JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

هنا، نحن نقدم ثلاث تجارب مختلفة لدراسة الإصابة Aeromonas في C. ايليجانس. باستخدام هذه الأساليب ملائمة، فمن السهل تقييم سمية فيما بين وداخل الأنواع Aeromonas .

Abstract

مسببات الأمراض البشرية Aeromonas ثبت سريرياً يسبب التهاب المعدة والأمعاء، وعدوى الجرح، وتسمم الدم، والتهابات المسالك البولية. قد أبلغ معظم البشرية من الأمراض تترافق مع أربعة أنواع من البكتيريا: Aeromonas دهاكينسيس هيدروفيلا Aeromonasو بروني Aeromonasو كافي أيروموناس. نموذج الكائن الحي ايليجانس كاينورهابديتيس هو باكتيريفوري الذي يوفر نموذج عدوى ممتازة لدراسة الآلية المرضية البكتيرية من أيروموناس. وهنا، نحن نقدم ثلاث تجارب مختلفة لدراسة الإصابة أيروموناس باستخدام نموذج C. ايليجانس ، بما في ذلك البقاء على قيد الحياة وسمية سائلة وفحوصات نخر العضلات. وكانت نتائج ثلاثة أساليب تحديد ضراوة Aeromonas متسقة. وأبدى دهاكينسيس (أ) أن تكون الأكثر سمية بين 4 أهم الأنواع Aeromonas تسبب العدوى السريرية. وترد هذه الأساليب لتكون وسيلة مريحة لتقييم سمية فيما بين وداخل الأنواع Aeromonas وتسهم في فهمنا للآلية المرضية للإصابة أيروموناس .

Introduction

مسببات الأمراض البشرية، Aeromonas، ثبت سريرياً يسبب التهاب المعدة والأمعاء، وعدوى الجرح، وتسمم الدم، والتهابات المسالك البولية1،2. أبلغ معظم الأمراض البشرية المرتبطة بها لتكون مرتبطة مع أربعة أنواع من البكتيريا: 2، دهاكينسيس أيروموناس، هيدروفيلا Aeromonasو بروني Aeromonasو كافي Aeromonas 3 , 4 , 5-من بين الأمراض المعدية أيروموناس ، يمكن أن يسبب التهابات الأنسجة اللينة حادة في معدلات الاعتلال والوفيات في البشر. ملاحظة، نخر العضلات هو أشد أشكال الأنسجة اللينة العدوى6. المراقبة للبقاء على قيد الحياة ونخر العضلات من ايليجانس كاينورهابديتيس بعد الإصابة أسلوب مناسب للتكهن بسمية Aeromonas.

فعلا طور العلماء الكائنات نموذج عديدة لدراسة حالات العدوى البكتيرية. في دراسات سابقة، استخدمت الفئران، زيبرافيشيس، والديدان الخيطية كنماذج حيوانية لدراسة الآلية المرضية وضراوة Aeromonas6،،من78. كل نموذج الحيوان في ' المزايا والتطبيقات. نموذج الكائن الحي، ايليجانس كاينورهابديتيس، هي ديدان أسطوانية باكتيريفوروس أي مأخذ البكتيريا فودناتورالي. C. ايليجانسطورت نظام المناعة فطرية معقدة ضد العدوى البكتيرية على مدى تطورها. وقد ثبت C. ايليجانس تحت ضغط العدوى البكتيرية، تكون نموذجا عدوى ممتازة لدراسة الآلية المرضية البكتيرية أيروموناس6،،من79 ومسببات الأمراض الأخرى مثل الفطريات10 واسشيريشيا الإشريكيّة القولونية O157:H711. ومع ذلك، لا يزال هناك لا المنشور يركز على المنهجية في استخدام C. ايليجانس كنموذج لدراسة ضراوة Aeromonas.

هنا، نحن نقدم ثلاث تجارب مختلفة لدراسة الإصابة Aeromonas استخدام C. ايليجانس كنموذج حيوان: فحوصات للبقاء على قيد الحياة وسمية سائلة ونخر العضلات. هذه الأساليب طريقة ملائمة لتقييم سمية فيما بين وداخل الأنواع Aeromonas وتحسين فهم الآلية المرضية أيروموناس.

Protocol

1-إعداد متوسطة الثقافة

ملاحظة: انظر الجدول 1 لإعداد الحل.

  1. إعداد M9 المتوسطة12، حل 1.5 ز خ2ص4، ز 5.66 Na2هبو4و 2.5 g من كلوريد الصوديوم في 500 مل مياه.. انتظر حتى تبرد بدرجة حرارة الغرفة اﻷوتوكﻻف في 121 درجة مئوية عن 20 دقيقة ثم قم بإضافة 0.5 مل من 1 م MgSO4 قبل أول استخدام.
  2. إعداد السلكية النمو المتوسطة (NGM)12، يحل الجيل الثالث 3g كلوريد الصوديوم، ببتون البكتيرية 2.5 g، واجار ز 20 في 1 لتر مياه.. انتظر حتى تبرد إلى 55 درجة مئوية في حمام مائي اﻷوتوكﻻف في 121 درجة مئوية عن 20 دقيقة ثم قم بإضافة 1 مل م 1 كاكل2، 1 مل 1 م MgSO4، 1 مل 5% الكولسترول في الإيثانول، و 25 مل من المخزن المؤقت للفوسفات. دوامة مزيج جيد.
  3. صب حوالي 5 مل NGM في كل سم 6 طبق بيتري. تجنب إنتاج فقاعة على السطح اللوحة. ترك لوحات في درجة حرارة الغرفة 1 ليلة وحزمة إنقاذ في 4 درجات مئوية. يعود إلى درجة حرارة الغرفة قبل الاستعمال.
  4. إعداد المخصب NGM (أنجم)، حل ببتون البكتيرية ز 5 واستخراج الخميرة ز 1، ز 3 كلوريد الصوديوم واجار 30 جرام في 1 لتر مياه.. اﻷوتوكﻻف في 121 درجة مئوية 20 دقيقة للانتظار حتى تبرد إلى 55 درجة مئوية في حمام مائي، وإضافة 1 مل م 1 كاكل2، 1 مل 1 م MgSO4، 1 مل 5% الكولسترول في الإيثانول، و 25 مل من المخزن المؤقت للفوسفات. دوامة مزيج جيد.
  5. صب حوالي 10 مل أنجم في كل سم 9 طبق بيتري. تجنب إنتاج فقاعة على السطح اللوحة. ترك لوحات في درجة حرارة الغرفة 1 ليلة وحزمة إنقاذ في 4 درجات مئوية. يصل إلى درجة حرارة الغرفة قبل الاستعمال.
  6. إعداد متوسطة S12، خلط 40 مل S القاعدية، 0.4 مل سترات البوتاسيوم 1 م، المعادن تتبع 0.4 مل الحل، 0.12 مل كاكل 1 م2، 0.12 مل من 1 م MgSO4، 40 ميليلتر من الكوليسترول 5% في الإيثانول ومل 1 من 8 مم فودر قبل الاستخدام.

2-تزامن ايليجانس جيم-6،،من912

  1. أغسل حوالي 2,000 الديدان في مرحلة جرابيد الكبار مع 10 مل مياه المعقمة في أنبوب 15 مل. تغسل البكتيريا 3 x، حفظ الديدان في الجزء السفلي من الأنبوب.
  2. الطرد المركزي العينة لمدة 1 دقيقة على 500 x ز لهدم الديدان. إزالة المادة طافية، والاحتفاظ الديدان في 3.5 مل منزوع الماء.
  3. أضف 1 مل NaOCl (10 – 15%) و 0.5 مل م 5 كوه في الأنبوب. المزيج بالتساوي بالهز < 6 دقيقة الهيئات دودة.
  4. بعد أن يتم الإفراج عن البيض من الديدان، أضف منزوع 10 مل من الماء لوقف تحلل. أجهزة الطرد المركزي لمدة 1 دقيقة في س 1,200 ز هدم البيض وإزالة المادة طافية بقدر الإمكان. يغسل مع 15 مل M9 المتوسطة على الأقل 3 س.
    ملاحظة: راجع الخطوة 1.1 لتكوين المتوسطة M9.
  5. الحفاظ على البيض في المتوسط 1 مل M9. نقل البيض إلى طبق 3.5 سم للحضانة في 20 درجة مئوية لليلة واحدة (حوالي 12-18 ساعة).
    ملاحظة: بعد الحضانة، سوف يفقس البيض دودة اليرقة التي تسمى كأول مرحلة من مراحل اليرقة (L1).
  6. "الماصة؛" إلى 10 ميليلتر من الديدان L1 في المتوسط M9. عد دودة وحساب تركيز L1 الديدان في المتوسط M9.
  7. البذور في معظم 10,000 المحتضنة الديدان المرحلة L1 مع بيبيت على لوحة أنجم 9 سم تنتشر مع OP50 الإشريكيّة القولونية .
    1. في هذه الخطوة، مثقف انتشار 0.5 مل بين عشية وضحاها OP50 كولاي مع مرق لوريا بيرتاني (رطل) على لوحة أنجم 9 سم. احتضان لوحة عند 37 درجة مئوية ح 16 – 18
      ملاحظة: لتفادي التلوث، ينبغي إجراء هذه الخطوة نشر في غطاء الاندفاق الصفحي.
    2. تبرد لدرجة حرارة الغرفة قبل البذر الديدان L1. البذور في معظم 10,000 المحتضنة L1 المرحلة الديدان على لوحة أنجم مع OP50 كولاي .
  8. احتضان الديدان في 20 درجة مئوية ح 44، أو حتى أنها تنمو إلى مرحلة اليرقة (L4)ال 4.
    ملاحظة: راجع الخطوة 1.3 لتكوين أنجم المتوسطة. وقد دودة نقطة بيضاء في الشكل هالفمون في منتصف الجانب الجسم في مرحلة L4.
  9. استخدام L4 متزامنة المرحلة الديدان في الاختبارات التالية. استخدم نوع البرية N2 الديدان في مقايسة البقاء C. ايليجانس مع دهاكينسيس Aeromonas والمقايسة سمية سائلة C. ايليجانس مع دهاكينسيس أيروموناس. استخدام الديدان RW1596 (myo-3(st386)؛ stEx30 [ميو-3p::GFP::myo-3 + rol-6(su1006)]) في مقايسة نخر العضلات C. ايليجانس مع دهاكينسيس أيروموناس.

3- C. ايليجانس "بقاء المقايسة" مع Aeromonas،من69

  1. في يوم البذر الديدان L1 في أنجم نشر مع OP50 كولاي ، اختيار مستعمرة واحدة من كل أربع سلالات أيروموناس أو OP50 كولاي والثقافة مع 2 مل مرق رطل على التوالي في 37 درجة مئوية ح 16.
    ملاحظة: لتجنب التلوث، يجب تنفيذ هذه الخطوة في غطاء الاندفاق الصفحي. وهنا استخدمت السلالات البكتيرية التالية: OP50 كولاي ، مصدر الغذاء الطبيعي ايليجانس جيم. أ-دهاكينسيس AAK1، أول التسلسل الكامل المسببة للأمراض السريرية دهاكينسيس (أ) عزل. ألف-هيدروفيلا A2-066 و بروني ألف- A2-007 و كافي أ- A2-9307121 هي بالإسم السريرية المعزولة من مستشفى جامعة الكونغ تشنغ الوطني.
  2. قياس امتصاص600 OD من مرق البكتيرية وضبط مرق البكتيرية OD600 = 2.0 مع مرق رطل.
  3. بقعة وانتشرت 30 ميليلتر من مرق البكتيرية كل لوحة NGM 6 سم. الثقافة اللوحات في درجة حرارة الغرفة بين عشية وضحاها.
    ملاحظة: راجع الخطوة 1.2 لتكوين NGM المتوسطة.
  4. اليوم تنمو الديدان L1 إلى مرحلة L4، عشوائياً اختيار ونقل الديدان 50 صفيحة NGM مع كل أربع سلالات أيروموناس أو OP50 كولاي .
  5. احتضان لوحات NGM في 20 درجة مئوية حتى يتم الانتهاء المقايسة.
  6. نقل جميع الديدان الحية لصفيحة NGM أعدت حديثا مع البكتيريا والعد الأرقام للعيش، الميتة، والديدان استشعار كل يوم حتى الدودة آخر ميت.
    ملاحظة: نقل الديدان إلى لوحة NGM إعداد جديدة كل يوم للحفاظ على الإصابة، حتى في حالة استخدام الديدان العقيمة (مثلاً، glp-4، أو مع فودر).
  7. رسم منحنيات البقاء على قيد الحياة تقوم على حساب البيانات اليومية.

4- C. ايليجانس "المقايسة سمية السائل" مع أيروموناس7

ملاحظة: لتجنب التلوث، ينبغي إجراء الخطوات في غطاء الاندفاق الصفحي.

  1. اختيار اليوم بعد البذر الديدان L1 على لوحة أنجم انتشرت مع OP50 كولاي ، مستعمرة واحدة من كل أربع سلالات Aeromonas OP50 كولاي ، والثقافة مع 5 مل مرق رطل كل في 37 درجة مئوية ح 16.
    ملاحظة: في البروتوكول، وسلالات البكتيريا التالية استخدمت: OP50 كولاي ، مصدر الغذاء الطبيعي ايليجانس جيم. أ-دهاكينسيس AAK1، أول التسلسل الكامل المسببة للأمراض السريرية دهاكينسيس (أ) عزل. ألف-هيدروفيلا A2-066 و بروني ألف- A2-007 و كافي أ- A2-9307121 هي بالإسم السريرية المعزولة من مستشفى جامعة الكونغ تشنغ الوطني.
  2. قياس امتصاص600 OD من مرق البكتيريا.
  3. الطرد المركزي مرق البكتيرية في س 3,500 ز لمدة 15 دقيقة لإزالة مرق رطل. ريسوسبيند البكتيريا وضبط مرق البكتيرية OD600 = 3.0 مع المتوسطة S. إضافة ميليلتر 195 من مرق البكتيرية في المتوسط S إلى آبار على الأقل 8 من لوحة 96-جيدا.
    ملاحظة: راجع الخطوة 1، 6 لتكوين المتوسطة S.
  4. يغسل الديدان L4 على لوحة أنجم مع البرنامج التنفيذي 5 كولاي استخدام المتوسطة M9. ضبط الحل دودة لتركيز ديدان 5 كل ميليلتر وإضافة 5 ميليلتر من دودة الحل لكل بئر من لوحة 96-جيدا. التأكد من أن هناك ما يقرب من 25 الديدان كل بئر.
  5. احتضان لوحة 96-جيدا على شاكر 200 لفة في الدقيقة عند 25 درجة مئوية.
  6. حساب العدد من الديدان الحية والديدان الميت بعد 24 و 48 و 72 حاء حساب معدلات البقاء على قيد الحياة لكل بئر بالصيغة التالية: (يعيش إلى مجموع الديدان الديدان) × 100%.
  7. رسم الرسم بياني مؤامرة مبعثر مع حساب البيانات اليومية.

5- C. ايليجانس "المقايسة نخر العضلات" مع أيروموناس6

ملاحظة: لتجنب التلوث، ينبغي تنفيذ هذه الخطوات في غطاء الاندفاق الصفحي.

  1. في اليوم هي تبذر الديدان L1 في أنجم انتشرت مع OP50 كولاي ، واختيار مستعمرة واحدة من كل أربع سلالات Aeromonas و OP50 كولاي والثقافة مع 2 مل رطل مرق كل في 37 درجة مئوية ح 16.
    ملاحظة: وهنا استخدمت سلالات البكتريا التالية: OP50 كولاي ، مصدر الغذاء الطبيعي ايليجانس جيم. أ-دهاكينسيس AAK1، أول التسلسل الكامل المسببة للأمراض السريرية دهاكينسيس (أ) عزل. هيدروفيلا أ- A2-066 و فيروني أ- A2-007 و كافياي أ- A2-9307121 هي بالإسم السريرية المعزولة من مستشفى جامعة الكونغ تشنغ الوطنية.
  2. قياس امتصاص600 OD من مرق البكتيريا وضبط مرق البكتيريا إلى OD600 = 2.0 مع مرق رطل. بقعة وانتشرت 30 ميليلتر من مرق البكتيرية في لوحات NGM 6 سم. الثقافة اللوحات في درجة حرارة الغرفة بين عشية وضحاها.
  3. في اليوم تنمو الديدان L1 إلى مرحلة L4، نقل الديدان 50 لكل لوحة NGM مع كل أربع سلالات أيروموناس أو OP50 كولاي . احتضان لوحات NGM في 20 درجة مئوية. نقل الديدان كل 24 ساعة إلى لوحات NGM أعدت حديثا مع البكتيريا.
  4. تأخذ الصور العضلات باستخدام مجهر الأسفار.
    1. عشوائياً اختيار الديدان 10 على 2% [اغروس] هلام في المتوسط M9 على شريحة. شل الديدان باستخدام 2 ميليلتر من أزيد الصوديوم 1% في المتوسط M9 على [اغروس] لمدة أقل من 5 دقائق قبل التقاط الصور.
    2. ضع غطاء زلة والتقاط الصور العضلات استخدام أخضر تصفية البروتينات الفلورية (التجارة والنقل) في مجهر فلوري مع جهاز الكاميرا. التقاط الصور العضلات في 24، 48، وح 72 وظيفة المرحلة L4.
  5. القيام بإعداد تحليل والشكل الصورة مع برامج معالجة صور.
    ملاحظة: تعاريف الدرجات ومستويات الضرر العضلات وترد في الشكل 3، التي يتم سرد المعايير على النحو التالي: 3 نقاط لألياف العضلات المفقودين؛ 2 نقطة لألياف العضلات تمزق أو كسر؛ 1 نقطة لألياف العضلات بنت؛ 0 نقطة لألياف العضلات صحية.

6. التحليلات الإحصائية

  1. إجراء جميع التجارب على الأقل ثلاث مرات بشكل مستقل.
  2. استخدام الأسلوب كابلان-ماير لتقييم فحوصات بقاء C. ايليجانس ، واستخدم اختبار رتبة سجل في تحليل الاختلافات البقاء على قيد الحياة. تعيين دلالة إحصائية 0.05.
  3. استخدم اختبار t للطالب لتحليل النتائج الإحصائية لفحوصات سمية سائلة C. ايليجانس لمجموعتين مختلفتين. استخدام اختبار ANOVA أحادي الاتجاه في تحليل الاختلافات بين ثلاثة أو أكثر من القيم لمتغير مستقل واحد. تعيين دلالة إحصائية 0.05.

النتائج

عن طريق اتباع البروتوكولات المذكورة أعلاه، فمن السهل للتفريق بين السمية من أربع سلالات أيروموناس . ويرد في الشكل 1مقايسة البقاء على قيد الحياة من C. ايليجانس . كانت معدلات البقاء على قيد الحياة من C. ايليجانس المصابين بالأنواع Aeromonas ، سيظ...

Discussion

C. ايليجانس ديدان أسطوانية باكتيريفوروس بطبيعة الحال أن مأخذ البكتيريا كغذاء، وقد وضعت حصانة فطرية تعقيداً للبكتريا أثناء عملية تطورية. اثنين من الأجهزة الرئيسية للحفاظ على ودعم الحصانة هي9،البشرة والأمعاء13. البشرة وعصابات من العضلات C. ايليجانس ...

Disclosures

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

Acknowledgements

ونحن ممتنون للمساعدة من مرفق الأساسية C. ايليجانس في تايوان والميكروبيولوجيا التشخيصية ويعزل "مضادات الميكروبات المقاومة المختبر من الوطني تشنغ الكونغ المستشفى الجامعي" لتقديم أيروموناس . ونعترف أيضا مركز علم الوراثة كاينورهابديتيس (كجك)، وفي وورمباسي. ونشكر أيضا مور سفانا لتحرير المخطوطة.

وأيد هذه الدراسة جزئيا المنح المقدمة من وزارة العلوم والتكنولوجيا من تايوان (آخر 105-2628-B-006-017-MY3) والمستشفى الوطني لجامعة الكونغ تشنغ (نكوه-10705001) بفضل تشن.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Shaker incubatorYIH DERLM-570RBacteria incubation
K2HPO4J.T.BakerMP021519455Culture medium preparation 
KH2PO4J.T.Baker3246-05Culture medium preparation 
Na2HPO4J.T.BakerMP021914405Culture medium preparation 
NaClSIGMA31434Culture medium preparation 
MgSO4SIGMAM7506Culture medium preparation 
agarDifco214530Culture medium preparation 
CaCl2SIGMAC1016Culture medium preparation 
cholesterolSIGMAC8503Culture medium preparation 
ethanolSIGMA32205Culture medium preparation 
KOHSIGMAP5958Culture medium preparation 
6 cm Petri plateALPHA PLUS46agar plate preparation
96-well plateFALCON353072liquid assay
bacterial peptoneAffymetrix/USBAAJ20048P2Culture medium preparation 
yeast extractSIGMA92144Culture medium preparation 
citric acid•H2OSIGMAC1909Culture medium preparation 
tri-potassium citrate•H2OSIGMA104956Culture medium preparation 
FudR SIGMA1271008Culture medium preparation 
disodium EDTASIGMAE1644Culture medium preparation 
FeSO4•7 H2OSIGMA215422Culture medium preparation 
MnCl2•4 H2OSIGMA221279Culture medium preparation 
ZnSO4•7 H2OSIGMA204986Culture medium preparation 
CuSO4•5 H2OSIGMAC8027Culture medium preparation 
tryptoneSIGMA16922Culture medium preparation 
Microscope systemNikon Eclipase Ti inverted microscope imaging
Scientific CCD CameraQImaging Retiga-2000R Fast 1394 microscope imaging

References

  1. Parker, J. L., Shaw, J. G. Aeromonas spp. clinical microbiology and disease. Journal of Infection. 62 (2), 109-118 (2011).
  2. Chao, C. M., Lai, C. C., Tang, H. J., Ko, W. C., Hsueh, P. R. Skin and soft-tissue infections caused by Aeromonas species. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 32 (4), 543-547 (2013).
  3. Chao, C. M., Lai, C. C., Tang, H. J., Ko, W. C., Hsueh, P. R. Biliary tract infections caused by Aeromonas species. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 32 (2), 245-251 (2013).
  4. Chuang, H. C., et al. Different clinical characteristics among Aeromonas hydrophila, Aeromonas veronii biovar sobria and Aeromonas caviae monomicrobial bacteremia. Journal of Korean Medical Science. 26 (11), 1415-1420 (2011).
  5. Chao, C. M., Lai, C. C., Gau, S. J., Hsueh, P. R. Skin and soft tissue infection caused by Aeromonas species in cancer patients. Journal of Microbiology, Immunology and Infection. 46 (2), 144-146 (2013).
  6. Chen, P. L., et al. A Disease Model of Muscle necrosis caused by Aeromonas dhakensis infection in Caenorhabditis elegans. Frontiers in Microbiology. 7, 2058 (2016).
  7. Chen, P. L., et al. Virulence diversity among bacteremic Aeromonas isolates: ex vivo, animal, and clinical evidences. PLoS One. 9 (11), 111213 (2014).
  8. Saraceni, P. R., Romero, A., Figueras, A., Novoa, B. Establishment of infection models in zebrafish larvae (Danio rerio) to study the pathogenesis of Aeromonas hydrophila. Frontiers in Microbiology. 7, 1219 (2016).
  9. Chen, Y. W., Ko, W. C., Chen, C. S., Chen, P. L. RIOK-1 Is a Suppressor of the p38 MAPK Innate Immune Pathway in Caenorhabditis elegans. Frontiers in Immunology. 9, 774 (2018).
  10. Powell, J. R., Ausubel, F. M. Models of Caenorhabditis elegans infection by bacterial and fungal pathogens. Methods in Molecular Biology. 415, 403-427 (2008).
  11. Chou, T. C., et al. Enterohaemorrhagic Escherichia coli O157:H7 Shiga-like toxin 1 is required for full pathogenicity and activation of the p38 mitogen-activated protein kinase pathway in Caenorhabditis elegans. Cellular Microbiology. 15 (1), 82-97 (2013).
  12. Stiernagle, T. Maintenance of C. elegans. WormBook. , 1-11 (2006).
  13. Engelmann, I., Pujol, N. Innate immunity in C. elegans. Advances in Experimental Medicine and Biology. 708, 105-121 (2010).
  14. Feinbaum, R. L., et al. Genome-wide identification of Pseudomonas aeruginosa virulence-related genes using a Caenorhabditis elegans infection model. PLoS Pathogens. 8 (7), 1002813 (2012).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

142 Aeromonas Aeromonas Aeromonas Aeromonas

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved