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本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 代表性结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

该协议描述了为体积电子显微镜制备视网膜样品的详细步骤,重点是视网膜感光器末端的结构特征。

摘要

体电子显微镜 (Volume EM) 已成为一种强大的工具,可以以纳米级的精度可视化细胞和组织的 3D 结构。在视网膜内,各种类型的神经元在内丛层和外丛状层建立突触连接。虽然传统的 EM 技术已经对视网膜亚细胞器产生了有价值的见解,但它们的局限性在于提供 2D 图像数据,这可能会阻碍准确测量。例如,量化三个不同突触囊泡池的大小对于突触传递至关重要,在 2D 中具有挑战性。Volume EM 通过提供大规模、高分辨率的 3D 数据来提供解决方案。值得注意的是,样品制备是体积电镜中的关键步骤,会显著影响图像清晰度和对比度。在这种情况下,我们概述了用于视网膜中感光器轴突末端 3D 重建的样品制备方案。该协议包括三个关键步骤:视网膜解剖和固定、样本包埋过程和感兴趣区域的选择。

引言

视网膜上密布着交织在一起的神经元轴突和树突,它们在它们之间形成突触1。显微镜是研究视网膜解剖结构不可或缺的工具,因为它具有精细、复杂和微小的结构。尽管电子显微镜 (EM) 为研究亚细胞器的超微结构和纳米级特定蛋白质的准确定位提供了无与伦比的能力2,但它产生的图像仅限于二维 (2D) 平面,从而导致关键信息的潜在丢失。

新兴的高分辨率体电子显微镜 (Volume EM) 技术的发展支持提供更全面和更大规模的三维 (3D) 结构信息。一些 3D EM 方法最近被其他人审查了 3,4,5。3D EM 允许重建神经元形状和连接细节,从而能够对感兴趣的结构进行精确的定量分析。这表明 volume EM 获得的数据更加系统、完整和准确。

视网膜光感受器构成视觉信号传导中的初始神经元 6,7感光器末端与二级双极和水平细胞的树突建立突触,以促进兴奋信号 8,9<....

研究方案

动物护理和使用方案由温州医科大学伦理委员会批准,并遵循视觉与眼科学研究协会 (ARVO) 制定的指南。所有小鼠维持在 12 小时的光照和 12 小时的黑暗循环中,并提供标准的食物饮食。

1. 视网膜清扫和固定

  1. 通过腹膜内注射 2,2,2-三溴乙醇(0.25 mg/g 体重)麻醉小鼠 (C57BL/6J,雄性,8 周龄,20-25 g)。通过捏住脚趾后后爪没有缩回或没有眨眼反射来确认麻醉深度。然后,在麻醉下脱臼颈椎以对动物实施安乐死。
    注意:选择三溴乙醇是因为其在小动物模型中诱导快速可靠麻醉的有据可查的功效,特别是对于短期手术。虽然首选药物级麻醉剂,但三溴乙醇在某些方案中具有特定的优势,如果制备和管理得当,使其成为合适的替代品。已采取一切预防措施以确保其安全有效地使用。本研究通过确保适当的准备、管理和监测来减轻与其使用相关的潜在风险,从而遵守道德考虑。
  2. 用弯曲的剪刀去除眼睛,然后将眼睛浸入含有 2% 戊二醛和 2% 多聚甲醛的磷酸盐缓冲液(PB,0.1 M,pH 7.4)的混合溶液中。
  3. 在解剖显微镜下用镊子从眼睛中取出眼前段和玻璃体。
  4. 用两个镊子剥开巩膜,直到视网膜与眼罩完全分离。
  5. 用剃须刀将视网膜快速切成 100 - 200 μm 厚的条带,然后用巴斯德移液管将视网膜条带....

代表性结果

图 1A 显示了使用传统化学双固定方法制备的视网膜感光器末梢的图像, 图 1B 显示了使用 OTO 方法制备的视网膜感光器末梢的图像。两者都通过 FIB-SEM 采样。可以清楚地看到,使用 OTO 方法可以尽可能地保留细胞膜结构,甚至可以清楚地看到囊泡的轮廓。此外,使用 OTO 方法获得的图像的对比度也更加清晰。

讨论

我们实施了 OTO 的 Volume EM 样品制备方案来分析视网膜组织中光感受器的末端结构。重点是详细介绍整个过程,从视网膜的分离和固定开始,到展示感光器轴突末端的 3D 重建结果。

与脑组织不同,视网膜组织的显着特征在于它没有区域差异。视网膜由三层神经元细胞体和两层突触连接组成,尽管其神经元和突触成分很复杂,但视网膜仍表现出规则和?.......

披露声明

作者没有披露。

致谢

这项工作部分得到了中国国家重点研发计划 (2022YFA1105503)、神经科学国家重点实验室 (SKLN-202103)、中国浙江省自然科学基金 (Y21H120019) 的资助。

....

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
2,2,2-TribromoethanolSigma-AldrichT48402
AcetoneElectron Microscopy Science10000
Amira 6.8Thermo Fisher Scientific
CaCl2SigmaC-2661
Embedding moldBeijing Zhongjingkeyi TechnologyGP10590
Epon resinElectron Microscopy Science14900
EthanolSigma64-17-5
GlutaraldehydeElectron Microscopy Science16020
Helios NanoLab 600i dual-beam SEMFEI
L-aspartic acidSigma56-84-8
Lead nitrateSigma10099-74-8
Na2HPO4.12H2OSigma71650A component of phosphate buffer
NaH2PO4.H2OSigma71507A component of phosphate buffer
OsO4TED PELLA4008-160501
ParaformaldehydeElectron Microscopy Science157-8
Potassium ferrocyanideSigma14459-95-1
Sodium cacodylateSigma6131-99-3
Sputter coaterLeicaACE200
ThiocarbohydrazideSigma2231-57-4
Uranyl acetateTED PELLACA96049

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