Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

השימוש בחזירים במחקר גדל בשנים האחרונות. עם זאת, חזירים מאופיינים באנטומיה קשה של דרכי הנשימה. על ידי הדגמה כיצד לבצע אינטובציה אנדוטרכאלית מונחית אנדוסקופית, הפרוטוקול הנוכחי נועד להגביר עוד יותר את הבטיחות של חיות מעבדה כדי למנוע סבל של בעלי חיים ומוות מיותר.

Abstract

אינטובציה אנדוטרכאלית היא לעתים קרובות דרישה בסיסית למחקר תרגומי במודלים חזיריים עבור התערבויות שונות הדורשות נתיב אוויר מאובטח או לחצי אוורור גבוהים. אינטובציה אנדוטרכאלית היא מיומנות מאתגרת, הדורשת מספר מינימלי של אינטובציות אנדוטרכאליות מוצלחות כדי להשיג שיעור הצלחה גבוה בתנאים אופטימליים, אשר לעתים קרובות בלתי ניתן להשגה עבור חוקרים שאינם מרדימים. בשל האנטומיה הספציפית של דרכי הנשימה החזיריות, בדרך כלל ניתן להניח נתיב אוויר קשה. חוסר האפשרות ליצור נתיב אוויר בטוח עלול לגרום לפציעה, תופעות לוואי או מוות של חיית המעבדה. באמצעות גישת הערכה פרוספקטיבית, אקראית ומבוקרת, הוכח כי אינטובציה אנדוטרכאלית בסיוע סיבים אופטיים אורכת זמן רב יותר, אך יש לה שיעור הצלחה גבוה יותר במעבר ראשון מאשר אינטובציה קונבנציונלית מבלי לגרום לירידות רלוונטיות קלינית בריווי חמצן. מודל זה מציג משטר סטנדרטי לאינטובציה אנדוטרכאלית מונחית אנדוסקופית, המספקת נתיב אוויר מאובטח, במיוחד עבור חוקרים שאינם מנוסים בטכניקה של אינטובציה אנדוטרכאלית באמצעות לרינגוסקופיה ישירה. הליך זה צפוי למזער את סבלם של בעלי חיים ואובדן מיותר של בעלי חיים.

Introduction

אינטובציה אנדוטרכאלית היא לעתים קרובות דרישה בסיסית למחקר תרגומי במודלים חזיריים עבור התערבויות שונות הדורשות נתיב אוויר מאובטח או לחצי אוורור גבוהים (כגון אוורור במהלך החייאה לב-ריאה1 או תסמונת מצוקה נשימתית חריפה2) או דורשות שזרימת הדם במוח לא תיפגע באמצעות דחיסה פנימית על ידי מכשירי דרכי נשימה סופרגלוטיים3 אשר מופצים מדי פעם כחלופות בהקשר של נתיב אוויר קשה צפוי בחזירים4,5.,

בעוד פיזיולוגיית הריאות של חזירים מראה תכונות דומות לזו של בני אדם6, אבטחת נתיב האוויר היא לפעמים קשה יותר באופן משמעותי7 בשל הבדלים ספציפיים באנטומיה orotracheal חזיר. לחוטם של חזיר יש פתח צר עם לשון גדולה מאוד, הגרון נייד מאוד, והאפיגלוטיס גדול יחסית, עם קצה חופשי המשתרע עד החיך הרך. באופן קאודלי, הגרון יוצר זווית אטומה עם קנה הנשימה. הסחוסים האריטנואידים גדולים8. החלק הצר ביותר של נתיב האוויר נמצא ברמה תת-גלוטית9, בדומה לאנטומיה של דרכי הנשימה של ילדיםבני 10. מכיוון שהגרון בחזירים נייד מאוד, קיים סיכון שקצה הצינור האנדוטרכאלי יעבור דרך מיתרי הקול, אך הגרון יזוז רק באופן קאודלי עד כמה סנטימטרים, מה שעלול להיחשב בטעות לאינטובציהנכונה 8,11. בנוסף, אינטובציה של הוושט היא סיכון נפוץ כאשר מתמודדים עם ניהול דרכי נשימה חזיריות12.

שיעורי אינטובציות אנדוטרכאליות קשות או בלתי אפשריות עם השפעה שלילית מקבילה על הניסוי או תמותה מוקדמת לא תועדו באופן שיטתי, אך פורסמו מספר דיווחי מקרה13,14. בבני אדם, קיימת אפשרות להשתמש באנדוסקופ אינטובציה גמיש בהקשר של אינטובציה קונבנציונלית קשה באופן בלתי צפוי15. אינטובציות שווא שונות מקדימות לעתים קרובות אמצעי זה. ניסיונות אינטובציה חוזרים ונשנים אלה קשורים לתופעות לוואי בבני אדם16,17, במיוחד סיבוכים בדרכי הנשימה 18. אירועים כאלה מזיקים בחיות ניסוי, שכן במקרה הפשוט ביותר הם מייצגים משתנה מבלבל בניסוי; במקרה הגרוע ביותר, הם יכולים להוביל לאובדן מיותר של החיה.

המחקר הנוכחי פיתח מודל המבוסס על הקווים המנחים לניהול דרכי נשימה קשות צפויות בבני אדם 15,19,20,21,22,23,24. בעבר, טכניקה דומה תוארה ללימוד אינטובציה של סיבים אופטיים במחקרים בבני אדם25,26. הפרוטוקול המוצג בדו"ח זה נועד לספק מודל אינטובציה סטנדרטי וקל להסתגלות המאפשר גם למומחים שאינם בדרכי הנשימה לבצע אינטובציה אנדוטרכאלית מוצלחת ובטוחה בחזירים.

Protocol

הניסויים בפרוטוקול זה אושרו על ידי הוועדה הממלכתית והמוסדית לטיפול בבעלי חיים (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz, קובלנץ, גרמניה; אישור מס' G20-1-135). הניסויים נערכו בהתאם להנחיות ARRIVE. בסך הכל, 10 חזירים זכרים מורדמים (Sus scrofa domestica) עם משקל ממוצע של 30 ק"ג ± 2 ק"ג וגיל 12-16 שבועות שימשו במחקר הנוכחי.

1. הכנת בעלי חיים

  1. שמרו על סביבה נורמלית עבור בעלי החיים כדי למזער את הלחץ. הימנעו ממזון 6 שעות לפני הניסוי המתוכנן כדי להפחית את הסיכון לשאיפה, אך אפשרו גישה למים.
  2. הרגיעו את החזירים בזריקה משולבת של מידזולם (0.5 מ"ג/ק"ג) ואזפרון (2-3 מ"ג/ק"ג) (ראו טבלת חומרים) בשריר הגלוטאלי או בצוואר באמצעות מחט (20 גרם) להזרקה תוך שרירית. השאירו את בעלי החיים ללא הפרעה עד שההרגעה נכנסת (15-20 דקות).
    הערה: בהתאם לתקנות לאומיות, מתן חומרי הרגעה עשוי להיות כפוף לבדיקה ועשוי לדרוש או לא לדרוש פיקוח של וטרינר מיומן. יש להתייעץ עם הרשויות המקומיות לפני תכנון הניסויים.
  3. להעביר את בעלי החיים המורדמים מהאורוות למעבדה. זמן ההובלה לא יעלה על זמן הרגעה מספיק (כאן, 30-60 דקות). ודא שימור חום מספיק, כך החיה לא מקבל היפותרמי (כלומר, מתחת 38 ° C), כגון על ידי כיסוי הגוף עם שמיכה בהתאם לטמפרטורה בחוץ.
  4. באמצעות חיישן (ראה טבלת חומרים) המוצמד לאוזן או לזנב, נטר את ריווי החמצן ההיקפי (SpO2).
  5. יש לחטא את העור בחומר חיטוי (אלכוהולי) לפני החדרת צינורית וריד היקפית (22 גרם) לווריד האוזן. רססו את האזור, נגבו פעם אחת, ואז רססו שוב, והניחו לחומר החיטוי להתייבש. הדקו את צינורית האוזן בעזרת פלסטר (ראו טבלת חומרים).

2. הרדמה ואוורור מכני

  1. ניהול שיכוך כאבים באמצעות הזרקה תוך ורידית של 4 מיקרוגרם / ק"ג פנטניל. יש להשרות הרדמה עם הזרקה תוך ורידית של 3 מ"ג/ק"ג פרופופול (ראה טבלת חומרים).
    הערה: בשל יישום הבולוס, התרופה מציפה במהירות לתוך התא הפעיל, מתן התחלה מהירה של הרדמה עמוקה.
  2. הניחו את החזיר על אלונקה במצב שכיבה וקיבעו אותו בתחבושות. יש למרוח מרפה שרירים באמצעות הזרקה תוך ורידית של 0.5 מ"ג/ק"ג אטרקוריום (ראו טבלת חומרים).
  3. התחילו מיד באוורור לא פולשני באמצעות מסכת אוורור לכלב (ראו טבלת חומרים) או דגמים דומים. כדי להבטיח התאמה הדוקה של המסכה, הניחו את ההבלטה האזנית ואת האגודלים של שתי הידיים על גבי המסכה תוך ביצוע דחיפת לסת עם האצבעות הנותרות.
    הערה: פרמטרי אוורור: FiO 2 (מקטע חמצן השראתי) = 100%, לחץ שיא השראתי = <20 ס"מ ג' 2 0, קצב נשימה= 18-20 נשימות לדקה, PEEP (לחץ חיובי בסוף התוקף) = 5 ס"מ ג'2 0.
  4. שמור על הרדמה באמצעות עירוי מתמשך של 0.1-0.2 מ"ג / ק"ג / שעה של פנטניל ו 8-12 מ"ג / ק"ג / שעה של פרופופול. התחילו להחדיר 5 מ"ל/ק"ג/שעה של תמיסת אלקטרוליטים מאוזנת (ראו טבלת חומרים) ברציפות. כל הזמן לשמור על עומק מספיק של הרדמה.
    הערה: פרמטרים חלופיים לכך הם היעדר תנועה, היעדר מאמצי נשימה משלו לאחר אינטובציה, והיעדר עלייה פתאומית בקצב הלב. במידת האפשר, הימנעו מהרפיית שרירים קבועה כדי לאפשר תגובות מוטוריות כסימן לעומק לא מספיק של הרדמה.

3. אינטובציה אנדוטרכאלית

  1. יש עוזר לעמוד בצד שמאל של הראש. בקש מידו השמאלית של העוזר לפתוח את הפה ולצבוט את הלשון החוצה ולהשאיר עם דחיסה. בקש מהעוזר ללחוץ כלפי מטה על השפה העליונה הימנית עם האצבע המורה הימנית כדי לספק פתיחת פה טובה יותר.
  2. בצע laryngoscopy ישיר. לשם כך, הכנס את הלרינגוסקופ (ראה טבלת חומרים) לצד ימין של הפה ודחוף אותו קדימה תוך דחיפת הלשון שמאלה. מקדמים את קצה הלרינגוסקופ עד שהוא נח בוקולה האפיגלוטית.
    הערה: האפיגלוטיס בדרך כלל מטשטש את הגלוטיס על ידי היצמדות לחיך הרך.
  3. דוחפים בזהירות את האפיגלוטיס הצידה בעזרת חוט מנחה צינור (ראו טבלת חומרים) בתנועת גריפה עדינה משקע הפיריפורם הימני שמאלה לאורך החיך הרך.
  4. העבר את ידית הלרינגוסקופ לעוזר כדי לתקן אותו במצב הנוכחי.
  5. עכשיו, קח את אנדוסקופ אינטובציה גמיש שעליו כבר הותקן צינור אנדוטרכאלי וזה מחובר לצג וידאו. הכנס את האנדוסקופ דרך הפה וקדם אותו על בסיס הלשון עד גלוטיס הוא דמיין.
    הערה: כדי למנוע ערפול של המצלמה, מומלץ להשתמש מראש בחומרים מונעי ערפל (ראה טבלת חומרים).
  6. מקדמים את האנדוסקופ בין רצועות הקול לתוך קנה הנשימה. לאשר את האנטומיה של קנה הנשימה על ידי זיהוי חזותי של טבעות סחוס ואת pars membranacea. מקדמים את האנדוסקופ עד שהוא נח מעל הקרינה. נסו לא לגעת ברירית הרגישה עם קצה האנדוסקופ כדי למנוע נפיחות ודימום.
  7. תוך שמירה על מיקום האנדוסקופ, מקדמים את הצינור האנדוטרכאלי עד שהוא הופך גלוי בתמונת המצלמה.
    הערה: אם לא ניתן לקדם את הצינור האנדוטרכאלי דרך המישור הגלוטי, קיימת אפשרות שהוא נתפס בסחוס האריטנואידי. במקרה זה, יש למשוך את הצינור האנדוטרכאלי 1 ס"מ ולסובב אותו ב -90 מעלות לפני שהוא מתקדם שוב בעדינות. במידת הצורך, תמרון זה יכול לחזור על עצמו. קליברים דומים של אינטובציה גמישה, אנדוסקופ וצינור אנדוטרכאלי יכולים למזער את הסיכון להתרחשות בעיה זו. אם לא ניתן לקדם את הצינור האנדוטרכאלי למרות תמרון זה, סביר להניח שלא ניתן לעבור את הצרות התת-גלוטית - החלק הצר ביותר של הגרון החזירי. במקרה זה, יש לבחור גודל צינור אנדוטרכאלי קטן יותר. צינורות אנדוטרכאליים רגילים הזמינים מסחרית בגדלים 6.5 ס"מ או 7.0 ס"מ ID, אמורים להיות מסוגלים לעבור את הגלוטיס כל עוד אין הפרעות אנטומיות. דרישות גודל הצינור האנדוטרכאלי משתנות בהתאם לגודל החזרזיר ולגזע.
  8. משוך את אנדוסקופ האינטובציה הגמיש תוך שמירה על מיקום הצינור האנדוטרכאלי.
  9. באמצעות מזרק 10 מ"ל, לנפח את השרוול עם 10 מ"ל של אוויר. שלוט בלחץ השרוול באמצעות מנהל שרוול (ערך יעד: 30 cmH2O, ראה טבלת חומרים).
  10. ודא את המיקום הנכון של הצינור האנדוטרכאלי ואוורור נאות על ידי נשיפה תקופתית וסדירה של פחמן דו חמצני באמצעות קפנוגרפיה24 ואוורור דו צדדי באמצעות auscultation15.
  11. התחל אוורור מכני לאחר חיבור הצינור עם מאוורר (PEEP = 5 cmH 2 O, קצב נשימה = משתנה כדי להשיג CO 2 של <6 kPa, בדרך כלל 30-50 דקות−1, FiO 2 = 0.4, I:E (יחס השראה לתפוגה) = 1:2, נפח גאות = 6-8 מ"ל / ק"ג).
  12. להרחיב את הניטור (למשל, קביעת מדידת לחץ דם תוך עורקי, התקנת קטטר ורידי מרכזי או עורקי ריאה27) או להמשיך בהתערבות.
    הערה: בהתאם לשאלת הניסויים הנוספים, הגדר ערכי גבול עבור הפרמטרים החיוניים ואפשרויות ההתערבות וקבע את הניטור בהתאם בפרוטוקול המחקר.

תוצאות

אינטובציה אנדוטרכאלית בוצעה על 10 חזירים זכרים (בגילאי 12-16 שבועות, משקל 30 ק"ג ± 3 ק"ג) במסגרת מחקר פרוספקטיבית, אקראית ומבוקרת. החזירים חולקו באופן אקראי לשתי קבוצות: הקבוצה השנייה עברה אינטובציה לרינגוסקופית קונבנציונלית (קבוצת CI), והקבוצה השנייה קיבלה אינטובציה בסיוע אנדוסקופ אינטובצ...

Discussion

במחקרים קודמים, קבוצת המחקר שלנו כבר תיארה פרטים ספציפיים לגבי היתרונות התרגומי של מודל חזירי 2,27,32,33. באופן כללי, הפחתת רמת הלחץ של בעל החיים וכאב מיותר צריכה להיות חלק בלתי נפרד מכל פרוטוקול מחקר והיא בעלת חשיבות עליונ?...

Disclosures

אנדוסקופ האינטובציה הגמיש ואביזריו, סופקו ללא תנאי על ידי היצרן למטרות מחקר בלבד. המחברים מצהירים כי אין עוד ניגודי עניינים כספיים או אחרים.

Acknowledgements

המחברים רוצים להודות לדאגמר דירבונסקיס על התמיכה הטכנית המצוינת שלה.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Ambu aScope RegularAmbu GmbH, Medizinprodukte, Bad Nauheim, GermanyDisposable fiber optic outer diameter 5 mm
Ambu aView MonitorAmbu GmbH, Medizinprodukte, Bad Nauheim, Germanymonitor
Atracurium Hikma 50 mg/5mLHikma Pharma GmbH, Martinsriedatracurium
Azaperone (Stresnil) 40mg/mLLilly Deutschland GmbH, Bad Homburg, Germanyazaperone
BD Discardit II Spritze 2, 5, 10, 20 mLBecton Dickinson S.A. Carretera, Mequinenza Fraga, Spainsyringe
BD Luer ConnectaBecton Dickinson Infusion Therapy, AB Helsingborg, Schweden3-way-stopcock
BD Microlance 3 20 GBecton Dickinson S.A. Carretera, Mequinenza Fraga, Spaincannula
Curafix i.v. classicsLohmann & Rauscher International GmbH & Co. KG, Rengsdorf, GermanyCannula retention dressing
Engström CarestationGE Heathcare, Madison USAventilator
Fentanyl-Janssen 0.05 mg/mLJanssen-Cilag GmbH, Neussfentanyl
Führungsstab, Durchmesser 4.3Rüschendotracheal tube introducer
IBM SPSS Statistics for Windows, Version 20IBM SPSS Statistics for Windows, Version 20.0. Armonk, NY: IBM Corp.)Statistical software
Incetomat-line 150 cmFresenius, Kabi Deutschland, GmbHperfusor line
Intrafix PrimelineB. Braun Melsungen AG, Melsungen, GermanyInfusion line
JOZA Einmal Nitril UntersuchungshandschuheJOZA, München, Germanydisposable gloves
Laryngoscope, 45.48.50, KL 2000MediconLaryngoscope handle
Littmann Classic III Stethoscope3M Deutschland GmbH, Neuss, Germanystethoscope
Luer LockB.Braun Melsungen AG, Germany
Maimed VlieskompresseMaimed GmbH, Neuenkirchen, GermanyFleece compress to fix the tongue
Masimo LNCS Adtx SpO2 sensorMasimo Corporation Irvine, Ca 92618 USAsaturation clip for the tail
Masimo LNCS TC-I SpO2 ear clip sensorMasimo Corporation Irvine, Ca 92618 USASaturation clip for the ear
Masimo Radical 7Masimo Corporation Irvine, Ca 92618 USAperiphereal oxygen saturation
Midazolam 15 mg/3 mLHameln Pharma GmbH, Hameln, Germanymidazolam
Midmark Canine Mask Small Plastic with Diaphragm FRSCM-0005Midmark Corp., Dayton, Ohio, USAdog ventilation mask
Octeniderm farblosSchülke & Mayr GmbH, Nordenstedt, GermanyAlcoholic disinfectant
Original Perfusor syringe 50 mLB.Braun Melsungen AG, Germanyperfusor syringe
Perfusor FM BraunB.Braun Melsungen AG, Germanysyringe pump
Propofol 2% 20 mg/mL (50 mL flasks)Fresenius, Kabi Deutschland, GmbHpropofol
RÜSCH Führungsstab für Endotrachealtubus (ID 5.6 mm)Teleflex Medical Sdn. Bhd, MalaysiaPVC coated tube guiding wire
Rüschelit Super Safety Clear >ID 6/6.5 /7.0 mmTeleflex Medical Sdn. Bhd, Malaysiaendotracheal tube
Stainless Macintosh Größe 4Welch Allyn69604blade for laryngoscope
SterofundinB.Braun Melsungen AG, Melsungen, GermanyBalanced electrolyte solution
Ultrastop Antibeschlagmittel bottle with dropper 25 mLSigmapharm Arzneimittel GmbH, Wien, AustriaAntifog agent
Vasofix Safety 22 G-16 GB.Braun Melsungen AG, Germanyvenous catheter
VBM Cuff ManometerVBM Medizintechnik GmbH, Sulz a.N., Germanycuff pressure gauge
ZeletteLohmann & Rauscher International GmbH & Co. KG, Rengsdorf, GermanyTissue swab

References

  1. Kleinman, M. E., Oh, W., Stonestreet, B. S. Comparison of intravenous and endotracheal epinephrine during cardiopulmonary resuscitation in newborn piglets. Critical Care Medicine. 27 (12), 2748-2754 (1999).
  2. Rissel, R., et al. Bronchoalveolar lavage and oleic acid-injection in pigs as a double-hit model for acute respiratory distress syndrome (ARDS). Journal of Visualized Experiments. (159), e61358 (2020).
  3. Segal, N., et al. Impairment of carotid artery blood flow by supraglottic airway use in a swine model of cardiac arrest. Resuscitation. 83 (8), 1025-1030 (2012).
  4. Goldmann, K., Kalinowski, M., Kraft, S. Airway management under general anaesthesia in pigs using the LMA-ProSeal: A pilot study. Veterinary Anaesthesia and Analgesia. 32 (5), 308-313 (2005).
  5. Wemyss-Holden, S. A., Porter, K. J., Baxter, P., Rudkin, G. E., Maddern, G. J. The laryngeal mask airway in experimental pig anaesthesia. Lab Animal. 33 (1), 30-34 (1999).
  6. Kobayashi, E., Hishikawa, S., Teratani, T., Lefor, A. T. The pig as a model for translational research: overview of porcine animal models at Jichi Medical University. Transplantation Research. 1 (1), 8 (2012).
  7. Judge, E. P., et al. Anatomy and bronchoscopy of the porcine lung. A model for translational respiratory medicine. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 51 (3), 334-343 (2014).
  8. Dondelinger, R. F., et al. Relevant radiological anatomy of the pig as a training model in interventional radiology. European Radiology. 8 (7), 1254-1273 (1998).
  9. Nickel, R., Schummer, A., Seiferle, E. . Lehrbuch der Anatomie der Haustiere, Band I: Bewegungsapparat. , (2003).
  10. Wani, T. M., Rafiq, M., Akhter, N., AlGhamdi, F. S., Tobias, J. D. Upper airway in infants-A computed tomography-based analysis. Paediatric Anaesthesia. 27 (5), 501-505 (2017).
  11. Chum, H., Pacharinsak, C. Endotracheal intubation in swine. Lab Animal. 41 (11), 309-311 (2012).
  12. Ettrup, K. S., et al. Basic surgical techniques in the Göttingen minipig: Intubation, bladder catheterization, femoral vessel catheterization, and transcardial perfusion. Journal of Visualized Experiments. (52), e2652 (2011).
  13. Steinbacher, R., von Ritgen, S., Moens, Y. P. S. Laryngeal perforation during a standard intubation procedure in a pig. Laboratory Animals. 46 (3), 261-263 (2012).
  14. Iliff-Sizemore, S. A., Chrisp, C. E., Rush, H. G. Peritracheolaryngeal abscess: An iatrogenic complication of endotracheal intubation in swine. Laboratory Animal Science. 39 (5), 455-458 (1989).
  15. Piepho, T., et al. S1 guidelines on airway management. Der Anaesthesist. 64 (11), 859-873 (2015).
  16. Mort, T. C. Emergency tracheal intubation: Complications associated with repeated laryngoscopic attempts. Anesthesia & Analgesia. 99 (2), 607-613 (2004).
  17. Hasegawa, K., et al. Association between repeated intubation attempts and adverse events in emergency departments: An analysis of a multicenter prospective observational study. Annals of Emergency Medicine. 60 (6), 749-754 (2012).
  18. Martin, L. D., Mhyre, J. M., Shanks, A. M., Tremper, K. K., Kheterpal, S. 3,423 emergency tracheal intubations at a university hospital: airway outcomes and complications. Anesthesiology. 114 (1), 42-48 (2011).
  19. Ahmad, I., et al. Difficult Airway Society guidelines for awake tracheal intubation (ATI) in adults. Anaesthesia. 75 (4), 509-528 (2020).
  20. Frerk, C., et al. Difficult Airway Society 2015 guidelines for management of unanticipated difficult intubation in adults. British Journal of Anaesthesia. 115 (6), 827-848 (2015).
  21. Cook, T. M., et al. Consensus guidelines for managing the airway in patients with COVID-19: Guidelines from the Difficult Airway Society, the Association of Anaesthetists the Intensive Care Society, the Faculty of Intensive Care Medicine and the Royal College of Anaesthetists. Anaesthesia. 75 (6), 785-799 (2020).
  22. Kornas, R. L., Owyang, C. G., Sakles, J. C., Foley, L. J., Mosier, J. M. Evaluation and management of the physiologically difficult airway: Consensus recommendations from Society for Airway Management. Anesthesia & Analgesia. 132 (2), 395-405 (2021).
  23. Higgs, A., et al. Guidelines for the management of tracheal intubation in critically ill adults. British Journal of Anaesthesia. 120 (2), 323-352 (2018).
  24. Apfelbaum, J. L., et al. American Society of Anesthesiologists Practice Guidelines for Management of the Difficult Airway. Anesthesiology. 136 (1), 31-81 (2022).
  25. Doyle, D. J. GlideScope-assisted fiberoptic intubation: A new airway teaching method. Anesthesiology. 101 (5), 1252 (2004).
  26. Lenhardt, R., et al. Is video laryngoscope-assisted flexible tracheoscope intubation feasible for patients with predicted difficult airway? A prospective, randomized clinical trial. Anesthesia & Analgesia. 118 (6), 1259-1265 (2014).
  27. Ruemmler, R., Ziebart, A., Garcia-Bardon, A., Kamuf, J., Hartmann, E. K. Standardized model of ventricular fibrillation and advanced cardiac life support in swine. Journal of Visualized Experiments. (155), e60707 (2020).
  28. Dodge, Y. Kolmogorov-Smirnov Test. The Concise Encyclopedia of Statistics. , 283-287 (2008).
  29. Ross, A., Willson, V. L. Independent Samples T-test. Basic and Advanced Statistical Tests: Writing Results Sections and Creating Tables and Figures. , 13-16 (2017).
  30. Mann, H. B., Whitney, D. R. On a test of whether one of two random variables is stochastically larger than the other. The Annals of Mathematical Statistics. 18 (1), 50-60 (1947).
  31. Spearman, C. The proof and measurement of association between two things. American Journal of Psychology. 100 (3-4), 441-471 (1987).
  32. Ziebart, A., et al. Standardized hemorrhagic shock induction guided by cerebral oximetry and extended hemodynamic monitoring in pigs. Journal of Visualized Experiments. (147), e59332 (2019).
  33. Kamuf, J., et al. Oleic acid-injection in pigs as a model for acute respiratory distress syndrome. Journal of Visualized Experiments. (140), e57783 (2018).
  34. Kurita, T., Kawashima, S., Morita, K., Nakajima, Y. Assessment of the benefits of head-up preoxygenation using near-infrared spectroscopy with pulse oximetry in a swine model. Journal of Clinical Monitoring and Computing. 35 (1), 155-163 (2021).
  35. Ruemmler, R., Ziebart, A., Ott, T., Dirvonskis, D., Hartmann, E. K. Flexible fibreoptic intubation in swine - Improvement for resident training and animal safety alike. BMC Anesthesiology. 20 (1), 206 (2020).
  36. Cook, J. A., Ramsay, C. R., Fayers, P. Using the literature to quantify the learning curve: A case study. International Journal of Technology Assessment in Health Care. 23 (2), 255-260 (2007).
  37. Buis, M. L., Maissan, I. M., Hoeks, S. E., Klimek, M., Stolker, R. J. Defining the learning curve for endotracheal intubation using direct laryngoscopy: A systematic review. Resuscitation. 99, 63-71 (2016).
  38. Knapp, S., et al. The assessment of four different methods to verify tracheal tube placement in the critical care setting. Anesthesia & Analgesia. 88 (4), 766-770 (1999).
  39. Schmidt, R. F. . Physiologie des Menschen. 31, (2010).
  40. Eberlein, C. M., Luther, I. S., Carpenter, T. A., Ramirez, L. D. First-pass success intubations using video laryngoscopy versus direct laryngoscopy: A retrospective prehospital ambulance service study. Air Medical Journal. 38 (5), 356-358 (2019).
  41. Lohse, J., Noppens, R. Awake video laryngoscopy - An alternative to awake fiberoptic intubation. Anasthesiologie, Intensivmedizin, Notfallmedizin, Schmerztherapie. 51 (11-12), 656-663 (2016).
  42. Johnson, C., Roberts, J. T. Clinical competence in the performance of fiberoptic laryngoscopy and endotracheal intubation: A study of resident instruction. Journal of Clinical Anesthesia. 1 (5), 344-349 (1989).
  43. Geovanini, G. R., Pinna, F. R., Prado, F. A., Tamaki, W. T., Marques, E. Standardization of anesthesia in swine for experimental cardiovascular surgeries. Revista Brasileira de Anestesiologia. 58 (4), 363-370 (2008).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

186

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved