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* 这些作者具有相同的贡献
假型病毒 (PV) 是复制缺陷的病毒粒子,用于在比处理真实病毒更安全的条件下研究宿主-病毒相互作用。这里介绍的是一个详细的方案,显示了如何使用 SARS-CoV-2 PV 来测试 COVID-19 疫苗接种后患者血清的中和能力。
假型病毒 (PV) 是一种分子工具,可用于研究宿主-病毒相互作用和测试血清样本的中和能力,此外,它们在基因治疗中更广为人知的用途是递送目标基因。PV 具有复制缺陷,因为病毒基因组被分成不同的质粒,这些质粒未掺入 PV 中。这种安全且多功能的系统允许在生物安全 2 级实验室中使用 PV。在这里,我们提出了一种基于此处提到的三种质粒生产慢病毒 PV 的通用方法:(1) 携带监测感染所需的报告基因的骨架质粒;(2)包装质粒携带产生PV所需的所有结构蛋白的基因;(3)包膜表面糖蛋白表达质粒,决定病毒嗜性并介导病毒进入宿主细胞。在这项工作中,SARS-CoV-2 Spike 是用于生产非复制性 SARS-CoV-2 假型慢病毒的包膜糖蛋白。
简而言之,使用标准方法将包装细胞 (HEK293T) 与三种不同的质粒共转染。48小时后,收获含有PV的上清液,过滤,并在-80°C下储存。 通过研究感染后 48 小时靶细胞系中报告基因(荧光素酶)的表达来测试 SARS-CoV-2 PV 的感染性。相对发光单位 (RLU) 的值越高,感染/转导率越高。此外,将传染性PV添加到连续稀释的血清样品中,以研究假病毒进入靶细胞的中和过程,以RLU强度的降低来衡量:较低的值对应于高中和活性。
假型病毒 (PV) 是微生物学中用于研究宿主-病毒和病原体-病原体相互作用的分子工具 1,2,3,4。PV 由内部部分(保护病毒基因组的病毒核心)和外部部分(定义向性5 的病毒表面的包膜糖蛋白)组成。假病毒在靶细胞中是复制不合格的,因为它不包含产生新病毒颗粒的所有遗传信息。这种特殊特征的组合使PV成为野生型病毒的安全替代品。另一方面,野生型病毒具有高致病性,不能在 BSL 2 实验室中用于分析6。
PV的传染性可以通过报告基因来监测,报告基因通常编码荧光蛋白(GFP、RFP、YFP)或产生化学发光产物的酶(荧光素酶)。它包含在用于 PV 生产的质粒之一中,并掺入假病毒7 的基因组中。
目前存在几种类型的 PV 核心,包括基于 HIV-1 基因组的慢病毒衍生颗粒。与其他平台相比,基于 HIV-1 的 PV 的最大优势在于它们在靶细胞基因组中的内在整合过程8。尽管HIV-1是一种高度....
本协议已获得维罗纳大学伦理委员会的批准并遵循其指导方针(批准协议编号 1538)。从参与研究的人类受试者那里获得知情书面同意。从正在接种抗SARS-CoV-2疫苗的医护人员(HCW)志愿者身上采集全血样本。将这些样品收集在含有抗凝剂的塑料管中,以便随后分离血清15。
以下所有过程必须在 2 类生物罩中执行,在无菌条件下工作。必须小心处理病毒,所有废物必须在稀释的漂白剂溶液中中和。该协议的概述如 图 1 所示。
图 1:中和测定的图形表示。 (A)PV生产,(B)PV滴定和(C)中和测定。所有程序均在无菌条件下在 2 级生物罩中进行。在用于中和测定 (C) 之前,需要执行滴定步骤 (B) 以标....
该协议描述了 SARS-CoV-2 PV 的产生以及这些 PV 的下游应用,以分析接受抗 COVID-19 疫苗接种的受试者血清/血浆的中和活性17。此外,该协议可用于产生每个 SARS-CoV-2 关注变体 (VOC) 的假型,以测试中和反应的演变。尽管该协议有助于研究 COVID-19 疫苗接种后的体液免疫反应,但它可以适应于轻松测试不同血清/血浆对不同病毒的中和作用 13,18,19。
尽管使用野生型病毒模拟实际感染,但慢病毒 PV 是研究与病毒进入和感染相关的机制的更安全选择,而无需处理致病病毒所需的严格安全要求 4,20,21。PV 由复制缺陷的病毒核心组成,该核心被致病病毒的表面包膜糖蛋白包围,这是研究的目的。
基于 HIV-1 的 PV 是使用最广泛的平台之一,这些平台已在该协?.......
作者声明没有利益冲突。
我们感谢卫生保健工作者志愿者的贡献。该项目得到了意大利 MUR 2023/2027 卓越部的支持。AR 和 DZ 得到了 PRIN2022(欧盟资助;下一代欧盟)
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.45 μm filter | SARSTEDT | 83 1826 | |
6-well plate | SARSTEDT | 83 3920 | |
96-well plate | SARSTEDT | 8,33,924 | |
Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Units | Merck | 10403892 | |
Black Opaque 96-well Microplate | Perkin Elmer | 60005270 | |
Dulbecco's Modified Eagle Medium | SIGMA-ALDRICH | D6546 - 500ML | |
Dulbecco's phosphate buffered saline (PBS 1x) | AUROGENE | AU-L0615-500 | |
Foetal Bovine Serum | AUROGENE | AU-S1810-500 | |
Graphpad Prism version 7 | graphpad dotmatics | NA | In the manuscript, we replace the commercial name with 'data analysis program' |
HEK293T cells | ATCC | CRL-3216 | |
HEK293T/ACE2 cells | ATCC | CRL-3216 | HEK293T has been transduced to overexpress ACE2 with a lentiviral vector. |
L-glutamine | AUROGENE | AU-X0550-100 | |
Luminometer - Victor3 | Perkin Elmer | HH35000500 | In the manuscript, we replace the commercial name with 'luminometer' |
Opti-MEM | Thermo Fisher Scientific | 11058021 | In the manuscript, we replace the commercial name with 'reduced serum medium' |
p8.91 packaging plasmid | Di Genova et al., 2021 | A kind gift from Prof. Nigel Temperton (ref 16.) | |
pCSFLW reporter plasmid | Di Genova et al., 2021 | A kind gift from Prof. Nigel Temperton (ref 16.) | |
Penicillin/streptomycin | AUROGENE | AU-L0022-100 | |
Polyethylenimine, branched (PEI) (25 kDa) | SIGMA-ALDRICH | 408727 | |
RRL.sin.cPPT.SFFV/Ace2.IRES-puro.WPRE (MT126) | Addgene | 145839 | This plasmid was used to generate HEK293Tcells/ACE2 |
SARS-CoV-2 Spike expressing plasmid | Addgene | pGBW-m4137382 | |
steadylite plus Reporter Gene Assay System | Perkin Elmer | 6066759 | In the manuscript, we replaced the commercial name with 'luciferase reading reagent' |
Trypsin EDTA 1x | AUROGENE | AU-L0949-100 |
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