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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats Représentatifs
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Ce protocole décrit en détail les étapes de préparation des échantillons rétiniens pour la microscopie électronique volumique, en mettant l’accent sur les caractéristiques structurelles des terminaisons des photorécepteurs rétiniens.

Résumé

La microscopie électronique volumique (Volume EM) est devenue un outil puissant pour visualiser la structure 3D des cellules et des tissus avec une précision nanométrique. À l’intérieur de la rétine, divers types de neurones établissent des connexions synaptiques dans les couches plexiformes internes et externes. Bien que les techniques EM conventionnelles aient permis d’obtenir des informations précieuses sur les organites subcellulaires de la rétine, leur limite réside dans la fourniture de données d’image 2D, ce qui peut entraver la précision des mesures. Par exemple, la quantification de la taille de trois bassins de vésicules synaptiques distincts, cruciale pour la transmission synaptique, est un défi en 2D. Volume EM offre une solution en fournissant des données 3D à grande échelle et à haute résolution. Il convient de noter que la préparation des échantillons est une étape critique du volume EM, car elle a un impact significatif sur la clarté et le contraste de l’image. Dans ce contexte, nous décrivons un protocole de préparation d’échantillons pour la reconstruction 3D des terminaisons axonales des photorécepteurs dans la rétine. Ce protocole comprend trois étapes clés : la dissection et la fixation de la rétine, les processus d’intégration de l’échantillon et la sélection de la zone d’intérêt.

Introduction

La rétine est densément remplie d’axones neuronaux et de dendrites entrelacés qui forment des synapses entre eux1. La microscopie est un outil indispensable pour l’étude de l’anatomie de la rétine car elle possède des structures fines, complexes et petites. Bien que la microscopie électronique (EM) offre une puissance inégalée pour étudier l’ultrastructure des organites subcellulaires et la localisation précise de protéines spécifiques au niveaunanométrique 2, elle produit des images limitées au plan bidimensionnel (2D), entraînant une perte potentielle d’informations clés.

Protocole

Les protocoles de soin et d’utilisation des animaux ont été approuvés par le comité d’éthique de l’Université de médecine de Wenzhou et ont suivi les directives établies par l’Association pour la recherche en vision et en ophtalmologie (ARVO). Toutes les souris ont été maintenues dans un cycle de 12 heures de lumière et de 12 heures d’obscurité et ont reçu un régime alimentaire standard.

1. Dissection et fixation de la rétine

  1. Anesthésier les souris (C57BL/6J, mâle, 8 semaines, 20-25 g) en injectant du 2,2,2-tribromoéthanol (0,25 mg/g de poids corporel) par voie intrapéritonéale. C....

Résultats Représentatifs

La figure 1A montre l’image des terminaisons des photorécepteurs rétiniens préparée à l’aide de la méthode traditionnelle de double fixation chimique, et la figure 1B montre l’image des terminaisons des photorécepteurs rétiniens préparée à l’aide de la méthode OTO. Les deux ont été échantillonnés par FIB-SEM. On peut clairement voir que la structure de la membrane cellulaire peut être conservée autant q.......

Discussion

Nous avons mis en œuvre le protocole de préparation d’échantillons Volume EM de l’OTO pour analyser la structure terminale des photorécepteurs dans le tissu rétinien. L’accent a été mis sur les détails de l’ensemble de la procédure, en commençant par le décollement et la fixation de la rétine jusqu’à la présentation des résultats de la reconstruction 3D des terminaisons axonales des photorécepteurs.

La particularité du tissu rétinie.......

Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucune divulgation.

Remerciements

Ce travail a été soutenu en partie par des subventions du Programme national de recherche et de développement clés de Chine (2022YFA1105503), du Laboratoire clé d’État de neurosciences (SKLN-202103) et de la Fondation des sciences naturelles du Zhejiang de Chine (Y21H120019).

....

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
2,2,2-TribromoethanolSigma-AldrichT48402
AcetoneElectron Microscopy Science10000
Amira 6.8Thermo Fisher Scientific
CaCl2SigmaC-2661
Embedding moldBeijing Zhongjingkeyi TechnologyGP10590
Epon resinElectron Microscopy Science14900
EthanolSigma64-17-5
GlutaraldehydeElectron Microscopy Science16020
Helios NanoLab 600i dual-beam SEMFEI
L-aspartic acidSigma56-84-8
Lead nitrateSigma10099-74-8
Na2HPO4.12H2OSigma71650A component of phosphate buffer
NaH2PO4.H2OSigma71507A component of phosphate buffer
OsO4TED PELLA4008-160501
ParaformaldehydeElectron Microscopy Science157-8
Potassium ferrocyanideSigma14459-95-1
Sodium cacodylateSigma6131-99-3
Sputter coaterLeicaACE200
ThiocarbohydrazideSigma2231-57-4
Uranyl acetateTED PELLACA96049

Références

Réimpressions et Autorisations

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Mots cl s chantillons r tiniensMicroscopie lectronique volumiqueReconstruction 3DTerminaisons axonales des photor cepteursPr paration d chantillonsDissection de la r tineFixationInt grationZone d int r t

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