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* 这些作者具有相同的贡献
新皮层的初级感觉区域在发育过程中表现出独特的自发活动。本文介绍了如何可视化单个神经元活动和初级感觉区域,以分析 体内新生小鼠的面积特异性同步活动。
哺乳动物大脑在整个产前和产后期间在细胞和回路水平上经历动态发育变化。在发现许多导致这些发育变化的基因之后,现在已知神经元活动也显着调节这些过程。在发育中的大脑皮层中,神经元表现出特定于每个主要感觉区域的同步活动模式。这些模式与在成熟皮层中观察到的模式明显不同,强调了它们在调节特定区域发育过程中的作用。发育过程中神经元活动的缺陷会导致各种脑部疾病。这些发现强调了检查神经元发育中活动模式背后的调节机制的必要性。本文总结了一系列协议,用于可视化新生小鼠的初级感觉区域和神经元活动,在 体内使用双光子显微镜对皮层子场内单个神经元的活动进行成像,并分析与子场相关的活动相关性。我们展示了体感皮层中单个桶内拼凑状同步活动的代表性结果。我们还讨论了该协议的各种潜在应用和一些局限性。
大脑皮层包含几个具有不同功能的感觉区域。这些区域接收来自其相应感觉器官的输入,主要通过脊髓或脑干传递并通过丘脑传递 1,2。值得注意的是,每个初级感觉区的神经元在早期发育阶段表现出独特的同步活动,这些活动也起源于感觉器官或下神经中枢,但与在成熟皮层中观察到的活动本质上不同3。
例如,在新生啮齿动物中,初级视觉区域 (V1) 显示波状活动,该活动起源于视网膜(视网膜波)并通过整个视觉通路传播,同时保留视网膜4。初级听觉区域 (A1) 表现出同步活动,组织在与成熟大脑中的等频带相对应的带状子区域中。这种活动来自耳蜗的内毛细胞 5,6。初级体感区 (S1) 的桶状皮层表现出一种拼凑状的活动模式,其中单个桶内的第 4 层神经元,即对单个胡须做出反应的神经元,被同步激活7。虽然提出起源于三叉神经节,但活动的来源仍然未知7。因此,新生儿活动模式在每个主要感觉区域和区域内子领域内都是专门的。神经元活动和....
所有实验均按照熊本大学和国立遗传学研究所的动物实验指南进行,并得到动物实验委员会的批准。
1. 宫内 电穿孔 (IUE)
图 1 显示了使用本协议可视化的 P6 幼崽桶状皮层中第 4 层神经元活动的代表性结果。绿色通道 (GCaMP) 和红色通道 (TCA-RFP) 的双光子图像进行了时间平均,如图 1A 所示。由于 TCA-RFP 荧光比 GCaMP 荧光弱得多,因此 GCaMP 信号泄漏到红色通道中(图 1A1,A2)。在表达 GCaMP 的神经元上绘制了 14 .......
鉴于自发活动从感觉器官或下神经系统出现,并通过相当于成熟神经系统的通路传播到初级感觉区域3,因此定义初级感觉区域和该区域内成像神经元的位置至关重要。在该协议中,我们通过使用可视化丘脑皮质轴突的转基因小鼠和稀疏表达 GCaMP 的 Supernova 系统来满足这一要求8。这些技术能够分析每个感觉区域内以及区域内子领域的活?.......
作者没有需要申报的相互竞争的经济利益。
这项工作得到了日本科学振兴会变革性研究领域资助资助 (B) (22H05092, 22H05094) 和科学研究资助 20K06876,AMED,资助号 21wm0525015、武田科学基金会、内藤基金会、加藤纪念生物科学基金会、Kowa 生命科学基金会、NIG-JOINT (24A2021)(至 HM);以及日本科学振兴会科学研究补助金 19K06887 和 22K06446、儿玉医学研究纪念基金、上原纪念基金会、加藤纪念生物科学基金会和武田科学基金会(至 N.N-T.)。我们感谢 Takuji Iwasato 博士的 TCA-RFP 小鼠。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
20× objective lens (water immersion) | |||
250 mL Vacuum Filter/Storage Bottle System | Corning | 431096 | |
4%-paraformaldehyde phosphate buffer solution (4% PFA) | Nacalai | 09154-85 | |
Acrylic resin (UNIFAST II) | GC | N/A | |
Agarose | Sigma | A9793 | |
Aspirator tube assembly | Drummond | 2-040-000 | |
CaCl2•2H2O | Nacalai | 06731-05 | |
Electroporator | BEX | GEB14 | |
Eye drop (Scopisol) | Senju Pharmaceutical | N/A | |
Fluorescence stereo microscope | Leica | M165FC | |
Glucose | Nacalai | 16806-25 | |
Heating pad | Muromachi Kikai | FHC-HPS | |
HEPES | Gibco | 15630-080 | |
Isoflurane | Pfizer | N/A | |
KCl | Nacalai | 28514-75 | |
MgSO4•7H2O | Wako | 131-00405 | |
Micropipette puller | Narishige | PC-100 | |
Multiphoton laser | Spectra-Physics | Mai Tai eHP DeepSee | |
Multiphoton microscope | Zeiss | LSM 7MP | |
NaCl | Nacalai | 31320-05 | |
Non-woven fabric (Kimwipe) | Kimberly Clark | S-200 | |
Phosphate buffered saline (PBS) | Nacalai | 27575-31 | |
Plasmid: CAG-loxP-STOP-loxP-GCaMP6s-ires-tTA-WPRE | Addgene | pK175 | |
Plasmid: TRE-nCre | Addgene | pK031 | |
Precision calibrated micropipets | Drummond | 2-000-050 | |
Razor blade | Feather | FA-10 | |
Rimadyl (50 mg/mL Carprofen) | Zoetis JP | N/A | |
Round cover glass, 3-mm-diameter | Matsunami | CS01078 | |
Saline | Otsuka | 035175315 | |
Sodium pentobarbital | Nacalai | 26427-72 | |
Stage for imaging living pup (two single-axis translation stage for XY positioning, two-axis goniometer, base plate, adjustable pillar for z positioning) | ThorLabs | LT1/M, GN2/M, BM2060/M, MLP01/M | |
TCA-RFP mouse | N/A | N/A | Mizuno et al., 2018a |
Tissue adhesive (Vetbond) | 3M | 1469SB | |
Titanium bar | Endo Scientific Instrument | N/A | Custom made (Mizuno et al., 2018b) |
Titanium bar fixing plate | N/A | Custom made (Mizuno et al., 2018b) | |
Trypan blue | Sigma | T8154 | |
Tweezers with platinum plate electrode, 5 mm diameter | BEX | CUY650P5 | |
Wild-type ICR mouse | Nihon SLC | Slc:ICR |
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