Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

زاد استخدام الخنازير في البحث في السنوات الأخيرة. ومع ذلك ، تتميز الخنازير بتشريح مجرى الهواء الصعب. من خلال توضيح كيفية إجراء التنبيب الرغامي الموجه بالمنظار ، يهدف البروتوكول الحالي إلى زيادة سلامة المختبر لتجنب معاناة الحيوانات والموت غير الضروري.

Abstract

غالبا ما يكون التنبيب الرغامي مطلبا أساسيا للبحث الانتقالي في نماذج الخنازير للتدخلات المختلفة التي تتطلب مجرى هواء آمنا أو ضغوط تهوية عالية. التنبيب الرغامي هو مهارة صعبة ، تتطلب الحد الأدنى من عدد عمليات التنبيب الرغامي الناجحة لتحقيق معدل نجاح مرتفع في ظل الظروف المثلى ، والتي غالبا ما تكون غير قابلة للتحقيق بالنسبة للباحثين غير الخدير. بسبب تشريح مجرى الهواء الخنازير المحدد ، يمكن عادة افتراض مجرى الهواء الصعب. يمكن أن تؤدي استحالة إنشاء مجرى هوائي آمن إلى إصابة أو أحداث سلبية أو موت المختبر. باستخدام نهج تقييم مستقبلي وعشوائي ومضبوط ، فقد ثبت أن التنبيب الرغامي بمساعدة الألياف البصرية يستغرق وقتا أطول ولكن لديه معدل نجاح أعلى من التنبيب التقليدي دون التسبب في انخفاضات ذات صلة سريريا في تشبع الأكسجين. يقدم هذا النموذج نظاما موحدا للتنبيب الرغامي الموجه بالمنظار ، مما يوفر مجرى هواء آمنا ، خاصة للباحثين الذين يفتقرون إلى الخبرة في تقنية التنبيب الرغامي عن طريق تنظير الحنجرة المباشر. من المتوقع أن يقلل هذا الإجراء من معاناة الحيوانات والخسائر غير الضرورية للحيوانات.

Introduction

غالبا ما يكون التنبيب الرغامي مطلبا أساسيا للبحث الانتقالي في نماذج الخنازير للتدخلات المختلفة التي تتطلب مجرى هواء آمنا أو ضغوط تهوية عالية (مثل التهوية أثناء الإنعاش القلبي الرئوي1 أو متلازمة الضائقة التنفسية الحادة2) أو تتطلب عدم المساس بتدفق الدم الدماغي من خلال الضغط الداخلي بواسطة أجهزة مجرى الهواء فوق المزمار3 ، والتي يتم نشرها أحيانا كبدائل في سياق مجرى الهواء الصعب المتوقع في الخنازير 4,5.

في حين أن فسيولوجيا الرئة للخنازير تظهر ميزات مماثلة لتلك الموجودة في البشر6 ، فإن تأمين مجرى الهواء يكون أحيانا أكثر صعوبةبشكل ملحوظ 7 بسبب الاختلافات المحددة في تشريح القصبة الهوائية الفموي الخنازير. خطم الخنزير له فتحة ضيقة بلسان كبير جدا ، والحنجرة متحركة للغاية ، ولسان المزمار كبير نسبيا ، مع نهاية حرة تمتد إلى الحنك الرخو. من الناحية الذيلية ، تشكل الحنجرة زاوية منفرجة مع القصبة الهوائية. الغضاريف الأريتينية كبيرة8. أضيق جزء من مجرى الهواء هو في المستوىتحت المزمار 9 ، مقارنة بتشريح مجرى الهواء للأطفال10. نظرا لأن الحنجرة في الخنازير متحركة للغاية ، فهناك خطر من أن تمر نهاية الأنبوب الرغامي عبر الحبال الصوتية ولكن لن يتم إزاحة الحنجرة إلا ذيليا بما يصل إلى عدة سنتيمترات ، والتي قد تكون مخطئة في التنبيب الصحيح 8,11. بالإضافة إلى ذلك ، يعد التنبيب المريئي خطرا شائعا عند التعامل مع إدارة مجرى الهواء الخنازير12.

لم يتم تسجيل معدلات التنبيب الرغامي الصعب أو المستحيل مع تأثير سلبي مماثل على التجربة أو الوفيات المبكرة بشكل منهجي ، ولكن تم نشر العديد من تقارير الحالات13،14. في البشر ، هناك إمكانية لاستخدام منظار التنبيب المرن في سياق التنبيب التقليدي الصعب بشكل غير متوقع15. غالبا ما تسبق عمليات التنبيب الكاذبة المختلفة هذا الإجراء. ترتبط محاولات التنبيب المتكررة هذه بالأحداث الضائرة في البشر 16,17 ، وخاصة مضاعفات مجرى الهواء18. مثل هذه الأحداث ضارة في الاختبار لأنها ، في أبسط الحالات ، تمثل متغيرا مربكا في التجربة ؛ في أسوأ الحالات ، يمكن أن تؤدي إلى خسارة غير ضرورية للحيوان.

طورت الدراسة الحالية نموذجا يعتمد على المبادئ التوجيهية لإدارة مجرى الهواء الصعب المتوقع في البشر15،19،20،21،22،23،24. في السابق ، تم وصف تقنية مماثلة لتعلم التنبيب بالألياف الضوئية في الدراسات البشرية25,26. يهدف البروتوكول المقدم في هذا التقرير إلى توفير نموذج تنبيب موحد وسهل التكيف يسمح أيضا للمتخصصين غير مجرى الهواء بإجراء تنبيب رغامي ناجح وآمن في الخنازير.

Protocol

تمت الموافقة على التجارب في هذا البروتوكول من قبل لجنة رعاية الحيوان الحكومية والمؤسسية (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz ، كوبلنز ، ألمانيا ؛ رقم الموافقة G20-1-135). أجريت التجارب وفقا لإرشادات ARRIVE. بشكل عام ، تم استخدام 10 خنازير ذكور مخدرة (Sus scrofa domestica) بمتوسط وزن 30 كجم ± 2 كجم وعمر 12-16 أسبوعا في الدراسة الحالية.

1. إعداد الحيوان

  1. الحفاظ على بيئة طبيعية للحيوانات لتقليل التوتر. حجب الطعام قبل 6 ساعات من التجربة المجدولة لتقليل خطر الطموح ، ولكن السماح بالوصول إلى الماء.
  2. قم بتخدير الخنازير بحقن مشترك من الميدازولام (0.5 مجم / كجم) والأزابيرون (2-3 مجم / كجم) (انظر جدول المواد) في عضلة الألوية أو الرقبة بإبرة (20 جم) للحقن العضلي. اترك الحيوانات دون إزعاج حتى يبدأ التخدير (15-20 دقيقة).
    ملاحظة: اعتمادا على اللوائح الوطنية ، قد تخضع إدارة عوامل التخدير للتدقيق وقد تتطلب أو لا تتطلب إشراف طبيب بيطري مدرب. التشاور مع السلطات المحلية قبل التخطيط للتجارب.
  3. نقل الحيوانات المخدرة من الاسطبلات إلى المختبر. يجب ألا يتجاوز وقت النقل وقت التخدير الكافي (هنا ، 30-60 دقيقة). تأكد من الاحتفاظ بالحرارة الكافية حتى لا يصاب الحيوان بانخفاض حرارة الجسم (أي أقل من 38 درجة مئوية) ، مثل تغطية الجسم ببطانية حسب درجة الحرارة الخارجية.
  4. باستخدام مستشعر (انظر جدول المواد) مثبت على الأذن أو الذيل ، راقب تشبع الأكسجين المحيطي (SpO2).
  5. تطهير الجلد بمطهر (كحولي) قبل إدخال قنية الوريد المحيطي (22 جم) في وريد الأذن. رش المنطقة ، امسحها مرة واحدة ، ثم رشها مرة أخرى ، واترك المطهر حتى يجف. قم بتأمين قنية الأذن باستخدام ضمادة (انظر جدول المواد).

2. التخدير والتهوية الميكانيكية

  1. تطبيق التسكين من خلال الحقن الوريدي بكمية 4 ميكروغرام/كغ من الفنتانيل. تحفيز التخدير بالحقن الوريدي بمقدار 3 ملغ/كغ من البروبوفول (انظر جدول المواد).
    ملاحظة: بسبب تطبيق البلعة ، يتدفق الدواء بسرعة إلى المقصورة النشطة ، مما يوفر بداية سريعة للتخدير العميق.
  2. ضع الخنزير على نقالة في وضع ضعيف وقم بإصلاحه بالضمادات. ضع مرخيات العضلات من خلال الحقن الوريدي بمقدار 0.5 مجم / كجم من الأتراكوريوم (انظر جدول المواد).
  3. ابدأ التهوية غير الغازية على الفور عبر قناع تهوية الكلاب (انظر جدول المواد) أو نماذج مماثلة. لضمان ملاءمة القناع بإحكام ، ضع بروز ثينار وإبهام كلتا اليدين أعلى القناع أثناء إجراء دفع الفك بالأصابع المتبقية.
    ملاحظة: معلمات التهوية: FiO 2 (جزء الأكسجين الشهيقي) = 100٪ ، ذروة ضغط الشهيق = <20 سم H 2 0 ، معدلالتنفس = 18-20 نفسا / دقيقة ، PEEP (ضغط الزفير النهائي الإيجابي) = 5 سم H2 0.
  4. الحفاظ على التخدير من خلال التسريب المستمر من 0.1-0.2 ملغ / كغ / ساعة من الفنتانيل و 8-12 ملغ / كغ / ساعة من البروبوفول. ابدأ بالغرس ب 5 مل / كجم / ساعة من محلول الإلكتروليت المتوازن (انظر جدول المواد) بشكل مستمر. الحفاظ باستمرار على عمق كاف من التخدير.
    ملاحظة: المعلمات البديلة لهذا هي عدم وجود حركة ، وعدم وجود جهود تنفسية خاصة بعد التنبيب ، وعدم وجود زيادة مفاجئة في معدل ضربات القلب. إذا أمكن ، تجنب استرخاء العضلات الدائم لتمكين التفاعلات الحركية كعلامة على عدم كفاية عمق التخدير.

3. التنبيب الرغامي

  1. اطلب من مساعد الوقوف على الجانب الأيسر من الرأس. اجعل اليد اليسرى للمساعد تفتح فمها وتقرص اللسان للخارج واليسار بضغط. اطلب من المساعد الضغط لأسفل على الشفة العليا اليمنى بإصبع السبابة الأيمن لتوفير فتحة فم أفضل.
  2. إجراء تنظير الحنجرة المباشر. للقيام بذلك ، أدخل منظار الحنجرة (انظر جدول المواد) في الجانب الأيمن من الفم وادفعه للأمام أثناء دفع اللسان إلى اليسار. تقدم طرف منظار الحنجرة حتى يستقر في فاليكولا epiglottic.
    ملاحظة: عادة ما يحجب لسان المزمار عن طريق الالتصاق بالحنك الرخو.
  3. ادفع لسان المزمار جانبا بحذر باستخدام سلك توجيه أنبوبي (انظر جدول المواد) بحركة مغرفة لطيفة من تجويف الكمثري الأيمن إلى اليسار على طول الحنك الرخو.
  4. مرر مقبض منظار الحنجرة إلى المساعد لإصلاحه في الموضع الحالي.
  5. الآن ، خذ منظار التنبيب المرن الذي تم بالفعل تركيب أنبوب القصبة الهوائية عليه والمتصل بشاشة فيديو. أدخل المنظار عن طريق الفم وقم بدفعه فوق قاعدة اللسان حتى يتم تصور المزمار.
    ملاحظة: لتجنب تعفير الكاميرا، يوصى بالتطبيق المسبق للعوامل المضادة للضباب (انظر جدول المواد).
  6. دفع المنظار بين الأربطة الصوتية إلى القصبة الهوائية. تأكيد تشريح القصبة الهوائية عن طريق تحديد بصريا الحلقات الغضروفية و pars membranacea. تقدم المنظار حتى يستقر فوق كارينا. حاول ألا تلمس الغشاء المخاطي الحساس بطرف المنظار لتجنب التورم والنزيف.
  7. مع الحفاظ على موضع المنظار ، قم بدفع الأنبوب الرغامي حتى يصبح مرئيا في صورة الكاميرا.
    ملاحظة: إذا تعذر تقدم الأنبوب الرغامي عبر المستوى المزمار ، فهناك احتمال أن يكون قد على الغضروف الأرتينيدي. في هذه الحالة ، يجب سحب الأنبوب الرغامي 1 سم وتدويره بمقدار 90 درجة قبل التقدم برفق مرة أخرى. إذا لزم الأمر ، يمكن تكرار هذه المناورة. يمكن أن تقلل الكوادر المماثلة لمنظار التنبيب المرن والأنبوب الرغامي من خطر حدوث هذه المشكلة. إذا تعذر تطوير الأنبوب الرغامي على الرغم من هذه المناورة ، فمن المحتمل أنه لا يمكن تمرير الضيق تحت المزمار - أضيق جزء من الحنجرة الخنازير. في هذه الحالة ، يجب اختيار حجم أنبوب القصبة الهوائية الأصغر. يجب أن تكون أنابيب القصبة الهوائية العادية المتاحة تجاريا بأحجام 6.5 سم أو 7.0 سم قادرة على تمرير المزمار طالما لا توجد تشوهات تشريحية. تختلف متطلبات حجم الأنبوب الرغامي حسب حجم الخنزير الصغير والسلالة.
  8. اسحب منظار التنبيب المرن مع الحفاظ على موضع الأنبوب الرغامي.
  9. باستخدام حقنة 10 مل ، قم بتضخيم الكفة ب 10 مل من الهواء. تحكم في ضغط الكفة باستخدام مدير الكفة (القيمة المستهدفة: 30 cmH2O ، انظر جدول المواد).
  10. تأكد من الموضع الصحيح للأنبوب الرغامي والتهوية الكافية عن طريق الزفير الدوري والمنتظم لثاني أكسيد الكربون عن طريق capnography24 والتهوية على الوجهين عن طريق التسمع15.
  11. ابدأ التهوية الميكانيكية بعد توصيل الأنبوب بجهاز التنفس الصناعي (PEEP = 5 سم H 2 O ، معدل التنفس = متغير لتحقيق ثاني أكسيد الكربون في نهاية المد والجزر2 من <6 كيلو باسكال ، عادة 30-50 دقيقة −1 ، FiO 2 = 0.4 ، I: E (نسبة الإلهام إلى انتهاء الصلاحية) = 1:2، حجم المد والجزر = 6-8 مل / كجم).
  12. توسيع المراقبة (على سبيل المثال ، إنشاء قياس ضغط الدم داخل الشرايين ، وتركيب قسطرة شريانية وريدية مركزية أو رئوية27) أو الاستمرار في التدخل.
    ملاحظة: اعتمادا على مسألة التجارب الإضافية ، حدد القيم الحدية للمعلمات الحيوية وخيارات التدخل وحدد المراقبة وفقا لذلك في بروتوكول الدراسة.

النتائج

تم إجراء التنبيب الرغامي على 10 ذكور من الخنازير (تتراوح أعمارهم بين 12-16 أسبوعا ، والوزن 30 كجم ± 3 كجم) في بيئة دراسة مستقبلية وعشوائية ومضبوطة. تم تقسيم الخنازير بشكل عشوائي إلى مجموعتين: إحداهما كانت تنبيبا تقليديا بالمنظار (مجموعة CI) ، وتم تنبيب المجموعة الأخرى بمساعدة منظار التنبيب ا...

Discussion

في الدراسات السابقة ، وصفت مجموعتنا البحثية بالفعل تفاصيل محددة تتعلق بالفوائد الانتقالية لنموذج الخنازير2،27،32،33. بشكل عام ، يجب أن يكون تقليل مستوى الإجهاد للحيوان والألم غير الضروري جزءا لا يتجزأ من أي بروتوكول درا?...

Disclosures

تم توفير منظار التنبيب المرن وملحقاته دون قيد أو شرط من قبل الشركة المصنعة لأغراض البحث فقط. ولا يعلن أصحاب البلاغ عن أي تضارب آخر في المصالح المالية أو غيرها.

Acknowledgements

يود المؤلفون أن يشكروا داغمار ديرفونسكيس على دعمها الفني الممتاز.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Ambu aScope RegularAmbu GmbH, Medizinprodukte, Bad Nauheim, GermanyDisposable fiber optic outer diameter 5 mm
Ambu aView MonitorAmbu GmbH, Medizinprodukte, Bad Nauheim, Germanymonitor
Atracurium Hikma 50 mg/5mLHikma Pharma GmbH, Martinsriedatracurium
Azaperone (Stresnil) 40mg/mLLilly Deutschland GmbH, Bad Homburg, Germanyazaperone
BD Discardit II Spritze 2, 5, 10, 20 mLBecton Dickinson S.A. Carretera, Mequinenza Fraga, Spainsyringe
BD Luer ConnectaBecton Dickinson Infusion Therapy, AB Helsingborg, Schweden3-way-stopcock
BD Microlance 3 20 GBecton Dickinson S.A. Carretera, Mequinenza Fraga, Spaincannula
Curafix i.v. classicsLohmann & Rauscher International GmbH & Co. KG, Rengsdorf, GermanyCannula retention dressing
Engström CarestationGE Heathcare, Madison USAventilator
Fentanyl-Janssen 0.05 mg/mLJanssen-Cilag GmbH, Neussfentanyl
Führungsstab, Durchmesser 4.3Rüschendotracheal tube introducer
IBM SPSS Statistics for Windows, Version 20IBM SPSS Statistics for Windows, Version 20.0. Armonk, NY: IBM Corp.)Statistical software
Incetomat-line 150 cmFresenius, Kabi Deutschland, GmbHperfusor line
Intrafix PrimelineB. Braun Melsungen AG, Melsungen, GermanyInfusion line
JOZA Einmal Nitril UntersuchungshandschuheJOZA, München, Germanydisposable gloves
Laryngoscope, 45.48.50, KL 2000MediconLaryngoscope handle
Littmann Classic III Stethoscope3M Deutschland GmbH, Neuss, Germanystethoscope
Luer LockB.Braun Melsungen AG, Germany
Maimed VlieskompresseMaimed GmbH, Neuenkirchen, GermanyFleece compress to fix the tongue
Masimo LNCS Adtx SpO2 sensorMasimo Corporation Irvine, Ca 92618 USAsaturation clip for the tail
Masimo LNCS TC-I SpO2 ear clip sensorMasimo Corporation Irvine, Ca 92618 USASaturation clip for the ear
Masimo Radical 7Masimo Corporation Irvine, Ca 92618 USAperiphereal oxygen saturation
Midazolam 15 mg/3 mLHameln Pharma GmbH, Hameln, Germanymidazolam
Midmark Canine Mask Small Plastic with Diaphragm FRSCM-0005Midmark Corp., Dayton, Ohio, USAdog ventilation mask
Octeniderm farblosSchülke & Mayr GmbH, Nordenstedt, GermanyAlcoholic disinfectant
Original Perfusor syringe 50 mLB.Braun Melsungen AG, Germanyperfusor syringe
Perfusor FM BraunB.Braun Melsungen AG, Germanysyringe pump
Propofol 2% 20 mg/mL (50 mL flasks)Fresenius, Kabi Deutschland, GmbHpropofol
RÜSCH Führungsstab für Endotrachealtubus (ID 5.6 mm)Teleflex Medical Sdn. Bhd, MalaysiaPVC coated tube guiding wire
Rüschelit Super Safety Clear >ID 6/6.5 /7.0 mmTeleflex Medical Sdn. Bhd, Malaysiaendotracheal tube
Stainless Macintosh Größe 4Welch Allyn69604blade for laryngoscope
SterofundinB.Braun Melsungen AG, Melsungen, GermanyBalanced electrolyte solution
Ultrastop Antibeschlagmittel bottle with dropper 25 mLSigmapharm Arzneimittel GmbH, Wien, AustriaAntifog agent
Vasofix Safety 22 G-16 GB.Braun Melsungen AG, Germanyvenous catheter
VBM Cuff ManometerVBM Medizintechnik GmbH, Sulz a.N., Germanycuff pressure gauge
ZeletteLohmann & Rauscher International GmbH & Co. KG, Rengsdorf, GermanyTissue swab

References

  1. Kleinman, M. E., Oh, W., Stonestreet, B. S. Comparison of intravenous and endotracheal epinephrine during cardiopulmonary resuscitation in newborn piglets. Critical Care Medicine. 27 (12), 2748-2754 (1999).
  2. Rissel, R., et al. Bronchoalveolar lavage and oleic acid-injection in pigs as a double-hit model for acute respiratory distress syndrome (ARDS). Journal of Visualized Experiments. (159), e61358 (2020).
  3. Segal, N., et al. Impairment of carotid artery blood flow by supraglottic airway use in a swine model of cardiac arrest. Resuscitation. 83 (8), 1025-1030 (2012).
  4. Goldmann, K., Kalinowski, M., Kraft, S. Airway management under general anaesthesia in pigs using the LMA-ProSeal: A pilot study. Veterinary Anaesthesia and Analgesia. 32 (5), 308-313 (2005).
  5. Wemyss-Holden, S. A., Porter, K. J., Baxter, P., Rudkin, G. E., Maddern, G. J. The laryngeal mask airway in experimental pig anaesthesia. Lab Animal. 33 (1), 30-34 (1999).
  6. Kobayashi, E., Hishikawa, S., Teratani, T., Lefor, A. T. The pig as a model for translational research: overview of porcine animal models at Jichi Medical University. Transplantation Research. 1 (1), 8 (2012).
  7. Judge, E. P., et al. Anatomy and bronchoscopy of the porcine lung. A model for translational respiratory medicine. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 51 (3), 334-343 (2014).
  8. Dondelinger, R. F., et al. Relevant radiological anatomy of the pig as a training model in interventional radiology. European Radiology. 8 (7), 1254-1273 (1998).
  9. Nickel, R., Schummer, A., Seiferle, E. . Lehrbuch der Anatomie der Haustiere, Band I: Bewegungsapparat. , (2003).
  10. Wani, T. M., Rafiq, M., Akhter, N., AlGhamdi, F. S., Tobias, J. D. Upper airway in infants-A computed tomography-based analysis. Paediatric Anaesthesia. 27 (5), 501-505 (2017).
  11. Chum, H., Pacharinsak, C. Endotracheal intubation in swine. Lab Animal. 41 (11), 309-311 (2012).
  12. Ettrup, K. S., et al. Basic surgical techniques in the Göttingen minipig: Intubation, bladder catheterization, femoral vessel catheterization, and transcardial perfusion. Journal of Visualized Experiments. (52), e2652 (2011).
  13. Steinbacher, R., von Ritgen, S., Moens, Y. P. S. Laryngeal perforation during a standard intubation procedure in a pig. Laboratory Animals. 46 (3), 261-263 (2012).
  14. Iliff-Sizemore, S. A., Chrisp, C. E., Rush, H. G. Peritracheolaryngeal abscess: An iatrogenic complication of endotracheal intubation in swine. Laboratory Animal Science. 39 (5), 455-458 (1989).
  15. Piepho, T., et al. S1 guidelines on airway management. Der Anaesthesist. 64 (11), 859-873 (2015).
  16. Mort, T. C. Emergency tracheal intubation: Complications associated with repeated laryngoscopic attempts. Anesthesia & Analgesia. 99 (2), 607-613 (2004).
  17. Hasegawa, K., et al. Association between repeated intubation attempts and adverse events in emergency departments: An analysis of a multicenter prospective observational study. Annals of Emergency Medicine. 60 (6), 749-754 (2012).
  18. Martin, L. D., Mhyre, J. M., Shanks, A. M., Tremper, K. K., Kheterpal, S. 3,423 emergency tracheal intubations at a university hospital: airway outcomes and complications. Anesthesiology. 114 (1), 42-48 (2011).
  19. Ahmad, I., et al. Difficult Airway Society guidelines for awake tracheal intubation (ATI) in adults. Anaesthesia. 75 (4), 509-528 (2020).
  20. Frerk, C., et al. Difficult Airway Society 2015 guidelines for management of unanticipated difficult intubation in adults. British Journal of Anaesthesia. 115 (6), 827-848 (2015).
  21. Cook, T. M., et al. Consensus guidelines for managing the airway in patients with COVID-19: Guidelines from the Difficult Airway Society, the Association of Anaesthetists the Intensive Care Society, the Faculty of Intensive Care Medicine and the Royal College of Anaesthetists. Anaesthesia. 75 (6), 785-799 (2020).
  22. Kornas, R. L., Owyang, C. G., Sakles, J. C., Foley, L. J., Mosier, J. M. Evaluation and management of the physiologically difficult airway: Consensus recommendations from Society for Airway Management. Anesthesia & Analgesia. 132 (2), 395-405 (2021).
  23. Higgs, A., et al. Guidelines for the management of tracheal intubation in critically ill adults. British Journal of Anaesthesia. 120 (2), 323-352 (2018).
  24. Apfelbaum, J. L., et al. American Society of Anesthesiologists Practice Guidelines for Management of the Difficult Airway. Anesthesiology. 136 (1), 31-81 (2022).
  25. Doyle, D. J. GlideScope-assisted fiberoptic intubation: A new airway teaching method. Anesthesiology. 101 (5), 1252 (2004).
  26. Lenhardt, R., et al. Is video laryngoscope-assisted flexible tracheoscope intubation feasible for patients with predicted difficult airway? A prospective, randomized clinical trial. Anesthesia & Analgesia. 118 (6), 1259-1265 (2014).
  27. Ruemmler, R., Ziebart, A., Garcia-Bardon, A., Kamuf, J., Hartmann, E. K. Standardized model of ventricular fibrillation and advanced cardiac life support in swine. Journal of Visualized Experiments. (155), e60707 (2020).
  28. Dodge, Y. Kolmogorov-Smirnov Test. The Concise Encyclopedia of Statistics. , 283-287 (2008).
  29. Ross, A., Willson, V. L. Independent Samples T-test. Basic and Advanced Statistical Tests: Writing Results Sections and Creating Tables and Figures. , 13-16 (2017).
  30. Mann, H. B., Whitney, D. R. On a test of whether one of two random variables is stochastically larger than the other. The Annals of Mathematical Statistics. 18 (1), 50-60 (1947).
  31. Spearman, C. The proof and measurement of association between two things. American Journal of Psychology. 100 (3-4), 441-471 (1987).
  32. Ziebart, A., et al. Standardized hemorrhagic shock induction guided by cerebral oximetry and extended hemodynamic monitoring in pigs. Journal of Visualized Experiments. (147), e59332 (2019).
  33. Kamuf, J., et al. Oleic acid-injection in pigs as a model for acute respiratory distress syndrome. Journal of Visualized Experiments. (140), e57783 (2018).
  34. Kurita, T., Kawashima, S., Morita, K., Nakajima, Y. Assessment of the benefits of head-up preoxygenation using near-infrared spectroscopy with pulse oximetry in a swine model. Journal of Clinical Monitoring and Computing. 35 (1), 155-163 (2021).
  35. Ruemmler, R., Ziebart, A., Ott, T., Dirvonskis, D., Hartmann, E. K. Flexible fibreoptic intubation in swine - Improvement for resident training and animal safety alike. BMC Anesthesiology. 20 (1), 206 (2020).
  36. Cook, J. A., Ramsay, C. R., Fayers, P. Using the literature to quantify the learning curve: A case study. International Journal of Technology Assessment in Health Care. 23 (2), 255-260 (2007).
  37. Buis, M. L., Maissan, I. M., Hoeks, S. E., Klimek, M., Stolker, R. J. Defining the learning curve for endotracheal intubation using direct laryngoscopy: A systematic review. Resuscitation. 99, 63-71 (2016).
  38. Knapp, S., et al. The assessment of four different methods to verify tracheal tube placement in the critical care setting. Anesthesia & Analgesia. 88 (4), 766-770 (1999).
  39. Schmidt, R. F. . Physiologie des Menschen. 31, (2010).
  40. Eberlein, C. M., Luther, I. S., Carpenter, T. A., Ramirez, L. D. First-pass success intubations using video laryngoscopy versus direct laryngoscopy: A retrospective prehospital ambulance service study. Air Medical Journal. 38 (5), 356-358 (2019).
  41. Lohse, J., Noppens, R. Awake video laryngoscopy - An alternative to awake fiberoptic intubation. Anasthesiologie, Intensivmedizin, Notfallmedizin, Schmerztherapie. 51 (11-12), 656-663 (2016).
  42. Johnson, C., Roberts, J. T. Clinical competence in the performance of fiberoptic laryngoscopy and endotracheal intubation: A study of resident instruction. Journal of Clinical Anesthesia. 1 (5), 344-349 (1989).
  43. Geovanini, G. R., Pinna, F. R., Prado, F. A., Tamaki, W. T., Marques, E. Standardization of anesthesia in swine for experimental cardiovascular surgeries. Revista Brasileira de Anestesiologia. 58 (4), 363-370 (2008).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

186

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved