JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

يصف هذا البروتوكول إجراء لأخذ عينات من شبكية الفئران واستخدام تلطيخ الهيماتوكسيلين يوزين ومقايسة TUNEL واللطخة الغربية للكشف عن التغيرات المرضية وموت الخلايا المبرمج في شبكية العين بعد الحقن داخل الصفاق ل N-Methyl-N-Nitrosourea.

Abstract

يمكن ملاحظة اعتلال الشبكية في معظم أمراض العين والمضاعفات المتأخرة لمرض السكري. تعد الخلايا الظهارية الصبغية المحددة وتلف الخلايا البصرية وتنكسها من السمات الرئيسية لاعتلال الشبكية. أظهرت العديد من الأدوية التقليدية فعالية سريرية كبيرة في علاج اعتلال الشبكية. تعد كيفية الحصول على شبكية العين بسرعة وبشكل كامل خطوة أساسية في أبحاث الطب التقليدي لعلاج اعتلال الشبكية. في هذه الدراسة ، نهدف إلى توفير إجراء موحد وقابل للممارسة لأخذ عينات من تلف شبكية العين الناجم عن N-methyl-N-nitrosourea (MNU) والتقييم متعدد المؤشرات للتغيرات المرضية. تم حقن الفئران داخل الصفاق ب 60 مجم / كجم MNU مرة واحدة للحث على تلف شبكية العين ، وتم الحصول على عينات شبكية العين بعد 7 أيام. بالإضافة إلى ذلك ، أجرينا تلطيخ الهيماتوكسيلين يوزين لتقييم التغيرات المرضية في الشبكية. تحديد معدل موت الخلايا المبرمج وبروتين موت الخلايا المبرمج بواسطة TUNEL و Western blot. تساعد هذه البروتوكولات الموحدة لأخذ عينات الشبكية وتقييم التغيرات المرضية في تعزيز استكشاف آلية اعتلال الشبكية واكتشاف أعشاب تقليدية جديدة وفعالة.

Introduction

التهاب الشبكية الصباغي (RP) هو مرض وراثي ومسبب للعمى فيالشبكية 1. يتراوح معدل الإصابة ب RP بين 1/3500 و 1/5000 ، مما يؤثر على الوظيفة البصرية لحوالي 2.5 مليون شخص في العالم. إنه من أكثر الأمراض شهرة التي تؤدي إلى ضعف البصر لدى الإنسان ، مما يفرض عبئا كبيرا على المجتمع بأسره2. يتميز المرض بالفقدان التدريجي لوظيفة الخلايا الظهارية الصبغية في الشبكية وموت الخلايا المبرمج التدريجي للمستقبلات الضوئية. في المرحلة المبكرة ، يعاني المرضى من العمى الليلي ، والذي يتجلى في عيوب المجال البصري المحيطي ويؤدي في النهاية إلى فقدان الرؤية المركزية3. لذلك ، فإن تثبيط موت الخلايا المبرمج لمستقبلات ضوء الشبكية هو نقطة للوقاية والعلاج من RP.

موت الخلايا المبرمج لخلايا الشبكية هو سمة شائعة للحيوانات النموذجية النموذجية4. يمكن أن يؤدي الحقن داخل الصفاق ل 60 مجم / كجم N-Methyl-N-Nitrosourea (MNU) في الفئران لمدة 7 أيام إلى موت الخلايا المبرمج وفقدان الخلايا المستقبلة للضوء في الشبكية ، وهو نموذج حيواني شائع الاستخدام ل RP5،6. يمكن أن يوفر تحليل التغيرات في التركيب المرضي ، وموت الخلايا المبرمج للخلايا المحددة ، والتعبير البروتيني المرتبط بموت الخلايا المبرمج لأنسجة الشبكية في النموذجية بيانات تجريبية فعالة ودعما نظريا في دراسة التسبب في RP البشري وأدويةالفحص 7،8. لذلك ، تحدد جودة عينات الشبكية موثوقية البيانات التجريبية. ومع ذلك ، نظرا لخصوصية أنسجة العين ، هناك عدد قليل جدا من التقارير حول كيفية الحصول على شبكية العين9.

توفر هذه الورقة إجراء بسيطا وسريعا وموحدا وقابلا للتشغيل لأخذ عينات الشبكية في الفئران للتغلب على أوجه القصور المذكورة أعلاه. يتم استخدام تلطيخ الهيماتوكسيلين - اليوزين (HE) ، وتلوين ديوكسي نيوكليوتيديل ترانسفيراز الطرفي بوساطة ديوكسيوريال ثلاثي فوسفات - ديجوكسيجينين (TUNEL) ، واللطخة الغربية لتحليل التغيرات المرضية في تلف أنسجة الشبكية وموت الخلايا المبرمج في الفئران. جميع الأساليب مستمدة من خبرة مجموعتنا البحثية مع العمليات التشغيلية المحددة.

Protocol

تمت الموافقة على جميع البروتوكولات والإجراءات الجراحية من قبل لجنة الأخلاقيات بجامعة نينغشيا الطبية (رقم الأخلاقيات: رقم 2020-Q066). تم شراء ذكور الفئران SPF Sprauge-Dawley (SD) ، التي تتراوح أعمارها بين 7 و 8 أسابيع ووزنها 200-220 جم ، من جامعة نينغشيا الطبية برقم ترخيص SCXK (Ning) 2020-0001. تم تربية جميع في مركز المختبر بجامعة نينغشيا الطبية. كانت درجة الحرارة والرطوبة مناسبتين ، وتم الحفاظ على دورة الضوء ليلا ونهارا ، وكان الطعام والماء مجانيين وكافيين.

1. التحضير قبل الجراحة

  1. تحضير المواد
    1. قم بإعداد ألواح الفئران ، وأجهزة التخدير الاستنشاقي ، والصناديق المدمجة ، وأنابيب التخزين المجمدة ، والقفازات والأقنعة الجراحية التي تستخدم لمرة واحدة ، والزجاجات ذات الفم الواسع ، و4٪ بارافورمالدهيد ، وكمادات الثلج ، ومقص العيون ، وملاقط العيون ، والشفرات الجراحية ومقابض السكاكين ، وأنابيب الطرد المركزي الدقيقة سعة 1.5 مل وتعقيمها مسبقا (انظر جدول المواد).
  2. تحضير
    1. قسم بشكل عشوائي 20 من ذكور فئران SD إلى مجموعة نموذجية (ن = 10) ومجموعة ضابطة (ن = 10). حقن الفئران النموذجية داخل الصفاق مع 60 مجم / كجم MNU وحقن الفئران الضابطة داخل الصفاق بنفس حجم المحلول الملحي.
    2. بعد 7 أيام من الحقن ، صوم الفئران واتركها تشرب بحرية في الليلة السابقة لأخذ العينات.
    3. في اليوم التالي ، ضع الفئران على طاولة العمليات واستخدم قناعا لإدارة التخدير باستخدام 4٪ إيزوفلوران و 2 لتر / دقيقة من الأكسجين. قم بقياس عمق التخدير عن طريق الضغط على مركز القدم لمراقبة ردود فعل الفئران.

2. أخذ عينات الشبكية للكشف عن عامل البروتين

  1. قم بإصلاح محجر العين للفأر باليد اليسرى وإزالة العين بقوة معتدلة باليد اليمنى باستخدام ملقط ثني العين. ضع مقلة العين في وضع سهمي في طبق زجاجي بارد.
  2. مع إمساك اليد اليسرى بملاقط مستقيمة للعيون لإصلاح مقلة العين واليد اليمنى تمسك بالشفرة الجراحية ، قم بعمل شق طولي 2 مم بالقرب من موقع العدسة.
  3. اقطع القرنية بمقص العيون على طول الشق ، وقشر العدسة برفق ، والجسم الزجاجي ، وكشف كوب العين.
  4. ضع الجزء السفلي من كوب العين عند طرف أنبوب الطرد المركزي الدقيق سعة 1.5 مل ، ثم اقلب كوب العين فوق الأنبوب ، وكشف الشبكية (شبكية العين صفراء باهتة).
  5. قم بإزالة شبكية العين بالكامل على طول الجدار الصلبي لمقلة العين باستخدام ملاقط ثني العين ، ثم ضعها في أنبوب مجمد وقم بتخزينها في خزان نيتروجين سائل لاستخدامها في المستقبل (الشكل 1).

3. أخذ عينات الشبكية للفحص المرضي وتلوين الخلايا المحددة

  1. باليد اليسرى ، استخدم ملاقط العين لرفع زاوية عين الفئران. باليد اليمنى ، استخدم شفرة جراحية لقطع فتحة 4 مم على طول زاوية عين الفئران.
  2. استخدم ملاقط العين لتثبيت حافة مقلة العين عند الفتحة في اليد اليسرى. استخدم مقص العيون لقطع الأنسجة المحيطة على طول حافة مقلة العين مع الانتباه إلى تنظيف الأنسجة المحيطة بمقلة العين.
  3. افصل الأنسجة حول العصب البصري في القطب الخلفي لمقلة العين باستخدام ملاقط العين ، وقطع العصب البصري ، وانتبه للحفاظ عليه. ثم قم بإزالة مقلة العين.
  4. اغسل مقلة العين التي تمت إزالتها في محلول ملحي لإزالة أي دم متبقي ، ولفها على ورق ترشيح لامتصاص الماء الزائد ، وضعها على ورق قصدير بارد.
  5. ثبت العين باستخدام ملاقط العيون. قم بعمل شق طولي 4 مم على طول تقاطع القرنية وشبكية العين بشفرة جراحية.
  6. قم بإزالة القرنية بمقص العيون ، وقم بعمل قطع دائري على طول الشق ، وقم بإزالة العدسة والجسم الزجاجي برفق.
  7. ضع كوب العين المتبقي مع عصب بصري في صندوق تضمين وثبته في 4٪ بارافورمالدهيد.
  8. قم بتضمين عينات مثبتة ببارافورمالدهايد في البارافين وتقطيعها إلى شرائح 4 ميكرومتر لتلوين HE وتلوين TUNEL7.

4. تلطيخ شبكية العين الفئران

  1. إزالة الشمع والترطيب: ضع الشرائح في الزيلين لمدة 10 دقائق ، كرر العملية لمدة 10 دقائق أخرى ، متبوعا بالإيثانول المطلق لمدة 5 دقائق ، كرر معالجة الإيثانول لمدة 5 دقائق أخرى ، متبوعا بالعلاج بالكحول بنسبة 95٪ لمدة 5 دقائق ، ثم في الكحول بنسبة 85٪ لمدة 5 دقائق ، وأخيرا في الكحول بنسبة 75٪ لمدة 5 دقائق.
  2. تلطيخ الهيماتوكسيلين: اشطف الشريحة بالماء منزوع الأيونات لمدة 5 دقائق. استخدم 100 ميكرولتر من محلول تلطيخ الهيماتوكسيلين وصمة عار لمدة 5 دقائق ، ثم اشطفها بالماء منزوع الأيونات لمدة 5-10 ثوان. أضف 100 ميكرولتر من الإيثانول بحمض الهيدروكلوريك 1٪ لمدة 30 ثانية ، واشطفها بالماء منزوع الأيونات لمدة 20 دقيقة ، وأضف 100 ميكرولتر من ماء الأمونيا 0.2٪ لمدة دقيقة واحدة. اشطفه بالماء منزوع الأيونات لمدة 5 دقائق.
  3. تلطيخ اليوزين: استخدم 100 ميكرولتر من محلول تلطيخ اليوزين للتلطيخ لمدة 5 دقائق ثم اشطفه بالماء منزوع الأيونات لمدة 30 ثانية.
  4. الجفاف والختم: اغمر الشرائح في 70٪ كحول لمدة 5 دقائق ، ثم 85٪ كحول لمدة 5 دقائق ، متبوعا بالكحول 90٪ لمدة 5 دقائق ، والإيثانول المطلق لمدة 5 دقائق. كرر معالجة الإيثانول المطلقة لمدة 5 دقائق أخرى ، ثم اغمرها في الزيلين لمدة 5 دقائق ، وكرر العملية لمدة 5 دقائق أخرى. أخيرا ، قم بإغلاقها بإضافة ما يقرب من 100 ميكرولتر من الراتنج المحايد إلى سطح الشرائح ثم قم بتغطيتها بزجاج غطاء.
  5. تصوير الشرائح: ضع الشرائح الملطخة على المجهر ، واضبط تركيز المجهر حتى تصبح الصورة مرئية بوضوح ، واضبط التكبير على 400x ، والتقط الصورة.
  6. قياس إجمالي سمك الشبكية وسمك الشبكية الخارجي: قياس إجمالي سمك الشبكية وسماكة الشبكية الخارجية (سمك الطبقة النووية الخارجية وطبقة المستقبلات الضوئية) ، وحساب النسبة المئوية لسمك الشبكية الخارجية
    سمك الشبكية الخارجي (٪) = (سمك الشبكية الخارجي / إجمالي سمك الشبكية) × 100.

5. تحديد معدل موت الخلايا المبرمج لخلايا مستقبلات ضوء الشبكية بطريقة TUNEL

  1. إزالة الشمع والترطيب: ضع الشرائح في الزيلين لمدة 10 دقائق ، كرر العملية لمدة 10 دقائق أخرى ، ثم ضعها في الإيثانول المطلق لمدة 5 دقائق ، وكرر هذه الخطوة لمدة 5 دقائق أخرى. قم بإجراء الجفاف عن طريق وضع 95٪ كحول لمدة 5 دقائق ، و 90٪ كحول لمدة 5 دقائق ، و 80٪ كحول لمدة 5 دقائق ، و 70٪ كحول لمدة 5 دقائق ، ثم اشطفه بالماء منزوع الأيونات لمدة 5 دقائق.
  2. اشطفها بمحلول كلوريد الصوديوم 0.85٪ لمدة 5 دقائق و PBS لمدة 5 دقائق. إصلاحه باستخدام بارافورمالدهيد باستخدام 4٪ بارافورمالدهيد لمدة 15 دقيقة. اشطفها باستخدام PBS لمدة 5 دقائق ، وكرر العملية لمدة 5 دقائق أخرى.
  3. الحضانة والتوازن7: احتضان بمحلول بروتيناز K 20 ميكروغرام / مل للهضم لمدة 15 دقيقة ، والتوازن في المخزن المؤقت للتوازن لمدة 10 دقائق ، واحتضانه مع المخزن المؤقت deoxynucleotidyltransferase الطرفي المؤتلف (rTdT) عند 37 درجة مئوية لمدة 60 دقيقة.
  4. إيقاف التفاعل: أضف 100 ميكرولتر من محلول السترات القياسي (محلول 2x SSC) لمدة 15 دقيقة. اشطفها باستخدام PBS لمدة 5 دقائق ، وكرر العملية لمدة 5 دقائق أخرى.
  5. صبغة نووية: أضف 100 ميكرولتر 4 ′ ، كاشف 6-diamidine-2-phenindl (DAPI) لمدة 5 دقائق. يغسل بالماء منزوع الأيونات لمدة 5 دقائق ، وكرر العملية لمدة 5 دقائق أخرى.
  6. الختم: امسح الزيلين الزائد حول الشرائح ، وأغلقه بإضافة ما يقرب من 100 ميكرولتر من الراتنج المحايد إلى سطح الشرائح ، ثم قم بتغطيته بغطاء زجاجي.
  7. الفحص المجهري: ضع الشرائح الملطخة على المجهر ، واضبط تركيز المجهر للحصول على رؤية واضحة ، واضبط التكبير على 400x ، والتقط الصورة. راقب التألق الأخضر عند 520 ± 20 نانومتر باستخدام مرشح مضان قياسي. راقب DAPI الأزرق عند 460 نانومتر.
  8. احسب معدل موت الخلايا المبرمج: قم بقياس قيم التألق الأخضر وقيم التألق الأزرق لطبقة نواة الشبكية الخارجية. احسب معدل موت الخلايا المبرمج على النحو التالي
    معدل خلايا موت الخلايا المبرمج = قيمة التألق الأخضر / قيمة التألق الأزرق × 100.

6. تحليل اللطخة الغربية 10

  1. العلاج العازل للتحلل: قم بفرم وتجانس شبكية واحدة مجمدة مع 50 ميكرولتر من محلول التحلل البارد (1 مل من محلول التحلل الذي يحتوي على 5 ميكرولتر من مثبط الفوسفاتيز ، و 1 ميكرولتر من مثبط الإنزيم البروتيني ، و 5 ميكرولتر من 100 ملي PMSF).
  2. تخضع لصوتنة 28 كيلو هرتز لمدة 5 ثوان على حمام جليدي ؛ كرر 3 مرات. جهاز طرد مركزي عند 4 درجات مئوية لمدة 5 دقائق عند 10,000 × جم لإزالة الحطام الخلوي. احتفظ بالمادة الطافية.
  3. em>6.3القياس الكمي للبروتين: تحديد تركيز البروتين باستخدام مجموعة كاشف فحص البروتين BCA.
  4. em>6.4الرحلان الكهربائي: قم بتحميل عينة بروتين 50 ميكروغرام وافصل عن الرحلان الكهربائي لجل بولي أكريلاميد دوديسيل كبريتات الصوديوم بنسبة 12٪ (SDS-PAGE).
  5. النقل إلى الغشاء: النقل الكهربائي إلى أغشية PVDF باستخدام نظام النقل الكهربائي.
  6. تقسيم الأغشية: قسم الأغشية ، وقم بتحليل كل بروتين ذي أهمية ، β-أكتين و GAPDH من نقل واحد.
  7. الحظر: سد الأغشية لمدة ساعة واحدة في TBST التي تحتوي على 5٪ حليب خالي الدسم في درجة حرارة الغرفة.
  8. احتضان الجسم المضاد الأولي: احتضان بالجسم المضاد الأولي للكاسباز -9 المشقوق (تخفيف 1: 200) ، كاسباز -3 المشقوق (تخفيف 1: 200) ، كاسباز -7 المشقوق (تخفيف 1: 200) ، و β-أكتين (1: 1000 تخفيف) بين عشية وضحاها عند 4 درجات مئوية. اغسل الأغشية باستخدام TBST لمدة 5 دقائق ، كرر 3 مرات.
  9. احتضان الجسم المضاد الثاني: احتضان بالأجسام المضادة الثانوية المترافقة مع بيروكسيداز الفجل الحار (1: 2000) لمدة ساعتين في درجة حرارة الغرفة. اغسل الأغشية باستخدام TBST لمدة 5 دقائق ، كرر 3 مرات.
  10. تعرض: تصور البروتينات المسمى باستخدام ركيزة اللطخة الغربية ، وأخيرا ، قم بتعريض الأغشية لتصور نطاقات البروتين في وضع التعرض التلقائي.
  11. احسب محتوى البروتين7 عن طريق قياس كثافة نطاق البروتين.

7. التحليل الإحصائي

  1. تحليل البيانات باستخدام برنامج SPSS 19.0 وتقديمها كمتوسط ± انحراف معياري. إجراء تحليلات إحصائية للقيم المرصودة باستخدام تحليل التباين أحادي الاتجاه. خذ p< 0.05 على أنه ذو دلالة إحصائية.

النتائج

بعد تلطيخ HE ، كان لجميع طبقات شبكية الفئران في المجموعة الضابطة بنية نسيجية واضحة ، وترتيب خلوي منظم ، وتلوين موحد ، في حين أن بنية شبكية الفئران في المجموعة النموذجية تضررت بشكل كبير ، وكانت طبقة الشبكية الخارجية أرق ، وتم دمج الطبقة النووية الخارجية بالكامل تقريبا مع ا...

Discussion

RP هو مرض شائع في الشبكية في العيادات. ترتبط بداية وشدة وتطور RP بالجينات والأنماط الجينية وتتأثر بالبيئة8،11. يشمل RP RP العائلي و RP العرضي ، حيث يمثل RP العائلي حوالي 60٪ من المرضى. من خلال تتبع التاريخ الجيني للعائلة ، تم تحديد 83 جينا مرتبطا ب RP ?...

Disclosures

المؤلفون ليس لديهم ما يكشفون عنه.

Acknowledgements

تم دعم هذا العمل من قبل مشروع البحث العلمي التابع لإدارة التعليم العالي في نينغشيا (NYG2022029).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Amersham ImagerGE680
Ammonium persulfate Boster Biological Technology Co.,LtdA8090
Analytical BalanceMettler ToledoME104E
BCA protein quantization kit Ken Gen Biotech. Co. LtdKGP902
cleaved caspase-3 antibodyCell Signaling Technology#9664
cleaved caspase-7 antibodyCell Signaling Technology#8438
cleaved caspase-9 antibodyCell Signaling Technology#9507
DeadEnd Fluorometric TUNEL SystemPromegaG3250
Glycine Boster Biological Technology Co.,LtdAR1200
Goat Anti-Rabbit IgG H&L (HRP)Bioss Antibodiesbs-80295G-HRP
Goat serumBiosharpBL210A
High speed  crusherThermo Fisher ScientificAG22331
Immobilon-P SQ Transfer membranesMerck Millipore. LtdISEQ00010
IsofluraneRWD Life ScienceR510-22-10
MethanolChengdu Kelong Chemical Co., Ltd20230108
Microplate ReaderThermo Fisher Scientific1510
MicroscopeOlympusIX73
Microscope slideCitotest Labware Manufacturing Co., Ltd7105P-G
Mini-PROTEAN TetraBIO-RAD1658001
N-Methyl-N-Nitrosoureasigma-AldrichN4766–100G
OvenShanghai Yuejin Medical Equipment Co., LtdDHG-8145
Page Pre-solution (30% )Doublehelix Biology Science and Technology Co.,LtdL3202A
PageRuler Prestained Protein LadderThermo Fisher Scientific26617
PBS bufferBiosharpG4202
SDS-PAGE Protein loading buffer (5×)Beyotime BiotechnologyP0015
Skim milk powderBioFroxx1172GR500
Sprague Dawley ratsNingxia Medical UniversitySCXK (Ning) 2020-0001
TEMED Boster Biological Technology Co.,LtdAR1165
Total protein extraction kit Ken Gen Biotech. Co. LtdKGP2100
Trans-Blot ModuleBIO-RAD1703935
Tris base Boster Biological Technology Co.,LtdAR1162
Tweezer Changde BKMAM Biotechnology Co., Ltd130302027
β-actinCell Signaling Technology#4970

References

  1. Cehajic-Kapetanovic, J., et al. Association of a novel intronic variant in RPGR with hypomorphic phenotype of X-linked retinitis pigmentosa. JAMA Ophthalmol. 138 (11), 1151-1158 (2020).
  2. Pan, M. Y., et al. Mice deficient in UXT exhibit retinitis pigmentosa-like features via aberrant autophagy activation. Autophagy. 17 (8), 1873-1888 (2021).
  3. Xiong, Y. C., et al. 17β-Oestradiol attenuates the photoreceptor apoptosis in mice with retinitis pigmentosa by regulating N-myc downstream regulated gene 2 expression. Neuroscience. 452, 280-294 (2021).
  4. Zhang, S., et al. Müller cell regulated microglial activation and migration in rats with -Methyl--Nitrosourea-Induced retinal degeneration. Front Neurosci. 14, 606486 (2020).
  5. Karine, B., et al. Transferrin non-viral gene therapy for treatment of retinal degeneration. Pharmaceutics. 12 (9), 836 (2020).
  6. Yan, W. M., et al. Protection of retinal function and morphology in MNU-induced retinitis pigmentosa rats by ALDH2: an in-vivo study. BMC Ophthalmol. 20 (1), 55 (2020).
  7. Zhu, Y. F., et al. Lycium barbarum polysaccharides attenuates N-methy-N-nitrosourea-induced photoreceptor cell apoptosis in rats through regulation of poly (ADP-ribose) polymerase and caspase expression. J Ethnopharmacol. 191, 125-134 (2016).
  8. He, S. Q., et al. Effects and mechanisms of water-soluble Semen cassiae polysaccharide on retinitis pigmentosa in rats. Food Sci Technol. 40 (1), 84-88 (2020).
  9. Chen, Q., Cheng, Z. H., Hu, B. J. Current situation of vitreous and retinal related tissue specimens collection and application. Chinese J Ocular Fundus Dis. 36 (5), 396-399 (2020).
  10. Zhang, Y., et al. Salidroside modulates repolarization through stimulating Kv2.1 in rats. Eur J Pharmacol. 977, 176741 (2024).
  11. Deng, F. Y., Han, M. Y., Deng, T. T., Jin, M. Research progress of gene therapy for retinitis pigmentosa. Int Eye Sci. 21 (7), 1205-1208 (2021).
  12. Lin, B., Youdim, M. B. H. The protective, rescue and therapeutic potential of multi-target iron-chelators for retinitis pigmentosa. Free Radic Biol Med. 174, 1-11 (2021).
  13. Carullo, G., et al. Retinitis pigmentosa and retinal degenerations: deciphering pathways and targets for drug discovery and development. ACS Chem Neurosci. 11 (15), 2173-2191 (2020).
  14. Zhang, Z. J., et al. Quantification of microvascular change of retinal degeneration in Royal College of Surgeons rats using high-resolution spectral domain optical coherence tomography angiography. J Biomed Opt. 28 (10), 106001 (2023).
  15. Loiseau, A., Raîche-Marcoux, G., Maranda, C., Bertrand, N., Boisselier, E. Animal models in eye research: focus on corneal pathologies. Int J Mol Sci. 24 (23), 16661 (2023).
  16. Gregory-Evans, K. A review of diseases of the retina for neurologists. Handb Clin Neurol. 178, 1-11 (2021).
  17. Li, X. M., et al. Targeting long noncoding RNA-AQP4-AS1 for the treatment of retinal neurovascular dysfunction in diabetes mellitus. EBioMedicine. 77, 103857 (2022).
  18. Lee, D., et al. Retinal degeneration induced in a mouse model of ischemia-reperfusion injury and its management by pemafibrate treatment. FASEB J. 36 (9), e22497 (2022).
  19. Zhang, Q. L., Zhao, N., Li, Z. J. Effects of salidroside on retinopathy in diabetic rats based on COX-2/PGE2/VEGF pathway. J China Medical Uni. 52 (8), 731-935 (2023).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

N methyl N nitrosoureaTUNEL

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved