currents to evoke eye movements. We monitored eye movements with an infrared video tracking system and quantified rotations of the eyes. Current pulses with a range of amplitudes, frequencies, and train durations were used to observe effects on responses. Because the preparation is separated from the brain, the efferent pathway going to muscle targets can be examined in isolation to investigate neural signaling in the absence of centrally processed sensory information.

Ocular Kinematics Measured by In Vitro Stimulation of the Cranial Nerves in the Turtle

This protocol describes how to use an in vitro isolated turtle head preparation to measure the kinematics of their eye movements. After removal of the brain from the cranium, cranial nerves can be stimulated with currents to quantify rotations of the eye and changes in pupil sizes.

Oküler kinematik Vitro uyarılması kaplumbağa kranial sinirler tarafından ölçülen

After animals are euthanized, their tissues begin to die. Turtles offer an advantage because of a longer survival time of their tissues, especially when ...

Modeling Charcot-Marie-Tooth Disease In Vitro by Transfecting Mouse Primary Motoneurons

Neurodegeneration of spinal motoneurons (MNs) is implicated in a large spectrum of neurological disorders including amyotrophic lateral sclerosis, Charcot-Marie-Tooth disease, and spinal muscular atrophy, which are all associated with muscular atrophy. Primary cultures of spinal MNs have been used widely to demonstrate the involvement of specific genes in such diseases and characterize the cellular consequences of their mutations. This protocol models a primary MN culture derived from the seminal work of Henderson and colleagues more than twenty years ago. First, we detail a method of dissecting the anterior horns of the spinal cord from a mouse embryo and isolating the MNs from neighboring cells using a density gradient. Then, we present a new way of efficiently transfecting MNs with expression plasmids using magnetofection. Finally, we illustrate how to fix and immunostain primary MNs. Using neurofilament mutations that cause Charcot-Marie-Tooth disease type 2, this protocol demonstrates a qualitative approach to expressing proteins of interest and studying their involvement in MN growth, maintenance, and survival.

Modeling Charcot-Marie-Tooth Disease In Vitro by Transfecting Mouse Primary Motoneurons

The goal of this technique is to prepare a highly enriched culture of primary motoneurons (MNs) from murine spinal cord. To evaluate the consequences of mutations causing MN diseases, we describe here the isolation of these isolated MNs and their transfection by magnetofection.

Fare birincil Motoneurons Transfecting tarafından Charcot Marie Tooth hastalığı Vitro modelleme

Neurodegeneration of spinal motoneurons (MNs) is implicated in a large spectrum of neurological disorders including amyotrophic lateral sclerosis, ...

Disruption of Frontal Lobe Neural Synchrony During Cognitive Control by Alcohol Intoxication

Decision making relies on dynamic interactions of distributed, primarily frontal brain regions. Extensive evidence from functional magnetic resonance imaging (fMRI) studies indicates that the anterior cingulate (ACC) and the lateral prefrontal cortices (latPFC) are essential nodes subserving cognitive control. However, because of its limited temporal resolution, fMRI cannot accurately reflect the timing and nature of their presumed interplay. The present study combines distributed source modeling of the temporally precise magnetoencephalography (MEG) signal with structural MRI in the form of &#34;brain movies&#34; to: (1) estimate the cortical areas involved in cognitive control (&#34;where&#34;), (2) characterize their temporal sequence (&#34;when&#34;), and (3) quantify the oscillatory dynamics of their neural interactions in real time. Stroop interference was associated with greater event-related theta (4 - 7 Hz) power in the ACC during conflict detection followed by sustained sensitivity to cognitive demands in the ACC and latPFC during integration and response preparation. A phase-locking analysis revealed co-oscillatory interactions between these areas indicating their increased neural synchrony in theta band during conflict-inducing incongruous trials. These results confirm that theta oscillations are fundamental to long-range synchronization needed for integrating top-down influences during cognitive control. MEG reflects neural activity directly, which makes it suitable for pharmacological manipulations in contrast to fMRI that is sensitive to vasoactive confounds. In the present study, healthy social drinkers were given a moderate alcohol dose and placebo in a within-subject design. Acute intoxication attenuated theta power to Stroop conflict and dysregulated co-oscillations between the ACC and latPFC, confirming that alcohol is detrimental to neural synchrony subserving cognitive control. It interferes with goal-directed behavior that may result in deficient self-control, contributing to compulsive drinking. In sum, this method can provide insight into real-time interactions during cognitive processing and can characterize the selective sensitivity to pharmacological challenge across relevant neural networks.

This experiment uses an anatomically-constrained magnetoencephalography (aMEG) method to examine brain oscillatory dynamics and long-range functional synchrony during engagement of cognitive control as a function of acute alcohol intoxication.

Ön lobu sinir senkronizasyonu bozulma bilişsel denetimi tarafından alkol zehirlenmesi sırasında

Decision making relies on dynamic interactions of distributed, primarily frontal brain regions. Extensive evidence from functional magnetic resonance ...

Real-time In Vitro Monitoring of Odorant Receptor Activation by an Odorant in the Vapor Phase

Olfactory perception begins with the interaction of odorants with odorant receptors (OR) expressed by olfactory sensory neurons (OSN). Odor recognition follows a combinatorial coding scheme, where one OR can be activated by a set of odorants and one odorant can activate a combination of ORs. Through such combinatorial coding, organisms can detect and discriminate between a myriad of volatile odor molecules. Thus, an odor at a given concentration can be described by an activation pattern of ORs, which is specific to each odor. In that sense, cracking the mechanisms that the brain uses to perceive odor requires the understanding odorant-OR interactions. This is why the olfaction community is committed to &#34;de-orphanize&#34;&#160;these receptors. Conventional in vitro systems used to identify odorant-OR interactions have utilized incubating cell media with odorant, which is distinct from the natural detection of odors via vapor odorants dissolution into nasal mucosa before interacting with ORs. Here, we describe a new method that allows for real-time monitoring of OR activation via vapor-phase odorants. Our method relies on measuring cAMP release by luminescence using the Glosensor assay. It bridges current gaps between in vivo and in vitro approaches and provides a basis for a biomimetic volatile chemical sensor.

Physiologically, odorant receptors are activated by odorant molecules inhaled in the vapor phase. However, most in vitro systems utilize liquid phase odorant stimulation. Here, we present a method that allows real-time in vitro monitoring of odorant receptor activation upon odorant stimulation in vapor phase.

Gerçek zamanlı olarak buharı aşamasında propil reseptör etkinleştirme bir propil tarafından in Vitro izlenmesi

Olfactory perception begins with the interaction of odorants with odorant receptors (OR) expressed by olfactory sensory neurons (OSN). Odor recognition ...

Rapid Isolation of Dorsal Root Ganglion Macrophages

There are growing interests to study the molecular and cellular interactions among immune cells and sensory neurons in the dorsal root ganglia after peripheral nerve injury. Peripheral monocytic cells, including macrophages, are known to respond to a tissue injury through phagocytosis, antigen presentation, and cytokine release. Emerging evidence has implicated the contribution of dorsal root ganglia macrophages to neuropathic pain development and axonal repair in the context of nerve injury. Rapidly phenotyping (or &#8220;rapid isolation of&#8221;) the response of dorsal root ganglia macrophages in the context of nerve injury is desired to identify the unknown neuroimmune factors. Here we demonstrate how our lab rapidly and effectively isolates macrophages from the dorsal root ganglia using an enzyme-free mechanical dissociation protocol. The samples are kept on ice throughout to limit cellular stress. This protocol is far less time consuming compared to the standard enzymatic protocol and has been routinely used for our Fluorescence-activated Cell Sorting analysis.

Here we present a mechanical dissociation protocol to rapidly isolate macrophages from the dorsal root ganglion for phenotyping and functional analysis.

Dorsal Kök Ganglion Makrofajlarının Hızlı İzolasyon

There are growing interests to study the molecular and cellular interactions among immune cells and sensory neurons in the dorsal root ganglia after ...

Positron Emission Tomography Imaging for In Vivo Measuring of Myelin Content in the Lysolecithin Rat Model of Multiple Sclerosis

Multiple sclerosis (MS) is a neuroinflammatory disease with expanding axonal and neuronal degeneration and demyelination in the central nervous system, leading to motor dysfunctions, psychical disability, and cognitive impairment during MS progression. Positron emission tomography (PET) is an imaging technique able to quantify in vivo cellular and molecular alterations.
Radiotracers with affinity to intact myelin can be used for in vivo imaging of myelin content changes over time. It is possible to detect either an increase or decrease in myelin content, what means this imaging technique can detect demyelination and remyelination processes of the central nervous system. In this protocol we demonstrate how to use PET imaging to detect myelin changes in the lysolecithin rat model, which is a model of focal demyelination lesion (induced by stereotactic injection) (i.e., a model of multiple sclerosis disease). 11C-PIB PET imaging was performed at baseline, and 1 week and 4 weeks after stereotaxic injection of lysolecithin 1% in the right striatum (4 &#181;L) and corpus callosum (3 &#181;L) of the rat brain, allowing quantification of focal demyelination (injection site after 1 week) and the remyelination process (injection site at 4 weeks).
Myelin PET imaging is an interesting tool for monitoring in vivo changes in myelin content which could be useful for monitoring demyelinating disease progression and therapeutic response.

Positron Emission Tomography Imaging for In Vivo Measuring of Myelin Content in the Lysolecithin Rat Model of Multiple Sclerosis

This protocol has the aim of monitoring in vivo myelin changes (demyelination and remyelination) by positron emission tomography (PET) imaging in an animal model of multiple sclerosis.

Multipl Sklerozun Lysolecithin Rat Modelinde Miyelin İçeriğinin In Vivo Ölçümü için Pozitron Emisyon Tomografi Görüntüleme

Multiple sclerosis (MS) is a neuroinflammatory disease with expanding axonal and neuronal degeneration and demyelination in the central nervous system, ...