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本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 代表性结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

软脑膜淋巴内皮细胞 (LEC) 是一种最近发现的颅内细胞类型,其功能知之甚少。本研究提出了一种可重复的方案,用于从小鼠收获 LLEC 并建立 体外 原代培养物。该协议旨在使研究人员能够深入研究 LEC 的细胞功能和潜在临床意义。

摘要

软脑膜淋巴内皮细胞 (LEC) 是最近发现的颅内细胞群,具有与外周淋巴内皮细胞明显不同的独特分布。它们的细胞功能和临床意义在很大程度上仍然未知。因此,LLEC供应的可用性对于进行体外功能研究至关重要。然而,目前尚无现成的 体外收获和培养 LEC 的方案。

本研究使用多步骤方案成功收获了 LEC,其中包括用纤连蛋白包被烧瓶、在显微镜的帮助下解剖软脑膜、酶促消化软脑膜以制备单细胞悬浮液、用血管内皮生长因子-C (VEGF-C) 诱导 LLEC 扩增,以及通过磁活化细胞分选 (MACS) 选择淋巴管透明质酸受体-1 (LYVE-1) 阳性细胞。这个过程最终导致了一种主要文化的建立。通过免疫荧光染色和流式细胞术分析确认了LLECs的纯度,纯度超过95%。该多步方案已证明具有可重复性和可行性,这将极大地促进探索LLEC的细胞功能和临床意义。

引言

新发现的软脑膜淋巴内皮细胞 (LEC) 在软脑膜内形成单个细胞的网状结构,与外周淋巴内皮细胞相比,表现出不同的分布模式 1,2。与LLEC相关的细胞功能和临床意义在很大程度上仍然是未知的领域。为了为LLEC的功能研究铺平道路,必须建立体模型进行研究。因此,本研究设计了一种用于 LEC 分离和原代培养的综合方案。

小鼠是首选的动物模型,因为它们适合在疾病研究中进行基因操作。先前的研究已成功从各种小鼠组织中分离出淋巴内皮细胞,包括淋巴结3、肠系膜组织4、真皮组织5、收集淋巴管6 和肺组织7。这些分离程序主要依赖于磁活化细胞分选 (MACS) 和流式细胞术分选等技术 8,9,10此外,研究工作还导致了大鼠蛛网膜细胞系和大鼠淋巴毛细血管细胞系的建立....

研究方案

该研究获得了昆明医科大学动物实验伦理委员会(kmmu20220945)的批准。所有实验均遵循既定的动物护理准则。从年龄在6-8周龄、体重在20-25g之间的雄性C57Bl/6J小鼠中收获软脑膜淋巴内皮细胞(LEC)。这些小鼠购自中国昆明的昆明医科大学。整个实验过程在严格的无菌条件下进行。除非另有说明,否则所有离心步骤均在室温下进行。

1.试剂和仪器的制备

注意:所有涉及溶液的步骤都必须在 II 类生物危害柜内进行。

  1. 通过将磷酸盐缓冲盐水(PBS)与钙和镁,10%胎牛血清(FBS)和1%青霉素 - 链霉素(P / S)混合来制备洗涤缓冲液(参见 材料表)。将该缓冲液保持在4°C。 必须在使用当天新鲜准备并对缓冲液进行脱气。
  2. 通过将 10 mL PBS(不含钙和镁)与 2 mL 0.25% 胰蛋白酶、1 mL 20 mg/mL 木瓜蛋白酶和 200 μL 1 mg/mL 胶原酶 I 混合来制备消化酶(见 材料表)。
    注意: 确保使用适当体积的等分试样,以防止反复冻融循环。将这些等分试样储存在-20°C。
  3. 利用市售的内皮细胞生长培养基试剂盒制备培养基,其中包括VEGF-C(100ng / mL)和1%P / S(参见 材料表)。....

代表性结果

本研究提出了一种可重复的多步骤方案,用于从小鼠身上收获淋巴内皮细胞 (LEC) 并随后 在体外建立其原代培养物。关键步骤包括烧瓶制备和纤连蛋白包被、软脑膜解离、通过酶消化获得单细胞悬浮液以及用 VEGF-C 诱导 LLECs 扩增。然后使用磁活化细胞分选 (MACS) 选择性分离 LYVE-1 阳性 LEC。最后,进行免疫荧光染色和流式细胞术分析以评估 LLEC 纯度,MTT 测定结果显示 LLEC 生长速率稳健(.......

讨论

以前没有报道过在 体外 收获和培养LLEC的现有方案。本研究介绍了一种可重复的多程序方案,用于从小鼠软脑膜中收获和培养 LEC。

虽然这种多程序方案是可重复的,但有几个关键考虑因素。例如,纤连蛋白包被的 T25 烧瓶通过消除非贴壁细胞来促进 LEC 的粘附和功能,从而确保更均匀的细胞群。此外,解离软脑膜的手术过程的持续时间和温度是影响细胞活力的关键因素.......

披露声明

作者声明他们没有利益冲突需要披露。

致谢

该研究得到了国家自然科学基金(81960226,81760223)、云南省自然科学基金(202001AS070045,202301AY070001-011)和云南省教育厅科研基金(2023Y0784)的资助。

....

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Block bufferBeyotimeP0102Store aliquots at –4 °C
Collagenase ISolarbioC8140Store aliquots at –20 °C
DAPIBeyotimeP0131Store aliquots at –20 °C
DMEMSolarbio11995Store aliquots at –4 °C
D-PBSSolarbioD1041Store aliquots at –4 °C
EGM-2 MV Bullet KitLonzaC-3202Store aliquots at –4 °C
FBSSolarbioS9010Store aliquots at –20 °C
FibronectinSolarbioF8180 Store aliquots at –20 °C
FlowJo SoftwareBD BiosciencesV10.8.1
LYVE-1 antibodyeBioscience12-0443-82Store aliquots at –4 °C
Magnetic separatorMiltenyi130-042-302Sterile before use
Magnetic separator standMiltenyi130-042-303Sterile before use
MicrobeadsMiltenyi130-048-801Store aliquots at –4 °C
P/SSolarbioP1400Store aliquots at –20 °C
PapainSolarbioG8430-25gStore aliquots at –20 °C
PBSSolarbioD1040Store aliquots at –4 °C
PDPN antibodySantasc-53533Store aliquots at –4 °C
PFASolarbioP1110Store aliquots at –4 °C
PROX1 antibodySantasc-81983Store aliquots at –4 °C
Selection column Miltenyi130-042-401Sterile before use
TrypsinGibco25200072Store aliquots at –20 °C
VEGF-C Abcamab51947Store aliquots at –20 °C
VEGFR-3 antibodySantasc-514825Store aliquots at –4 °C

参考文献

  1. Shibata-Germanos, S., et al. Structural and functional conservation of non-lumenized lymphatic endothelial cells in the mammalian leptomeninges. Acta Neuropathologica. 139 (2), 383-401 (2020).
  2. Suárez, I., Schulte-Merker, S.

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